Name: 오일 유제에서 물 : 소수성 안료와 수용성 엽록소 결합 단백질을 조립하기위한 새로운 시스템 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 26 s
Description: 배우세요 오일 유제를 이용하여 소수성 엽록소를 수용성 결합 단백질에 조립하는 고효율 방법을. 태그 없이 단백질 스크리닝이 가능하며 엽록소-단백질 상호작용 연구에 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

DN은 EU FP7 프로젝트의 PEPDIODE (GA 256672)과 REGPOT-2012-2013-1 (GA 316157), 그리고 이스라엘 과학 재단에서 개인 연구 보조금 (제 10분의 268)의 지원을 인정합니다. 우리는 공 초점 현미경 이미지를내어 교수 쉬 무엘 루빈스타인, 공학부 및 응용 과학, 하버드 대학, 캠브리지 MA, USA 감사합니다.

1. 엽록소에게 주식 솔루션을 준비 <ol><li> 중요한 단계는 : 광 손상을 최소화하기 위해, 녹색 광 (520 ㎚) 또는 어두운 하에서 화학적 후드 엽록소 제조의 모든 단계를 수행한다. 항상 저장을 위해 안료를 동결하기 전에 질소 나 아르곤을 추가합니다. 모든 용매 분석 학년 있는지 확인합니다. </li><li> 틸라코이드 막 만 엽록소 a를 포함하는 동결 건조 스피루리나 platensis 세포 또는 다른 cyanobacterium 세포의 약 5 mg의 무게 박격포와 유 봉을 사용하여 분쇄. </li><li> 유리 컬럼에 짓 눌린 세포를로드 및 카로티노이드를 제거하기 위해 약 50 ~ 100 ml의 100 % 아세톤으로 세척한다. 용출 된 오렌지 / 그린 부분을 폐기하십시오. 주 : 오렌지 분획을 아세톤 100 ㎖로 용출되지 않으면 녹색 분획이 용출되기 시작할 때까지 아세톤으로 세포를 세척 계속한다. </li><li> 과거 100 % 메탄올, 아세톤 및 엽록소 함유 녹색 분획을 수집한다. 용출 fract의 부피이온은 50 ~ 100 ml의 사이에 다를 수 있습니다. 초기에 용출 된 분획을 용출 끝에 옅은 녹색으로 변화되는 짙은 녹색을 갖는다. 용출 된 부분의 색이 옅은 녹색으로 바뀌면 용출를 중지합니다. </li><li> 추출물을 완전히 건조 될 때까지 회전 증발기를 사용하여 메탄올을 증발시켰다. 솔루션에 열을 가하지 마십시오; 증발기의 수조 온도가 30 ° C를 초과하지 않는 것을 보장한다. 참고 : 증발의 시간이 증발되는 메탄올 분획의 양에 따라 달라지며 10 ~ 60 분 사이에 다를 수 있습니다. 완전히 추출물을 건조하는 것이 중요하다. </li><li> 디 에틸 에테르 (약 5 ~ 10 ㎖)의 작은 볼륨에서 건조 추출물에서 색소를 용해하고, 탈지면을 통해 필터링합니다. 안료가 완전히 필터링 전에 에테르에 용해되어 있는지 확인합니다. </li><li> 안료가 (10-30 분)이 완전히 건조 될 때까지 디 에틸 에테르를 증발시켰다. 주 : 건조 안료는 치환 및 질소 또는 아르곤하에 유지 될 수 -20 ° C, 추가 처리 될 때까지 어둠한다. </li><li> 하지 모두가 완전히 정지되는 경우에도 100 %의 메탄올 (약 1 ㎖)의 가능한 가장 작은 양의 건조 안료를 녹인다. 이 용액에 아세톤 4 mL를 넣고 완전히 안료를 용해하기 위해 부드럽게 유리를 쓸어. </li><li> 파스퇴르 피펫을 사용하여, DEAE의 열이 100 % 아세톤에 평형 세 파로스에 부드럽게 샘플을로드합니다. </li><li> 100 % 아세톤으로 용출 카로티노이드 (오렌지색 - 노란 밴드). 1 v / V를 아세톤 / 메탄올 혼합물 : 다음, 3 엽록소 A (녹색 밴드) 용출. 주 : 아세톤, 아세톤 / 메탄올 혼합물의 부피가 컬럼에 로딩 DEAE 세 파로스의 용적과 거의 동등하다. </li><li> 용리액 (17)이 디클로로 메탄 / n- 헥산 / 이소프로판올 / 메탄올 (v / v)의 혼합물을 25 : 5 엽록소에게 68을 사용하여 박층 크로마토 그래피에 의해 순도를 확인한다. </li><li> 엽록소 a가 완전히 건조 될 때까지 (a 회전 증발기를 사용하여 용매를 증발시켜 1060 분). 주 : 건조 엽록소는 질소 또는 아르곤으로 퍼징하고, 어둠 속에서 -20 ℃에서 아르곤 대기 하에서 저장 될 수있다. </li><li> 100 % 에탄올 2-4 ml의 건조 엽록소 a를 다시 용해시켜 엽록소를 원액을 준비한다. 주 : 663 nm에서 엽록소 A의 흡광 계수는 74,400cm M -1 -1 (83.3 cm -1 (㎎ / ㎖) 1) 에탄올이다. 전형적인 스톡 용액을 25 mM의 (23 ㎎ / ㎖)의 농도에 대응하여 1860의 OD를 가져야한다. 엽록소의 10 배 몰 과량 대와 혼합 유기상을 5 ㎖ 및 수성 상 결과를 1ml WSCP 1 ㎎을 함유하는 에멀젼이 주식의 20 μL를 추가 WSCP. </li></ol> 2. 에멀젼의 유기 단계 준비 에멀젼의 유기상 (v / v)의 스팬 (80) 4.5 %를 함유하는 미네랄 오일로 구성되고, 0.4 % (v / v)의 트윈 80 참고. <ol><li> T의 50 ㎖ 튜브 0.2 g에 무게80 스판 80 1.8 g, 미네랄 오일 38 g을 싸우는. 