Name: Myofilament 칼슘의 평가 2 + 감도 근본적인 심장 여진 수축 커플 링 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 29 s
Description: 학습하세요 심근세포의 myofilament Ca²⁺ 감도 평가 방법을 통해 심장 수축 메커니즘을 이해하세요. Fura-2 AM 형광 현미경법으로 흥분-수축 결합을 분석하고 심부전 및 고혈압에서의 기능 변화를 탐구합니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

이 연구는 교육 과학 기술부 (2013068067)에 의해 투자 한국 연구 재단 (NRF)를 통해 기초 과학 연구 프로그램에 의해 지원되었다; 교육 과학 기술부, 서울 대학교 병원, 고혈압 학회 (2013), SK 텔레콤 연구 기금의 한국 교육부의 두뇌 한국 (21) 대학원 프로그램에 의해 (NO. 3420130290)를 중국의 국립 자연 과학 재단 (NSFC 31460265; NSFC 81260035).

프로토콜은 건강의 UN 국립 연구소에 의해 게시 된 실험 동물의 관리 및 사용에 대한 가이드에 따라입니다 (NIH 공개 번호 85-23, 1996 개정). 그것은 서울 대학교의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC) (IACUC 승인 번호 : SNU-101213-1)에 의해 승인되었다. 1. 버퍼 준비 (표 재료 및 장비) <ol><li> mm 단위 (실험 당일 신선한 분리 용액 300㎖를 준비 : 염화나트륨, 135의 KCl, 5.4;의 MgCl 2, 3.5, 글루코스, 5; HEPES, 5; 나 2 HPO 4, 0.4, 타우린 20] pH가 7.4 NaOH로). </li><li> 밀리미터에 (실험의 날에 신선한 스토리지 솔루션 100 ml의 준비 : 염화나트륨 (120);의 KCl 5.4, 황산 5, CaCl2를 0.2, 나트륨 피루 베이트 (5); 5.5 포도당, 타우린 (20), HEPES (10), 만니톨 (29), pH 7.4의 ) NaOH로. </li><li> 밀리미터의 관류 액 1L (준비 : 염화나트륨, 141.4을, KCl을, 4;의 NaH 2 PO 4, 0.33; MGC를L이 1; HEPES, 10; 포도당, 5.5; 염화칼슘 2, 1.8; 만니톨, 14.5; pH를 NaOH로 7.4). </li><li> 절연 25 ㎖로 콜라게나 제 (1 ㎎ / ㎖), 프로테아제 (0.1 ㎎ / ㎖), 소 혈청 알부민 (BSA, 1.67mg / ㎖) 및 칼슘 (0.05 mm)를 첨가하여 콜라겐 용액 1 30 ㎖를 준비 해결책. </li><li> 차단 용액을 16.7 ml의 (1 ㎎ / ㎖) BSA (1.67 ㎎ / ㎖), 및 칼슘 (0.05 ㎜) 콜라게나 제를 첨가하여 콜라겐 용액이 20 ㎖를 준비한다. </li><li> 차단 용액을 40 ml의 BSA 0.4 g을 첨가하여 BSA 용액 40 ml를 준비. 10 mL 및 두 개의 비커에 30 ml의 분리. 칼슘을 BSA 용액 2+ 30 mL로 추가되도록 BSA 용액의 최종 칼슘 농도가 1 mm이다. </li></ol> 좌심실 (LV) 심근 세포의 분리 2. 준비 <ol><li> 준비와 격리 방에 동물 시설에서 깨끗한 전송 케이지 8-12 주령, 수컷 스프 라그 - 돌리 (SD) 쥐를 전송합니다. </li><li> H37 오 C. 두 개의 수조를 먹고 참고 : 물에 대해 하나의 수조를 사용 - 재킷 저수지와 랑겐 돌프 관류 시스템의 관류 관. 하나의 근육 세포를 분리하기 위해 심근 조직 트렁크를 선동하기 위해 다른 수조를 사용합니다. </li><li> 각각 30 mL 및 20 ㎖에 볼륨을 만들기 위해 5 ㎖의 콜라겐 액 (1) 및 16.7 ml의 콜라겐 액이 25 ml의에 (칼슘없이 2+) BSA 용액의 3.3 ML을 추가합니다. </li><li> 랑겐 도르프 재관류에있어서, 각각 (도 1a)에서 분리 용액 (100 mL) 및 1 열 (골 1) 및 열 (2)에 콜라게나 제 용액 1 (30 ㎖) (골 2)를 추가한다. </li><li> 랑겐 돌프 관류 시스템 (도 1A)의 산소 연결 튜브를 통해 골 1 Col.2의 분리 용액과 콜라겐 용액 1 네이트. 마찬가지로 네이트 콜라게나 제 용액과 두 비아 100 % O 2를 진탕 수욕에서 BSA 용액산소 접속 관. </li></ol> LV 근육 세포 3. 분리 <ol><li> 펜토 바르 비탈 나트륨 (30 ㎎ / ㎏)의 복강 내 주사를 통해 SD 쥐를 마취하고 곤란 발가락과 철수 반사의 부족으로 마취 상태를 확인합니다. </li><li> 해부 트레이에 쥐를 이동합니다. 앙와위에서 테이프 본체의 측면에 4 개의 다리를 고정. </li><li> 심장이 손상되지 않도록 보장, 가슴을 열고 수술 가위 흉부 중간 축 절개를 적용합니다. 연결 용기 (예를 들어, 우수하고 하대 정맥, 폐 혈관 및 대동맥) 및 심낭 막 (13)로부터 심장을 해부 깨끗한 가위의 또 다른 한 쌍을 사용합니다. </li><li> 충분한 길이의 대동맥의 일부를 남기기 (5-8mm)를 미세 집게로 대동맥 클램프, 빠르게 1 분 (그림 1A) 내에서 랑겐 돌프 관류 시스템의 캐 뉼러를 탑재합니다. 대동맥을 통해 단단히 봉합 나사 4/0을 묶어. </li><l난&gt; 골 1 밸브를 켜고 10 분 동안 예열 및 산소 격리 솔루션 (관류 속도 : 12 ~ 14 ml / 분)와 고립 된 마음을 관류. , 골 ​​1 밸브의 전원을 끄고 골 2의 밸브를 켜고 8 콜라겐 액 (1)와 함께 마음을 관류 - 10 분. </li><li> 대동맥을 절단하여 소화 마음을 분리하고 신선한 격리 솔루션 (그림 1Bi)를 포함하는 플라스크에 집게로 대동맥을 유지하여 전송할 수 있습니다. 작은 조각 (~ 22mm, 그림 1Bii)에 (격막 포함) LV 무료 벽의 대부분을 잘라 미세 가위와 집게를 사용합니다. </li><li> 미리 예열 및 산소 신선한 콜라게나 제 용액 (2) (그림 1Biii)를 포함하는 플라스크에 조각을 전송합니다. 10 분 동안 흔들어. 