Name: 마우스의기도 신속 삽관 용 개선 된 방법 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-02-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 46 s
Description: 학습하세요 마우스 기도 내 삽관을 통한 신속한 약물 투여 방법으로 폐 생물학 및 급성 폐 손상 연구를 수행하는 기술입니다. 이 방법은 재현성이 높고 주변 조직 손상을 최소화하며 특수 장비 없이도 익힐 수 있습니다.

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저자는 트리 크롬 염색 및 분석에 대한 도움말은 워싱턴 대학의 조직학의 브라이언 존슨과 이미징 코어 감사합니다. 이 작품은 NIH 보조금 HL098067 및 HL089455에 의해 지원되었다.

미국과 삼목 시나이 의료 센터의 대학 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)는 이러한 연구에 필요한 동물 작업을 승인했다. 1. 준비 <ol><li> 무딘 엔드 집게와 억압자를 통해 오토 클레이브를 모두 소독. </li><li> 생물 안전 캐비닛을 사용하여 동결 건조 분말 PBS에서 BLM의 작업 주식을 준비합니다. 혼합조차 보장 35 kHz에서 10 분 동안 초음파 처리 용액. 참고 : μL (30) 사이에 45의 총 부피는 큰 볼륨과 피펫의 로우 엔드에 변화하고, 질식을 방지하는 것이 좋습니다. </li><li> 약 1 절차 자체에 대한 평방 미터뿐만 아니라 전 시술 후 모두 케이지에 대한 지정된 위치를 포함하는 깨끗한 작업 공간을 준비합니다. </li><li> 베이스와 underl를 통해 실험실 테이프의 2 또는 3 스트립을 마련하여 즉시 연구원 앞의 벤치에 프로 시저 보드의 기본 수정벤치 잉. 보드를 만드는 방법에 대한 자세한 사양은 그림 1을 참조하십시오. </li><li> 절차 기판의 두 개의 위치 사이의 나사 크기 4.0 봉합 실의 단일 길이 넥타이. </li><li> 제거하고 1 ㎖의 세 주사기에서 플런저를 폐기하고, 기밀 밀봉을 형성하여 배럴의 상부에 PBS 60 μL를 증착함으로써 임시 폐활량계를 생성한다. 느슨하게 주사기 중 하나에 카테터의 허브를 안전하고 보드의 한쪽에 놓습니다. </li><li> 1 ML의 주사기에 공기의 흡인 300 μL와 보드의 한쪽에 놓습니다. </li><li> 한쪽으로 테이프 길이와 장소에 약 6 인치의 추가 조각을 잘라. 이 단계 2.4 보드 동물을 보호하는 데 사용된다. </li><li> 이소 플루 란 실을 설정합니다. 노출 챔버와 통관 진공 모두에서 해당 포트에 O (2), 이소 플루 란, 진공을 연결합니다. 또는에서 마취를 관리 이소 플루 란 호환 생물학적안전 캐비닛. </li></ol> 2. 삽관 <ol><li> 이 의식을 잃고 호흡이 적절한 속도로 감속 할 때까지 실에서 이소 플루 란과 마우스를 마취. 