물론 모든 구성 요소를 혼합하고 얼음에 냉각. 참고 유기상을 1 주일까지 4 ℃에서 저장 될 수있다. </li></ol> 3. 에멀젼의 수성 상을 준비 주 : 에멀젼의 수성 상 정제 WSCP 또는 WSCP 과발현 균의 조 추출물 중 구성 될 수있다. <ol><li> 정제 WSCP을 함유하는 수성 상을 준비. <ol><li> 0.3-0.6의 OD까지 37 ℃ LB 배지 1 L로 WSCP 플라스미드 12을 함유하는 대장균 BL21 박테리아 성장. </li><li> 1 mM의 IPTG를 첨가하여 단​​백질 발현을 유도한다. 유도 후 12 ~ 16 시간 동안 30 ° C에서 박테리아를 성장. </li><li> 4 ℃에서 10 분 동안 5,000 XG에 원심 분리하여 수확 박테리아. </li><li> 얼음에 버퍼와 초음파 처리를 결합에서 펠렛 (30​​ 초, 15 초 오프 5 회)을 녹인다. 250㎖를 원심 분리로 얻어진 펠렛을 완충액 10 ㎖를 사용하여단백질을 과발현하는 세포 LB 배지. 주 : 정제 방법에 따라 상기 결합 완충액은 100 mM의 포스페이트 완충액, pH가 7.2, 50 mM 트리스, pH가 7.5, 500 mM의 염화나트륨, 5 mM의 EDTA로 구성 될 수있다. </li><li> 39 ° C에서 30 분 동안 12,000 XG에서 세포 용 해물을 스핀. </li><li> 친화도 크로마토 그래피에 의해 WSCP을 정화. WSCP 융합 태그에 따라 제조사의 지시에 따라 단백질 정제에 적합한 시판되는 친 화성 크로마토 그래피 시스템을 사용하여 재조합 단백질을 정제. </li><li> 에멀젼 제제를 들어, 50 밀리미터의 정제 WSCP 인산염 완충액, pH가 7.8을 사용합니다. 재구성에 사용되는 최종 단백질 양이 버퍼 1 ㎖ 당 0.5 ~ 1.0 mg을 확인하십시오. </li></ol></li><li> WSCP 원유 박테리아 용 해물을 함유하는 수성 상을 준비. <ol><li> OD 0.3-0.6 될 때까지 37 ℃ LB 배지 250 ㎖ 중의 플라스미드 발현 WSCP를 포함한 대장균 BL21 세포를 성장한다. </li><li> 과 단백질 발현을 유도1 mM의 IPTG는 30 ℃에서 밤새 박테리아를 성장. </li><li> 원심 분리하여 수확 박테리아 세포를 4 ℃에서 10 분 동안 5,000 XG에. </li><li> 4 ℃에서 30 분 동안 12,000 XG에 1-2 ml를 50 mM의 인산 나트륨 완충액 pH 7.8, 초음파 처리 (30 초, 15 초 오프, 3 회) 및 원심 분리기에서 펠렛을 녹인다. </li><li> 50 mM의 인산 나트륨 완충액 pH 7.8 0.875 ml의 상등액 0.125 mL를 혼합하여 에멀젼의 수성 상을 준비한다. </li></ol></li></ol> 에멀젼의 엽록소 a를 가진 WSCP 4. 조립 <ol><li> 유리 바이알에 넣고 오일 - 계면 활성제 혼합물을 5 ㎖를 얼음에 냉각. 피펫 전에, 유기상의 모든 성분이 완전히 혼합되는 것을 확인한 후 계면 활성제 및 광유 사이에는 상 분리가 없다. </li><li> 유기 상을 5 ml의 섹션 3에서와 같이 제조 얼음처럼 차가운 수상의 1 ML을 추가합니다. </li><li> 얼음에 9,500 rpm에서 2 분간 조직 균질를 사용하여 두 단계를 섞는다.</li><li> 중요한 단계 :에이 단계에서, 광 손상을 최소화하기 위해 녹색 빛 (520 ㎚)에서 모든 추가 단계를 수행합니다. 25 mM의 엽록소 주식 용액 20 μl를 추가 에멀젼에 (섹션 1.13 참조). 튕기 유리 바이알을 반전시킴으로써 분산. 엽록소가 균등하게 유화에 분산되어 있는지 확인합니다. </li><li> 어둠 속에서 얼음에 1 ~ 2 시간 동안 에멀젼을 품어. </li><li> 실온에서 5 분 동안 14,000 × g으로 1.5 ㎖의 플라스틱 튜브에서 원심 분리에 에멀젼을 전송 유기상으로부터 분리 에멀젼 물방울을 분해하기 위하여. 주 : 조립이 완료되면, 하부 수 성상은 녹색을 가져야한다. </li><li> 상부 오 일상을 폐기하고 광유 1 ㎖를 추가한다. 소용돌이하거나 철저하게 튜브를 틀지하여 펠렛 에멀젼으로 잘 미네랄 오일을 섞는다. 실온에서 5 분 동안 14,000 XG에서 샘플을 스핀. 수성과 광부를 구분하는 명확한 메 니스 커스 때까지이 단계를 반복합니다중간 에멀젼없이 알 오일 상을 구한다. </li><li> 화학 후드에서이 단계를 수행합니다. 수성 미네랄 오일 상 명확하게 분리 된 후, 미네랄 오일을 제거하고 물, 포화 디 에틸 에테르를 가하여 1. 볼텍스하고, 실온에서 5 분 동안 14,000 XG에서 샘플을 스핀 다운. 두 번이 단계를 반복합니다. </li><li> 두 번째 원심 분리 한 후, 디 에틸 에테르를 제거하고 후드에서 5 ~ 20 분 동안 열린 튜브를 둡니다. </li><li> 마지막으로, 탈염 칼럼 상 WSCP / 엽록소에게 복합체를 함유하는 수성 상을로드하고 상기 실험에 적합한 완충액으로 용출시킨다. 주 : 단백질의 pH (6.0-7.5)의 넓은 범위에서 인산염 트리스 완충액에서 안정하다. 샘플은 1 개월까지 빛으로부터 보호 4 ° C에 저장할 수 있습니다. </li></ol>

