Name: 일본 메추라기 배아의 노 른 골목 막에서 차 내배엽 상피 세포 배양 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 53 s
Description: 배우세요 일본 메추라기 노 른 골막에서 내장엽 상피 세포를 분리 배양하는 방법을. 이 기술은 조류 배아 발달 및 지질 대사 연구에 활용될 수 있습니다.

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현재 프로토콜의 개발을위한 자금 조달은 특히 국립 대만 대학, 대만 (부여 ID-104R350144)뿐만 아니라 대만의 과학 기술부 (부여 ID &quot;상위 대학 계획에 대한 목표&quot;에 의해 지원됩니다 MOST (104) -2313-B-002-039-MY3). 우리는 특히 현재의 연구를위한 동물 실 및 실험실 공간을 제공하기 위해 국립 대만 대학의 생명 공학 센터 감사합니다.

참고 :..이 절차는 등 바우어 등 2013 나카자와 등, 2011 년 2,9에 의해 개발 된 치킨 모델 문화 프로토콜의 수정입니다 1. 건강한 배아 5 일 태아 일본어 메추라기에서 준비 <ol><li> 같은 케이지에서 함께 한 남자와 세 여성의 성적으로 성숙한 일본어 메추라기를 놓습니다. 전원 공급 및 임의 량의 물. 빛의 14 시간과 어둠의 10 시간에 동물 방에 빛을 조정합니다. </li><li> 오후에 매일 비닐 봉지에 수정 된 알을 수집하고 태아의 성장 속도를 지연하기 위해 16 ° C 냉장고에 보관하십시오. </li><li> 2 주 기간 내에 계란의 충분한 수를 수집 한 후, 5 일 동안 통풍이 잘되는 37 ° C 배양기에서 수정 된 알을 품어. </li></ol> 2. 기초 배지 및 세척 솔루션을 준비 <ol><li> 성장 배지로 (pH를 7.2로 조정) DMEM / F-12 배지를 사용하고, 그것을 보충10 % 새로 태어난 송아지 혈청 (NBCS), 1 % 펜 연쇄상 구균 Ampho와. 솔루션 (PSA; 페니실린, 105 단위 / L, 스트렙토 마이신, 100 ㎎ / ℓ, 암포 테리 신 B, 0.25 ㎎ / ℓ). </li><li> 저장을위한 10 배 농도의 인산 완충 식염수 (PBS) 용액을 제조; 씻어 (pH를 7.2로 조정;의 KCl, 2.667 밀리미터, KH 2 PO 4, 1.471 밀리미터; 나 2 HPO 4 -7H- 피 2 O, 8.06 mM의 NaCl을, 137.93 밀리미터 포함)과 난황 막 동안 축축하게 1X PBS 솔루션을 사용 계란 노른자와 알부민에서 내배엽을 분리. </li><li> 내배엽 펠렛을 다시 중단 (pH를 7.2로 조정) DMEM 배지를 사용합니다. </li></ol> 일본어 메추라기 YSMs에서 차 EECS 3. 컬렉션 <ol><li> 오일 (단계 1.3)에 대한 수집 한 알을 품어. 정상 배아 발달을 확인 달걀 ​​캔 들러에 의해 계란을 검사합니다. 참고 : 배아 일 5 일 YSM의 중배엽의 경계는 매우 명확하고 3 배아 층은 덜 함께 밀접하게 연결되어있다, 그래서 OB하기 쉬운주석 박의 내배엽. 만 YSM 컬렉션 정상적인 모세 혈관 순환 개발을 보여주는 계란을 사용합니다. </li><li> 주의 깊게 신선한 물과 75 % 에탄올을 사용하여 껍질을 청소합니다. 부드럽게, 가위로 공기 셀 위치에서 달걀 껍질을 열고 밖으로 껍질, 37 ° C 1X PBS로 가득 10cm 배양 접시에 집게와 장소에 의해 전체 YSM를 수집합니다. </li><li> 가위는 배아, 난황과 난백을 분리하고 부드럽게 1X PBS로 세척 YSM 세 번 및 10cm 배양 접시에 PBS 용액 YSM 배치하여. </li><li> YSM에서 외배엽을 제거하기 위해 집게와 가위를 사용합니다. 