Name: 치근단 절제술 마우스 모델은 초기 포유류의 심장 재생을 연구하는 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 8 s
Description: 학습하세요 치근단 절제술을 이용한 신생아 마우스 심장 재생 연구 방법을. 이 기술은 조기 포유류 심장 재생의 분자 및 세포 메커니즘을 규명하는 데 활용됩니다.

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저자는 박사 감사합니다. 제임스 호킨스, 국립 심장, 폐에서 즈 - 사이 유와 법사 숨어 및 마우스 수술 준비와 파라핀 섹션의 염색과의 도움을 혈액 연구소 (NHLBI). 저자는 편집 지원에 대한 NIH 휄로우 편집위원회에 감사드립니다.

모든 마우스 실험 프로토콜 번호 H0083R3와 국립 보건원 (NIH)의 동물 관리 및 사용 프로그램에 의해 승인되었다. NHLBI IACUC는 진통제없이 프로토콜을 승인했다. 신생아 마우스 1. 저체온 마취 <ol><li> 수술 전에 오토 클레이브 스폰지 및 수술 장비 소독. 모든 수술 재료를 준비하고 270 ° C에 240 ° C에 도달하기 위해 사전에 뜨거운 구슬 살균기 15 ~ 20 분에 전환합니다. </li><li> 신선한 침구와 중첩 재료와 깨끗한 마우스 케이지에 자신의 간호 어머니의 모든 C57BL / 6 새끼 (연령 P1)를 전송합니다. 새끼는 수술 방으로 촬영하면, 자신의 시간은 어머니로부터 분리 된 시간에 산모 잠식의 위험을 줄이기 위해 최소화하기 위해 신속하게 혀끝 수술을 수행합니다. </li><li> 얼음 침대에 스폰지를 넣고 2 ~ 3 분 저체온 마취를 달성하기 위해 다음 스펀지에 한 강아지를 놓습니다. AP를 관찰하여 마취를 확인NEA와 무 운동과 후방 발을 곤란. 너무 적은 시간이 강아지의 무 운동성 및 apneic 및 생존율 (12)을 낮출 수 마취의 과도 기간을 확인하지 않습니다 자주하기 때문에 신생아의 상태를 확인합니다. </li></ol> 2. 개흉술 <ol><li> 수술 벤치 탑 지역에 얼음 침대에서 강아지를 전송하고 앙와위에서의 팔, 다리, 꼬리를 고정하는 테이프를 사용합니다. </li><li> betadine을 사용하여 가슴을 소독하고 부드럽게 70 % 알코올 준비 패드를 사용하여 청소합니다. </li><li> 스프링 Vannas 가위를 사용 흉강의 항 늑간 영역을 따라 횡 피부 절개를하고 심장에 대한 액세스를 용이하게하기 위해 기재된 늑간 근육을 무디게 절개. 참고 : 혈액 손실이 수술 과정에서 최소화 될 때 생존율을 향상시킬 수 있습니다. </li></ol> 심장 심실 에이펙스 3. 수술 절단 수술 <ol><li> 손으로 부드럽게를 외면 화하다하기 위해 복부에 압력을가마음의 정점. 명확한 시각화를위한 멸균 면봉 어플리케이터와 외과 영역의 주위에 피를 흡수한다. 가짜 운영 제어 신생아의 경우, 4 (봉합 및 마우스의 복구) 단계로 직접 진행합니다. </li><li> 돋보기 램프와 가위를 사용하여 홍채 절제술에서 부드럽게 LV 실이 노출 될 때까지 좌심실 (LV)의 단편적인 절제술을 수행합니다. LV의 절제 부분을 최소화하기 위해주의해야합니다. 약 15 %의 절제는 LV 챔버의 최적의 노출을 달성 할 필요가있다. </li><li> LV 실이 노출되면 심장이 흉강에 반환해야합니다. </li></ol> 4. 봉합 및 마우스의 복구 <ol><li> 멸균 프롤린 6-0 봉합사를 사용 흉강을 함께 밀봉 립과 근육을 봉합 한 후 조심스럽게 피부 접착제를 이용하여 피부 절개 부위를 닫는다. </li><li> 복구 ~ 3 분 동안 가열 램프하에 신생아를 따뜻하게 한 후 70 % 알코올을 준비 사이클로 작업하기 전에 패드를 사용하여 혈액과 접착제 흔적을 깨끗하게그 한배 새끼에 재 소개 재. 어머니로부터 분리 소요되는 시간을 최소화하는 것이 치근단 절제술 후 강아지의 생존을 향상하기 때문에 10 분 이내에 전체 수술 절차를 완료하려고합니다. </li><li> 각각의 수술 후, 완전한 살균 약 20 초 동안 뜨거운 구슬 살균기의 구슬과 접촉 수술 도구를 배치합니다. 