심근 함유 콜라겐 용액 2에 산소를 전달하는 것. </li><li> (BSA 용액을 함유 - 2+ 흡입 전구 적기를 사용하여 10 mL의 원심 분리 튜브에 현탁 및 CA 추가 - 심근 이동1 : 볼륨 1). 2 분 30 g에서 원심 분리하고 상층 액을 버린다. BSA 용액 5 ㎖에 심근 세포 펠렛을 다시 일시. 원심 분리기 뜨는을 버리고. </li><li> 심근 세포 펠렛을 분산 및 RT (그림 1Biv-VI)에서 미리 산소 저장 용액 10 ml의 근육 세포를 유지. </li><li> 플라스크에 남아있는 LV 조직으로 - 절차를 (3.9 3.7 단계) 반복합니다. 좌심실 조직의 대부분이 근육 세포의 좋은 수율을 얻을 사라질 때까지 다시 - (3.9 3.7 단계)의 절차를 반복하십시오 :합니다. </li><li> 실험이 끝날 때까지 실온에서 6-8 시간 동안 스토리지 솔루션의 근육 세포를 유지합니다. </li></ol> 세포 내 칼슘 과도과 심근 수축 4. 동시 측정 <ol><li> 아세 톡시 메틸 에스테르의 Fura-오전 2시 (2 μM)와로드 LV의 근육 세포. 참고 : 어두운 튜브 (그림 1Bvii)에로드 된 근육 세포로 모든 로딩 절차와 실험을 수행합니다. <ol><li> 하기 Centr10 초 동안 2,000 XG에서 심근 서스펜션 (1 ml)에 ifuge. 뜨는을 취소하고 낮은 칼슘 농도 (250 μM, 표 재료 및 장비)와 타이로드 용액 1 ㎖의 심근 세포 펠렛을 다시 일시 중지합니다. </li><li> 부드럽게 심근 세포 현탁액을 분산,은 Fura - 오전 2시 및 폴록 사머 407 (2 μL)를 추가하고, 실온에서 혼합물을 유지 - 15 분 (20 ~ 24 O를 C) (그림 1Bvii). </li><li> 원심 혼합물을 5 초 동안, 상층 액을 제거하고 500 μM 칼슘을 함유하는 관류 액 1ml에 심근 세포 펠렛을 분산. 10 분 후, 5 초 동안 혼합물을 원심 분리하고 상층 액을 버린다. </li><li> 신선한 관류 용액 (500 μM 칼슘, 1 ml)에 추가하고의 Fura - 오전 2시 유지 - 녹음이 솔루션에로드 된 심근 세포 펠렛을. </li></ol></li><li> 좌심실 심근의 수축과 세포 내 칼슘의 측정 2 + <ol><li> 기록하기 전에 통해 실행 관류 관을 채우기인 타이로드 용액, 물 재킷 (36) 오 C.에 미리은 예열 </li><li> 8 분 - 5 거꾸로 형광 현미경의 챔버에로드 좌심실 심근 서스펜션 - 상기의 Fura 오전 2시의 몇 방울을 배치합니다. 천천히 타이로드 용액 (2.2 ㎖ / 분)를 관류. </li><li> 필드 자극 (2 Hz에서) 시작하는 디지털 자극의 전면 패널에있는 &quot;시작&quot;버튼을 누릅니다. 주 : 출력 전압 (10 V는 5 밀리 초 지속 기간)는 상기 챔버의 양측에 위치하는 백금 와이어를 통해 챔버에서 심근 세포에 적용된다. <ol><li> 안정적으로 그 계약을 선택 심근 세포 기록 (하이퍼 또는 저자 극성 수축을 표시하지 않는 것). </li></ol></li><li> 비디오 기반 근절 검출 시스템의 수평 위치에서의 선택의 근세포를 조정 근섬유 분절 최적의 이미지를 획득하기 위해 상기 현미경의 초점을 조절한다. 분명 근섬유 분절는 누가 뭐라고해도 평균 때까지 관찰되는 영역에 보라색 사각형 상자를 배치근절 길이 (적색 피크)의 단수 날카로운 피크 (그림 2A, 낮은 이미지)를 표시합니다. </li><li> 필드 자극 (도 2A와 B)에 응답하여 근절 길이의 변화를 기록한다. 주 : 1 내에서로드 된 근육 세포를 사용 - 2 시간. </li><li> 비디오 기반 근절 검출 시스템의 필드가 근세포 (도 2A)의 크기가되도록 카메라의 조리개를 조정한다. 510 nm의 (인수 주파수 1000 Hz에서)에서 360 나노 미터 / 380 nm에서 여기 및 방출과 심근을 자극한다. 기록 근절 단축 및 현장 자극 (그림 2B)로 Fura2 AM 비율. </li></ol></li></ol> Myofilament 칼슘 감도 5. 평가 <ol><li> 측정 값이 모두 (- (20 추적 10)과 같은 심근의 근절 길이 대의 Fura-2 비율의 위상면 루프를 플롯 근절 길이 및 정상 상태에서 2 + 과도 칼슘 평균s와 델타의 변화도 2C). </li><li> 각각의 플롯에서 50 % 완화에서의 Fura -2 비율 (EC 50, 그림 2C)을 정의합니다. 루프 각 개입의 EC (50) 양을 비교합니다. </li></ol>

<ol><li>Bers, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+excitation-contraction+coupling%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cardiac excitation-contraction coupling.</a> Nature. 415 (6868), 198-205 (2002).</li>
<li>Eisner, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrative+analysis+of+calcium+cycling+in+cardiac+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Integrative analysis of calcium cycling in cardiac muscle.</a> Circ Res. 87 (12), 1087-1094 (2000).</li>
<li>Palmiter, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+regulating+the+myofilament+response+to+Ca2%2B%3A+implications+of+mutations+causal+for+familial+hypertrophic+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms regulating the myofilament response to Ca2+: implications of mutations causal for familial hypertrophic cardiomyopathy.</a> Basic Res Cardiol. 92 (S1), 63-74 (1997).</li>
