Name: Kinomic 프로파일 의약품 응답 테스트를위한 3D 인간의를 Biogel 문화 시스템을 사용 Microtumors 및 환자 유래 아교 모세포종 세포의 생성 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-09T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 24 s
Description: 학습하세요 환자 유래 교모세포종 3D 미세종양 배양 시스템을 이용한 고처리량 약물 테스트와 키노믹 프로파일링 방법을. 이 기술은 맞춤형 암 치료 연구를 위한 현실적인 종양 모델을 제공합니다.

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, 뇌 종양 SPORE 상 (PD : GY 길레스피, P20CA 151129-03)과 SBIR 계약 (PI : R. 싱, N43CO-2013-00026) : NIH R21 부여 (C. Willey, CA185712-01 PI)에 의해 지원됩니다.

참고 : 모든 이종 이식 치료 평가는 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인 된 프로토콜에 아교 모세포종에 대한 동 소성 종양 모델을 사용하여 수행 하였다. 환자 유래 GBM 이종 이식 세포의 1. 분리 <ol><li> 시약의 제조 <ol><li> 5 ㎎ / ㎖ 멸균 필터의 농도로 멸균 콜라게나 제 I을 다시 구성한다. -20 ℃에서 1 mL의 분취 량의 쇼핑몰 (최종 농도가 100 ㎖의 효소 용액을 50 ㎍ / ㎖의 경우). </li><li> 이 용액에 100 μg의 표피 성장 인자 (EGF)에 녹여 멸균 인산 완충 식염수 (PBS). 100 μL (5 μg의 / 100 μL) 10 ng를 / ml의 최종 농도 -20 ° C에서 분취에 보관할 것. </li><li> 이 용액에 100 μg의 FGF-β 멸균 PBS를 녹여. 100 μL (5 μg의 / 100 μL) 10 ng를 / ml의 최종 농도 -20 ° C에서 분취에 보관할 것. </li><li> 로 Neurobasal 메드의 다음 한 500 ml의 병 추가아이오와 (NBM)이 완료 NBM을 준비하는 10 ML의 B-27 보충 비타민 A하지 않고, 5 ml의 N2 보충, 100 μL의 EGF, 100 ㎕의 섬유 아세포 성장 인자 (FGF) - 기본, 5 ml의 암포 테리 신 B, 0.5 ml의 겐타 마이신, 5 ml의 L 글루타민. </li><li> 조합하여 신선한 효소 용액을 제조 하였다 : 98.5 ml의 PBS를 1 ㎖의 콜라게나 제 1, 0.5 ml의 10 배 트립신 / EDTA와 0.22 μm의 기공 필터를 통하여 여과하여 멸균. </li><li> 준비하거나 소량의 멸균 된 둘 베코 변형 이글 중간 (DMEM) 칼슘 또는 마그네슘이없는 7 % 소 태아 혈청 (FBS), 1X PBS와 함께 / F12 세포 배양 배지를 얻었다. </li></ol></li><li> 종양 세분화 참고 : 이전에 만져서 알 수있는 종양 덩어리에서에 오른쪽 측면에서 종양 세포를 주입하고 사용할 수있는 무 흉선 뉴 / 뉴 마우스는이 절차가 필요합니다. 여기에 표시된 예에서, 우리는 환자 유래의 이종 이식 GBM 세포, JX10과 JX12 (17)을 사용했다. <ol><li> 2 % 클로르헥시딘을 분사하여 작업 영역을 소독하고 작업 영역 재치를 설정일회용 척, 핀셋, 메스, 유리 페트리 접시, 효소 용액, PBS 및 클로르헥시딘 (그림 2A 참조)을 포함하여 시간에 필요한 악기 / 공급하고 있습니다. </li><li> 플랭크 종양을 품고 마우스 / 쥐를 안락사. 30 %의 이산화탄소를 이용하여 CO2를 20 % / min의 변위 율을 목표. 마우스가 호흡 정지를 표시 한 후, 약 1 분 (일반적으로 3 분 총)에 대한 CO 2 흐름을 유지한다. 마우스를 챔버로부터 제거하고 경부 탈구 보조 안락사 확인으로 수행된다. 피부 소독 3 % 클로르헥시딘과 동물을 분무. </li><li> 마우스가 정상 채, 수 있도록 반원형 피부 절개 ~ 종양 질량 두개골 시작하여 주위에 마우스의 뱃속으로 절개와 # 11 블레이드 멸균 일회용 메스를 사용하여 종양 덩어리 (측면 이식 종양)에서 1.5 cm 꼬리 끝. </li><li> 절개의 꼬리 끝에 부드러운 견인과 손가락을 사용하여 종양 덩어리를 통해 피부를 반영하고 피부에 밀어종양을 터치하지 않고 최선 액세스 할 수있는 종양을 상승시킬 표면 (그림 2B 참조). </li><li> 부드럽게 복막 벽에서 피부에서 무료로 종양 덩어리 (그림 2C 참조) 집게와 무딘 절개를 사용합니다. </li><li> 멸균 유리 페트리 접시 제대로 시체를 버리고 옆이 악기를 배치 (닦지 동안 파괴 방지하기 위해 플라스틱 접시를 사용하지 마십시오)에 집게로 전송 종양 덩어리. </li><li> 멸균 악기의 새로운 세트를 사용하여 괴사 조직 및 멤브레인 호스트 결합 조직 취재 종양의 종양 조직을 괴사 조직을 제거하기 위해 (# 11 블레이드, 반 곡선 집게와 메스). </li><li> 교반 막대와 멸균 배출-trypsinizing 플라스크에 15 ml의 효소 솔루션을 배치하고 후드에서 천천히 저어 준다. </li><li> (부어 또는 PBS로 씻어하기 위해 주사기를 사용할 수있다)을 초과 혈액을 제거하고 멸균 PBS로 5 회 - 멸균 유리 페트리 접시에서 수확 종양 3 씻는다. 부드럽게 요리와 피펫을 기울거나 세척 물질을 대기음. 말하다 Finely이 # 11 메스 블레이드를 사용하여 (그림 2D 참조). </li><li> 3 회 - 부드럽게 위아래로 다진 종양과 피펫에 2 효소 용액의 14 ML을 추가합니다. 전송 혼합물 플라스크를 trypsinizing 통풍과 20 분 동안 천천히 교반합니다. 단계 1.2.11의 트립신을 중화하기 위해 각 1.5 ML의 FBS를 첨가하여 5 50 ㎖ 원뿔형 튜브를 준비한다. </li><li> 20 분 후, trypsinizing 플라스크에서 세포 용액을 14 ml의를 수집하고 FBS 하나의 튜브에 추가 할 수 있습니다. 플라스크 교반을 계속하려면 14 ml의 신선한 효소 솔루션을 추가합니다. </li><li> 원심 분리기는 실온에서 8 분 동안 150 XG에 세포를 수집하고 상층 액을 버린다. , 펠렛에 완전한 NBM의 45 ML을 추가 부드럽게 혼합 혈청을 씻어 원심 분리를 반복합니다. 