집게를 사용하여 2 번 단단히 내배엽 세포 층을 보유하고, 다른 하나는 모세관 중배엽을 잡아. </li><li> 해부 현미경에서 떨어져 당겨 배아를 향한 방향으로 중배엽의 가장자리에서 내배엽를 구분합니다. 37 ° C 와트 성장 배지 15 ㎖ 중의 적기 장소를 이용하여, 50 ml 원심 분리 튜브 내에서 담황색 내배엽 모아서어 목욕 모든 조직 모음이 완료 될 때까지. </li></ol> 콜라게나 소화에 의해 내배엽 조각 4. 소화 <ol><li> 갓 DMEM 10 ml의 유형 IV 콜라​​게나 6.5 단위를 녹인다. </li><li> RT에서 3 분 동안 130 XG에 50 ㎖ 튜브 (3.4)을 원심 분리기. 매체를 기음과 피펫을 사용하여 6cm 배양 접시에 모든 내배엽을 배치합니다. 이 배양 접시에 1 ml의 콜라게나 솔루션을 추가합니다. </li><li> 각 조각의 크기까지 곡선 가위 2 메추라기 배아에서 수집 내배엽 슬라이스 대략 2-3mm이다. , 적기를 사용하여 신선한 콜라게나 솔루션의 9​​ ml의와 함께 50 ㎖ 원심 분리 튜브에 모든 조각을 수집합니다. </li><li> 175 rpm에서 37 ° C 진탕 수조에서 30 분 동안 콜라게나 조직 다이제스트. 콜라겐이 부분 소화 이식편의 세포 증식을 향상시키는 데 사용된다. </li><li> RT에서 3 분 동안 130 XG에 원심 분리기 부드럽게 피펫을 사용하여 상층 액의 일부를 제거. 20 ㎖ DMEM에 현탁하여 펠렛을 씻고 3 분 130 XG에 원심 분리 후 상층 부분을 제거합니다. </li><li> 다시 중단 성장 매체 (10 % NBCS 1 %의 PSA와 DMEM / F12)의 12 ml의와 펠렛을, 24 웰 플레이트에 부드럽게와 동일 (각 웰에 500 ㎕의 세포 솔루션을) 시드. </li><li> 세포 조직에서 증식 할 수 있도록 2 일 동안 공기 중에서 5 %에서 37 ° C에서 CO 2 조직 이식편 부화. </li><li> 추가 2 일 동안 세포를 인큐베이션하고 세포 생존 분석 프로토콜에 의해 세포 생존율에 대한 특성화. 15 주 : 살아있는 세포는 세포질 내에서 환원 환경을 유지한다. 레사 주린, 활성 성분은 푸른 색과 거의 비 형광 비 독성 세포 투과성 화합물이다. 세포 배양에 첨가 될 때, 레사 주린은 미토콘드리아 효소에 의해 세포질로 레조 루핀 (resorufin)로 감소된다. 레조 루핀 (resorufin)는 붉은 색과 높은 형광입니다. 실행 가능한 세포가 지속적으로 레사 주린은 레조 루핀 (resorufin)로 변환, incre주변 세포 배양 배지의 전체 형광 색 asing. </li><li> 한 바와 같이 전사 및 PCR 마커 유전자의 mRNA 발현의 정량적 실시간 역 내배엽 상피 세포의 총 RNA 분리를 수행한다. (16, 17)을 <ol><li> SOAT1 mRNA를 검출하는 역전사 효소를 사용하여 PCR (센스 : 5&#39;-GAAGGGGCCTATCTGGAACG-3 &#39;안티센스 : 5&#39;-ATCTGCACGTGACATGACCA-3&#39;; PCR 생성물을 B​​P = 168) EEC 세포 특이 마커로. 하우스 키핑 유전자 및 내부 통제로 β-굴지의 mRNA (PCR 제품 = 151 bp의 : &#39;; 5&#39; GTGATGGACTCTGGTGATGG-3 안티센스&#39;5&#39;- TGGTGAAGCTGTAGCCTCTC-3 감각)를 사용합니다. </li><li> RT-qPCR에 제품의 크기를 검출하는 겔 전기 영동을 사용한다. 1 % 아가 로스 젤을 준비, 2 μL 로딩 염료 10 μl의 qPCR에 제품을 혼합한다. 로드 10 μL 웰을 1 % 아가 로스 겔에서 각 혼합물에, 30 분 동안 100V로 겔을 실행. </li></ol></li></ol>