<li>Missiaen, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+intracellular+Ca2%2B+homeostasis+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Calcium%22%5BJournal%5D)">Abnormal intracellular Ca2+ homeostasis and disease.</a> Cell Calcium. 28 (1), 1-21 (2000).</li>
<li>Trafford, A. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel%2C+rapid+and+reversible+method+to+measure+Ca+buffering+and+time-course+of+total+sarcoplasmic+reticulum+Ca+content+in+cardiac+ventricular+myocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">A novel, rapid and reversible method to measure Ca buffering and time-course of total sarcoplasmic reticulum Ca content in cardiac ventricular myocytes.</a> Pflugers Arch. 437 (3), 501-503 (1999).</li>
<li>Berlin, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intrinsic+cytosolic+calcium+buffering+properties+of+single+rat+cardiac+myocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Intrinsic cytosolic calcium buffering properties of single rat cardiac myocytes.</a> Biophys J. 67 (4), 1775-1787 (1994).</li>
<li>Robertson, S. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+time-course+of+Ca2%2B+exchange+with+calmodulin%2C+troponin%2C+parvalbumin%2C+and+myosin+in+response+to+transient+increases+in+Ca2%2B%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">The time-course of Ca2+ exchange with calmodulin, troponin, parvalbumin, and myosin in response to transient increases in Ca2+.</a> Biophys J. 34 (3), 559-569 (1981).</li>
<li>Schober, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myofilament+Ca2%2B+sensitization+increases+cytosolic+Ca2%2B+binding+affinity%2C+alters+intracellular+Ca2%2B+homeostasis%2C+and+causes+pause-dependent+Ca2%2B-triggered+arrhythmia%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Myofilament Ca2+ sensitization increases cytosolic Ca2+ binding affinity, alters intracellular Ca2+ homeostasis, and causes pause-dependent Ca2+-triggered arrhythmia.</a> Circ Res. 112 (2), 170-179 (2012).</li>
<li>Briston, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Balanced+changes+in+Ca+buffering+by+SERCA+and+troponin+contribute+to+Ca+handling+during+%CE%B2-adrenergic+stimulation+in+cardiac+myocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Res%22%5BJournal%5D)">Balanced changes in Ca buffering by SERCA and troponin contribute to Ca handling during β-adrenergic stimulation in cardiac myocytes.</a> Cardiovasc Res. 104 (2), 347-354 (2014).</li>
<li>Patel, B. G., Wilder, T., John Solaro, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+control+of+cardiac+myofilament+response+to+calcium+by+S-glutathionylation+at+specific+sites+of+myosin+binding+protein+C%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Physiol%22%5BJournal%5D)">Novel control of cardiac myofilament response to calcium by S-glutathionylation at specific sites of myosin binding protein C.</a> Front Physiol. 4, 336(2013).</li>