5ml를 완료 NBM의 펠렛을 다시 중단하고 얼음에 개최합니다. </li><li> 얼음에 하나의 원뿔 튜브에 수집 된 모든 세포를 결합 5 수확의 총 반복 셀 수확 단계. </li><li> 50 ML 원뿔 튜브의 상단에 40 μm의 셀 스트레이너를 놓습니다. 준비 t그는 통해 DMEM / F12 + 7 % FBS 10 ㎖를 통과 한 후 10 ml의 PBS로 세척하여 스트레이너 셀. </li><li> 천천히 (그림 2M 참조)를 통해 드립 할 수 있도록 스트레이너에 세포 현탁액을 추가합니다. 부드럽게 모든 진공을 깨고 일시 중단 된 세포가 자유롭게 통과 할 수 있도록 각각의 새로운 추가 사이에 셀 스트레이너의 탭을 들어 올립니다 (그림 2N 참조). </li><li> 상기와 같이 필터링 된 세포 현탁액을 원심 분리기. 전체 NBM 10ml에 다시 중단하고 0.04 % 블루 트리 판과 혈구를 사용하여 가능한 세포의 수를 결정하기 위해 계산합니다. microtumor 생성 될 때까지 얼음 세포를 잡습니다. </li></ol></li></ol> 2. 다른 조직 세분화 프로토콜 <ol><li> 조직 dissociator 및 세분화 시스템 자동화. <ol><li> 프로그램 &quot;종양 _02_02&quot;를 눌러 시작을 선택하고 32 초 동안 실행, 휴대 dissociator로 세분화 튜브를 놓습니다. 전달 튜브는 40 분 동안 37 ° C의 배양기에서 발생하는 회전기. </li><li> 원심 분리기는 실온에서 8 분 동안 150 XG에서 세포를 중단하고 상층 액을 버린다. 세포를 원심 분리하는 동안, 세포 현탁액의 처리 시약을 설정. 10 ml의를 무 혈청 NBM 천천히 씹다 정지를 추가합니다. </li><li> 30 × 106 생존 세포 (~ 0.3 ㎖) - 원심 분리 후, ~ 10를 함유하는 세포 펠렛을 얻었다. (도 2O을 참조) 10 mL의 무 혈청 NBM에 펠렛을 재현 탁 -. 제외 분석하여 가능한 세포를 결정한다 (단계 3.2.2 참조). </li></ol></li></ol> 3. Microtumor 세대 <ol><li> 시약의 제조 <ol><li> 1.1.4에서와 같이 전체 NBM을 준비하고 내부 프로토콜 당 (3 ㎎ / ㎖에서 HDHG) 중화 고밀도 인간의를 Biogel (HuBiogel)를 준비합니다. 유사를 Biogel 행렬이 또한 사용될 수있다. </li></ol></li><li> Microtumor 생산 및 문화 <ol><li> 얼음에 완전한 NBM에서 단일 세포 현탁액 등 갓 해리 PDX 세포를 얻습니다. </li><li> 셀 스와 믹스트리 판 블루 용액 (PBS에 0.4 %)과 같은 부피를 가진 spension은 트리 판 블루 배제에 의해 셀 (18)의 수 및 생존력을 결정 hemacytometer를 사용하여 분석한다. 50,000 세포를 생성하는 데 필요한 볼륨 / 제거 microtumor 볼륨 = (50,000 세포 / 종양 * # 종양) / (가능한 셀 / 1 ml의 계산)과 신선한 원뿔 튜브에 배치 할 경우. </li><li> 상온에서 8 분 동안, 150 × g으로 원심 분리하여 세포를 농축시켰다. 뜨는을 취소하고 FBS 1 부 세포와 4 부 HDHG의 최종 비율로 얼음처럼 차가운 HDHG 솔루션 세포 펠렛을 resuspend. </li><li> microtumors (2mm 비즈 50,000 세포를 포함하는 각)를 생성하기 위해 (소수성 코팅) 96 핀 강판에 핀 세포 HDHG 혼합물 당 ​​10 μl를 분배하는 전자 멀티 채널 피펫을 사용합니다. </li><li> 구슬을 겔화 15 분 동안 조직 문화 인큐베이터 (37 ° C, 가습 5 % CO 2) 내부 3D 종양 구슬을 배치합니다. </li><li> 겔화 후 (10 μ를 microtumors를 전송상기 전자 멀티 채널 피펫 및 맞춤 핀 장치를 사용하여 전체 NBM 함유 맞춤 현탁 배양 챔버 (50 ㎖) 또는 대량 배양 접시 (10cm로 l)). </li><li> 1 일 이후 - 조직 문화 인큐베이터 2 일 50 μL의 NBM / 웰 피펫을 분배 넓은 입을 사용하여 수행하는 다양한 분석 및 분석 프로토콜을 포함하는 96 웰 배양 플레이트에 microtumors을 전송합니다. </li></ol></li><li> 약물 치료와 microtumors의 유지 보수 <ol><li> 약물 테스트를위한 최종 농도를 선택합니다. 주 : 약물이 2 차원 배양의 효능을 알고있는 경우, 선택 배의 중간 투여 량 농도가 IC (50)가 위아래 5 도즈 레벨 총 희석액을 3 배 선택한다. 이 IC (50)는 2D 문화의 약 9 μm의 경우 예를 들어, 54 μM, 약물 테스트를위한 최종 농도 162 μM을 2 μM, 6 μM, 18 μM 선택합니다. </li><li> 디메틸 sulfoxi에서 완전한 NBM에 2 배 약물 투여 솔루션을 준비드 (DMSO) 주식. 5 도즈 3 배 연속 희석액을 제조 1 % DMSO 매체 투약 용액을 희석. </li><li> 0.5 %의 최종 DMSO 농도를 달성하기 위해 웰 분석 플레이트에서의 50 μl를 함유 microtumor에 투여 용액 50 μL를 추가한다. 3.3.1에서 결정된 각 약물의 투여 량에서 각각의 복제 (예를 들어, 4)에 대해 반복합니다. </li><li> 37 ° C에서 문화를 유지, 5 % CO 2, 1 가습 조직 문화 인큐베이터 - 십사일. 위와 같이 미디어 및 약액를 새로 고침하여 두 번 매주 피드 문화. </li></ol></li></ol> 4. 형태 학적 및 Microtumors의 표현형 분석 <ol><li> 표준 라이브 세포 얼룩을 사용하여 microtumors의 세포 형태를 결정합니다. <ol><li> DMSO에 칼 세인-AM의 1 mM의 주식을 준비합니다. -20 ° C에서 나누어지는 및 저장. </li><li> 원하는 배양 간격 (1, 7, 14 일)에서 1 μM의 최종 농도를 96 웰 플레이트 (칼슘 / 마그네슘)없이 PBS에서 제조 된 칼 세인 AM 용액을 추가한다. </li><li> 품다2 배, 4 배에서 형광 현미경을 사용하여 37 ° C, 5 % CO 2, 가습 인큐베이터 및 이미지에서 20 분, 그리고 10 배 (여자 : 450-490 나노 미터 대역 통과, 방출 : 515 nm의 긴 패스, 500 nm의 이색) . </li></ol></li><li> Microtumor 성장 / 증식 분석 <ol><li> 12 mM의 주식을 준비하기 위해 (칼슘 / 마그네슘없이) PBS에 MTT 분말을 녹여. -20 ° C에서 살균 필터, 나누어지는 및 저장. </li><li> 원하는 배양 간격 (1, 7, 14 일)에서, 100 ㎕의 배양 부피 당 96- 웰 플레이트에 MTT 용액 20 μl를 추가한다. 