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</ol>

경쟁하는 재정적 이해관계나 기타 이해 상충이 없습니다. 우리는 어떤 민간 기업으로부터 자금도 받지 못했습니다.

전 배양 시스템은 제한된 성공을 갖기 때문에, 더 배양 시스템이 필요하다. 일본 메추라기 YSM의 내배엽은 전 생체 내 외식의 더 나은 성장 성능을 달성하기 위해 세포 - 세포 접합을 완화하기 위해 콜라겐 등의 단백질 분해 효소와 치료가 필요합니다. 우리의 데이터는 부분 소화 처리에서 세포 수는 이일 (그림 1)에 대한 시딩 후 소화되지 않은 조직 문화에서보다 더 컸다 것으로 나타났다. 따라서, 부분적인 단백질 분해 소화 YSM 셀에서의 수율을 향상시키는 중요한 단계이다. 현재 문화 프로토콜의 중요한 수정 부분 단백질 분해 소화합니다. 이 처리는 크게 셀 수율 라이브 EECS를 얻는 성공률을 향상. 오버 소화가 조직에서 세포를 분리하고 세포, 판에 부착되지 않기 때문에 아래 - 소화의 적은 세포 수율 결과 반면 소화 시간이 매우 중요하다조직 이식편. 우리는 위에서 설명한 조건을 사용하여 30 ~ 40 분 소화 최적 것으로 나타났습니다. <...