전형적인 노출 3-4 분 동안 4 % 이소 플루 란 2 % O 2를 포함하고, 최적의 결과는 마취 2-2.5 분이다. 이 한 숨을 2 초마다의 호흡 속도에 해당한다. </li><li> 한쪽으로 피펫과 장소에 BLM 30, 45 μl의 사이에 설정하는 진정 작용, 흡인 기다리는 동안. </li><li> 준비가되면, 절차 플랫폼의 위치에 장착 나사 스레드에서 상부 앞니에 의해 마우스를 진정 중단. 동물의 배부 플랫폼 표면에 평평하게 놓여 있는지 확인합니다. </li><li> 환기를 제한하지 않도록주의이기 때문에, 그냥 진동판 위에 느슨하게 흉강의 하단 (꼬리) 부분에서 테이프의 조각을 놓습니다. 위치는 PROC 동안 적절한 정렬을 유지하기 위해 꽉 충분해야한다edure하지만 호흡을 제한 너무 꽉 없습니다. </li><li> 80 % 내지 100 %의 강도로 조명을 켜고 명치 부근의 피부 표면 1~2cm,되도록 거위의 방향. 주기적으로 마우스를 손상하지 않도록 열을 위해 거위의 끝을 확인합니다. </li><li> 플랫폼 뒤에 ​​서, 혀의 위치를​​ 살균, 무딘 엔드 집게를 사용합니다. 아래 앞니, 부드럽게 그립을 방지하고 구강 밖으로 혀를 그릴 조심. </li><li> 나머지 손을 사용하여, 억압 물을 넣고 구강의 바닥에 평평하게 혀를 사용. 집게를 해제하지만 다음 두 단계를위한 장소에 억압자 둡니다. </li><li> 기관지 그것이 mainstem 기관지의 수준에 도달 할 때까지 명치의 레벨로부터 근위 거위 안내하여 볼 수 있도록 빛의 방향. 주 : 기관지 용이 호흡 작용에 의해 구별 될 수 있으며, WHI채널은 강도가 변동하는 방출되는 빛을 발생합니다. 정확하게 위치 할 때,이 구조는 구강 자체 최소한의 주변 조명과 빛의 중앙에 위치한 핀과 같은 축 평면에서 식별 할 수 있습니다. </li><li> 각도가 직선 루멘, 액 적을 함유 연결된 주사기, 기관의 천연 경로를 따르며, 22-G 카테터 팁을 낮추도록 주사기. PBS 거품이 상승하고 성공적인 위치에 따라 각각의 호흡과 가을에 시작됩니다. 참고 :이 작업은 깊은 진정 작용의 결과로 몇 초 정도 지연 될 수 있습니다. </li><li> 추가 5mm에서 카테터 피드. 혀를 제거 억압자. </li><li> 부드럽게 주사기를 제거, 반대 손으로 주사기를 이동하고, 허브를 파지. </li><li> 카테터 허브의 내부의 중심으로 BLM 30 45 μL 사이 금고는 제 2 주사기를 연결하고 허브에 공기의 300 μL 분주. </li><li> 두 번째 교체제 PBS의 기포를 함유하는 주사기. 거품 상승과 절차가 성공적으로 수행 된 경우 떨어질 것입니다. </li></ol> 3. 후 절차 케어 <ol><li> 카테터 및 테이프를 제거하고 의식을 회복 할 때까지 건조 따뜻한 장소에서 동물을 배치 - 일반적으로 몇 분 내에. </li></ol>