조직 문화 인큐베이터에서 2 시간을 품어. </li><li> 0.01 M HCl을 10 % SDS의 신선한 분해 용액을 준비하고 접시에 배양 볼륨에 동일한 금액을 추가합니다. 하룻밤 37 ° C 배양기에서 밀봉 판을 품어. </li><li> 멀티 플레이트 리더를 이용하여 570 nm에서의 흡광도를 참조하십시오. </li></ol></li><li> Kinomic 분석을위한 Microtumor 준비 <ol><li> 프로 100 배 각각 100 비율 : 4 ° C에 미리 차게 한 다음 1을 추가하여 용해 버퍼를 준비TEIN 인산 가수 분해 효소 억제제 (PPI)와 100 배 단백질 프로테아제 억제제 (PI). 잘 혼합하고 얼음에 보관하십시오. </li><li> 이전 세 1.5 ml의 microcentrifuge 관의 각 2 microtumors. 상층 액을 제거하고 4 ° C에서 30 분 각 튜브를 Lyse에 PPI와 PI를 포함하는 용해 버퍼의 40 μl를 추가합니다. </li><li> 피펫 샘플을 적극적으로 종양 구슬을 깰 수 있습니다. kinomic 분석 할 때까지 -80 ° C에서 4 ° C 저장 샘플에서 10 분 동안 16,000 XG에 원심 분리기. </li></ol></li></ol> Microtumors 5. Kinomic 프로파일 <ol><li> 단백질 티로신 키나제 (PTK) 프로파일 <ol><li> 해동 시약 (10 배 단백질 키나제 (PK) 버퍼 2 % 소 혈청 알부민 (BSA)) 프로파일에 위치 # 2 주사기에 4 ° C로드 PK 버퍼 (300 ㎕의 10 배 PK 버퍼 재고 2.7 ml의 DH 2 O)에 플랫폼. </li><li> 소프트웨어 내에서 샘플을 주석, 키나아제 분석 소프트웨어 프로그램을 열고 PTK 프로토콜 파일을 눌러 &#39;START&#39;를로드스캔 칩 후 프로그램입니다. 다음 프로파일 링 플랫폼과 부하 2 % 소 혈청 알부민 (BSA)의 25 μl의 배열 당 위에 배치 칩 단계를 차단 소프트웨어로 제어 프로토콜을 시작 LOAD를 누릅니다. </li><li> 10 mM의 아데노신 삼인산 (ATP)를 만들기 위해 54 μL의 DH 2 O 100 mM의 ATP 주식의 6 μM을 희석. 소프트웨어가 3 차 및 최종 세척 단계 (화면에 표시)를 시작하면 해물의 15 μg의는 DH 2 O와 28 μL까지 가져 가져 혼합 배열에 추가 할 수 있습니다. </li><li> (최대 12 샘플) PTK 마스터 믹스 (MM)를 준비합니다. (이미 60 μl의 10 배 BSA를 포함) (DTT)를 디티 오 트레이 톨을 재구성하고 PTK-MM1 관, 6 μL DTT, 60 ㎕의 10 배 PK 솔루션을 추가하는 32.6 μL의 DH 2 O를 추가합니다. </li><li> 다음 126 PTK-MM1의 μL, 60 μL의 PTK 첨가제 등을 추가 나타납니다 키나아제 분석 소프트웨어 &#39;로드&#39;프롬프트 될 때까지 기다립니다 60 μl의 10 mM의 MM2에 ATP (4.5 ㎕를 PY20 FITC 항체를 분주 이전 포함)과 혼합한다.각 샘플 해물 튜브와 피펫 믹스 5 번이 PTK 마스터 믹스 16 μl를 추가합니다. </li><li> 커버 유리가 깨끗한 지 확인 후 35 μl의 용 해물 / 배열, 가까운 회전 목마 뚜껑 눌러 LOAD 버튼 당 마스터 믹스를 추가합니다. </li></ol></li><li> 세린 / 트레오닌 키나제 (STK) 프로파일 : <ol><li> 해동 시약 4 ° C까지 (10 배 PK 버퍼, 10 배 STK 버퍼, 2 %의 BSA). 로드 PK 완충액 주사기 위치 # 1, 1:10 STK 버퍼 주사기 위치 # 2로 (2.7 mL의 DH 2 0 300 μL)로 (2.7 mL의 DH 2 0 300 μL). </li><li> 스캔 칩 후 프로그램 내에서 샘플을 주석, 키나아제 분석 컴퓨터 소프트웨어 프로그램을 열고 STK 프로토콜 파일과 보도 START를로드합니다. 프로파일 링 플랫폼과 부하 후 25 어레이 당 2 % BSA의 μL, 소프트웨어 제어 프로토콜 차단 단계를 시작 LOAD를 눌러 상에 배치 칩입니다. </li><li> 54 μL의 DH 2 O. 100 mM의 ATP 6 μM 희석 최종 (3 차) 세척 단계 믹스 중해물의 2 μg의 및 DH 2 O와 32.6 μL로 불러, 혼합 배열에 추가 할 수 있습니다. </li><li> STK-MM1 튜브에 70 μl의 10 배 PK 추가 (7 ㎕의 100 배 BSA를 포함), 다음 STK-MM1 튜브에 42 μL의 DH 2 O를 추가 STK 마스터 믹스합니다. </li><li> 다음 키나아제 분석 소프트웨어 &#39;로드&#39;프롬프트 될 때까지 기다립니다 : STK-MM1 18 μl의 10 mM의 ATP를 추가하고 각 샘플 용 해물 9 μL의 MM1를 추가합니다. 잘 섞다. </li><li> 커버 유리가 깨끗한 지 확인하고 35 μl의 용 해물 / 배열, 가까운 회전 목마 뚜껑 눌러 LOAD 당 마스터 믹스를 추가합니다. </li><li> 최종 (3 차) 세척 단계 중 (3.03 μl를 STK 차 항체 믹스를 포함) DMAB 관에 1.05 μL의 STK-FITC 차 항체를 추가 DMAB에 39.6 μL AB 버퍼를 추가, 추가 356.0 μL의 DH DMAB 2 O는, 각각의 배열에 DMAB 30 μl를 추가하고 보도 LOAD . </li></ol></li><li> Kinomic 데이터 (19, 20)의 분석 <ol><li> 오픈 분석 소프트웨어 및 이미지 분석 응용 프로그램을로드합니다. 자체[선택] 이미지 PTK 또는 STK 데이터를 선택 문서 번호 일치하는 배열 레이아웃 파일 (STK에 대한 PTK에 대한 86312 및 87102)에 대한 바코드와 타임 스탬프 전체 배열 이미지가 들어있는 폴더 및로드는 이전에 배열 주석 파일을 생성합니다. </li><li> 모든 이미지의 정확한 리딩을 확인하고 응용 프로그램을 확장 노출 시간을 실행합니다. 통계적으로 노출 / 경사 LOG2 변환 된 값을 비교하고, 예비 세탁 운동 곡선을 19-21으로 확인합니다. </li><li> 상류 키나제 22, 23에 대한 조건 사이의 변경된 kinomic 프로필을 조회 할 수 상류 키나제 예측 소프트웨어를 실행합니다. </li></ol></li></ol>

