Name: 호중구의 분리 및 분석 치료제에 림프종 세포 감도에서 자신의 역할을 확인하는 방법 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 4 s
Description: 배우세요 밀도 그라디언트 원심분리를 이용해 호중구를 분리하고 림프종 세포의 항암제 감수성에 미치는 영향을 2D 및 3D 배양 모델로 분석하는 방법입니다. 이 기술은 면역세포 기능을 손상시키지 않고 순수한 세포 집단을 신속하게 얻어 암 면역학 연구에 활용할 수 있습니다.

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이 연구는 Institute National du Cancer(INCa-DGOS-4664)의 지원을 받았습니다.

기본 백혈병 세포 1. 호중구의 분리 및 공동 문화 참고 : 절차는 동의서에 서명 모든 환자와 리옹 병원 윤리위원회의 승인하에 실시 하였다. <ol><li> 기본 백혈병 세포 및 호중구의 분리 <ol><li> 만성 림프 구성 백혈병 (CLL)으로 진단 된 환자에서 EDTA (혈액의 밀리리터 당 1.8 mg을 EDTA)에 말초 혈액의 튜브를 수집합니다. </li><li> 멸균 50 ㎖ 튜브에 혈액을 각각 15 ㎖에 첨가하고 15 ml의 RPMI로 희석 하였다 (희석 1 : 1)로 조심스럽게 천천히 위상 혼합없이 상기 튜브의 하단에 밀도 구배 용액의 15 mL로 추가한다. 밀도 구배 용액을 제조 RT에있을 수 있도록한다. </li><li> RT에서 브레이크없이 35 분 동안 300 XG에 원심 분리기. 그림 1A, 위에서 아래와 같이 피가 네 가지 단계로 구분한다 : 혈소판과 혈장, 단핵 세포 (w하이트 링) 밀도 구배 용액 과립구 및 적혈구. </li><li> 새로운 50 ML 튜브에 플라스틱 파스퇴르 피펫 및 전송에 기본 백혈병 세포를 나타내는 흰색 반지를 수집합니다. <ol><li> PBS로 튜브를 실온에서 10 분 동안 300g에 총과 원심 분리기에 50 ㎖까지 (칼슘과 마그네슘을 포함)를 입력합니다. </li><li> 5 PBS 후 RT에서 10 분 동안 300g로 원심 분리하고 총 50 ㎖의 PBS까지 추가 ml로 펠렛을 재현 탁. </li><li> 완전한 RPMI 배지로 펠렛을 재현 탁 (RPMI 1640, 10 % 소 태아 혈청 (FBS), 2 mM의 글루타민, 100 U 보충 / ㎖ 페니실린 및 100 ㎎ / ㎖ 스트렙토 마이신) 세포 생존 카운터를 이용하여 카운트. </li></ol></li><li> 대기음는 상위 단계 과립구와 적혈구 위상을 떠나 25 ml의 최대 PBS를 추가는 총 50ml로 0.9 % NaClup에 3 % 덱스 트란을 추가합니다. 튜브 10 번을 혼합하고 혼합하지 않고 실온에서 30 분 동안 보관하십시오. </li><li> 상단 RBC 부족한 호중구 층를 수집깨끗한 멸균 50 ㎖ 튜브로 배치하고 RT에서 10 분 동안 300g로 원심 분리 튜브 거라고. PBS 후 총 50 ㎖까지 적혈구 용해 완충액을 추가 5 ㎖ 각 펠렛을 재현 탁. </li><li> RT 후 RT에서 10 분 동안 500g으로 원심 분리기에서 15 분 동안 어두운 데에서 튜브를 유지한다. PBS로 알약을 (총 50 ㎖까지 PBS를 추가) 다음 실온에서 10 분간 500 g에서 원심 분리 세척 할 것. </li><li> 세포 생존 카운터를 이용하여 카운트 완전한 RPMI 배지 펠렛을 재현 탁. 유세포 사용하여 분리의 순도를 결정하기 위해 5 ㎖ 플라스틱 튜브에 50 ㎕의 PBS-FBS (4 %)에서 각 세포 유형의 3 × 105을 유지한다. </li></ol></li><li> 분리 된 세포 집단의 형태 학적 출연 분석 <ol><li> 이를 위해, 각각 3 × 104 호중구 150 μL 완전 RPMI 배지에서 3 × 104 단핵 세포를 재현 탁. 즉 t을 보장 cytospin 원심 분리기에서 유리 슬라이드 필터 카드 및 샘플 챔버를 조립그는 원심 분리기는 균형이다. </li><li> 원심 분리기에서 슬라이드, 필터 카드 및 샘플 실을 제거 실온에서 10 분 동안 750 XG에서 샘플 챔버 및 사이토 원심 분리기로 각 셀 유형을 놓습니다. 슬라이드의 세포를 손상시키지 않도록 신중하게 분해한다. 필터 카드 및 샘플 챔버를 폐기하십시오. </li><li> 김사 염색 키트를 사용하여 세포를 염색하고 1 시간 건조 할 슬라이드를 유지합니다. 