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</ol>

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에어로졸 인해 제한 시약 가용성, 안전성, 또는 비용이 비현실적 경우에, 직접 기관 행정부는 폐에 외인성 에이전트의 전달을위한 우수한 방법이다 16 Transtracheal의 점안이 광범위하게이 작업을 수행하는 데 사용되었습니다.; 그러나, 모든 외과 적 개입, 그것은 또한 그것 절차 자체에 의한 합병증의 가능성을 수행하고, 반드시 제가 주입된다. (13) 이러한 이유로, 삽관 16,17,18,19,20 통해기도에 직접 약물을 투여하는 점차 일반화되고있다. 그러나, 이러한 방법은 확장 복구 케타민 / 자일 라진 같은 강력한 진정제의 사용으로 인해 시간, 불확실성 카테터의 위치에 대한 (즉., 식도로가 아닌 기관)에서 조직의 불필요한 조작을 포함, 제한 고통 구강 및 관련 비용이러한 검 이경 / 후두경 같은 전문 장비를 구입와. 설립되면, 여기에 설명 된 방법은 다른 삽...

일부 해부학 적 생리 학적 차이에도 불구하고, 1 뮤린 모델 사육 관점에서 인간 생물학 및 질환 발병. 2 모델링 헤아릴 수, 마우스, 취급하기 쉬운 낮은 사육 시간 가속 수명을 가지며, 상대적으로 저렴 계속 집입니다. 다양한 유전자 변형 전략 (예., 조건부 녹아웃 리포터 마우스 계통 추적 방법 등)뿐만 아니라, 가능한 시약의 다양한 (예., 항체, 재조합 단백질 억제제의 개발과 함께, 등), 마우스는 인간의 질병 및 항상성 과정을 밝히기 위해서 필수적인 모델 척추 생물되었다. (3) 마우스는 인간의 4 ALI는 외상, 부상 또는 패혈증으로 인해 발생할 수 있습니다. 급성 폐 손상 (ALI) 및 폐 섬유증을 포함한 폐 조건을 공부에 특히 유용되었습니다 상피을 특징으로하고내피 누출 (예., 부종), 염증 및 초기 섬유화. 많은 환자에서 ALI 종종 인한 호흡 부전으로 사망 섬유증 결과의 중증 급성 호흡 곤란 증후군 (ARDS)으로 진행한다. 5,6- 폐 섬유증은 세포 외 기질의 과잉 증착 특징 진보적 인 심각한 병리학 , 특히. 나는 장애인 폐 기능을 선도, 콜라겐 블레오 마이신 (BLM)의 7,8 관리를 입력 한 실험 동물에 ALI 및 섬유화를 유도하기 위해 가장 널리 사용되는 최고의 특성화 된 모델입니다. (9) 설치류에 폐 섬유증을 BLM 유발하지만 않습니다 완전히 인간의 섬유 성 표현형은,이 모델 (10) 마우스 연구는 발병과 질병의 진행에 영향을 미치는 여러 중요한 요인의 발견을 주도 요점을 되풀이하지. (11) BLM 유도 섬유화 뒤에 정확한 메커니즘 (들)를 알 수 있지만, 개시 부상전도기도 및 폐포, 특히 제 1 형 pneumocytes 라이닝 상피 세포의 접촉에 의존하는 DNA 가닥 나누기에서 발생하는 것으로 생각된다. (12) BLM과 폐 상피 세포 사이의 직접 접촉에 대한 필요성은 강력한 전달 경로의 중요성을 강조 그리고 이러한 우려는 재조합 단백질, 항체, siRNA를, 바이러스, 박테리아, 미립자 등을 포함한 말초기도를 대상으로 치료의 넓은 범위에 밀접한 있습니다. 인두 흡인 (OPA)는 이러한 목적 13 널리 사용되었지만, OPA의 주요 단점은 전달 제의 일부가되어 투여 용량으로 부정확 선도 위장관으로 삼킬 수 있다는 것이다. 널리 사용되는 또 다른 방법은 직접 호흡기에 제의 기관지 점적 및 노출 강한 마취 기관 절개술을 포함 transtracheal 점안이다. (14) 그러나, 그러한 수도절차 인해 invasivity에 바람직하지 않을 수 있지만, 또한, 시간 소모적 인 훈련 공정한 비트가 필요하며으로 제제의 직접 투여를 포함한다. 15,16 여러 프로토콜들이 개발되었다 호흡기 잠재적 손상을 일으키는 수술 개입 없이도기도가 16,17,18,19,20 그러나 이러한 방법은 확장 된 것을 포함 복구 시간 강력한 마취제로 인한 고가 장비의 사용 (예., 이경 / 후두경 시판 절차 보드, 광섬유 투여 량에 관한 와이어 등), 구강 조작 과량 불확실성. 이 논문은 연구자가 신속, 저렴하고 안정적​​으로 주변 조직에 잔류 손상의 제한으로 위험 쥐의 폐에 시약을 주입 할 수 있습니다 삽관을 통한 행정의 비교적 쉬운 방법을 설명합니다.