조류 배아의 주요 영양 자원이 33 % 지질, 17 %의 단백질로 구성 노른자, 1 % 재. 1 배아 개발 중입니다, 난황 막 (YSM)는 배아 복강 내에서 성장하고 점차적으로 노른자를 커버 표면. 배아 2 일에 시작하여, 지질 대사 및 혈관 신생과 관련된 유전자의 발현이 점차 YSM 증가되고 YSM 천천히 융모와 같은 돌기를 발생한다. -8,9- 이러한 돌기는 배아 발달을 지원하기 노른자 영양소의 흡수를 증가시킨다. YSM 세 가지 배엽, 내배엽, 중배엽과 외배엽을 포함하는 배외 (extraembryonic) 조직이다. (14) 난황 외배엽 부드럽게 난황을 포함하는 난황 막과 알부민 및 링크에 직면 해있다. 내배엽 상피 세포는 shap로 나눌 수있다 달걀 노른자를 향해 직접 직면하고 영양 활용 포털의 역할을한다. 6 YSM이 확장하면서, 내배엽 상피 세포 (EECS)를하고 있습니다두 그룹, 지역 난황 및 지역 vasculosa에 전자 및 기능을 제공합니다. (7) 영역 난황는 내배엽 세포로 구성되며 배아로부터 떨어진되고 영역 vasculosa는 중배엽 세포로 구성되고, 혈관 결합 조직으로 분화 EECS을 덮는다. 배아 5 일까지, 노른자는 완전히 YSM의 외배엽과 내배엽이 적용되고, 혈관 영역은 빠른 속도로 성장하고있다. YSM은 배아 순환 시스템으로 (노른자 유래 매우 저밀도 지질 단백질 등)과 단백질. 9, 2 따라서, 우리는 지질의 메커니즘을 연구하기 위해, 기본 일본어 메추라기 배아 내배엽 상피 세포 배양 시스템을 구축 recomposes 해제 지질 흡수 조류 배아 개발하는 동안 YSM에 활용. 예컨대 중성 지방, 레시틴, 인지질 및 콜레스테롤 에스테르 (CE)와 같은 지질 조류 배아의 주 에너지 원이다. 개발의 초기 단계에서, 난황 지질 C는1.3 %의 CE의 omposed하고 조류 배아 발달 (3)의 중간 10-15 %로 상승, 11. 콜레스테롤 에스테르 조류 배아 YSM에 스테롤 O-아실 트랜스퍼 라제 1 (SOAT1)에 의해 콜레스테롤로부터 합성된다. (4) 콜레스테롤의 저장 형태는 CE, CE는 지질 단백질에 실시하고, 지질 단백질은 조직에 혈액 순환에 의해 수송된다. 13 주 해치 전에 조류 배아의 급속한 성장이있다. 약 노른자의 나머지 지질 함량의 68 %는이 단계에서 흡수된다. 10 지질 EEC 연구 모델로 정화 할 수있다 이용된다 노른자하는 메커니즘. 닭 EEC 배양 프로토콜은 본 연구의 목표를 ​​달성하기 위해 설립되었다. 2, 9, 그러나, 향상된 EEC 세포 배양 방법에 의해 영양분 활용도를 매개 특정 효소와 단백질의 기능을 연구하는데 필요한 조직 이식편의 낮은 성공률로 개발하는 동안 조류 배아.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle Medium</td><td>Gibco by Life technologies</td><td>12800-017 10 X 1 L</td><td>EECs 펠릿</td></tr><tr><td>D-MEM/F-12</td><td>Gibco by Life technologies</td><td>12400-024 10 X 1 L</td><td>EEC 배양의 기초 매체</td></tr><tr><td>NBCS</td><td>Gibco by Life technologies</td><td>16010-159</td><td>EEC 배양 시 공급 혈청</td></tr><tr><td>Pen-Strep Ampho. 솔루션</td><td>BI (생물 산업)</td><td>03-033-1B 100 ml</td><td>감염 가능성을 약화시키기 위해&nbsp;</td></tr><tr>Life technologies의 <td>Collagenase Type IV</td><td>Gibco</td><td>17104-019 1 g</td><td>&nbsp; 콜라겐분해효소(collagenase)는 Pro-XGly-Pro 서열에서 중성 아미노산(X)과 글리신 사이의 결합에 특이성을 가진 프로테아제입니다. 일차 조직에서 세포의 해리를 위한 프로테아제로.</td></tr><tr><td>24웰 플레이트</td><td>FALCON&reg; </td><td>REF-353047</td><td>EEC가 부착하고 확장하기 위해</td></tr><tr><td>50 ml PP 원심분리기 튜브</td>를 <td>Corning&reg; CentriStarTM</td><td>430829</td><td>멤브레인 및 효소 분해 운반용</td></tr><tr>캡<td>이 있는 50ml 원뿔형 바닥 튜브</td><td>PRO TECH</td><td>CT-50-PL-TW</td><td>멤브레인 및 효소 분해 운반용</td></tr><tr><td>상호 진탕</td><td>DEAGLE</td><td>SB302</td><td>멤브레인의 더 나은 효소 분해를 위해</td></tr></tbody></table>

일본 메추라기 배아의 노 른 골목 막에서 차 내배엽 상피 세포 배양

Primary Endodermal Epithelial Cell Culture from the Yolk Sac Membrane of Japanese Quail Embryos