수술 도구는 각각의 수술 전에 실온으로 냉각 할 수 있습니다. </li><li> 쓰레기의 모든 새끼에 대한 수술을 완료 한 후, 어머니의 둥지로 돌아 오기 전에 어머니의 침구와 배설물로 새끼를 섞는다. 참고 : 일반적으로, ICR / CD-1 마우스는 더 나은 위탁 C57BL / 6보다 어머니,하지만 심지어 같은 유전 적 배경의 간호 어머니 사이는, 육성 본능에 따라 다릅니다. 간호 어머니를 변경하면, 산모의 잠식에 의해 사망​​률을 감소 간호 어머니 P0 새끼를 제거한 다음 (P1)에 혀끝의 절제술을 수행 할 필요가있는 경우. 만 허위 조작이나 혀끝의 연구를 수행새끼의 한 쓰레기에서 esection, 혼합 가짜 수술 새끼가 새끼 6 수술 군의 생존율을 감소 할 수 있기 때문이다. </li></ol> 5. 수술 후 분석 <ol><li> 하루 수술 후, 새끼를 모니터링하고 가짜 수술 군 간의 차이가 없다는 것을 확인하고 생존율을 측정하는 새끼의 개수를 카운트. 수술이 적절하게 수행되는 경우, 생존율은 가짜 수술 군 모두에서 유사한 60 % 이상이어야한다. </li><li> 심장 격리 및 고정. <ol><li> 일 1에서 새끼 자궁 전위에 의해 사망​​ 보장과 이산화탄소에 의해 참수하고 21 일 후 수술을 통해 2 후 수술을 안락사, 다음 70 % 알코올 준비를 사용하여 가슴을 청소합니다. </li><li> 가슴의 중간 선 피부와 근육을 절개 한 후 가슴을 엽니 다. </li><li> 흉강에서 전체의 마음을 절제하고 4 % 파라 포름 알데히드의 O / RT에서 N 5ml에 각 샘플의 전체 마음을 고정한다. </li></ol></li><li> 다음날, 70 % 에탄올로 샘플들을 전달. 샘플은 파라핀 삽입하기 전에 일주까지 저장할 수 있습니다. </li><li> 슬라이스는 5 μm의 두께의 파라핀 전체 심실을 통해 섹션과 회생 응답 5, 7을 검토 표준 헤 마톡 실린 및 에오신 (H &amp; E)과 메이슨의 트리 크롬 염색을 수행한다. 특히, H &amp; E 염색은 근육의 교체를 검토하는 데 사용되며 메이슨의 트리 크롬 염색이 사용됩니다 섬유 성 반응 (5)을 조사한다. </li><li> 관심의 영역을 선택하여 수동으로 슬라이드 스캐너를 사용하여 샘​​플 당 적어도 세 초점을 설정합니다. 이미지 및 디폴트 매개 변수와 제조자의 지시에 따라 40 × 배율에서 염색 슬라이드를 분석한다. </li></ol>

<ol><li>Lin, Z., Pu, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strategies+for+cardiac+regeneration+and+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Strategies for cardiac regeneration and repair.</a> Sci Transl Med. 6, 231-239 (2014).</li>
<li>Xin, M., Olson, E. N., Bassel-Duby, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mending+broken+hearts%3A+cardiac+development+as+a+basis+for+adult+heart+regeneration+and+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mending broken hearts: cardiac development as a basis for adult heart regeneration and repair.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 14, 529-541 (2013).</li>
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</ol>

이 기사에 대한 출판 비용은 박사 지앤 허우에 파인 과학 도구의 선물 후원했다.