<ol><li>Bryant, D. A., Frigaard, N. -U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prokaryotic+photosynthesis+and+phototrophy+illuminated%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Prokaryotic photosynthesis and phototrophy illuminated.</a> Trends Microbiol. 14, 488-496 (2006).</li>
<li>Tronrud, D. E., Wen, J. Z., Gay, L., Blankenship, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+structural+basis+for+the+difference+in+absorbance+spectra+for+the+FMO+antenna+protein+from+various+green+sulfur+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Photosynth.+Res%22%5BJournal%5D)">The structural basis for the difference in absorbance spectra for the FMO antenna protein from various green sulfur bacteria.</a> Photosynth. Res. 100, 79-87 (2009).</li>
<li>Schulte, T., Johanning, S., Hofmann, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+and+function+of+native+and+refolded+peridinin-chlorophyll-proteins+from+dinoflagellates%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Structure and function of native and refolded peridinin-chlorophyll-proteins from dinoflagellates.</a> Eur. J. Cell Biol. 89, 990-997 (2010).</li>
<li>Renger, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water+soluble+chlorophyll+binding+protein+of+higher+plants%3A+a+most+suitable+model+system+for+basic+analyses+of+pigment-pigment+and+pigment-protein+interactions+in+chlorophyll+protein+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Water soluble chlorophyll binding protein of higher plants: a most suitable model system for basic analyses of pigment-pigment and pigment-protein interactions in chlorophyll protein complexes.</a> J. Plant Physiol. 168, 1462-1472 (2011).</li>
<li>Satoh, H., Uchida, A., Nakayama, K., Okada, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water-soluble+chlorophyll+protein+in+Brassicaceae+plants+is+a+stress-induced+chlorophyll-binding+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Water-soluble chlorophyll protein in Brassicaceae plants is a stress-induced chlorophyll-binding protein.</a> Plant Cell Physiol. 42, 906-911 (2001).</li>
<li>Bektas, I., Fellenberg, C., Paulsen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water-soluble+chlorophyll+protein+%28WSCP%29+of+Arabidopsis+is+expressed+in+the+gynoecium+and+developing+silique%5BTitle%5D)+AND+%22Planta%22%5BJournal%5D)">Water-soluble chlorophyll protein (WSCP) of Arabidopsis is expressed in the gynoecium and developing silique.</a> Planta. 236, 251-259 (2012).</li>
<li>Damaraju, S., Schlede, S., Eckhardt, U., Lokstein, H., Grimm, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functions+of+the+water+soluble+chlorophyll-binding+protein+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Functions of the water soluble chlorophyll-binding protein in plants.</a> J. Plant Physiol. 168, 1444-1451 (2011).</li>
<li>Horigome, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+mechanism+and+photoprotective+function+of+water-soluble+chlorophyll-binding+protein%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Structural mechanism and photoprotective function of water-soluble chlorophyll-binding protein.</a> J. Biol. Chem. 282, 6525-6531 (2007).</li>
<li>Reinbothe, C., Satoh, H., Alcaraz, J. -P., Reinbothe, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Novel+Role+of+Water-Soluble+Chlorophyll+Proteins+in+the+Transitory+Storage+of+Chorophyllide%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">A Novel Role of Water-Soluble Chlorophyll Proteins in the Transitory Storage of Chorophyllide.</a> Plant Physiol. 134, 1355-1365 (2004).</li>
<li>Satoh, H., Nakayama, K., Okada, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+cloning+and+functional+expression+of+a+water-soluble+chlorophyll+protein%2C+a+putative+carrier+of+chlorophyll+molecules+in+cauliflower%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Molecular cloning and functional expression of a water-soluble chlorophyll protein, a putative carrier of chlorophyll molecules in cauliflower.</a> J. Biol. Chem. 273, 30568-30575 (1998).</li>
<li>Schmidt, K., Fufezan, C., Krieger-Liszkay, A., Satoh, H., Paulsen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recombinant+water-soluble+chlorophyll+protein+from+Brassica+oleracea+var.+Botrys+binds+various+chlorophyll+derivatives%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Recombinant water-soluble chlorophyll protein from Brassica oleracea var. Botrys binds various chlorophyll derivatives.</a> Biochemistry. 42, 7427-7433 (2003).</li>
<li>Takahashi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+cloning%2C+characterization+and+analysis+of+the+intracellular+localization+of+a+water-soluble+Chl-binding+protein+from+Brussels+sprouts+%28Brassica+oleracea+var.+gemmifera%29%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Molecular cloning, characterization and analysis of the intracellular localization of a water-soluble Chl-binding protein from Brussels sprouts (Brassica oleracea var. gemmifera).</a> Plant Cell Physiol. 53, 879-891 (2012).</li>
<li>Takahashi, S., Ono, M., Uchida, A., Nakayama, K., Satoh, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+cloning+and+functional+expression+of+a+water-soluble+chlorophyll-binding+protein+from+Japanese+wild+radish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Molecular cloning and functional expression of a water-soluble chlorophyll-binding protein from Japanese wild radish.</a> J. Plant Physiol. 170, 406-412 (2013).</li>
<li>Boex-Fontvieille, E., Rustgi, S., von Wettstein, D., Reinbothe, S., Reinbothe, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water-soluble+chlorophyll+protein+is+involved+in+herbivore+resistance+activation+during+greening+of+Arabidopsis+thaliana%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Water-soluble chlorophyll protein is involved in herbivore resistance activation during greening of Arabidopsis thaliana.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 112, 7303-7308 (2015).</li>
<li>Hughes, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magneto-optic+spectroscopy+of+a+protein+tetramer+binding+two+exciton-coupled+chlorophylls%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Magneto-optic spectroscopy of a protein tetramer binding two exciton-coupled chlorophylls.</a> J. Am. Chem. Soc. 128, 3649-3658 (2006).</li>
<li>Bednarczyk, D., Takahashi, S., Satoh, H., Noy, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assembly+of+water-soluble+chlorophyll-binding+proteins+with+native+hydrophobic+chlorophylls+in+water-in-oil+emulsions%5BTitle%5D)+AND+%22BBA+-+Bioenergetics%22%5BJournal%5D)">Assembly of water-soluble chlorophyll-binding proteins with native hydrophobic chlorophylls in water-in-oil emulsions.</a> BBA - Bioenergetics. 1847, 307-313 (2015).</li>
<li>Fiedor, L., Rosenbach-Belkin, V., Scherz, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+stereospecific+interaction+between+chlorophylls+and+chlorophyllase.+Possible+implication+for+chlorophyll+biosynthesis+and+degradation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">The stereospecific interaction between chlorophylls and chlorophyllase. Possible implication for chlorophyll biosynthesis and degradation.</a> J. Biol. Chem. 267, 22043-22047 (1992).</li>
<li>Kamimura, Y., Mori, T., Yamasaki, T., Katoh, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation%2C+properties+and+a+possible+function+of+a+water-soluble+chlorophyll+a%2Fb-protein+from+brussels+sprouts%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Isolation, properties and a possible function of a water-soluble chlorophyll a/b-protein from brussels sprouts.</a> Plant Cell Physiol. 38, 133-138 (1997).</li>
<li>Murata, T., Itoh, R., Yakushiji, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystallization+of+water-soluble+chlorophyll-proteins+from+Lepidium+virginicum%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Crystallization of water-soluble chlorophyll-proteins from Lepidium virginicum.</a> Biochim. Biophys. Acta. 593, 167-170 (1980).</li>
</ol>