우리는 개발 과정에서 조류 배아에 의해 영양소 이용률을 매개하는 특정 효소와 단백질의 기능을 연구하는 내배엽 상피 세포 배양 모델 (EEC)를 설립했다. 수정 된 일본어 메추라기 계란 5 일 동안 37 ° C에서 배양 한 다음 골목 막 (YSM)는 EEC 문화 시스템을 구축하기 위해 수집 노른자 하였다. 우리 YSM에서 배아 내배엽 층을 단리하고, (2) 내에 막 분리 - MM 3 개의 부분적으로 24 웰 배양 플레이트에 파종 전에게나로 분해. EECS는 조직에서 증식 및 세포 배양 연구를위한 준비가되어 있습니다. 우리는 EECS 예를 들어 생체 내에서 YSM의 일반적인 특성, 지질 방울의 축적, 스테롤 O-아실 트란스 퍼과 지단백 리파제의 발현을 한 것으로 나타났습니다. 부분 소화 치료는 크게 EEC 문화의 성공적인 속도를 증가했다. EECS을 활용, 우리는 SOAT1의 발현이 캠프 D에 의해 규제 것을 증명ependent 단백질은 관련 경로를 키나아제. 이 차 일본어 메추라기 EEC 문화 시스템은 배아 지질 수송을 연구하고 조류 배아 개발하는 동안 YSM 영양소 이용률을 매개에 관여하는 유전자의 역할을 명확히하기 위해 유용한 도구입니다.

일관성 있고 유용한 셀 모델을 설정하는 목표를 달성하기 위해, 우리는 확장 증식 속도 및 조류 EECS의 성능을 안정화 할 필요가있다. 우리는 부분적 콜라겐 또는 콜라겐 플러스 디스 파제 0.6 U와 같은 단백질 분해 효소로 분해 내배엽 아니 효소 소화와 내배엽의 직접 배양을 비교 하​​였다. 디스 파제는 비극성 아미노산 잔기의 N 말단 펩티드 결합을 가수 분해 아미노 - 엔도 펩 티다 제이다. 단백질 분해 효소 소화 처리없이 소화 (그림 1)에 비해 세포 증식을 증가하는 반면, 세포 성장은 오일 배양 (그림 2) 이후 두 효소 처리와 현저하게 차이가 없었다. 그러나, 콜라게나 제 처리는 더 성장 곡선 귀착 EECS가 6~9일 (도 2)에 대해 안정적으로 증식 것으로 나타났다. 따라서, 부분 콜라게나 소화에서 EECS의 성장을 향상전 생체 내 외식과 충분한 및 기능 EEC를 획득...

조류 배아 발달 후기 단계에서 난황낭 막의 지질 활용 메커니즘을 연구하기 위해 1차 일본 메추라기 배아 내배엽 상피 세포 배양 시스템을 구축했습니다.

We established an endodermal epithelial cell culture model (EEC) for studying the function of certain enzymes and proteins in mediating nutrient ...