심장 재생은 심부전의 치료 및 예방 가능성을 보여줍니다1, 2. 동물 모델은 필수 불가결하며 심장 재생이 어떻게 발생하는지 이해하는 데 중요한 역할을 합니다3-6. 많은 양서류와 어류는 부상에 대한 반응으로 심장 조직을 재생하여 인간 심혈관 질환에 대한 이해에 대한 통찰력을 제공합니다13, 14. 그러나 진화 측면에서 병태생리학은 마우스 모델과 인간 사이에서 더 보존되어야 합니다. 포유류 동물 모델의 심장 재생은 심부전 치료에 대한 비교적 새롭지만 급성장하는 연구 분야입니다3-6. 
최근 신생아 마우스의 심장 재생 연구에서 정점 절제술과 심근경색술이라는 두 가지 외과적 접근법이 확립되었습니다6. 치근단 절제술은 심근 세포의 손실 및/또는 손상에 대한 비교적 쉽고 직접적인 모델을 제공하지만, 심근경색에 비해 치근단 절제술의 주요 한계는 높은 사망률로 인해 이 수술 방법을 P7 이상으로...

인간의 수명이 길어지면 주요 사망 원인인 심부전을 포함한 다양한 노화 및 생활 습관 관련 질병이 발생합니다. 그러나 손실되거나 기능 장애가 있는 심장 근육 세포를 대체하지 않으면 현재의 치료법은 심장 기능을 일시적으로 개선할 수 있을 뿐이다1, 2. 따라서 심장 재생 및 복구를 위한 혁신적인 전략을 발견하고 개발해야 합니다. 다 자란 포유류의 심장은 재생 잠재력이 제한적입니다. urodele 양서류와 teleost fish와 같은 하등 척추 동물에 대한 연구는 심장 재생의 기저에 있는 분자 및 세포 메커니즘에 대한 전례 없는 통찰력을 제공했습니다3, 4. 최근에는 심장 재생에 대한 신생아 마우스 모델이 등장하여 인간의 심장 재생에 필요한 보다 진화적으로 보존된 병태생리학적 사건을 식별하고 특성화할 수 있습니다5. 
정점 절제술은 좌심실 정점을 외과적으로 제거하는 것을 말합니다. 이 절차는 1-7일 된 생쥐(P1-P7) 생쥐로 제한되는데, 그 이유는 나이가 많은 생쥐에서 치사율이 높기 때문이다6. 정점 절제 후 신생아 마우스의 심장 재생 과정은 다음과 같을 것으로 예상됩니다: (I) 정점을 밀봉하고 출혈을 방지하기 위한 혈종의 빠르고 효과적인 형성; (II) 심근세포 재생과 수축기 기능 회복5, 7. 최근 연구는 이 모델8-11의 중요성과 효율성에 대한 논쟁을 불러일으켰습니다. 따라서 정점 절제술을 명확하고 자세하게 제시하는 것이 중요합니다. 이를 위해 이 프로토콜은 이전 프로토콜6을 기반으로 정점 절제술을 어떻게 수행했는지에 대한 비디오를 생생하고 구체적으로 설명합니다. 
심장 재생의 기저에 있는 분자 메커니즘을 이해하는 것은 심부전과 같은 심근세포의 손실 및/또는 손상을 특징으로 하는 심장 질환의 치료에 중요합니다1, 2. 심장 재생 연구에서 정점 절제술의 현재 유망한 진전을 감안할 때, 이 연구는 심장 재생 연구에서 이 기술의 사용과 사용을 촉진할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>가위가 있는 Olsen-Hegar 바늘 홀더, 1.5mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>12002-12</td><td></td></tr><tr><td>Vannas Spring Scissors - 2mm Cutting Edge</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-03</td><td>홍채 절제술 가위</td></tr><tr><td>핫 비드 살균기</td><td>Fine Science Tools</td><td>18000-45</td><td></td></tr><tr><td>홍채 집게, 직선, 톱니 모양의</td><td>Fine Science Tools</td><td>11064-07</td><td></td></tr><tr><td>홍채 집게, 곡선, 톱니 모양의</td><td>정밀 과학 도구</td><td>11065-07</td><td></td></tr><tr><td>시어 가위 - 곡선/둔기/12cm</td><td>정밀 과학 도구</td><td>14105-12</td><td></td></tr><tr><td>원형 핸들 봉합사 묶는 집게, 직선</td><td>미세 과학 도구</td><td>18025-12</td><td></td></tr><tr><td>원형 핸들 반나스 스프링 가위</td><td>정밀 과학 도구</td><td>15400-12</td><td></td></tr><tr><td>미세 지혈</td><td>정밀 과학 도구</td><td>13007-12</td><td></td></tr><tr><td>확대</td>등 <td>Luxolamp Corp</td><td>IM120&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>난방 램프</td><td>Brandt Equipment llc</td><td>51152/3</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Prolene 봉합사</td><td>Ethicon</td><td>8889H</td><td></td></tr><tr><td>피부 접착제-Vetbond 조직 접착제&nbsp;</td><td>3M&nbsp;</td><td>1469</td><td></td></tr><tr><td>멸균 면 팁 애플리케이터</td><td>Dynarex</td><td>4305</td><td></td></tr><tr><td>WEBCOL 알코올 준비 패드</td><td>Covidien</td><td>6818</td><td>중간 2 PLY, 200/BOX, 70% 이소프로필 알코올</td></tr><tr><td>큐리티로 포화 다목적 스폰지</td><td>Covidien</td><td>9024</td><td>비직물 4 PLY, 4"x4" (10.2cm&times; 10.2cm)</td></tr><tr><td>벤치탑 보호시트</td><td>KIMTECH SCIENCE</td><td>7546</td><td>18" x 19.5" (45.72cm x 49.53cm) x 50</td></tr><tr><td>0.9% 염화나트륨, 250ml</td><td>호스피라</td><td>NDC 0409-6138-22</td><td></td></tr><tr><td>Betadine 솔루션 Swabsticks</td><td>Purdue Products LP</td><td>NDC 67618-153-03</td><td></td></tr><tr><td>오토클레이브</td><td>TOMY 디지털 생물학</td><td>SX-700</td><td>고압 증기 살균기</td></tr><tr><td>슬라이드 스캐너</td><td>HAMAMATSU</td><td>NanoZoomer 2.0-RS</td><td></td></tr></tbody></table>