100X 배율 현미경으로 세포를 검사합니다. </li></ol></li><li> FACS에 의해 고립 된 세포의 순도 테스트 <ol><li> APC에 접합 된 항 - 인간 CD19 항체 (5 μL / 10 6 세포)와 격리 된 차 백혈병 세포를 레이블. 표 1 (5 μL / 10 6 세포)에 나열된 항 인간 항체의 혼합물로 정제 된 호중구 레이블. 4 O ℃에서 30 분 동안 어둠 속에서 세포를 부화 </li><li> 500 ㎕의 PBS-FBS (4 %) RT에서 5 분 동안 300g의 튜브를 원심 분리기로 세포를 씻으십시오. </li><li>200 ㎕의 PBS-FBS (4 %)의 각 펠렛을 재현 탁. </li><li> , SSC-A (488 /이 10bp), FITC (BP 530/30)를 PerCP-Cy5.5 (40분의 695 BP FSC-A (488 nm의) : 488 nm의 레이저 : 다음 광학 구성을 사용하여 사이토 흐름 분석 ), PE (BP를 575/26); 633 nm의 레이저 : APC (BP를 660/20), APC-Cy7 (BP를 780/60). 색 보정을 확인합니다. </li></ol></li><li> 자가 호중구와 차 백혈병 세포의 공 배양 <ol><li> 시드 차 백혈병 세포 단독으로 또는 완전 RPMI 배지에서 비 1:10자가 호중구로 2 × 105 세포 / ml. 이렇게 희석하여 세포 현탁액을 세포 수를 조절하고 2 × 106 세포 / ml로 호중구 주 백혈병 세포를 2 × 105 세포 / ㎖를 추가한다. 조심스럽게 섞는다. </li><li> 세포에의 Bruton의 티로신 키나제 (BTK) 억제제 (ibrutinib)의 25 μM을 추가합니다. 5 % CO 2와 37 ° C에서 24 시간 동안 품어. </li></ol></li><li> 세포 수확 및 FACS 분석 <ol><li> 콜요법 FACS 분석 및 원심 분리기 RT에서 5 분 동안 300g의 튜브 5 ML의 플라스틱 튜브에 세포. 다음 실온에서 5 분간 300 g에서 원심 분리기 1 ml의 PBS-FBS (4 %)와 펠렛을 씻으십시오. </li><li> 상업 키트를 사용하여 실온에서 10 분 동안 어둠 속에서 세포를 배양 재현 탁의 넥신 V의 펠렛 및 PI. (FSC-A (488 ㎚), SSC-A (488 /이 10bp), FITC는 (BP 530/30), PI 610 : 488 nm의 레이저 :도 2A의 게이트 전략을 사용하여 유세포과 같은 광학 구성에 분석 / 20 BP). 색 보정을 확인합니다. </li></ol></li></ol> 과립 통로 및 3D 모델에서 RL 림프종 B 세포와의 공동 배양을 따라 HL60 세포의 분화 (2) <ol><li> 호중구와 같은 세포로 인간 전 골수성 (HL60) 세포의 분화 <ol><li> / ㎖가 그들의 분화를 유도하기 위해 1 μm의 레티노 산 (RA) 및 1.25 %의 DMSO를 추가 3 × 10 5 세포에 HL60 세포 수를 조정합니다. 각 3 × 10 5 종자 </s최대&gt;도 48 웰 플레이트 당 HL60 세포는 5 % CO 2, 37 ℃에서 48 시간 동안 배양한다. </li><li> 그 후, 실온에서 5 분 300g에 세포와 원심 분리기를 수집합니다. 세포 생존 카운터를 이용하여 카운트 완전한 RPMI 배지로 세포를 재현 탁. </li><li> 이어서 용액 3 × 105 세포 /으로 HL60 세포의 수를 조정하고 1 μM 레티노 산 (RA) 및 1.25 % DMSO를 첨가하여 다시 분화를 유도하는 완전 RPMI 배지에서 세포 현탁액을 희석. 당 잘 48 웰 플레이트에 각 3 × 10 5 HL60 세포를 종자와 5 % CO 2와 37 ° C에서 또 다른 48 시간 동안 배양한다. </li></ol></li><li> HL60 분화 분석 (HL60의 차이) <ol><li> 세포를 수집하고 RT에서 5 분 동안 300g로 원심 분리 튜브. 세포 생존 카운터를 이용하여 카운트 완전한 RPMI 배지 펠렛을 재현 탁. </li><li> 유동 세포 계측법에 의한 세포 표면 마커의 발현에서의 변화를 분석. 