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</ol>

R.S.와 R.S.는 Vivo Biosciences의 직원입니다. JCA는 UAB Kinome Core에서 부분적으로 자금을 지원합니다.

프로토콜 내에서 중요한 단계는 주로 생성뿐만 아니라 약물 투여 및 유지 microtumor에 관한 것이다. microtumor 비즈 깨지기 쉽게 찢어 때문에, 극도의주의는 분석 및 유지 보수의 발달 단계에 모두 필요합니다. 에러가 이러한 공정 중 하나가 발생했을 경우, 실험 해석 확장하거나 불필요한 반복 실험 데이터 또는 심지어 배제를 초래 손상 될 수있다. 수정 및 문제 해결, 특히 microtumor 개발 과정은 microtumor 구슬을 사용하는 사용자 소수성 툴의 설계 및 제작을 포함했다. 이 도구는 microtumors의 더 빠르고 정확한 생산이 가능합니다. 또한 microtumors 유지 작은 변형 배지를 바꾸고 세포를 투여하는 과정을 가속화하는 것을 도왔다. 이러한 변형 중 일부는 포함하지만, 다 채널을 이용하여, 이에 한정되지 않은전자 피펫으로 제거하고 96- 웰 플레이트로부터 배지를 대체하는 새로운 약물 투여 용액을 미리 혼합하고, 해당 2 mL를 96- 웰 ...

가장 일반적인 기본 두개 내 악성 뇌 종양은 등급 III 성상 세포종과 등급 IV의 아교 모세포종의 홍반 (아교 모세포종 또는 GBM)입니다. 미국 1-3 GBM 현재 치료와 15개월 -이 종양은 12 사이의 평균 일 년 생존율 가난한 예후를 제공합니다. Multimodality 치료는 테모 졸로 마이드 (TMZ) 및 키나제 타겟 에이전트를 포함한 수술, 방사선, 화학 요법 등이 있습니다. 키나제 신호는 자주 표피 성장 인자 수용체 (EGFR), 혈소판 유래 성장 인자 수용체 (PDGFR)의 증가 신호 증가 포스파티딜 이노시톨-3 키나아제 (PI3K)과의 증폭과 종양의 하위 집합 또는 활성화 돌연변이를 포함, GBM에서 조절 곤란된다 혈관 내피 성장 인자 수용체 (VEGFR)뿐만 아니라 기타 키나아제 중심 경로를 통해 혈관 신생 4-6 시그널링을 지원 종양. 생체 외 및 생체 내 모델은 자주이 대표 변경을 잃을 현재 &lt;SUP&gt; 7. 또한, 유전 적 프로파일 유전 및 후생 유전 학적 변화는 항상 제 타겟팅 가장 키나아제 직접 작용 단백질 활성의 수준에서의 변화를 예측할 수없고, 동작의 다른 메커니즘 요법 여기서 작용할 수 있다는 사실을 반영 예상 이익을 제공하지 간접적으로. 무한히 계대 수있는 전통적인 불멸화 세포주 긴 인한 유지 및 재현성의 용이성에 약물 시험을위한 표준이었다. 그러나이 모델은 빠르게 원래의 종양에서 크게 차이가 세포 성장을 위해 선택하는 고 영양 (인공) 성장 환경에서 겪고있다. 이와 같이, 환자에 존재하는 등의보다 복잡한 종양 생물학적 시스템을 반영보다 현실적인 모델 시스템을 개발하는데 상당한 관심이 있었다. 종양 이종 이식 생쥐에서 자란 차 종양 ( &quot;xenoline,&quot;환자 유래의 이종 이식 또는 PDX) 있습니다 provi에서 직접 개발이들은보다 확실 임상 적 성공을 예측. 8 이상의 반사 생물학 불구 생각대로 데 특히 암 치료제의 설정에서 더 반사 모델 시스템은, 이러한 모델은 고가이며 수립하고 유지하기 어렵다. 또한, 이들은 높은 처리량 연구 의무가 없다. 필요성이 더 더 정확하게 유전자 마커를 대리하지, 기본 종양에서 분자 변화를 반영하고, 프로파일 및 키나제 활성을 직접 측정을 사용하여 이러한 모델을 테스트 생물학적 모델을 개발하기 위해 분명하다. 이 아니라 2 차원 단층 배양과는 달리, 3 차원 또는 다세포 분석 모델보다 생리 관련 엔드 9-11을 제공 할 수 있다고 인식된다. 일반적인 3D 배양 기질 코팅 미세 전달체 셀 타원체 형성을 수반 접근한다. 종양 타원체는 스피너 플라스크, PHEMA 플레이트를 사용하여 드롭 기술을 걸려 휴대 집계를 통해 생성 할 수 있습니다. t에 대한 제한 사항HESE 방법은 다음과 같습니다 : 일부 세포가 혼합 된 세포 유형으로 안정된 회전 타원체, 변동 성장과 도전을 형성 할 수 없음을. 또한, 많은 합성 (하이드로 겔 폴리머) 및 Engelbreth가-홀름 - 떼 행렬이 3D 문화를 위해 개발 된 마우스 육종에서 (EHS) 행렬, 소 콜라겐)이 12 ~ 14을 연구하는 동물 유래. 마우스 EHS 행렬은 광범위하게 사용되고 있지만, 시험 관내 및 생체 내 (15)에 세포 증식 및 분화를 촉진하는 것으로 알려져있다. 3D 종양 생물학을 복제하기 위해, 인간 biomatrix 시스템 박사 라즈 싱 등. (16)에 의해 개발되었다. 천연 성장 인자없이 인체를 Biogel 여러 종류의 세포의 장기 배양을 지원 3D 배양 지지체 (비드, 디스크)를 허용한다. 3D 인간의를 Biogel 문화 디자인의 일련의 종양 성장, 접착, 혈관 신생과 침략 속성을 공부 설정됩니다. 장점과 인간의를 Biogel의 특성을 일반에 비해마우스 EHS 겔은 표 1 및 표 2에 요약되어있다. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> 출처: </td><td> 인간 Amnions (풀링 조직) 병원체가없는, IRB 면제는 / 승인 </td></tr><tr><td> ECM 자연 : </td><td> 비 변성를 Biogel (GLP-생산) </td></tr><tr><td> 키 구성 요소 : </td><td> COL-I (38 %), 라미닌 (22 %), COL-IV (20 %), COL-III (7 %) 및 ​​Entactin HSPG (&lt;3 %) </td></tr><tr><td> GF-무료 : </td><td> 탐지 EGF, FGF, TGF, VEGF, PDGF (비 혈관, 비 독성) </td></tr></tbody></table> 표 1 : 일반 EHS 젤에 비해 인간의 등록 정보를 Biogel. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-wi일 - next.within 페이지 = &quot;항상&quot;&gt; <tbody><tr><td> 인간의를 Biogel </td><td> EHS 젤 </td></tr><tr><td> 자연 인간의 행렬 </td><td> 재구성 마우스 행렬 </td></tr><tr><td> 제어 된 세포 증식 및 분화 </td><td> 세포의 성장 및 분화를 촉진 할 수 </td></tr><tr><td> 생리적 유전자 발현 </td><td> 가변 유전자 발현 </td></tr><tr><td> 3D 조직 같은 문화 모델 </td><td> 플레이트 기반 문화 모델 </td></tr></tbody></table> 표 2 : 일반 EHS 젤에 비해 인간를 Biogel 장점.