치근단 절제술 마우스 모델은 초기 포유류의 심장 재생을 연구하는

Apical Resection Mouse Model to Study Early Mammalian Heart Regeneration

심혈관 질환으로 인해 집중적 인 생활 습관의 변화로 전 세계를 재앙. 심장 재생은 수리 인한 부상과 질병에 손실 심근 세포를 복원하는 큰 약속을 보유하고있다. 특정 낮은 척추 동물의 강력한 심장 재생과는 달리, 성인 포유류의 마음은 일반적으로 심장 재생 및 수리를위한 최소한의 용량을 보여줍니다. 그러나, 최근의 연구 (P7에 P1) 1-7 출생 후의 일 사이에, 신생아 마우스 마음이 혀끝의 절제 (즉, 수술 절단 및 좌심실 정점의 노출) 후 상당한 회생 가능성을 유지, 연구 결과와 상당한 과학적 관심을 촉발했다. 이 발견을 통해 하나의 주요 논쟁은 복제하거나이 중요한 발견에 확장하기위한 노력에 사용되는 다양한 수술 관련 절차로 인해 수 있습니다. 이 지침은 동적으로 마우스 모델에서 혀끝의 절제에 대한 자료와 방법론을 제시한다. 이 설치류 surviva의 두드러진 단계L 수술은 저체온 마취, 개흉술, 심장 심실 정점의 수술 절단 및 봉합와 마우스의 회복을 포함한다. 심장 혈관 연구를위한 치근단 절제술 마우스 모델의 응용 프로그램을 확장 할 수 설명하는 방법.