<li>Jin, C. Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myofilament+Ca2%2B+desensitization+mediates+positive+lusitropic+effect+of+neuronal+nitric+oxide+synthase+in+left+ventricular+myocytes+from+murine+hypertensive+heart%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Myofilament Ca2+ desensitization mediates positive lusitropic effect of neuronal nitric oxide synthase in left ventricular myocytes from murine hypertensive heart.</a> J Mol Cell Cardiol. 60, 107-115 (2013).</li>
<li>Wang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+L-type+Ca2%2B+channel+activity+by+neuronal+nitric+oxide+synthase+and+myofilament+Ca2%2B+sensitivity+in+cardiac+myocytes+from+hypertensive+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Calcium%22%5BJournal%5D)">Modulation of L-type Ca2+ channel activity by neuronal nitric oxide synthase and myofilament Ca2+ sensitivity in cardiac myocytes from hypertensive rat.</a> Cell Calcium. 58 (3), 264-274 (2015).</li>
<li>Louch, W. E., Sheehan, K. A., Wolska, B. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+in+cardiomyocyte+isolation%2C+culture%2C+and+gene+transfer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Methods in cardiomyocyte isolation, culture, and gene transfer.</a> J Mol Cell Cardiol. 51 (3), 288-298 (2011).</li>
<li>Spurgeon, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytosolic+calcium+and+myofilaments+in+single+rat+cardiac+myocytes+achieve+a+dynamic+equilibrium+during+twitch+relaxation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Cytosolic calcium and myofilaments in single rat cardiac myocytes achieve a dynamic equilibrium during twitch relaxation.</a> J Physiol. 447, 83-102 (1992).</li>
<li>Preston, L. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+effects+of+the+DCM+mutant+Gly159Asp+troponin+C+in+skinned+muscle+fibres%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Arch%22%5BJournal%5D)">Functional effects of the DCM mutant Gly159Asp troponin C in skinned muscle fibres.</a> Pflugers Arch. 453 (6), 771-776 (2007).</li>
<li>Willott, R. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+Troponin+that+cause+HCM%2C+DCM+AND+RCM%3A+what+can+we+learn+about+thin+filament+function%3F%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mol+Cell+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Mutations in Troponin that cause HCM, DCM AND RCM: what can we learn about thin filament function?</a> J Mol Cell Cardiol. 48 (5), 882-892 (2010).</li>
<li>Yasuda, S. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+to+study+contraction+characteristics+of+a+single+cardiac+myocyte+using+carbon+fibers%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">A novel method to study contraction characteristics of a single cardiac myocyte using carbon fibers.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 281 (3), H1442-H1446 (2001).</li>