<table><tbody><tr><td>콜라겐 분해 효소-I&nbsp;</td><td>시그마-알드리치</td><td>CO130</td><td></td></tr><tr><td>트립신 EDTA (10x)</td><td>Invitrogen</td><td>15400-054&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal-A</td><td>Life Technologies</td><td>10888-022</td><td></td></tr><tr><td>N-2 보충제</td><td>Life Technologies</td><td>17502-048</td><td>1x 최종 농도</td></tr><tr><td>B-27 보충제 (비타민 A 제외</td>) <td>Life Technologies</td><td>12587-010</td><td>1x 최종 농도</td></tr><tr><td>재조합 인간 FGF-basic</td><td>Life Technologies</td><td></td><td>PHG0266 10 ng / ml 최종 농도</td></tr><tr><td>재조합 인간 EGF</td><td>Life Technologies</td><td></td><td>PGH0315 10ng/ml 최종 농도</td></tr><tr><td>L-글루타민</td><td>Corning Cellgro Mediatech</td><td>25-005-CI</td><td>2mM 최종 농도</td></tr><tr><td>Fungizone</td><td>Omega Scientific</td><td>FG-70</td><td>2.5 &마이크로; g/ml 최종 농도</td></tr><tr><td>페니실린 스트렙토마이신</td><td>오메가 사이언티픽</td><td>PS-20</td><td>100 U/ml 페니실린 G, 100 &마이크로; g/ml 스트렙토마이신 최종 농도</td></tr><tr><td>Gentamicin</td><td>Life Technologies</td><td>15750-060</td><td>50 ng/ml 최종 농도</td></tr><tr><td>MTT</td><td>Life Technologies</td><td>M6494</td>는 <td>PBS에서 5 mg/ml로 준비되고 멸균 여과, 웰 SDS에서 1 mg/ml</td></tr><tr><td></td> MTT 용해 완충액에 대해 <td>Fisher</td><td>BP166</td><td>, 0.01&nbsp에서 10%로 준비됨; M HCl, 5% in well</td></tr><tr><td>HCl</td><td>Fisher</td><td>A144SI-212</td><td>for MTT lysis buffer, 0.01&nbsp; SDS가 있는 M, 웰</td></tr><tr><td>Calcein AM</td><td>Life Technologies</td><td>C1430</td>에서 <td>5mM DMSO 재고에서 1mM, 2&nbsp; &마이크로; PBS 염색 용액의 M, 1&nbsp; &마이크로; M in well</td></tr><tr><td>Halt' (M) s 단백질 인산가수분해효소 억제제 칵테일&nbsp;</td><td>피어스 써모사이언티픽</td><td>78420</td><td>1:100 비율, MPER&nbsp;</td></tr><tr><td>Halt의 단백질 프로테아제 억제제&nbsp;</td><td>Pierce ThermoScientific</td><td>87786</td><td>1:100 비율 in MPER</td></tr><tr><td>Mammalian Protein Extraction Reagent (MPER)</td><td>Pierce ThermoScientific</td><td>PI78501</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue</td><td>Pierce ThermoScientific</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td></td><td>Fisher BP231</td><td>for dissolution of calcein AM & compounds</td></tr><tr><td>Phosphate-Buffered Saline without Ca/</td><td>Mg Lonza</td><td>17-517Q</td><td>, MiliQ 초순수로 1배로 희석, 멸균 여과(세포 배양용)</td></tr><tr><td>Dulbecco의 인산염 완충 식염수(Ca/Mg</td><td>Corning, Cellgro Mediatech</td>, <td>20-030-CV</td>, <td>MiliQ 초순수로 1배로 희석, 사전 고정 세척용)</td></tr><tr><td>10% 중성 완충 포르말린</td><td>프로토콜</td><td>032-060</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue</td><td>Pierce ThermoScientific</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>High Density Hubiogel</td><td>Vivo Biosciences</td><td>HDHG-5</td><td></td></tr><tr><td>Halt's Protein Phosphatase Inhibitor</td><td>Pierce</td><td>78420</td><td></td></tr><tr><td>Halt's Protein Protease Inhibitor</td><td>Pierce</td><td>87786</td><td></td></tr><tr><td>Mammalian Protein Extraction Reagent (MPER)</td><td>Thermo Scientific</td><td>78501</td><td></td></tr><tr><td>Protein Tyrosine Kinase (PTK) Array Profiling chip</td><td>PamGene</td><td>86312</td><td></td></tr><tr><td>PTK 키나아제 완충액</td><td>PamGene</td><td>36000</td><td>300 &micro; l 10x PK 버퍼 스톡 2.7&nbsp; ml dH2O, PTK 시약 키트의 카탈로그 번호</td></tr><tr><td>ATP</td><td>PamGene</td><td>36000</td><td>PTK 시약 키트의 카탈로그 번호</td></tr><tr><td>PY20- FITC-conjugated antibody</td><td>PamGene</td><td>36000</td><td>PTK 시약 키트의 카탈로그 번호</td></tr><tr><td>PTK Additive</td><td>PamGene</td><td>32114</td><td></td></tr><tr><td>PTK-MM1 튜브(10x BSA)</td><td>Ppk 시약 키트</td><td></td><td></td></tr><tr><td>의 PamGene 36000 카탈로그 번호Serine/Threonine Kinase (STK) Array Profiling chip</td><td>PamGene</td><td>87102</td><td></td></tr><tr><td>STK kinase buffer</td><td>PamGene</td><td>32205</td><td>STK 시약 키트용 카탈로그 번호</td></tr><tr><td>STK Primary Antibody Mix(DMAB 튜브)</td><td>PamGene</td><td>32205</td><td>STK 시약 키트용 카탈로그 번호</td></tr><tr><td>FITC-conjugated Secondary Antibody</td><td>PamGene</td><td>32203</td><td></td></tr><tr><td>STK-MM1 튜브(100x BSA)</td><td>PamGene</td><td>32205</td><td>STK 시약 키트용 카탈로그 번호</td></tr><tr><td>STK 항체 버퍼</td><td>PamGene</td><td>32205</td><td>STK 시약 키트용 카탈로그 번호</td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>#11 블레이드, 멸균</td><td>Fisher</td><td>3120030</td><td></td></tr><tr><td>#3 메스 핸들, 멸균</td><td>Fisher</td><td>08-913-5</td><td></td></tr><tr><td>100mm 유리 페트리 접시</td><td>Fisher</td><td>08-748D</td><td></td></tr><tr><td>반곡선 펜치</td><td>Fisher</td><td>12-460-318</td><td></td></tr><tr><td>트립시나이징 플라스크</td><td>Fisher</td><td>10-042-12B</td><td></td></tr><tr><td>자기 스티러</td><td>Fisher</td><td>14-490-200</td><td></td></tr><tr><td>3/4" 스티어 바</td><td>Fisher</td><td>14-512-125</td><td></td></tr><tr><td>B-D 셀 여과기&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>#352340</td><td></td></tr><tr><td>B-D 50 ml 원심분리기 튜브</td><td>Fisher</td><td>#352098</td><td></td></tr><tr><td>PamStation 12</td><td>PamGene</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BioNavigator 6.0 키노믹 분석 소프트웨어&nbsp;</td><td>PamGene</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Evolve Kinase 분석 소프트웨어</td><td>PamGene</td><td></td><td></td></tr><tr><td>UpKin App 소프트웨어(업스트림 키나아제 예측)</td><td>PamGene</td><td></td><td></td></tr><tr><td>gentleMACS Dissociator</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-093-235</td><td></td></tr><tr><td>회전식 세포 배양 시스템(RCCS)</td><td>10ml 일회용 HARV가 있는</td> <td>Synthecon</td><td>RCCS-D</td></tr></tbody></table>