각 3 × 10 (5)를 배치 </suP&gt; 미분화 (세포 배양에서) HL60 세포와 FACS 분석 및 원심 분리기 RT에서 5 분 동안 300g의 튜브 5 ML의 플라스틱 튜브에 3 × 10 5 HL60은 diff 세포. </li><li> 50 ㎕의 PBS-FBS (4 %)의 펠렛을 재현 탁. AF700 또는 APC에 접합 된 항 - 인간 CD38 (5 μL / 10 6 세포)에 접합 된 항 - 인간 CD11b를 가진 세포를 레이블. 4 O ℃에서 30 분 동안 어둠 속에서 세포를 부화 </li><li> 다음 실온에서 5 분 300g에 원심 분리기 500 μl의 PBS-FBS (4 %)로 세척. 200 ㎕의 PBS-FBS (4 %)의 펠렛을 재현 탁. </li><li> 488 nm의 레이저 :도 3A의 게이팅 전략과 같은 광학 구성을 이용하여 유동 세포 계측기에 분석 FSC-A (488 나노 미터), SSC-A (488 /이 10bp); 633 nm의 레이저 : APC (660/20 BP), 알렉사 플 루어 700 (BP를 730/45). </li><li> HL60은 diff의 형태 학적 변화를 테스트하려면, 현미경 검사 용 유리 슬라이드에 세포를 고정. <ol><li> 이렇게하려면 각 3 × 10을 재현 탁 <su(세포 배양)에서 P&gt; 4 미분화 HL60 세포 150 μl를 완전 RPMI 배지에서 3 × 10 4 HL60은 diff. 원심 균형 것을 보장 cytospin 원심 분리기에서 유리 슬라이드 필터 카드 및 샘플 챔버를 조립한다. </li><li> 실온에서 10 분 동안 1,500 rpm으로 샘플 챔버 및 사이토 원심 분리기로 각 셀 유형을 놓습니다. 원심 분리기에서 슬라이드, 필터 카드 및 샘플 실을 제거합니다. 슬라이드의 세포를 손상시키지 않도록 신중하게 분해한다. 필터 카드 및 샘플 챔버를 폐기하십시오. </li><li> 김사 염색 키트를 사용하여 세포를 염색하고 1 시간 건조 할 슬라이드를 유지합니다. 100X 배율 현미경으로 세포를 검사합니다. </li></ol></li></ol></li><li> 3 차원 (3D) 문화 주 :이 실험에 사용 된 물질은 저온이며 실험 얼음 일어나고 있는지 확인. <ol><li> 단독으로 또는 HL60은 diff와 혼합하거나, 각 5 × 10 4 RL 세포를 재현 탁 </em&gt; 비 RL에서 : HL60의 DIFF 1:10 약 2 내지 3 mm의 개구부를 넓게하기 위해 멸균 가위로 절단 한 ml의 피펫 팁을 사용하여 300 ㎕의 기저막 매트릭스. 이 단계에서 거품을 피하십시오. </li><li> 24 웰 플레이트에 잘 / 세포 현탁액 각각 300 μl를 시드. 이 단계에서 거품을 피하십시오. 그 다음 각 웰에 대해 RPMI 배지를 완료하고, 5 % CO 2, 37 ℃에서 7 일간 배양한다 ㎖로 1을 추가 5 % CO 2, 37 ℃에서 30 분 동안 플레이트를 배양한다. 매 2 일 매체를 변경합니다. 하루 5에서 10 나노 빈 크리스틴을 추가합니다. </li></ol></li><li> FACS 분석 <ol><li> 문화 7 일 후, 매체를 대기음 두 번 1 ml의 얼음처럼 차가운 PBS로 각 웰을 씻는다. 3 ㎖ / 얼음처럼 차가운 PBS-EDTA (5 mM)을 잘을 추가합니다. 200 μL 피펫 팁의 바닥을 이용하여 긁어 웰의 바닥에서 겔을 분리. 30 분 동안 얼음에 부드럽게 판을 흔들어. </li><li> 멸균 15 ML 튜브에 세포 현탁액을 전송하고 IC에 부드럽게 튜브를 흔들또 다른 30 ​​분 동안 전자. 균일 한 세포 현탁액의 모양을 확인합니다. (이 경우가 아니라면, 다음 긴 시간 동안 세포를 흔들 이상의 PBS-EDTA 추가). </li><li> RT에서 10 분 동안 300 XG에서 튜브를 원심 분리기. PBS로 펠릿 후 RT에서 10 분 동안 300 × g으로 원심 분리로 세척 하였다. </li><li> PBS-FBS (4 %)으로 재현 탁 및 PE Cy7하고 APC에 접합 된 항 - 인간 CD38 항체 (5 μL / 10 106 세포)를 접합 항 - 인간 CD19 항체 레이블. 4 오 ℃에서 30 분 동안 어둠 속에서 품어 </li><li> 실온에서 5 분 동안 300g에 500 ㎕의 PBS-FBS (4 %) 원심 분리기 튜브로 씻으십시오. 상업용 키트를 사용하여 아 넥신 V 및 PI로 세포를 재현 탁. </li><li> 도 4a의 게이팅 전략을 사용 사이토 흐름을 분석하고 다음 광학 구성 : 488 nm의 레이저 : FSC-A (488 ㎚), SSC-A (488 /이 10bp), FITC (530/30 BP), PI (610 / 20 BP), PE-Cy7 (780/60 BP); 633 nm의 레이저 : APC (BP를 660/20). 색 보정을 확인합니다. </li></ol></li&gt; </ol>