<table><tbody><tr><td>Bleomycin For Injection, 30 units/vial</td><td>APP Pharmaceuticals, LLC</td><td>103720</td><td>최상의 결과를 위해, BLM은 PBS에 현탁시키고, 분주하며, 일회용 동결필 분취제로 보관해야 합니다</td></tr>. <tr><td>Blunt End Forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tongue Depressor (즉, 굽은 Valleylab Blade Electrode, 2.4")&nbsp;</td><td>Covidien</td><td>E1551G</td><td>사용하기 전에 블레이드 끝에서 1.5cm&nbsp; 45도 굽힘을 만드십시오. 유사한 치수의 모든 금속 도구로부터 적절한 감압기를 만들 수도 있습니다.&nbsp;</td></tr><tr><td>Exel Safelet 카테터 22G X 1"</td><td>Exel International</td><td>26746</td><td></td></tr><tr><td>1 ml 슬립 팁 일회용 투베르큘린 주사기 (200/sp, 1600/ca)</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>0.2 ml 피펫터 및 필터 팁</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fiber-Lite 조명기. 모델 181-1: 모델 180은 표준 듀얼 구즈넥 조명기</td><td>Dolan Jenner Industries, Inc.</td>와 결합됩니다.<td>181-1</td><td>저출력 LED 조명기는 기관을 충분히 조명하지 못하므로 권장하지 않습니다.</td></tr><tr><td>삽관 보드</td><td></td><td></td><td>는 다이어그램 1을 참조하십시오.</td></tr><tr><td>컬러 라벨 테이프 : 0.5&nbsp; 안으로. 와이드</td><td>피셔브랜드</td><td>15-901-15A</td><td></td></tr><tr><td>산소&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수, 1X</td><td>Corning</td><td>21-040-CV</td><td>제품은 멸균이어야합니다</td></tr> 비 <tr><td>멸균 실크 블랙 브레이드 봉합 스풀, 91.4 m, 크기 4-0</td><td>하버드 장치</td><td>517698</td><td></td></tr><tr><td>탁상용 마취 기계 Isoflurane</td><td>Highland Medical Equipment</td><td></td><td>http://www.highlandmedical.net/</td></tr> <tr><td>Slide Top Induction Mouse Isoflurane Chamber</td><td>MIP / Anesthesia Technologies</td><td>AS-01-0530-SM</td><td></td></tr><tr><td>FORANE (이소플루란, USP) 액체 흡입용 100 mL&nbsp;</td><td>박스터</td><td>1001936040</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp; Nanozoomer 디지털 병리학 시스템</td><td>Hamamatsu</td><td></td><td></td></tr><tr><td>IgM ELISA 정량화 키트&nbsp;</td><td>베틸 연구소</td><td>E90-101</td><td></td></tr></tbody></table>

마우스의기도 신속 삽관 용 개선 된 방법

An Improved Method for Rapid Intubation of the Trachea in Mice

해부학적, 생리학적, 약간의 차이에도 불구하고 마우스 모델은 인간의 폐 질환을 연구하는 데 필수적인 도구로 계속 사용되고 있습니다. 블레오마이신 독성은 급성 폐 손상과 섬유증을 모두 연구하는 데 일반적으로 사용되는 모델이며, 블레오마이신(및 기타 독성 물질)을 폐에 투여하기 위해 여러 방법이 개발되었습니다. 그러나 경기관 점안과 같은 이러한 접근법 중 다수는 강력한 마취제 및 생존 수술의 필요성을 포함하여 고유한 단점을 가지고 있습니다. 이 논문은 가벼운 흡입 마취, 기관 시각화 및 노출을 확인하기 위한 대리 폐활량 측정기 사용을 포함하는 빠르고 재현 가능한 기관 내 삽관 방법을 보고합니다. 개념 증명으로, 8-12주 된 C57BL/6 마우스에게 2.0 U/kg의 블레오마이신 또는 동등한 양의 PBS를 투여하고, 노출 후 손상 및 섬유화 종점을 모두 측정했습니다. 이 절차를 통해 연구원들은 비교적 짧은 기간에 적은 비용과 최소한의 시술 후 관리로 대규모 마우스 코호트를 치료할 수 있습니다.

삽관 마우스는 체중 감소와 고통에 대해 매일 모니터링, 2.5 % 2,2,2- tribromoethanol의 복강 내 주사를 통해 4, 10 또는 제 17 일 후에 희생되었다. 기관지 폐포 세척액 (BAL)는 PBS 세 세척에 수집 된 21 곳 바와 같이 , 오른쪽 폐는 10 % 포르말린에 고정 된 파라핀, 워싱턴 조직학 및 이미징 코어 (22)의 대학에 의해 메이슨의 트리 크롬 염색 하였다. 구축 된 데이터에 아울러, BLM 처리 마우스 일 7 및 10 노광 후 23 (도 2a) 사이의 최대 체중 감소를 경험 하였다. 또한, 희생 BLM - 처리 된 마우스로부터 BAL에서의 IgM의 상승 된 수준은 상당한 시...

이 문서에서는 삽관을 통해 마우스 기관에 직접 블레오 마이신 관리를위한 신속하고 간단한 방법을 제공합니다. 이러한 방법의 주요 장점은 마스터 높은 재현성 쉽고, 특수 장비 나 긴 회복 시간을 요구하지 않는다는 점이다.

Despite some anatomical and physiological differences, mouse models continue to be an essential tool for studying human lung disease. Bleomycin toxicity ...