저자는 더 경쟁 재정적 이해 관계가 없음을 선언합니다.

우리의 목표는 소수성 안료와 수용성 클로로필 결합 단백질의 조립을위한 새로운 일반 시스템을 개발 하였다. 여기가 W의 /의 O 에멀젼을 기반으로 새로운 재구성 시스템은 재조합 E. 표현 브뤼셀 콩나물, 콜리 플라워, 와사비와 버지니아 pepperweed에서 WSCP의 아포 단백질의 조립 작업을 입증 일반적인 방법입니다 것을 알 수있다 대장균. 다음 결과는 엽록소 (A)의 10 배 몰 과량 WSCP의 1 밀리그램의 재구성에서 제공됩니다. 그러나 다른 reconstitutions 엽록소 / 단백질에 대한 몰비 WSCP의 낮은 농도를 사용하는 것도 가능하다. 우리는 W / O 에멀션으로 조립할 수 있었던 단백질의 최소량의 단백질 비율 안료 5 다를 수 있지만, 100 μg의 : 1과 최대 20 : 1이다. 또한, 수성상의 부피를 50 μL로 하강 될 수있다. 본 연구에서는 엽록소 a를 가진 WSCP의 조립이 표시됩니다. 그러나, 조립하는 것도 가능하다다른 소수성 Chl...

이러한 엽록소 (Chls), bacteriochlorophylls (BChls) 및 카로티노이드 등의 소수성 안료는 전자 수송 및 빛 에너지 캡처 및 전송을 수행 광합성 반응 센터와 빛 수확 단백질의 기본 보조 인자이다. 반응 센터와 엽록소 결합 광 수확 복합체의 대부분은 막 횡단 단백질이다. 비 산소를 광합성 녹색 유황 세균 1, 2의 Fenna - 매튜스 - 올슨 (FMO) 단백질 및 와편 모 조류 (3)의 peridinin - 엽록소 단백질 (PCP)는 수용성 빛 수확 단백질의 뛰어난 예이다. 수용성 엽록소 결합 단백질 (WSCPs) 십자화과, 타테, 명아주과 및 비름 식물 4, 5는 다른 독특한 예이며, 아직 FMO와 PCP 달리,이 광 수확에서나 차 광합성 반응의 어느 것도 관여 및 그들의 정확한 PHYsiological 기능은 아직 5-8 불분명하다. 높은 엽록소 결합 친 화성이 과도 Chls의 사업자와 엽록소 유도체 9,10와 같은 제안 기능에지도했다. 또한, 그것은 WSCP이 손상된 세포에 Chls을 청소하는 역할을하고 엽록소에 의한 광산화 손상 7,11-13 방지 것을 가정했다. 더 최근에는 프로테아제 억제제로서 그 WSCP 기능을 제시하고 초식 저항 동안 역할뿐만 꽃 발달 동안 14 세포 사멸을 조절 하였다. WSCPs는 광 물리 특성에 따라 두 가지 종류로 구분된다. 첫 번째 클래스 (클래스 I, 예. 명아주에서)는 조명에 광을 거칠 수있다. 광 5,10을받지 않는 브라 시카 공장에서 클래스 II WSCPs는 더 클래스 인천 공항으로 세분화된다 (예., 브라 시카 올레 라 케아, Raphanus sativus에서) 및 IIB (예., 다닥 냉이의 virginicum에서 </em&gt;). 다닥 냉이의 virginicum에서 클래스 IIB의 WSCP의 구조는 2.0 Å 해상도 8에서 X 선 결정학에 의해 해결되었다. 이것은 단백질 하위 단위는 소수성 코어를 형성하는 대칭 homotetramer을 보여준다. 각 서브 유닛은 모든 엽록소의 구성은 엽록소 - 단백질 복합체의 결합 및 조립을 공부 WSCPs에게 잠재적으로 유용한 모델 시스템을 만드는 간단한 core.This 내에서 네 밀접하게 포장 Chls의 꽉 배치 결과 하나의 엽록소 및 Chls 이웃의 효과를 결합 개별 Chls의 스펙트럼 및 전자 특성에 단백질 환경. 또한, 인공 광합성 소자에서 광 수확 모듈에 사용될 수있는 인공 엽록소 결합 성 단백질을 구성하는 템플릿을 제공 할 수있다. 식물로부터 정제 복합체는 항상 엽록소 (a)의 서로 다른 조합으로 사량의 이종 혼합물을 포함하기 때문에 기본 WSCPs의 엄격한 연구는 가능하지 않습니다와 엽록소 B (9). 따라서, 시험 관내 재조합 발현과 Chls WSCPs를 조립하는 방법이 요구된다. 이것은 (15)가 입증되었다 틸라코이드 막과 아포 단백질을 혼합하여. 불가능 단순히 수용액에 안료와 수용성 아포 단백질을 혼합하여 시험 관내 복잡한 조립하게 Chls의 무시할 수용성 의해 시험관 조립체 도전되지만 이 방법은 틸라코이드의 기본 Chls 존재로 제한됩니다. 슈미트는 등. 재조합 E.에 히스티딘 - 태그 단백질을 발현하여 콜리 플라워 (CaWSCP)에서 WSCP 여러 엽록소와 BChl 파생 상품을 조립보고 대장균은 니켈 친 화성 칼럼에 그것을 고정 및 세제 (11)에 용해 엽록소 유도체를 도입. 성공적으로 A.에서 재조합 WSCPs의 재구성 장대 6, 브뤼셀 콩나물 (BoWSCP), 일본어 야생 무 (RshWSCP)를비슷한 방법으로 D 버지니아 pepperweed (LvWSCP)도보고되었다. 여기, 우리는 소설 단백질을 태그가 필요하지 않습니다 WSCP와 Chls 조립 또는 고정 일반, 간단한 방법을 제시한다. 이 광유 수용성 아포 단백질들의 수용액에서 에멀젼의 제조에 의존한다. 단백질 따라서 부피 비율 16 유 중수 (W / O) 매우 높은 표면 미세 방울에 캡슐화됩니다. 소수성 공동 인자는 오일에 용해하고 용이 유상로부터 액적 내로 도입된다. 우리는 재조합 E. 표현 WSCP의 아포 단백질의 여러 변형의 조립 방법을 이용하여보고 엽록소 A의 대장균. 우리는 엽록소 신규 한 결합 단백질을 개발하기위한 스크리닝 시스템으로 사용될 수있다 WSCP 과발현 세균 조질 용 해물에서 어셈블리를 보여준다.