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밀도 구배 원심 분리 방법을 이용하여 고순도의 인간 혈액 호중구의 분리를 위해 동일한 단계 단핵 세포 내에서, 여기에 효과적인 간단한 빠르고 저렴 프로토콜 설명도 분리 회수된다. 분리 된 세포 집단은 ≥90 % 순수 있습니다. 여러 가지 방법 인간의 혈액에서 호중구의 분리에 사용할 수 있습니다. 이러한 불연속 그라디언트 (11, 12)를 사용하거나 호중구는 면역 자기와 같은 후 CD16-의 결합에 의해 농축 호중구 항 - 인간 CD16으로 특정 항체로 표지되는 동안 긍정적 인 면역 자기 선택에 의해 호중구 격리를위한 상업 키트를 사용하여 유사한 방법을 포함 자기 열 (13)에 양성 세포. 음의 면역 자기 선택과 상업 키트는 전혈 또는 과립구 정지 세포의 다른 그쪽에 결합하는 항체의 칵테일로 표지하는 동안도 사용할 수 있습니다n은 호중구 9 (즉, 적혈구, 혈소판 등 CD2, CD3, CD9, CD19,...

선천성 면역 세포는 종양 미세 환경 내에서 세포의 중요한 비율을 구성하는 환자, 암 (1)의 동물 모델에서 종양의 암과 연관되어왔다. 최근에,보다 널리 만성 면역 반응은 화학 요법에 대한 종양이 진행, 전이 저항 증진에 중요한 역할을하는 것으로 인식되고있다. 식세포 직접 화학 요법에 3,4- 종양 세포 반응을 조절하는 것으로 나타났다 중요한 선천성 면역 세포이다. 그러나 항암 치료에 대한 종양 반응을 조절하는 호중구의 선천 면역 키 선수의 역할은 알려져 있지 않다. 이러한 프로토콜의 목적은 CLL 환자의 혈액 샘플로부터의 호중구를 분리하는 빠르고 신뢰할만한 방법을 사용하여 안티 림프종 에이전트 림프종 세포의 민감도를 조절하는 역할을 연구하기 위하여 과립 통로 따라 HL60 세포를 구별한다. 6 침입에 대한 방어의 첫 번째 줄 혈액 (5) 행동의 선천성 면역 시스템의 가장 풍부한 세포의 구성 요소입니다. 호중구 여러 병리 적 상태 (7)에 가변 이펙터 기능 이외에 유효 선천성 면역 반응을 상승에 필수적인 역할을한다. 따라서, 이러한 농도 구배 분리법과 같은 다른 혈액 세포에서 호중구를 분리하는 빠르고 신뢰할만한 방법은 시험 관내 연구에 필요하다. 호중구 격리를 위해이 방법을 사용하면 생체 내 및 생체에서 호중구 매개 면역 기능에 대한 추가 연구를 촉진 할 것이다. 호중구 순수한 집단을 수득하는 능력은 면역 학적 질환 환자의 팔 조사 중요한 첫 단계이다. 밀도 구배 분리 방법은 세포의 높은 수율을 수득하는 이상적인 방법이다. 운전 방식D는 쉬지 않고 35 분 동안 300g으로 원심 분리 한 다음 희석 된 인간 혈액을 함유하는 튜브의 바닥에서 밀도 구배 용액의 첨가를 포함한다. 단핵 세포의 링 인터페이스에 표시하고, 호중구 전 이하 상주. 이 방법은 훨씬 더 9 비싼 호중구 분리 키트로 사용 가능한 다른 방법에 대한 상당한 이점이있다. 또한, 인간의 호중구에 대한 특정 표면 마커에 관한 항체를 사용하여 상업용 키트에 의해 인간 혈액으로부터 분리 호중구 세포 활성화 또는 분화의 위험을 증가시킨다. 밀도 구배 분리 방법은 단시간 호중구의 분리를 허용한다. 동일 단계 내에서 단핵 세포는 분리 회수된다. 순수한 세포의 높은 수율 무결성 기능을 달성하기 위해 수득되는 기본 기술이다. 종양 microenv을 모방하기 위해ironment, 3 차원 실험을 수행 하였다. 체외에서 호중구의 짧은 반감기를 고려할 때, 신선한 인간의 호중구와 3D 실험은 결정적인 없습니다. 이런 이유로, 전 골수성 (HL60) 세포 분화 유도제 디메틸 설폭 사이드 (DMSO) 및 레티노 산 (RA)를 사용하여 호중구와 같은 세포로 분화 유도된다. 차별화 된 HL60 세포 (HL60은 diff)를 사용하여 인해 다른 기증자로부터 격리에 호중구의 다른 응답을 갖는 것을 방지 할 수 있습니다. 체외 차원에서 문화 모델은 체외 2D 모델 사이의 생체 내 모델에서 중간 단계를 나타냅니다. 2D 문화에서, 세포는이 합성 표면에 변성되어 퇴적 단백질에 자연스러운 세포의 첨부 파일을 형성하는 플라스틱 표면에 확산. 반대로, 세포가 세포 외 기질의 합성 보낸 3D 배양 형태 천연 세포 - 세포 부착에 세포는 이들이 결합되어있는 천연 물질이다.이러한 이유로, 특히 암 세포 및 다른 세포 유형 간의 3D 공동 배양 모델은 종양 성장, 혈관 신생 및 전이에 대한 기여를 나타내는 매우 유용한왔다. 결과적으로, 3 차원 배양은 세포 배양 물이 생체 내 (10)에 존재하는 생리적 조건을 모방 할.