이 절차의 전체적인 목표는 기관 삽관을 통해 마우스 폐에 시약을 빠르고 쉽고 신뢰성 있게 투여하는 것입니다. 또한 이 방법은 주변 조직의 잔류 손상 위험을 제한하며 비용이 저렴합니다. 본 방법은 기초 폐 생물학 및 질병 메커니즘 분야의 핵심 질문을 해결하는 데 도움이 될 수 있습니다.급성 폐 손상 및 섬유화 등이 이에 해당합니다. 이 기술의 주요 장점은 재현성이 매우 높고, 숙달하기 쉬우며, 특수 장비나 긴 회복 시간이 필요하지 않다는 점입니다. 모든 절차는 멸균된 도구를 사용하여 수행해야 합니다.둔단 포셉(blunt end forceps)과 압설자(depressor)를 모두 오토클레이브로 멸균하십시오. 멸균된 후드 내에서 삽관을 통해 투여할 시약의 작동 농도 스톡(working stock)을 준비하십시오. 30에서 45 µL 사이의 볼루스 용량을 권장합니다.균일한 혼합을 위해 용액을 35 kilohertz에서 10분 동안 초음파 처리합니다. 이제 작업 공간을 준비하십시오. 작업 공간 자체를 위해 최소 1제곱미터의 공간을 지정하십시오.또한 시술 전후로 동물을 배치할 별도의 장소를 마련하십시오. 이제 시술 보드를 준비합니다. 이 맞춤형 모델은 알루미늄 시트를 절단하여 제작되었으며 T 브라켓으로 보강되었습니다.유사한 상용 보드 또한 시중에서 구할 수 있습니다. 테이프 몇 조각을 사용하여 프로시저 보드의 바닥면을 벤치에 고정하여 실험자의 바로 앞에 오도록 합니다. 그런 다음 4.0 봉합사를 프로시저 보드의 두 포지셔닝 나사 사이에 묶어줍니다.다음으로, 폐활량계를 제작합니다. 1 mL 주사기 세 개에서 플런저를 제거합니다. 그런 다음 각 주사기 배럴 상단에 최대 60 µL의 PBS를 채웁니다.이 세 가지 주사기 중 하나를 카테터 허브에 느슨하게 고정합니다. 사용 시 기관에서 나오는 공기로 인해 배럴 안의 PBS가 오르내리게 됩니다. 이를 실험대 옆에 배치하십시오.나머지 추가 주사기 두 개를 백업용으로 사용할 수 있도록 손이 닿는 곳에 둡니다. 다음으로, 네 번째 주사기에 공기 300 microliters를 흡입하여 보드 한쪽에 둡니다. 또한, 동물을 보드에 고정하기 위해 6인치 길이의 테이프 몇 개를 준비합니다.그런 다음 필요한 경우 이소플루레인 챔버를 설치합니다. 산소, 이소플루레인 및 진공 라인을 챔버의 해당 포트와 클리어런스 진공에 연결합니다. 마우스 마취부터 시작하십시오.중요한 점은 동물의 연령, 체중 및 건강 상태와 같은 요인들이 마취제에 대한 반응을 모두 변화시킬 수 있으므로, 각 실험실은 자체 요구 사항에 맞게 이소플루레인(isoflurane) 노출 조건을 최적화해야 한다는 것입니다. 기다리는 동안, 시약의 볼루스(bolus) 분량을 피펫 팁에 로드하여 따로 둡니다. 마우스가 진정되면, 동물의 등 부분이 플랫폼 표면에 평평하게 닿도록 한 상태에서 시술 플랫폼의 실을 이용해 상악 절치로 매달아 고정합니다.이제 환기가 제한되지 않도록 주의하면서, 시술 중에 동물의 위치가 유지되도록 횡격막 바로 위의 흉강 하단을 플랫폼에 느슨하게 테이프로 고정합니다. 다음으로, 구스넥 조명(gooseneck illuminator)을 80~100%로 설정합니다. 