<table><tbody><tr><td>미네랄 오일</td><td>: Sigma</td><td>M5904</td><td></td></tr>, <tr><td>Span80</td>, <td>Sigma</td><td>85548</td><td></td></tr>, <tr><td>Tween80</td>, <td>Sigma</td><td>P8074</td><td></td></tr>, <tr><td>Bio-Scale Mini Profinity eXact 카트리지,</td><td>네이티브 염기서열을 사용한 WSCP 정제를 위한 Bio Rad 10011164 친화성 크로마토그래피.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>His Trap HF column</td><td>GE Healthcare Life Science</td><td>17-5248-02</td> His-tag DEAE Sepharose Fast Flow<td>를 사용한 WSCP 정제를 위한 친화성 크로마토그래</td></tr>피 <tr><td></td><td>GE Healthcare Life Science</td><td>17-0709-01</td><td>엽록소 정제를 위한 크로마토그래피 배지</td></tr></tbody></table>

오일 유제에서 물 : 소수성 안료와 수용성 엽록소 결합 단백질을 조립하기위한 새로운 시스템

Water in Oil Emulsions: A New System for Assembling Water-soluble Chlorophyll-binding Proteins with Hydrophobic Pigments

엽록소 (Chls) 및 bacteriochlorophylls (BChls)는 광합성 빛 수확 및 전자 수송을 수행하는 기본 보조 인자이다. 이들의 기능은 매우 크고 정교한 multisubunit 막 횡단 단백질 복합체 내에서 특정 조직에 따라 달라집니다. 이러한 복합체는 태양 에너지 변환을 용이하게하는 방법을 분자 수준에서 이해하기 위하여, 단백질 - 안료, 안료와 안료의 상호 작용 및 동력학 여기에 그 효과를 이해하는 것이 필수적이다. 이러한 이해를 얻는 방법 중 하나는 건설 및 단순 수용성 재조합 단백질과 Chls의 단지를 공부하는 것입니다. 그러나, 수용성 단백질에 친 유성 및 Chls BChls를 통합하는 것은 어렵다. 또한, 소수성의 안료와 수용성 단백질의 조립에 사용될 수있는 일반적인 방법이 없다. 여기서는 엉덩이 있도록 유 중수 에멀젼에 기초한 간단한 고 스루풋 시스템을 보여소수성 Chls와 수용성 단백질의 embly. 새로운 방법은 엽록소 A의 십자화과 식물 (WSCP)의 수용성 엽록소 결합 단백질의 재조합 버전을 조립하여 검증 하였다. 우리는 엽록소의 성공적인 조립에게 E.을 표현 WSCP의 사용 조 해물을 보여 신규 수용성 ​​엽록소 결합 단백질 유전자 스크린 시스템을 개발하는데 사용되며, 엽록소 - 단백질 결합 및 조립 공정을 연구 할 수있다 대장균 세포.

재조합 WSCP의 아포 단백질은 이전 섹션에 설명 된 프로토콜에 따라 W / O 에멀젼의 엽록소 a를 조립했다. 프로토콜은 순수한 WSCPs 또는 대장균 세포 용 해물 WSCP 과발현 (도 1)를 함유하는 수성 상을 이용하여 구현 하였다. 이 프로토콜은 빠르고, 간단하고 조직 균질 제외하고는 특별한 장비를 필요로하지 않습니다. 이들은 각각의 고유 단지 10,18의 이전에보고 된 스펙트럼에 밴드 모양과 위치에 유사 흡광도와 엽록소의 CD 스펙트럼은 네 개의 재조합 WSCP 변형, 즉 RshWSCP, CaWSCP, BoWSCP 및 LvWSCP의 복합체는 그림 2에 나타낸다, 19. 이러한 결과는 명확 W / O 에멀젼...