kinomic 프로파일 의약품 응답 테스트를위한 3d 인간의를 biogel 문화 시스템을 사용 microtumors 및 환자 유래 아교 모세포종 세포의 생성

Generation of Microtumors Using 3D Human Biogel Culture System and Patient-derived Glioblastoma Cells for Kinomic Profiling and Drug Response Testing

암 모델링을 위해 환자 유래 이종 이식편을 사용하는 것은 암 생물학 및 약물 반응성에 대한 중요한 통찰력을 제공했습니다. 그러나 시간이 많이 걸리고 비용이 많이 들며 노동 집약적입니다. 이러한 장애물을 극복하기 위해 많은 연구 그룹이 암세포의 스페로이드 배양으로 눈을 돌렸습니다. 종양 스페로이드 또는 응집체는 유용하기는 하지만, in vivo에서 발견되는 세포-기질 상호작용을 복제하지 않습니다. 따라서 세포외 매트릭스 스캐폴드를 활용하는 3차원(3D) 배양 접근 방식은 조사를 위한 보다 현실적인 모델 시스템을 제공합니다. 피하 또는 두개내 이종이식편에서 시작하여 종양 조직은 암 줄기세포 신경구와 유사한 단일 세포 현탁액으로 해리됩니다. 그런 다음 이러한 세포는 인간 유래 세포외 기질인 3D 인간 바이오겔에 삽입되어 많은 수의 미세종양을 생성합니다. 흥미롭게도 미세종양은 높은 생존력으로 약 한 달 동안 배양할 수 있으며 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide(MTT)와 같은 표준 세포독성 분석을 사용한 약물 반응 검사 및 Calcein-AM을 사용한 라이브 셀 이미징에 사용할 수 있습니다. 또한 면역조직화학을 통해 분석하거나 배열 기반 고처리량 키놈 프로파일링과 같은 분자 프로파일링을 위해 수확할 수 있으며, 이에 대해서도 자세히 설명되어 있습니다. 따라서 3D 미세종양은 기존 접근 방식보다 생체 내 종양 생물학을 더 밀접하게 복제할 수 있는 다목적 고처리량 모델 시스템을 나타냅니다.

우리는 3D를 Biogel 배양 시스템은 여러 종류의 세포 장기 성장 및 기능을 지원하는 것을 보여준다. 이 공동 프로젝트에서, 환자 유래 GBM의 xenolines (PDX)는 microtumors의 수백을 생산하는 데 사용됩니다. 해리 세포 (3 × 10 5) 또는 neurosphere를 (40-50)는를 Biogel 비즈 (2mm)에 포함 된 빠른 겔화 후 그들은 NB-미디어 작성 사용자 정의 생물 반응기에서 배양한다. 세포 생존 능력 (칼 세인-AM), 성장 프로파일 (MTT), 및 kinomic 활동 배열 기반의 분석은 측정 하였다. PDX의 microtumors은&gt; 삼주에 대한 다세포 조직과 높은 생존 능력 (&gt; 80 %)를 유지했다. 우리는이 생체 -like 생물학은 3D 셀 매트릭스 구조의 유지 보수 (2D 또는 회전 타원체 문화 불가능)로 인해 믿습니다. 또한 3D 종양 가능성으로 인해 콜라겐 I ...

교모세포종 다형성의 환자 유래 이종이식편은 3D 인간 바이오겔 배양 시스템을 사용하여 살아있는 미세종양으로 소형화할 수 있습니다. 이 생체 내 유사 3D 종양 분석은 키노믹 분석을 포함한 약물 반응 검사 및 분자 프로파일링에 적합합니다.

Kinomic 프로파일 의약품 응답 테스트를위한 3D 인간의를 Biogel 문화 시스템을 사용 Microtumors 및 환자 유래 아교 모세포종 세포의 생성

The use of patient-derived xenografts for modeling cancers has provided important insight into cancer biology and drug responsiveness. However, they are ...