조명을 태양신경총 근처의 피부 표면에서 1~2cm 거리에 배치하고, 피부가 과열되지 않는지 정기적으로 확인합니다. 플랫폼 뒤쪽에서 뭉툭한 끝의 핀셋(blunt end forceps)을 사용하여 혀의 위치를 찾습니다.그 다음 하악 절치를 건드리지 않도록 주의하며, 혀를 부드럽게 잡고 구강 밖으로 끌어냅니다. 혀를 고정한 상태에서, 비우세손에 든 압설자로 혀를 눌러 평평하게 펴고 포셉을 놓습니다. 이제 구스넥(gooseneck) 조명을 태양신경총에서 주기관지 방향으로 안내하여 기관을 비춥니다.기관은 호흡 작용에 의해 기관을 빠져나오는 빛의 강도가 변동하므로 쉽게 구별할 수 있습니다. 올바르게 위치했을 때, 기관은 중앙의 핀 모양 빛으로 보이며 구강 자체에는 주변광이 최소한으로 관찰됩니다. 기관의 시야가 이상적인 상태가 될 때까지 카테터가 구강 내로 진입해서는 안 됩니다.광원이나 압박기를 조절해도 기관이 보이지 않을 수 있습니다. 연구자는 혀를 놓아준 후 절차를 다시 시도해야 합니다. 그다음, 주사기를 기관의 자연스러운 경로를 따라 각도를 조절하십시오.그 다음, PBS가 담긴 시린지가 연결된 22 gauge 카테터 팁을 루멘 안으로 곧게 내립니다. 이제 카테터를 5 mm 더 밀어 넣고 설압자를 제거하십시오. 정확하게 위치했다면, 시린지 배럴 속의 PBS 기포가 호흡에 따라 오르내리기 시작할 것입니다.심한 진정 상태와 가벼운 진정 상태 모두 호흡 빈도를 변화시킬 수 있으므로, 이 지표를 확인할 때 인내심을 가지십시오. 그런 다음 주사기를 비우세손으로 옮겨 잡습니다. 허브를 잡은 상태에서 카테터는 그대로 둔 채 주사기를 부드럽게 제거합니다.우세손을 사용하여 준비된 시약 볼러스를 카테터 허브 중앙에 직접 주입하십시오. 그런 다음 300 µL의 공기가 들어 있는 두 번째 주사기를 연결하고 허브 내부로 공기를 밀어 넣으십시오. 이는 볼러스가 폐에 잘 분포되도록 하는 데 도움이 됩니다.이제 주사기를 제거하고 PBS 기포가 들어 있는 주사기로 교체하십시오. 절차가 성공적으로 수행되었다면 기포가 계속해서 상승하고 하강할 것입니다. 이제 카테터와 테이프를 제거하십시오.그 후 동물이 의식을 회복할 때까지 건조하고 따뜻한 곳에 둡니다. 보통 수 분 내로 회복됩니다. 기관 삽관된 마우스는 체중 감소 여부를 매일 모니터링하였습니다.블레오마이신(bleomycin) 기관 내 삽관 후 4일, 10일, 17일에 마우스를 수집하였습니다. 이 폐에서 기관지폐포 세척액을 수집하여 분석하였습니다. 상승된 IgM 수치는 상피 및/또는 내피 장벽 기능 장애를 나타내는 폐 투과성의 유의미한 시간 의존적 증가를 보여주었습니다.우측 폐를 고정하고 Masson's trichrome으로 염색하였습니다. 총 콜라겐 함량의 잘 알려진 표지자인 섬유성 반응을 정량화하였습니다. 조직학적 절편을 통해 치료법에 따른 폐 간질의 증후 및 섬유성 병변의 증가가 확인되었습니다.이 기술을 숙달하면 적절히 수행했을 때 1분 이내에 완료할 수 있습니다. 이 절차를 시도할 때 기관 주변의 연조직을 조작하는 것은 필요하지 않으며 권장되지 않는다는 점을 기억하는 것이 중요합니다. 이러한 조작은 동물의 건강과 실험의 무결성을 모두 손상시킬 수 있습니다.