이 논문은 유 중수 에멀젼에 기초 소수성 안료와 수용성 단백질을 조립하기위한 간단하고 높은 처리량 방법을 설명한다. 우리는 브라 E. 식물에서 발현 재조합 수용성 엽록소 4 변형 결합 단백질 (WSCPs) 네이티브 엽록소의 조립에있어서의 효과를 입증 대장균.

Chlorophylls (Chls) and bacteriochlorophylls (BChls) are the primary cofactors that carry out photosynthetic light harvesting and electron transport. ...

이 기술의 전반적인 목표는 수용성 단백질의 결합 부위에 수불용 엽록소를 통합시키는 것입니다. 이 방법은 엽록소를 재조합 단백질과 결합시켜 엽록소-단백질 상호작용에 대한 정밀한 연구를 가능하게 하며, 새로운 엽록소-단백질 복합체 구축을 위한 새로운 가능성을 제시합니다. 이 기술의 주요 장점은 단백질에 태그를 붙이거나 고정화할 필요가 없다는 점입니다.따라서 이는 스크리닝 분석에 매우 적합합니다. 실험 절차 시연은 제 연구 그룹의 박사후 연구원인 Dominica Bednarczyk이 진행하겠습니다. 다음의 스톡 용액을 준비하는 동안, 광손상을 최소화하기 위해 모든 엽록소 준비 단계는 화학 흄후드 내의 녹색광 아래 또는 암소에서 수행하십시오.색소를 보관을 위해 냉동하기 전에는 항상 질소 또는 아르곤을 첨가하고, 모든 용매가 분석 등급(analytical grade)인지 확인하십시오. 우선, 틸라코이드 막에 엽록소 a 또는 chlorophyll-a만을 포함하고 있는 동결 건조된 Spirulina platensis 세포 또는 기타 남조류 세포를 약 5g 측정하고, 막자사발을 사용하여 분쇄합니다. 엽록소 추출 과정에서 중요한 단계는 남조류 세포가 완전히 동결 건조되었는지 확인하고, 아세톤으로 여러 번 세척하여 DEAE-Sepharose에서 수분을 완전히 제거하는 것입니다.분쇄된 세포를 유리 컬럼에 적재하고 약 50-100 milliliters의 100% acetone으로 조직을 세척하여 카로티노이드를 제거합니다. 세척 후, 용출된 오렌지-녹색 분획을 버립니다. 실제 색상은 시아노박테리아 배양 및 성장 조건에 따라 오렌지-녹색에서 녹색까지 다양할 수 있습니다.아세톤을 100% methanol로 교체하고 chlorophyll a가 포함된 녹색 분획을 수집합니다. 용출된 분획의 색상이 진한 녹색에서 연한 녹색으로 변하면 용출을 중단합니다. 다음으로, 30 °C를 초과하지 않는 워터배스가 장착된 회전 증발기를 사용하여 추출물이 완전히 마를 때까지 methanol을 증발시킨 후, 적은 양의 diethyl ether를 사용하여 건조된 추출물로부터 색소를 완전히 용해시키고, 추가로 소량의 ether를 사용하여 면솜에 묻은 색소를 씻어내며 용액을 면솜으로 여과합니다.색소가 완전히 마를 때까지 디에틸 에테르를 증발시킵니다. 이 단계에서 중단할 경우, 추가 처리 시까지 건조된 색소를 질소 또는 아르곤 분위기의 20 °C 암실에 보관하십시오. 엽록소 a 조제를 계속하려면 건조된 색소를 가능한 최소 부피의 100% 아세톤에 일부 용해시킨 다음, 현탁액에 아세톤 4 mL를 추가하고 플라스크를 가볍게 흔들어 색소를 완전히 용해시킵니다.파스퇴르 피펫을 사용하여 100% acetone으로 평형화된 DEAE-Sepharose 컬럼에 시료를 조심스럽게 로딩하고, 100% acetone을 사용하여 카로티노이드를 용출합니다. 그다음 3:1 부피비의 acetone-methanol 혼합물을 사용하여 엽록소 a를 용출합니다. 용출 과정 중에 실제 색소를 관찰하기 위해 손전등으로 컬럼을 잠시 비출 수 있습니다.박층 크로마토그래피를 이용하여, 시료를 용리시키기 위해 dichloromethane, hexane, isopropanol, methanol을 68:25:5:2 부피비로 혼합하여 chlorophyll a의 순도를 확인합니다. 그 다음, 회전 증발기를 사용하여 chlorophyll a가 완전히 건조될 때까지 용매를 증발시킵니다. chlorophyll a 표준 용액을 제조하려면 건조된 chlorophyll a를 2-4 milliliters의 100% methanol에 다시 용해시킵니다.에멀젼의 유기상을 준비하려면, 50 milliliter 튜브에 Tween 80 0.2 grams, Span 80 1.8 grams, mineral oil 38 grams을 계량합니다. 성분들을 잘 섞은 후 용액을 얼음에 놓아 냉각시킵니다. 정제된 수용성 엽록소 결합 단백질(WSCP)을 포함하는 수상을 준비하려면, WSCP 유전자를 포함하는 E.coli BL21 박테리아를 1 liter의 LB 배지에서 37 degrees Celsius로 OD600이 0.3에서 0.6이 될 때까지 배양합니다.단백질 발현을 유도하기 위해 1 millimolar IPTG를 첨가하고 박테리아를 30 °C에서 12-16시간 동안 배양한 후, 5000 G, 4 °C에서 10분간 원심분리하여 박테리아를 수확합니다. 친화성 크로마토그래피에 적합한 버퍼로 펠릿을 용해하고, 박테리아 현탁액을 더 작은 튜브로 옮겨 얼음 위에서 초음파 분쇄합니다. 용해물을 원심분리한 후, 제조업체의 지침에 따라 단백질 정제용으로 시판되는 적절한 친화성 크로마토그래피 시스템을 사용하여 재조합 태그 WSCP 단백질을 정제합니다.