<table><tbody><tr><td>RPMI 1640년&nbsp;</td><td>Gibco Invitrogen</td><td>21875-034</td><td></td></tr><tr><td>Fetal bovine serum (FBS)</td><td>Gibco Invitrogen</td><td>10270-106</td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수(PBS에는 칼슘과 마그네슘이 함유됨)</td><td>Gibco Invitrogen</td><td>14040-091</td><td></td></tr><tr><td>N-acetyl-L-alanyl-L-glutamine (L-Glutamine)</td><td>Life technologies</td><td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin streptomycin (Pen Strep)</td><td>Life technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>브루톤 티로신 키나아제(Btk) 억제제(이브루티닙)&nbsp;</td><td>CliniSciences</td><td>A3001</td><td></td></tr><tr><td>빈크리스틴&nbsp;</td><td>EG labo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD Matrigel 기저 멤브레인 매트릭스&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td>354234 실험일 전에 4 oC에서 하룻밤(O/N)</td></tr> 적<tr><td>혈구 용해 완충액을 넣습니다.</td><td>BD Biosciences</td><td>555899</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll (Pancoll)</td><td>PAN Biotech</td><td>P04-60500</td><td></td></tr><tr><td>덱스트란&nbsp;</td><td>시그마-알드리치</td><td>D8906</td><td></td></tr><tr><td>디메틸설폭사이드(DMSO)</td><td>시그마-알드리치</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>레티노산</td><td>, 시그마-알드리치</td><td>R2625</td><td></td></tr>, <tr><td>소 혈청 알부민(BSA)</td><td>시그마-알드리치</td><td>A7906</td><td></td></tr>, <tr><td>에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA)</td><td>시그마-알드리치</td><td>E5134</td><td></td></tr><tr><td>염화나트륨(NaCl)</td><td>유로메덱스</td><td>S3014</td><td></td></tr><tr><td>부속 V-FLOUS 염색 키트&nbsp;</td><td>로슈</td><td>11&nbsp; 988년&nbsp; 549년&nbsp; 001</td><td></td></tr><tr><td>키트 RAL 555 수정된 Giemsa 염색 키트</td><td>Cosmos Biomedical</td><td>CB361550-0000</td><td></td></tr><tr><td>LSRII 플로우 사이토메트리</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>사이토센트리퓨지</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Leica DMR-XA 현미경</td><td>Leica Microsystems</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cellometer Auto T4 세포 생존도 카운터</td><td>Nexcelom&nbsp; 생명</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

호중구의 분리 및 분석 치료제에 림프종 세포 감도에서 자신의 역할을 확인하는 방법

Neutrophil Isolation and Analysis to Determine their Role in Lymphoma Cell Sensitivity to Therapeutic Agents

호중구는 백혈구 중 가장 풍부한(40%에서 75%) 유형이며 염증 부위로 이동하는 첫 번째 염증 세포 중 하나입니다. 이들은 선천면역 체계의 핵심 플레이어이며 암 생물학에서 중요한 역할을 합니다. 호중구는 악성 변형, 종양 진행, 혈관 신생 및 항종양 면역의 조절의 핵심 매개체로 제안되었습니다. 용해성 인자의 방출 또는 종양 세포와의 상호 작용을 통해. 호중구의 특정 기능을 특성화하기 위해 인간 혈액에서 호중구를 체외에서 분리하는 빠르고 신뢰할 수 있는 방법이 탐납니다. 여기에서는 밀도 구배 분리 방법이 혈액에서 호중구와 단핵 세포를 분리하는 것으로 입증되었습니다. 이 절차는 만성 림프구성 백혈병(CLL) 진단을 받은 환자로부터 얻은 희석된 혈액 위에 Ficoll과 같은 밀도 구배 용액을 조심스럽게 겹쳐 놓은 다음 원심분리, 단핵층 분리, 적혈구에서 호중구 분리, 덱스트란에 의한 호중구 분리, 잔류 적혈구를 용해하는 것으로 구성됩니다. 이 방법은 호중구를 순도 90%≥ 분리하는 것으로 나타났습니다. 종양 미세환경을 모방하기 위해 Matrigel과 같은 기저막 매트릭스를 사용하여 3차원(3D) 실험을 수행했습니다. in vitro에서 호중구의 반감기가 짧기 때문에 새로운 인간 호중구를 사용한 3D 실험은 수행할 수 없습니다. 이러한 이유로 전골수구 HL60 세포는 분화 유도제인 디메틸설폭사이드(DMSO) 및 레티노산(RA)을 사용하여 과립구 경로를 따라 분화됩니다. 본 실험의 목적은 항림프종제에 대한 림프종 세포의 민감도에 대한 호중구의 역할을 연구하는 것입니다. 그러나 이러한 방법은 다양한 상황에서 호중구 또는 호중구 유사 세포와 광범위한 세포 유형의 상호 작용을 연구하기 위해 일반화할 수 있습니다.

흰색 환 단핵 세포이고, 혈소판 혈장 :. 여기에 설명 된 농도 구배 분리법은 CLL 환자의 혈액에서 분리 된 일차 백혈병 세포 및 자극되지 호중구도 1a는 위에서 아래로 (밀도 구배 원심 분리 후의 다른 혈액 층을 나타낸다 제공 밀도 구배 용액, 과립구 및 적혈구).도 1b 및 1c는 각각 호중구 (멀티 로브 핵 세포)와 단핵 세포의 형태 학적 외관의 차이를 나타낸다. 그림 1D의 결과는 기본 백혈병 세포 (단핵 세포)의 측면 산란 (SSC) 플롯 대 전방 산란 (FSC)을 나타냅니다. 하나와 히스토그램 (그림 1E)의 전체 오른쪽 시프트는 APC에 접합 된 항 - 인간 CD19이 인구를 보여줍니다 라벨 붙이기이 인구는 CD19과 순수에 ...