an-improved-method-for-rapid-intubation-of-the-trachea-in-mice

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

쥐 호흡 생리학과기도 염증 세포의 샘플링의 반복 측정이 바람직하지만, 일반적으로 가능하지 않습니다. 여기 구두기도 염증 세포의기도 기능 항 진성과 샘플링의 반복 측정을 허용 쥐를 intubating에 대한 반복 방법을 설명합니다.

에어웨이 저항 측정 및 마우스에 Bronchoalveolar 세척 유체 샘플링에 대한 가역, 비침습 방법

우리는 2.0 mm 검경과 이경을 사용하여 직접 후두경을 통해 마우스에서 기관 내 삽관을위한 간단하고 신뢰할 수있는, 그리고 상대적으로 저렴한 방법을 개발했습니다. 이 기술은 atraumatic이고 만성 실험에서 반복 측정에 사용될 수있다. 우리는 우수한 기관 절개 또는 이전에 비수술 적 방법을보고 찾을 수 있습니다.

마우스의 기관 내 삽관<em&gt;를 통해</em이경 사용&gt; 직접 후두경

본 논문은 폐 기능 측정 또는 쥐가 복구 나중에 시간에 공부를 할 수 있습니다 폐 기지에 대한 쥐를 intubating의 striaghforward하고 효율적인 방법을 설명합니다. 절차는 직접 기관을 비춰 저렴한 fiberoptic 광원을 포함한다.

마우스 폐 삽관 법의 간단한 방법

인간 폐 질환의 상태를 본뜬 모델의 사용은 특정 질환의 병태 생리학 및 / 또는 병인을 연구 및 치료 적 개입을 개발에 중요하다. 여기에 직접 마우스의 폐에 외인성 물질을 제공 할 수있는 비 침습적 인 기관 내 삽관 방법이 제시된다.

비 침습적 기관 내 삽관 마우스 폐의 병리학 및 생리학을 연구하는

여기, 선물이 측면 thoracotomy 통해 가로 대동맥 수축 (TAC)의 프로토콜. 이 기술은 압력 과부하 및 마우스 활용 표준 전술 실험실 설정에서에서 심장 마비를 시뮬레이션을 최소 침 습, 닫힌 가슴 수술입니다.

마우스에 가로 대동맥 수축 유도를 폐쇄 가슴 모델

이 문서의 목적은 실험실 마우스의 정교한 삽관 방법을 설명하는 것입니다. 이 방법은 비침습적이며, 따라서 호흡기 기능의 연속 모니터링 및 / 또는 폐로의 치료 의 주입을 필요로하는 연구에 이상적입니다.

마우스에서 반복된 Orotracheal 삽관

우리는 복부 측에서 성인 마우스의 뇌간을 노출하는 프로토콜을 제시합니다. 소형 현미경을 가진 그라데이션 굴절 지수 렌즈를 사용하여, 칼슘 화상 진찰은 생체 내의 열등한 올리브 신경 소마타의 활동을 검사하기 위하여 이용될 수 있습니다.

생체 내 마우스 열등올리브의 칼슘 이미징

환기를 유지하고 저산소증을 피하면서 왼쪽 폐 허혈 재관류 (IR) 손상을 만드는 마우스 수술 모델.

Orotracheal 삽관 및 환기 폐 허혈 재관류 수술의 마우스 모델

여기에서 우리는 비침습적 구인두 기관내 삽관을 통한 기관내 지질다당류(LPS) 전달을 위한 프로토콜을 제안합니다. 이 방법은 동물에 대한 수술 절차의 외상을 최소화하고 LPS를 기관으로 정확하게 전달한 다음 폐로 전달합니다.

Noninvasive Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation in Mice

여기에서는 생체 내 쥐 모델에서 흉부 기관의 침습적 환기 및 노출이 필요한 비생존 응용 프로그램의 정밀도와 재현성을 향상시키는 것을 목표로 하는 쥐에서 기관절개술과 개흉술을 통한 기관내 삽관에 대한 표준화된 절차를 소개합니다.

Non-survival 응용 프로그램을 위한 쥐의 기관절개술을 통한 기관내 삽관 및 후속 흉곽절개술

이 프로토콜은 마우스를 최적으로 배치하고 카메라 기반 검이경을 경구로 삽입하면 성문을 시각화하고, 조직 외상을 최소화하면서 신속한 삽관을 수행하며, 폐에 액체를 일관되게 전달할 수 있는 방법을 보여줍니다.

쥐의 폐에 액체를 전달하기 위한 개선된 방법론: 소비자 검이경을 사용한 삽관

학습하세요 마우스 기도 내 삽관을 통한 신속한 약물 투여 방법으로 폐 생물학 및 급성 폐 손상 연구를 수행하는 기술입니다. 이 방법은 재현성이 높고 주변 조직 손상을 최소화하며 특수 장비 없이도 익힐 수 있습니다.

마우스의기도 신속 삽관 용 개선 된 방법

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