버퍼를 50 millimolar 인산염 버퍼 pH 7.8로 교체하고 정제된 WSCP 농도를 0.5 내지 1 milligram per milliliter로 조절하여 에멀션의 수상을 준비합니다. WSCP가 포함된 조박테리아 용해물을 함유한 수상을 준비하려면, WSCP를 발현하는 플라스미드가 포함된 E.coli BL21 세포를 37 degrees Celsius의 LB 250 milliliters에서 로그 단계까지 배양합니다. 단백질 발현을 유도하기 위해 1 millimolar IPTG를 첨가하고 박테리아를 30 degrees Celsius에서 하룻밤 동안 배양합니다.다음 날, 수확한 박테리아 세포 펠렛을 50 millimolar sodium phosphate buffer pH 7.8 1-2 milliliters를 사용하여 용해합니다. 그 다음, 초음파 처리 후 용해물을 12, 000 G, 4 degrees Celsius에서 30분 동안 원심 분리합니다. 상층액 0.125 milliliters와 50 millimolar sodium phosphate buffer pH 7.8 0.875 milliliters를 혼합하여 에멀젼의 수성 상을 준비합니다.에멀젼 내의 chlorophyll a를 포함하는 WSCP를 조립하려면, 충분히 혼합된 오일-계면활성제 혼합물 5 milliliters를 유리 바이알에 옮기고 얼음 위에서 냉각합니다. 방금 준비한 얼음처럼 차가운 수성상 1 milliliter를 추가하고, 얼음 위에서 9,500 RPM의 조직 균질기를 사용하여 2분 동안 두 상을 혼합합니다. 이 시점부터는 광손상을 최소화하기 위해 모든 단계를 녹색광 아래에서 수행하며, 25 millimolar chlorophyll a 스톡 용액 20 microliters를 에멀젼에 추가합니다.유리 바이알을 튕기고 뒤집어 분산시켜 chlorophyll a가 에멀젼 내에 고르게 분포되도록 한 다음, 암소의 얼음 위에서 1-2시간 동안 배양하십시오. 에멀젼 준비 과정에서 가장 중요한 단계는 혼합 전 수상과 유기상을 모두 냉각시키는 것입니다. 다음으로, 에멀젼을 깨뜨려 유기상으로부터 수적을 분리하기 위해, 에멀젼을 1.5-milliliter 플라스틱 튜브로 옮기고 실온에서 14,000 G로 5분 동안 원심분리하십시오.상층의 오일 층을 제거하고 하층에 mineral oil 1 milliliter를 추가한 다음, 볼텍싱하거나 튜브를 뒤집어 잘 섞습니다. 샘플을 원심 분리한 후 상층의 오일 층을 제거하고, 중간 유제 층 없이 수성 층과 mineral oil 층이 명확하게 구분되는 메니스커스가 형성될 때까지 mineral oil 추가와 원심 분리 과정을 반복합니다. 이제 수성 층에 물로 포화된 diethyl ether 1 milliliter를 추가합니다.그 다음, 샘플을 볼텍싱한 후 상온에서 14,000 G로 5분 동안 원심 분리합니다. 세 번째 원심 분리가 끝나면, 후드 내에서 디에틸 에테르를 제거하고 튜브를 5-20분 동안 열어둡니다. 마지막으로, WSCP-클로로필 a 복합체가 포함된 수성상을 탈염 컬럼에 로딩하고, 향후 실험에 적합한 완충액으로 용리합니다.샘플을 빛이 닿지 않는 4 °C에서 최대 한 달 동안 보관하십시오. 이 비디오에 설명된 프로토콜을 사용하여, 재조합 WSCP 아포단백질을 수중 및 오일 에멀전 내의 chlorophyll a와 함께 조립하였습니다. 여기에는 네 가지 재조합 WSCP 변이체와 chlorophyll a 복합체의 흡광도 및 CD 스펙트럼이 표시되어 있습니다.결과는 밴드 형태의 최종 위치 면에서 각각의 천연 복합체에 대해 이전에 보고된 스펙트럼과 유사합니다. 이 그림은 수성 층의 녹색으로 확인할 수 있듯이, WSCP 발현 세포의 용해물에서 WSCP와 chlorophyll a의 양성 조립을 보여줍니다. 이 결과는 물과 오일 에멀션이 WSCP와 chlorophyll의 양성 조립을 위한 신속 스크리닝 시스템으로서 잠재력이 있음을 입증합니다.여기에서 입증된 바와 같이, WSCP 함유 용해물 방울은 공초점 현미경 이미지에서 뚜렷한 엽록소 a 형광을 나타냅니다. 이는 WSCP-엽록소 복합체의 성공적인 조립을 수적(water droplets) 내에서 직접 검출할 수 있음을 의미하며, 수중-유중 에멀젼 기반의 스크리닝 시스템을 위한 기초를 제공할 수 있습니다. 이 기술을 숙달하면, 적절히 수행했을 때 5시간 이내에 완료할 수 있습니다.이 절차를 수행할 때, 엽록소를 빛과 산소에 노출시키지 않고 신속하게 작업하는 것이 중요하다는 점을 기억하십시오. 이 기술이 개발된 후, 우리는 엽록소의 전기분해 및 분광 특성에 단백질 환경이 미치는 영향을 탐구하는 데 사용되는 광범위한 수용성 엽록소 결합 단백질을 준비할 수 있었습니다. 이 영상을 시청하고 나면, 시아노박테리아에서 엽록소를 추출 및 정제하고 수성 및 유성 에멀젼을 사용하여 이를 수용성 단백질로 조립하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.에테르, 메탄올 또는 아세톤과 같은 유기 용매를 다루는 것은 위험할 수 있으므로, 본 실험 절차를 수행하는 동안에는 항상 화학 흄 후드 내에서 작업하는 등의 예방 조치를 취해야 함을 잊지 마십시오.

water-oil-emulsions-new-system-for-assembling-water-soluble

Research

연구

JoVE Journal

Chemistry

화학

이 프로토콜은 in vitro에서 광 수확 복합체의 재구성에 대해 자세히 설명합니다. 이러한 일체형 막 단백질은 엽록소와 카로티노이드를 조정하고 고등 식물과 녹조류에서 빛을 수확하는 역할을 합니다.