호중구는 백혈구 중 가장 풍부한 유형입니다. 밀도 구배 분리 방법에 의한 인간 혈액에서 호중구의 분리 및 과립구 경로를 따른 인간 전골수구(HL60) 세포의 분화가 여기에 설명되어 있습니다. 항림프종제에 대한 림프종 세포의 민감도에 대한 역할을 테스트합니다.

Neutrophils are the most abundant (40% to 75%) type of white blood cells and among the first inflammatory cells to migrate towards the site of ...

본 절차의 전반적인 목표는 밀도 구배 원심분리를 통해 인간 혈액 샘플에서 고순도의 호중구를 신속하게 분리하여, 2D 및 3D 세포 배양 모델을 이용해 림프종 세포의 암 치료제 민감성에서 호중구가 하는 역할을 조사하는 것입니다. 이러한 방법은 호중구 매개 종양 세포 반응이 암 치료에서 어떤 역할을 하는지와 같이 선천 면역 체계와 암 사이의 상호작용에 관한 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 밀도 구배 분리의 주요 장점은 세포를 기능 변화 유도 자극에 노출시키지 않고 짧은 시간 내에 순수한 면역 세포 집단을 분리할 수 있다는 점입니다.일차 백혈병 세포와 호중구를 분리하기 위해, 먼저 만성 림프구 백혈병 환자 샘플에서 얻은 EDTA 처리 혈액 15 milliliters를 개별 멸균 50 milliliter 튜브에 넣습니다. 혈액을 15 milliliters의 RPMI로 희석합니다. 그다음 층이 섞이지 않도록 주의하며 혈액 아래에 상온의 밀도 구배 용액 15 milliliters를 조심스럽고 천천히 첨가합니다.원심분리를 통해 세포를 분리하면 네 개의 뚜렷한 층이 관찰됩니다. 상단의 혈소판과 혈장, 단핵구를 형성하는 흰색 띠, 밀도 구배 용액, 그리고 하단의 과립구와 적혈구가 그것입니다. 플라스틱 파스퇴르 피펫을 사용하여 일차 백혈병 세포가 포함된 흰색 띠를 먼저 새로운 50 milliliter 튜브로 옮깁니다.칼슘과 마그네슘이 포함된 PBS 50 mL까지 사용하여 세포를 세척합니다. 그 후, 5 mL의 신선한 PBS에 펠렛을 재현탁합니다. 이어서 세포에 PBS 45 mL를 추가로 넣고, 세포를 다시 원심 분리합니다.두 번째 세척 후, 펠렛을 완전 RPMI 배지에 다시 현탁합니다. 그리고 생존 가능한 일차 백혈병 세포의 수를 측정합니다. 다음으로, 혈소판 혈장 층과 밀도 구배 층을 제거하고, 과립구 및 적혈구 층에 25 milliliter의 PBS와 25 milliliters의 염화나트륨 함유 덱스트린을 첨가합니다.튜브를 10회 반전시켜 섞습니다. 그 후, 실온에서 30분 동안 세포를 침강시킵니다. 평형화가 끝나면 적혈구가 적은 상층의 호중구 층을 멸균된 50 milliliter 튜브로 옮기고 세포를 원심분리하여 가라앉힙니다.펠렛을 5 mL의 PBS에 재현탁하고 45 mL의 적혈구 용해 버퍼를 사용하여 적혈구를 용해합니다. 실온의 암소에서 15분간 방치한 후, 세포를 다시 원심 분리하고 펠렛을 50 mL의 PBS로 세척합니다. 세척이 끝나면 세포를 완전 RPMI 배지에 재현탁하고 생존 가능한 호중구의 수를 측정합니다.두 그룹의 세포를 RPMI 50 µL당 300,000 cells 농도로 희석하고, 이를 적절한 수의 5 mL fax tube에 나누어 담습니다. 원심분리 후, 펠렛을 FBS가 첨가된 PBS 50 µL에 다시 현탁합니다. 분리된 세포 하위 집단의 순도를 결정하기 위해, 일차 백혈병 세포 분획은 APC가 접합된 anti human CD19 항체로, 정제된 중성구 분획은 표에 나열된 anti human 항체 혼합물로 암소에서 4 °C로 30분 동안 표지합니다.배양 종료 후, 500 µL의 FBS 보충 PBS로 세포를 세척하고 200 µL의 신선한 FBS PBS에 펠렛을 재현탁합니다. 그런 다음, 시료의 색도 보정을 주의하며 유세포 분석기로 세포 집단의 순도를 분석합니다. 일차 백혈병 세포를 자가 호중구와 공동 배양하려면, 24 웰 플레이트의 완전 RPMI 배지에 백혈병 세포 단독 또는 자가 호중구를 포함하여 mL당 200,000 cells의 밀도로 배양하십시오.