마우스 새끼는 1, 2, 이십일일 후 치근단 절제술을 안락사시키고, 그들의 마음을 H &amp; E 및 메이슨 트리 크롬 염색의 수집 하였다. 메이슨의 트리 크롬 염색 블루 색상은 심 외막 세포 외 기질 (5)의 증착을 나타냅니다. 도 1a에 도시 된 바와 같이 성공적인 치근단 절제술, 혈병을 효과적으로, LV 일일 후 치근단 절제술을 밀봉하도록 형성된다. 혈액 응고 초기 심장 섬유화의 점진적인 흡수가 관찰되고, 심근의 완전한 재생이 이십일일 치근단 절제술 후 (그림 1B 및 C)를 배치한다 때까지 심근 조직으로 대체가 발생합니다. 형태 학적 분석은 이십일일 수술 후 (그림 1C와 D)에서 절제와 가짜로 작동하는 마음 사이에 차이점을 보여줍니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/53488/53488fig1.jpg" /> ...

이 연구에서는 정점 절제술의 단계별 비디오 프로토콜이 입증되었습니다. 정점 절제술은 포유류 심장 재생 연구에서 최근 주목받고 있는 수술 방식입니다. 이 연구는 심장 재생의 기저에 있는 메커니즘에 대한 연구에서 정점 절제술의 표준 방법론으로 적용을 촉진할 수 있습니다.

Cardiovascular disease plagues the whole world due to intensive lifestyle changes. Heart regeneration holds great promise for repairing and restoring ...

이 실험 절차의 전반적인 목적은 신생 생쥐의 심첨부 절제를 통해 초기 포유류의 심장 재생을 연구하는 것입니다. 이를 통해 초기 포유류 심장 재생의 기초가 되는 분자 및 세포 기전은 무엇인가와 같은 심장 재생 분야의 핵심 질문에 대한 답을 찾는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 심첨부 절제 생쥐 모델이 초기 포유류 심장 재생 연구를 위한 상대적으로 단순하고 직접적인 접근 방식을 제공한다는 점입니다.절차를 시작하기 전, 생후 1일 된 C57 black six 새끼 쥐 6마리를 수유 중인 어미로부터 분리하여 신선한 베딩과 둥지 재료가 들어 있는 깨끗한 마우스 케이지로 옮깁니다. 그 다음, 각 신생물을 순서대로 아이스 베드에서 수술 구역으로 옮기고, 팔, 다리, 꼬리를 앙와위(supine position)로 고정합니다. 흉부를 베타딘으로 소독한 후, 70% 알코올 솜으로 부드럽게 닦아냅니다.이제 가슴강의 네 번째 내측 늑간 구역을 따라 피부 절개를 실시합니다. 스프링 가위를 사용하여 심장 첨단부를 절개합니다. 심장에 접근하기 위해, 스프링 가위로 심장 첨단부를 절개한 다음 내측 늑간근을 둔성 박리합니다.멸균된 6-0 봉합사를 사용하여 갈비뼈와 근육을 함께 봉합합니다. 피부 접착제를 사용하여 피부 절개 부위를 조심스럽게 닫고, 신생 동물이 가열 램프 아래에서 약 3분 동안 회복하도록 합니다. 그런 다음 70% 알코올 솜을 사용하여 새끼 쥐의 몸에 묻은 모든 혈액과 접착제 흔적을 닦아내고, 동물을 다른 형제들과 함께 원래의 무리로 돌려보냅니다.모든 수술이 완료되면, 새끼 쥐들을 어미의 깔짚 및 배설물과 섞은 후 어미의 둥지로 돌려보냅니다. 수술 하루 뒤, 가짜 수술군(sham)과 수술군 새끼 쥐의 수를 세어 각 그룹의 생존율을 결정합니다. 수술 후 적절한 시점에, 각 동물을 순차적으로 70% ethanol로 흉부를 세척하고 흉부의 피부 및 근육 중앙선을 절개합니다.흉강에서 심장 전체를 적출하여 4% paraformaldehyde 5mm 두께의 용액에 담가 상온에서 하룻밤 동안 고정합니다. 다음 날, 파라핀 포매 전까지 샘플을 70% ethanol로 옮겨 최대 일주일 동안 보관합니다. 심실 전체에 대해 5µm 두께의 파라핀 절편을 제작한 후, hematoxylin, eosin 및 Masson's trichrome으로 각각 염색하여 절제된 심장의 근육 대체 및 섬유성 반응을 관찰합니다.슬라이드 스캐너를 사용

apical-resection-mouse-model-to-study-early-mammalian-heart

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이 비디오에서는 신생아 마우스 심장의 좌심실 정점을 외과적으로 제거하는 절차를 보여줍니다.