본 ex vivo 조직편(explant) 절차의 전반적인 목적은 조류 배아의 영양분 이용을 매개하는 효소 및 단백질의 기능을 연구하기 위해 조류 내배엽 상피세포의 수집을 개선하고 응용 범위를 확장하는 것입니다. 이 방법은 발달 후기 단계에서 난황 지질이 어떻게 패키징되어 난황에서 배아로 운반되는지와 같은 조류 배아 형성 과정 중의 지질 이용에 관한 핵심적인 질문들에 답하는 데 도움을 줄 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 일본메추라기 난황낭 막에서 기능적인 내배엽 상피세포를 성공적으로 분리해낼 수 있다는 것이며, 이는 조류 배아 발달 연구를 위한 모델로 활용될 수 있습니다.텍스트 프로토콜에 설명된 대로 10x PBS 용액을 만드는 것부터 시작하십시오. 이 스톡 용액을 10배로 희석하여 1x PBS를 준비하며, 이는 내배엽 박리 중 난황낭 막을 세척하는 데 사용됩니다. 내배엽 상피 세포(endodermal epithelial cells, EECs)용 성장 배지를 준비하려면, 먼저 DMEM/F-12에 10% newborn calf serum과 1% penicillin streptomycin amphotericin 용액을 첨가하십시오.그 후, pH 미터의 프로브를 미리 준비한 DMEM에 넣습니다. 배지의 pH가 7.2로 조정될 때까지 3N HCl을 한 방울씩 첨가합니다. 수정된 메추라기 알을 약 24개 수집한 후, 기실이 위치한 넓고 뭉툭한 끝부분이 위를 향하도록 달걀 용기에 수직으로 세워 놓습니다.그런 다음, 알을 37 °C로 설정된 통풍이 잘 되는 배양기로 옮깁니다. 5일간 배양한 후, 검란기를 사용하여 알을 검사합니다. 배아가 정상적으로 발달했다면, 기실 아래에 모세혈관으로 이루어진 원형 구조가 보일 것입니다.정상적인 모세혈관 발달을 보이는 알을 선택하고, 껍질을 증류수와 75% ethanol로 세척합니다. 그다음 가위를 사용하여 기실(air cell) 부위에서 알껍질을 엽니다. 핀셋을 사용하여 알의 내용물을 빈 10 cm 배양 접시에 조심스럽게 쏟아냅니다.그런 다음, 가위를 사용하여 배아, 난황 및 알부민을 난황낭막(YSM으로 약칭)에서 분리합니다. YSM을 분리한 후, 1x PBS로 3회 세척하고, PBS가 담긴 새로운 10 cm 디쉬로 옮깁니다. 그 후, 디쉬를 해부 현미경 아래에 놓습니다.그 다음, 가위로 YSM의 외측 외배엽 층에 인접한 잔여 난백을 제거합니다. 이어서 핀셋을 사용하여 난황낭 막의 중배엽 가장자리로부터 반투명한 외배엽과 붉은 모세혈관 구조의 중배엽을 들어 올립니다. 그런 다음, 외배엽과 중배엽을 함께 부드럽게 벗겨내어 하단의 내배엽 세포 층을 분리합니다.그런 다음, 한 쌍의 핀셋으로 막의 노란색 내배엽 세포층을 단단히 잡습니다. 다른 핀셋으로 모세혈관 중배엽을 잡고, 중배엽과 내배엽의 접합부 가장자리에서 중배엽을 떼어냅니다. 가위로 남은 노란색 내배엽 층을 잘라내어 성장 배지가 채워진 6 cm 배양 접시에 옮깁니다.스포이드를 사용하여 YSM 수집 후 6 cm 배양 접시의 연노란색 내배엽을 15 mL 원심분리 튜브로 옮기고, 미리 준비한 성장 배지 15 mL를 추가합니다. 모든 조직 수집이 완료될 때까지 원추형 튜브를 37 °C 항온수조에 둡니다. 먼저 10 mL의 DMEM에 6.5 units의 Type IV collagenase를 녹여 용해시킵니다.다음으로, 내배엽이 포함된 튜브를 실온에서 130 ×g로 3분 동안 원심분리합니다. 원심분리 후 배지를 흡입하여 제거하고, 스포이드를 사용하여 모든 내배엽 샘플을 6 cm 배양 접시로 옮깁니다. 그 후, 접시에 콜라겐 용액 1 mL를 추가합니다.곡선 가위를 사용하여 4마리의 메추라기 배아에서 수집한 내배엽을 약 2~3mm 크기의 조각으로 자릅니다. 그 후, 조각들을 50 mL 원심분리 튜브에 모으고, 이미 튜브 안에 들어 있는 9 mL의 신선한 collagenase 용액과 섞습니다. 외식편(explant) 단계에서 세포 증식을 향상시키기 위해, 튜브를 37°C로 설정된 진탕 항온수조에 넣습니다.