이 환자 유래 교모세포종 3D 미세종양 배양 시스템의 전반적인 목표는 키노믹 테스트와 같은 이에 상응하는 분자 프로파일링 분석을 통해 고처리량 약물 테스트를 가능하게 하는 것입니다. 이 방법은 특정 치료법이 왜 어떤 환자의 종양에서는 효과적이지만 다른 환자에서는 그렇지 않은가와 같은 암 연구 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움을 줄 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 치료 테스트에 적합한 소형이면서도 실제와 유사한 종양 배양 시스템을 제공한다는 점입니다.일반적으로 이 방법을 처음 접하는 연구자들은 환자 유래 이종이식(patient derived xenograft) 세포의 취급 방식이 오래전 확립된 불멸화 종양 세포의 취급 방식과 다르기 때문에 어려움을 겪을 수 있습니다. 이는 해당 세포들이 취약하며 배양 조건의 변화에 민감하기 때문입니다. 마이크로종양 생성 단계는 생산 방식이 독특하고 복잡하여 설명만으로는 학습하기 어렵기 때문에, 이 방법에 대한 시각적 시연이 매우 중요합니다.종양 분해 절차를 시연할 사람은 저희 실험실의 수석 기술자이자 실험실 관리자인 Catherine Langford입니다. 마이크로종양 생성 및 약물 투여 절차를 시연할 사람은 저희 실험실의 기술자인 Rachael Shevin입니다. 핀셋을 사용하여 복벽과 피부에서 종양 덩어리를 조심스럽게 분리한 후, 무균 유리 페트리 접시로 종양 덩어리를 옮깁니다.그 다음, 11번 날이 장착된 멸균 메스와 멸균 반곡 핀셋을 사용하여 종양 조직에서 괴사 조직과 막성 숙주 결합 조직을 제거합니다. 멸균 RPMI로 세척한 종양을 3~5회 씻어 과잉 혈액을 제거하며, 세척액을 제거할 때마다 접시를 조심스럽게 기울여 줍니다. 마지막 세척 후, 두 개의 11번 메스 날을 사용하여 종양을 미세하게 다집니다.그 후, 멸균된 반곡형 포셉을 사용하여 종양을 효소 용액이 들어 있는 해리 튜브로 옮깁니다. 튜브를 세포 해리기에 넣고 Tumor 2 프로그램을 선택합니다. Start를 클릭하여 해리기를 37초 동안 작동시킵니다.그 다음 튜브를 로테이터로 옮기고, 로테이터를 37 °C 인큐베이터에 넣어 40분 동안 배양합니다. 배양이 끝나면 튜브를 다시 해리기에 놓고 Tumor 3 프로그램을 37초 동안 실행합니다. 프로그램이 종료되면 세포를 원심 분리하고, 펠렛을 10 mL의 무혈청 RPMI에 넣고 부드럽게 섞어 재현탁합니다.다음으로, 새로운 50 milliliter 튜브에 40 micron 셀 스트레이너를 장착하고 세포를 천천히 로딩한 후, 중력에 의해 현탁액이 필터를 통해 떨어지게 합니다. 세포를 새로 추가할 때마다 셀 스트레이너의 탭을 가볍게 들어 올려 스트레이너와 튜브 사이의 진공 상태를 깨뜨려줌으로써, 현탁된 세포가 메쉬를 통해 자유롭게 통과할 수 있도록 합니다. 모든 세포의 여과가 완료되면, 단일 세포 현탁액을 원심 분리하고 펠렛을 10 milliliters의 완전한 Neurobasal Medium에 다시 현탁합니다.그 다음, 트립판 블루 배제법으로 생존 세포 수를 결정하고, 세포를 얼음에 놓습니다. 마이크로종양을 생성하려면 해리된 환자 유래 교모세포종 제노라인 세포를 원심 분리하고, 펠릿을 FBS 2 µL당 50,000 cells의 농도로 재현탁합니다. 이어서, 세포와 바이오젤의 비율을 1:4로 하여 세포를 얼음처럼 차가운 고밀도 인체 바이오젤에 희석합니다.그 다음, 전자식 멀티채널 피펫을 사용하여 소수성 코팅이 된 96핀 스틸 플레이트의 핀당 10 µL의 세포 혼합물을 분주합니다. 세포, 배지, 바이오젤을 혼합할 때 기포가 생기지 않도록 주의하는 것이 중요하며, 동시에 인간 바이오젤이 핀 위에서 응고되기 시작하기 전에 신속하고 효율적으로 마이크로종양을 생성해야 합니다. 모든 마이크로종양의 플레이팅이 완료되면, 종양 비드를 젤화하기 위해 3D 종양을 조직 배양 인큐베이터로 옮겨 20분 동안 유지합니다.배양 종료 후, 마이크로종양을 완전 Neurobasal Medium이 들어 있는 10 cm 배양 접시로 옮기고 인큐베이터에 다시 넣습니다. 1~2일 후, 광구 분주 피펫을 사용하여 마이크로종양을 웰당 50 µL의 Neurobasal Medium이 포함된 96-웰 배양 플레이트의 각 웰로 옮기고, 각 웰에 적절한 투여 용액 50 µL를 추가합니다. 처리된 마이크로종양을 조직 배양 인큐베이터에서 1~14일 동안 유지하며, 일주일에 두 번 신선한 배지와 약물 용액을 공급합니다.미세종양 세포의 형태를 평가하기 위해, 배양 1일, 7일 및 14일째에 조직 배양 인큐베이터 내의 각 웰에 갓 희석한 1 µM Calcein-AM을 넣어 20분 동안 미세종양을 염색합니다. 그 후, 형광 현미경을 사용하여 2배, 4배 및 10배 배율로 종양의 이미지를 촬영합니다. 미세종양의 성장을 평가하기 위해 1일, 7일 및 14일째에 갓 조제한 20 µL MTT를 처리하여 조직 배양 인큐베이터에서 2시간 동안 배양합니다.배양 기간이 끝나면, 배양 웰 부피와 1:1 비율로 갓 제조한 10% SDS 용해 버퍼를 사용하여 종양을 용해시키고 플레이트를 밀봉합니다. 그 후 37 °C에서 하룻밤 동안 마이크로종양을 용해 버퍼 내에서 배양하고, 다음 날 아침 멀티 플레이트 리더를 사용하여 570 nm에서 흡광도를 측정합니다. 앞서 시연한 Calcein-AM을 이용한 살아있는 세포 이미징을 통해 마이크로종양의 세포 성장 및 생존력과 더불어, 이러한 기능에 미치는 약물 치료의 효과를 평가할 수 있습니다.관찰된 바와 같이, 처리되지 않은 마이크로종양과 실험적 약물 처리에 대해 알려진 내성을 가진 마이크로종양은 2주간의 배양 기간 동안 지속적인 성장 패턴을 보입니다. 그러나 TMZ 민감성 종양 세포의 경우, MTT 분석 결과 TMZ의 최고 농도 처리 시 배양 종료 시점에서 세포 성장이 감소하는 것으로 나타났습니다. 흥미롭게도, TMZ 내성 마이크로종양의 키나아제 신호 전달 분석 결과, 10 µM TMZ 처리 후 강도가 유의미하게 변한 다수의 펩타이드가 확인되었습니다.실제로, 이 대표적인 실험에서 상위 키나아제 예측 소프트웨어를 사용하여 이러한 변경된 키노믹 프로파일을 분석한 결과, SYK, LCK, CTK 티로신 키나아제 및 다수의 세린/트레오닌 키나아제 강도의 특이적 변화가 확인되었으며, 이는 종양 치료 내성을 극복하는 데 도움이 될 수 있는 잠재적인 새로운 치료 표적을 시사합니다. 숙련된 경우, 종양 해리 과정은 적절히 수행되었을 때 2시간 이내에 완료될 수 있습니다. 마이크로종양 생성 및 약물 투여 기술은 적절히 수행되었을 때 총 3시간 이내에 완료될 수 있습니다.향후 이 모델 시스템은 프로밴드(proband) 스타일의 아바타 시스템으로 활용될 수 있으며, 이를 통해 환자의 종양을 기존의 환자 유래 마이크로종양 라이브러리와 분자적으로 매칭하여 임상의가 최적의 치료법을 선택할 수 있도록 정보를 제공할 수 있습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