세포를 조심스럽게 혼합합니다. 그런 다음 37 °C, 5% CO2 조건에서 24시간 동안 Brutton's Tyrosine Kinase Inhibitor로 세포를 처리합니다. 다음 날, 5 mL 플라스틱 팩 튜브에 세포 일부를 수집합니다.그 후, 세포를 원심 분리하여 가라앉히고 1 mL의 FBS PBS로 펠렛을 세척합니다. 두 번째 원심 분리 후, 제조사의 지침에 따라 annexin V와 propidium iodide로 세포를 염색하며, 실온의 암소에서 10분 동안 반응시킵니다. 그런 다음, 도식화된 게이팅 전략을 사용하여 유세포 분석기로 호중구와 일차 백혈병 세포를 분석합니다.3D 공동 배양을 설정하려면, 50,000개의 RL 림프종 b-세포만을 멸균된 15 mL 튜브에 넣거나 HL60 분화 세포와 혼합하여 넣습니다. 샘플을 원심 분리하고, 개구부를 2~3 mm로 절단한 1 mm 피펫 팁을 사용하여 펠렛을 300 µL의 기저막 매트릭스에 재현탁합니다. 다음으로, 24웰 플레이트의 각 웰에 300 µL의 세포를 넣고 37 °C, 5% CO2 조건에서 30분 동안 배양합니다.배양 종료 후, 각 웰에 1 mL의 완전 RPMI 배지를 추가하고 3D 배양물을 인큐베이터로 옮겨 2일마다 배지를 교체하며 7일 동안 더 배양합니다. 5일 차에 배양물에 10 nM의 incristine을 추가합니다. 1주일간의 배양 후, 배지를 흡입하여 제거하고 각 웰을 1 mL의 ice cold PBS로 2회 세척합니다.그 다음, 각 웰에 EDTA가 포함된 얼음처럼 차가운 PBS 3 mL를 넣고, 200 µL 피펫 팁으로 웰 바닥을 긁어 젤을 분리합니다. 플레이트를 얼음 위에서 30분 동안 부드럽게 흔들어 줍니다. 이후, 세포 현탁액을 개별 멸균 15 mL 튜브로 옮겨 얼음 위에서 30분 동안 더 부드럽게 흔들어 줍니다.균질한 세포 현탁액이 형성되었는지 확인합니다. 그 다음, 세포를 원심 분리하고 PBS로 세척한 후, FBS가 포함된 신선한 PBS에 펠렛을 재현탁합니다. 마지막으로, 앞서 시연한 대로 적절한 항체와 생존능 염색약을 사용하여 세포를 표지하고, 제시된 게이팅 전략을 이용해 유세포 분석기로 RL 및 HL60 분화 세포를 분석합니다.유세포 분석법으로 분리된 세포 집단의 모든 이벤트를 분석한 결과, 이 분리 방법을 통해 CD19를 발현하는 매우 순도가 높은 단일 피크의 일차 백혈병 세포 집단을 얻을 수 있음을 확인하였습니다. 또한, 백혈구 공통 항원인 CD45와 성숙한 호중구에서 발현되는 CD15 및 CD16 항원에 양성인 90% 이상의 고순도 호중구 집단을 얻었습니다. 호중구 공동 배양액에서 일차 백혈병 세포를 게이팅하여 분석한 결과, 호중구 단독 배양 시보다 일차 백혈병 세포와 호중구를 공동 배양했을 때 티로신 억제제인 ibrutinib에 대해 생존 가능한 일차 백혈병 세포 수가 유의미하게 더 많았으며, 이는 호중구가 세포 생존에 보호 효과를 나타냄을 보여줍니다.분화된 HL60 세포는 호중구보다 3D 배양에서 더 안정적입니다. 과립구 발달이 유도된 후, 이 세포들은 분화되지 않은 HL60 세포보다 크기가 작으며 CD11B와 CD38의 발현 수준이 더 높습니다. 또한 분화된 HL60 세포는 다엽 핵을 나타냅니다.이 세포들은 RL 세포에 대해 보호 효과를 나타내며, vincristine 처리 후 3D 공동 배양 시 vincristine을 처리하여 단독 배양한 림프종 세포와 비교했을 때 생존한 RL 세포의 수가 훨씬 더 많았습니다. 숙달되면 밀도 구배 원심분리법은 90분 이내에 완료할 수 있습니다. 이러한 기술들의 개발 이후, 암 생물학 분야의 연구자들은 전임상 모델과 환자 샘플에서 다양한 백혈구가 종양 악성도에 미치는 영향을 탐구할 수 있게 되었습니다.이 영상을 시청한 후, 단핵구와 호중구를 빠르고 신뢰성 있게 분리하는 방법, 항암제에 대한 종양 세포 반응을 매개하는 호중구의 효과를 분석하는 방법, 그리고 3D 공배양 체계를 구축하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