정점 절제 신생아 마우스 모델: 신생아 마우스 심장의 재생 가능성을 연구하기 위해 심실 정점을 절단하는 수술 절차

심부전은 입원의 주요 원인이자 사망의 주요 원인입니다. 마우스에서 좌측 전방 하행 관상동맥의 영구 결찰 모델을 적용하여 심근경색 후 심실 리모델링 및 심장 기능 장애를 조사합니다. 마우스의 침습적 혈류역학적 측정 기술이 제시됩니다.

마우스의 왼쪽 전방 내림차순 관상 동맥의 영구 결찰 : 심근 경색 리모델링과 심장 마비의 모델

이 프로토콜은 출생 후 1일차 마우스의 좌심실에서 심근경색의 외과적 유도에 의한 재현성이 높은 심장 재생 모델을 설명합니다. 이 방법은 저체온 마취 유도와 좌측 전방 하행 관상 동맥 결찰을 포함합니다.

신생아 쥐의 심근 경색, 심장 재생의 모델

상해 다음 심근 세포 증식은 비 근세포 세포 집단에서 세포 외 단서의 교향곡을 요구하는 동적 프로세스입니다. 계보 추적, 수동 선명도 및 3차원 전체 마운트 공초점 현미경 기술을 활용하여 다양한 세포 유형이 심장 수리 및 재생에 미치는 영향을 분석할 수 있습니다.

클리어 심장 3 차원 이미징을 통해 표적 세포 집단의 심장 손상 반응을 캡처

이 프로토콜은 심부전 모델링하는 경질 마우스의 에피카듐에 3D 생체 인쇄 패치를 이식하는 것을 목표로합니다. 그것은 마취에 관한 세부 사항을 포함, 수술 가슴 개폐, 왼쪽 전방 내림차순 (LAD) 관상 동맥의 영구 결찰 및 심장의 경각진 영역에 생체 인쇄 패치의 적용.

심근 경색의 뮤린 모델에서 3D 생체 인쇄 패치의 이식

이성애 복부 마우스 심장 이식 모델에서 혈액 회로 재건을 위한 새로운 기술이 입증된다.

복부 마우스 심혼 이식 모형에 있는 혈액 회로 재건

우리는 신생아 심장 대식세포 분리 및 이식을 위한 프로토콜을 성인 마우스 심혼으로, 심장 수리를 승진시키는 유망한 방법이 될 수 있었습니다.

신생아 마우스 심장 대식세포를 성인 마우스로 이식

생쥐의 심근 경색 부위 주변의 초음파 유도 세포 전달은 안전하고 효과적이며 편리한 세포 이식 방법입니다.

심근 경색 마우스에서 초음파 유도 유도 만능 줄기 세포 유래 심근 세포 이식

여기에서 우리는 심근 경색 후(MI) 마우스 심장에서 높은 생존력을 가진 충분한 양의 단일 비심근 세포를 분리하는 프로토콜을 설명합니다. 이는 후속 단일 세포 시퀀싱, 유세포 분석 및 일차 세포 배양에 사용할 수 있습니다.

심근경색 후 성인 마우스 심장에서 단일 세포 RNA 시퀀싱을 위한 비심근세포 세포 현탁액의 제조

Xenopus tropicalis 는 많은 기관이 놀라운 재생 능력을 가지고 있기 때문에 재생 연구에 이상적인 모델입니다. 여기에서는 정점 절제술을 통해 X. tropicalis 에서 심장 손상 모델을 구성하는 방법을 제시합니다.

성인 Xenopus tropicalis 심장의 정점 절제 모델

학습하세요 치근단 절제술을 이용한 신생아 마우스 심장 재생 연구 방법을. 이 기술은 조기 포유류 심장 재생의 분자 및 세포 메커니즘을 규명하는 데 활용됩니다.

치근단 절제술 마우스 모델은 초기 포유류의 심장 재생을 연구하는

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