이 비디오에서는 3D 인간 바이오겔을 사용하여 환자 유래 종양 세포에서 미세 종양을 생성합니다. 이러한 미세종양은 체내 종양 미세환경과 매우 유사하며 약물 검사를 위한 잠재적인 플랫폼 역할을 합니다.

미세종양의 생성: 약물 치료에 대한 반응을 분석하기 위해 3D 미세종양을 배양하는 체외 배양 기술

혈청이 없는 신경권 배지에서 해리된 고급 신경종 수술 용 시편을 전파하여 암 줄기 세포 표현형을 가진 세포를 선택한다. 신경구로 성장하지 못하는 표본의 경우 대체 프로토콜이 제안됩니다. 면역 세포화학을 위한 3D 신경구 아키텍처를 유지하기 위한 파라핀 임베딩 기술이 설명된다.

임상적으로 관련동물 모델 및 3D 면역화학에 사용하기 위한 외과 표본에서 고학년 신경교종 세포 배양의 최적화

여기, 우리 두뇌 매트릭스를 모방 하도록 설계 하는 기가 가변 생체 내의 세포종 환자에서 파생 된 셀의 3 차원 문화에 대 한 프로토콜을 제시. 이 접근 한 생체 외에서세포종 세포 vivo에서 일반적으로 문화에서 길을 잃 었의 많은 특성을 유지 하는 실험 플랫폼을 제공 합니다.

히 알루 론 산 기반 Hydrogels 세포종 환자에서 파생 된 셀의 3 차원 문화에 대 한

Neurospheres 3D 문화로 성장 glioma 생물학을 공부 하는 강력한 도구를 구성 합니다. 여기 선물이 immunohistochemistry 파라핀 포함 통해 glioma neurospheres의 3 차원 구조를 유지 하면서 수행 하는 프로토콜. 이 메서드는 stemness 등 신경 분화 glioma neurosphere 속성의 특성을 수 있습니다.

Immunohistochemistry 파라핀 임베디드 3D Glioma Neurosphere 문화에 의해 Glioma 바이오 마커의 평가

여기에서는 교모세포종에 대한 사용하기 쉬운 침략 분석방법을 설명합니다. 이 분석은 교모세포종 줄기 와 같은 세포에 적합합니다. 침략, 마이그레이션 및 확산의 쉬운 정량화를 위한 피지 매크로도 설명되어 있습니다.

교모세포종을 위한 3D 스페로이드 모형

여기에서는 1차 환자 검체 또는 환자 유래 세포 배양에서 교모세포종(GBM) 오가노이드를 생성하고 성숙할 때까지 유지하는 방법을 설명합니다. 이러한 GBM 오가노이드는 표현형적으로 다양한 세포 집단을 포함하고 생체 외 종양 미세 환경을 재현합니다.

3차원 오가노이드 배양을 사용한 생체 외 인간 교모세포종 세포 다양성 유지

본 프로토콜은 맞춤형 UV 조명 장치를 사용하여 3D 매트릭스-모방 배양물에서 환자 유래 교모세포종 세포의 화학요법 반응에 대한 기계적 및 생화학적 단서의 영향을 평가하기 위한 실험 플랫폼을 기술하며, 조정 가능한 기계적 특징을 갖는 하이드로젤의 고처리량 광가교를 용이하게 한다.

하이드로겔 어레이는 3D 종양 모델에서 매트릭스 성분 및 치료제의 스크리닝 효과를 위한 처리량 증가를 가능하게 합니다.

여기에서는 유전자형-표현형 의존성을 조사하고 교모세포종 치료를 위한 잠재적 약물을 스크리닝하기 위해 실험실에서 엔지니어링한 교모세포종 오가노이드(LEGO)를 생성 및 활용하기 위한 포괄적인 프로토콜을 간략하게 설명합니다.

실험실에서 엔지니어링한 교모세포종 오가노이드 배양 및 약물 스크리닝

여기에서 우리는 세포외 플럭스 분석을 통해 3차원(3D) 신경아교종 스페로이드와 이미징 기반 정규화를 통합하는 대사 프로파일링 플랫폼을 구축합니다. 이 접근법을 통해 약물 치료에 대한 종양 대사 반응을 보다 정확하게 평가할 수 있으며 잠재적인 내성 메커니즘에 대한 통찰력을 얻을 수 있습니다.

약물 스크리닝을 위한 3차원 뇌종양 스페로이드의 대사 프로파일링의 발전

우리는 새로 진단되고 재발한 종양에서 생성된 환자 유도 자기 교모세포를 이용한 3D 교모세포종 이동 모델을 제시합니다. 이 플랫폼은 환자별 이동 역학을 시각화하고 치료 효과 평가를 가능하게 합니다. 이 분석법은 이동 후 다중화되어 단백질 위치와 발현 패턴을 평가할 수 있습니다.

저산소 조건에서 자기 나노입자를 이용한 구형 위치 측정을 이용한 재현 가능한 3D 교모세포종 이동 검사

학습하세요 환자 유래 교모세포종 3D 미세종양 배양 시스템을 이용한 고처리량 약물 테스트와 키노믹 프로파일링 방법을. 이 기술은 맞춤형 암 치료 연구를 위한 현실적인 종양 모델을 제공합니다.

Kinomic 프로파일 의약품 응답 테스트를위한 3D 인간의를 Biogel 문화 시스템을 사용 Microtumors 및 환자 유래 아교 모세포종 세포의 생성

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