식물과 녹조류의 빛 수확 단지의 체외의 재구성에

유기 염료 분자와 올레산으로 코팅된 상향 변환 나노 입자는 수용성이 아닙니다. 이 프로토콜은 유기 염료 분자를 전달하고 입자를 초기 소수성 용매에서 물로 상향 변환할 수 있는 '플러그 앤 플레이' 방법을 설명합니다.

&#39;플러그 앤 플레이&#39;방법은 양친 매성 고분자, 유기 염료 및 업 컨버팅 나노 입자를 포함하는 수분 산성 Nanoassemblies 만들기

이 논문은 독립형 필름 및 함침 멤브레인에서 하이드로겔을 준비하고 물 수송 특성을 포함한 물리적 특성을 특성화하는 실용적인 방법을 보고합니다.

물 정화를위한 막으로 방오 특성을 가진 히드로 겔의 합성

이 프로토콜 자체 조립 펩타이드와 아미노산 솔루션의 조합을 사용 하는 수성 환경에서 소수 성 화합물을 녹 이기의 임상 적용 방법을 설명 합니다. 우리의 방법은 소수 치료 학, 임상 설정으로 안전 하 고 효율적 수단 가용성 및 배달 방법의 부족의 주요 한계를 해결 합니다.

자기 조립 펩타이드와 아미노산의 조합을 사용 하 여 수 용액에서 소수 성 화합물의 용 해도

여기 postfusion bilayer에이 막 단백질의 세제 무료 배달 대상 지질 bilayers와 fusogenic proteoliposomes에 막 단백질의 재구성 및 같은 proteoliposomes의 융합에 대 한 두 개의 초고속 프로토콜 선물이. 이러한 방법의 복잡 한 다중 구성 요소 막 시스템의 신속 하 고 쉽게 제어 조립이 있습니다.

세제 없는 보완 청구 Proteoliposomes Fusogenic를 사용 하 여 지질 Bilayers에 막 단백질의 초고속 재구성.

여기, 선물이 fucoxanthin 엽록소 a/c 바인딩 단백질 (FCP) 규조류에서 격리 하 여 이온 구성 변경 시 여기 에너지 전달 연구를 자연 지질 작곡과 리로 그들을 통합 하는 프로토콜.

분리 및 통합 규조류 Cyclotella Meneghiniana Thylakoid 지질으로 리에서에서 광 수확 안테나

유기 및 수성 용매의 계면에서 맞춤형 양피 성 엘라스틴과 같은 단백질은 환경 매개 변수에 의해 유발되는 소포, 섬유 및 응고체와 같은 복잡한 상분자 구조로 조립됩니다. 설명된 조립 프로토콜은 튜닝 가능한 특성을 가진 단백질 멤브레인 기반 구획(PMBC)을 생성하여 다양한 화물을 캡슐화할 수 있도록 합니다.

엘라스틴과 같은 단백질을 체외에서 정의된 수분자 구조 및 화물 캡슐화로 조립하도록 지시

우리는 구리 (II) 2,9,16,23 테트라 - 테르트 - 부틸 -29H,31H -phthalocyanine (CuPc) 분자와 지질 이중 층을 도핑하여 물 / 공기 인터페이스에서 하이브리드 지질 막을 생산하기위한 프로토콜을보고합니다. 그 결과 하이브리드 지질 막에는 지질/CuPc/지질 샌드위치 구조가 있습니다. 이 프로토콜은 또한 다른 기능성 나노 물질의 형성에 적용될 수 있다.

물/공기 인터페이스에서 소수성 유기 분자와 함께 도핑 하이브리드 지질 막의 자체 조립

약물 전달 응용 분야에 사용되는 오일은 환자의 지질 프로필을 방해할 수 있으며, 이는 심혈관 질환에서 바람직하지 않습니다. 오메가-3 지방산이 풍부한 오일은 기존 오일의 건강한 대안이며 자가 유화 약물 전달 시스템에 대한 엄청난 잠재력을 가지고 있습니다.

친유성 약물의 용해도를 향상시키기 위한 건강한 오일의 자체 나노 유화

본 프로토콜은 생체적합성 리포솜을 생성하기 위한 미세유체 기술인 옥탄올 보조 리포솜 어셈블리(OLA)를 설명합니다. OLA는 효율적인 캡슐화를 통해 단분산 미크론 크기의 리포솜을 생산하여 즉각적인 온칩 실험이 가능합니다. 이 프로토콜은 합성 생물학 및 합성 세포 연구에 특히 적합할 것으로 예상됩니다.

생명공학을 위한 온칩 옥탄올 보조 리포솜 어셈블리

이 프로토콜은 합성 세포를 구성하는 데 사용되는 CFPS(Cell-Free Protein Synthesis) 시스템을 설명합니다. 다양한 마이크로 컴파트먼트에서 대표적인 결과를 제공하는 주요 단계를 간략하게 설명합니다. 이 프로토콜은 합성 세포 커뮤니티의 다양한 실험실에 대한 모범 사례를 수립하여 합성 세포 개발의 진전을 촉진하는 것을 목표로 합니다.

합성 세포 구축을 위한 Cell-Free 단백질 합성 시스템

배우세요 오일 유제를 이용하여 소수성 엽록소를 수용성 결합 단백질에 조립하는 고효율 방법을. 태그 없이 단백질 스크리닝이 가능하며 엽록소-단백질 상호작용 연구에 활용됩니다.

오일 유제에서 물 : 소수성 안료와 수용성 엽록소 결합 단백질을 조립하기위한 새로운 시스템

더 많은 동영상 탐색