그 다음, 원추형 튜브를 30분 동안 배양하여 collagenase로 조직을 부분적으로 소화시킵니다. 부분적인 단백질 분해 소화는 난황낭 막 내배엽으로부터 세포 난황 수집 효율을 높이는 가장 중요한 단계입니다. 본 연구 데이터에 따르면, collagenase 소화 과정을 통해 세포 배양 및 세포 증식의 성공률이 유의미하게 향상됨을 확인할 수 있습니다.콜라게나아제(collagenase) 소화 후, 조직을 상온에서 130 ×g로 3분간 원심분리하고 피펫으로 상층액을 제거합니다. 펠렛(pellet)을 20 mL의 DMEM에 다시 현탁하여 세척합니다. 앞서 설명한 방법으로 튜브를 원심분리한 후, 상층액을 제거하고 펠렛을 12 mL의 성장 배지에 다시 현탁합니다.그 다음, 현탁액 500 µL를 24-well plate의 각 웰에 조심스럽게 분주합니다. 내배엽 절편을 37 °C, 5% CO2 조건에서 2일 동안 배양합니다. 이 기간 동안 세포가 조직 밖으로 증식하게 됩니다.다음으로, 세포를 이틀 더 배양합니다. 그런 다음, 세포 생존능 분석을 수행하고 플레이트 리더를 사용하여 결과를 시각화합니다. 이후, RT-qPCR을 수행하여 EEC에서 관심 마커의 발현 수준을 평가하고, 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 겔 전기영동을 통해 RT-qPCR의 산물 크기를 확인합니다.이 그래프에서 나타나고 paired t-test로 확인된 바와 같이, 콜라게나제(collagenase)로 부분 소화시킨 외식편은 처리하지 않은 외식편에 비해 세포 증식이 유의미하게 증가하여 배양 시스템의 성공을 입증하였습니다. 다른 효소들의 효과를 평가하기 위해, 콜라게나제와 디스파제(dispase)를 함께 처리한 조직과 콜라게나제만 처리한 조직에 대해 세포 생존능 분석을 수행하였습니다. 배양 초기 5일 동안 두 조건 모두에서 세포 성장은 비슷하게 나타났습니다.하지만 6일에서 9일 사이에는 collagenase로 처리한 EECs만이 꾸준히 증식했으며, 이는 이 효소를 이용한 부분 소화가 성장을 촉진하므로 우선적으로 사용되어야 함을 시사합니다. 배양된 EECs를 시각화했을 때, 여기에서 보는 바와 같이 크고 둥근 지질 방울이라는 지방세포 유사 특징이 나타났습니다. 이러한 세포들은 일반적으로 지방세포 식별에 사용되는 Oil Red O 염색에서도 양성 반응을 보였습니다.이러한 형태학적 데이터를 뒷받침하기 위해, 실시간 정량 PCR을 통해 배양된 EEC가 콜레스테롤로부터 콜레스테롤 에스테르를 합성하는 단백질인 SOAT1을 높은 수준으로 발현함을 확인하였습니다. 이는 배양된 EEC가 지방세포의 정확한 생리학적 특성을 나타낸다는 것을 추가적으로 시사합니다. 중요한 점은, cyclic adenosine monophosphate 또는 cAMP 수치를 증가시키는 인자인 IBMX와 Forskolin에 EEC를 노출시켜 24시간 동안 배양했을 때, 두 처리 모두 SOAT1 발현을 자극했다는 것이며, 이는 YSM 내의 SOAT1 조절 및 지질 이용의 가능한 기전을 시사합니다.이 기술을 숙달하면 약 4시간 이내에 수행할 수 있으며, 그동안 최소 3개의 샘플을 수집할 수 있습니다. 이 절차 이후에 SOAT1과 같은 방법이나 다른 효소 활성 분석 및 유사한 시각적 확인을 수행할 수 있습니다. 이러한 분석은 특정 단백질과 다량 영양소가 배아 발달의 후기 단계에 어떻게 관여하는지와 같은 추가적인 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다.이 기술의 개발 이후, 배아 영양소 이용 분야의 연구자들은 조류 배아 모델에서 영양소가 이용되고 운송되는 가능한 메커니즘을 탐구할 수 있는 길을 열었습니다. 이 영상을 시청하고 나면 조류 배아에서 내배엽 조직을 수집하는 방법을 배울 수 있으며, 조류 모델을 이용해 배아 영양소 운송 및 이용을 연구하기 위한 EEC 배양 방법을 익힐 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

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