neutrophil-isolation-analysis-to-determine-their-role-lymphoma-cell

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

이 비디오에서는 종양이 있는 마우스의 혈액에서 불연속 자당 구배 원심분리를 통해 세포독성 고밀도 호중구와 저밀도 호중구를 분리하는 방법을 보여줍니다.

Isolation of Cytotoxic Neutrophils from Tumor-Bearing Mouse Blood(종양을 지닌 쥐 혈액에서 세포독성 호중구의 분리)

이 비디오는 화학요법제의 세포독성으로부터 림프종 세포를 보호하는 호중구 유사 세포의 역할을 조사하는 분석을 보여줍니다. 림프종과 호중구 유사 세포로 구성된 3D 공동 배양이 이루어지고 화학 요법 약물인 빈크리스틴에 노출됩니다. 호중구 유사 세포와 직접 접촉하면 림프종 세포에서 항세포사멸 단백질의 상향 조절을 유도하여 빈크리스틴이 있는 상태에서 생존을 촉진합니다.

Determining the Role of Neutrophil-like cells in Lymphoma cell: test drug (림프종에서 호중구 유사 세포의 역할: 시험 약물에 대한 민감성)

여기에서 우리는 커플이 프로테오믹스 기술, 즉 전기 영동 (2DE)와 질량 분석기 (MS) 2 차원, 차동 차 샘플 두 개 이상의 그룹 중 / 번역 후 변형 된 단백질을 발현 식별 할 수있는 프로토콜을 설명합니다. 이 방법은, 실험과 함께 기능성, 예후 마커 / 치료 대상의 식별 및 특성을 허용한다.

단백질 기능에 2DE - 젤 지점에서 만성 림프 구성 백혈병에 HS1에서 배운 레슨

호중구는 침입하는 미생물에 대한 숙주 방어뿐만 아니라 종양 세포의 면역 감시에도 중요한 역할을 합니다. 여기에서는 항종양 특성을 가진 호중구의 분리와 관련된 기술과 in vitro 및 in vivo에서 항종양 호중구 기능을 모니터링하는 방법에 대해 설명합니다.

항 종양 특성을 가진 분리 및 호중구의 특성

여기에 설명된 프로토콜은 다양한 조건에서 배양된 만성 림프구성 백혈병(CLL) 세포의 퓨린 대사를 측정하기 위해 역상 고성능 액체 크로마토그래피(RP-HPLC)를 사용하는 쉽고 재현 가능한 방법을 나타냅니다.

HPLC 기반 분석은 인간의 만성 림프 구성 백혈병 세포에 세포 외 뉴클레오티드 / 뉴 클레오 시드 신진 대사를 모니터링하기

여기, 우리는 인간의 저밀도 호 중구 (LDN), 수술 후 복 막 게 액체에서 회복 대규모 호 중구 extracellular 함정 (그물)를 생산 하 고 이후에 성장 하는 무료 종양 세포를 효율적으로 트랩 방법을 제시.

호 중구 Extracellular 함정 밀도가 낮은 호 중구에 의해 생성 된 종양 세포 성장 및 첨부 파일 중재 하십시오 복 막 게 액체에서 얻은

만성 림프모구 백혈병 (CLL)은 서방 세계에서 가장 흔한 백혈병이 이다. NFAT 녹음 방송 요인 개발 및 많은 세포 유형에 활성화의 중요 한 레 귤 레이 터는. 여기, 우리 NFAT2의 소설 대상 유전자를 식별 하기 위해 인간의 CLL 세포에 chromatin immunoprecipitation (칩)의 사용에 대 한 프로토콜을 제시.

만성 림프모구 백혈병에서 소설 NFAT2 대상 유전자를 식별 하는 Chromatin Immunoprecipitation 분석 결과

이 프로토콜은 전혈, 버피 코트 또는 백혈구 막에서 호중구를 분리하여 좋은 수율, 높은 순도 및 최소한의 세포 활성화를 달성하는 방법을 자세히 설명합니다. 그라데이션 정제, 적혈구(RBC) 퇴적물 및 RBC 용액을 활용하여 고품질/순도 호중구 제제를 획득합니다.

전신 혈액과 버피 코트에서 인간의 호중구의 격리

이 프로토콜은 다양한 신호 전달 경로의 기능을 포괄하는 스크리닝 방법으로 사용되는 호중구 기능 분석 세트를 특징으로 합니다. 이 프로토콜에는 세포 생존율, 순도, 활성 산소 종 생산, 실시간 이동, 식세포작용 및 호중구 세포외 트랩에 대한 예비 제안에 대한 초기 및 간단한 평가가 포함됩니다.

호중구 기능에 대한 간략한 개요를 위한 일련의 스크리닝 기법

여기에서는 자기 분리(negative selection) 및 불연속 밀도 구배 매체를 사용하여 전혈에서 저밀도 및 정상 밀도 호중구를 분리하기 위한 신뢰할 수 있는 접근 방식을 제공합니다. 이는 고순도 세포(≥93%)의 손대지 않은 분리를 보장하여 건강과 질병에서 호중구 하위 집단의 역할을 이해하는 데 중요한 호중구 하위 집단의 정확한 다운스트림 분석을 용이하게 합니다.

전혈에서 저밀도 및 정상 밀도 호중구의 분리 및 특성화(The Isolation and Characterization of Low- and Normal- Density Neutrophils from Whole Blood)

저밀도 호중구(LDN)는 여러 질병에서 크게 증가합니다. LDN은 일반적으로 세포 분류를 통해 분리됩니다. 순수하고 실행 가능한 LDN을 얻는 실용적인 방법을 제시합니다. 말초 혈액의 밀도 구배 원심분리 후 세포를 자성 마이크로비드와 함께 배양한 다음 LDN을 자기 컬럼을 통해 분리합니다.

저밀도 호중구의 효율적인 정제를 위한 신속한 자기-마이크로비드 방법

배우세요 밀도 그라디언트 원심분리를 이용해 호중구를 분리하고 림프종 세포의 항암제 감수성에 미치는 영향을 2D 및 3D 배양 모델로 분석하는 방법입니다. 이 기술은 면역세포 기능을 손상시키지 않고 순수한 세포 집단을 신속하게 얻어 암 면역학 연구에 활용할 수 있습니다.

호중구의 분리 및 분석 치료제에 림프종 세포 감도에서 자신의 역할을 확인하는 방법

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