<li>Sears, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+neuronal+nitric+oxide+synthase+isoform+regulates+myocardial+contraction+and+calcium+handling%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Cardiac neuronal nitric oxide synthase isoform regulates myocardial contraction and calcium handling.</a> Circ Res. 92 (5), e52-e59 (2003).</li>
<li>Ashley, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+nitric+oxide+synthase+1+regulates+basal+and+beta-adrenergic+contractility+in+murine+ventricular+myocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Cardiac nitric oxide synthase 1 regulates basal and beta-adrenergic contractility in murine ventricular myocytes.</a> Circulation. 105 (25), 3011-3016 (2002).</li>
<li>Zhang, Y. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reduced+phospholamban+phosphorylation+is+associated+with+impaired+relaxation+in+left+ventricular+myocytes+from+neuronal+NO+synthase-deficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Reduced phospholamban phosphorylation is associated with impaired relaxation in left ventricular myocytes from neuronal NO synthase-deficient mice.</a> Circ Res. 102 (2), 242-249 (2008).</li>
<li>Roe, M. W., Lemasters, J. J., Herman, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+Fura-2+for+measurements+of+cytosolic+free+calcium%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Calcium%22%5BJournal%5D)">Assessment of Fura-2 for measurements of cytosolic free calcium.</a> Cell Calcium. 11 (2-3), 63-73 (1990).</li>
<li>Grynkiewicz, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+generation+of+Ca2%2B+indicators+with+greatly+improved+fluorescence+properties%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">A new generation of Ca2+ indicators with greatly improved fluorescence properties.</a> J Biol Chem. 260 (6), 3440-3450 (1985).</li>
</ol>

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

여기서 우리는 하나의 고립 된 심장 근세포에 myofilament 칼슘 감도의 변화를 평가하기 위해 프로토콜을 설명하고이 전기 생리 특성과 함께 매개 변수, 세포 내 칼슘 2 + 과도 및 myofilament 역학 측정의 중요성을 강조한다. 하나 또는 두 개의 매개 변수의 녹음은 심장의 수축과 이완을 기본 메커니즘을 해명하지 않을 수 있기 때문입니다. 심근의 수축과 세포 내 칼슘 2 + 프로필 개별적으로 1을 측정하는 기존의 방법과는 달리, 본 발명의 방법은 동시에 같은 심장 근육 세포에서 두 매개 변수를 검사합니다. 다수의 방법은 일반적으로 근육 세포질 15, 16, 17, 예를 들어, 피부가 근육 세포에서 외인성 카 사이의 상호 작용의 시험 2+ 및 근절 / 셀 길이 / 장력 myofilament 칼슘...

여기 심장 수축 (EC) 결합 심근 즉, 심장의 수축 1,2- 함수의 기계적 특성을 분석하는 기본 방식이다. EC 커플 sarcolemmal이 이온 채널의 활성에 보조 막을 탈분극에 의해 개시된다 (예를 들어, 패치 클램프 기술을 통해 측정 할 수있는 전압 - 게이트 나 + 채널). (나노 몰에서 nm의 세포질 칼슘 농도를 증가 ryanodine 수용체 (RyRs)를 통해 전압 게이트 L 형의 후속 활성화 칼슘은 2 + 채널 LTCCs를 통해 2+ 유입이 칼슘의 대부분을 트리거 (LTCCs)과 칼슘 2 + 릴리스, )는 (μM) 수준을 마이크로합니다. 세포질 칼슘의 이러한 증가는 얇은 필라멘트에 트로포 닌 C (TNC)에 결합하는 2 + 칼슘을 촉진하고 이끌어 필라멘트 복합체의 구조적 변화를 액틴 - 미오신 상호 작용을 촉진하고 myocardi을 달성알은 3 수축. 반대로, 세포질 칼슘은 SR에서 칼슘 2 + -ATPase를 통해 근질 세망 (SR) (SERCA2a)로 다시 재 uptaken거나 나 + / 칼슘 교환기 및 plasmalemmal를 통해 심근에서 압출 칼슘 2 + ATPase의 1, 2. 따라서, 세포질 칼슘의 감소는 2 + 액틴 - 미오신과 심근 이완 1-3의 분리의 결과로, 다시 원래 상태로 얇은 필라멘트의 구조적인 변화를 선동. 대부분의 포유 동물의 심장 세포 1 세포질 칼슘 제거의 90 % - 이러한 방식에서, SERCA2a의 활성은 일반적으로 70를 차지하기 때문에 심근 완화의 속도를 결정하는데 고려된다. 등 LTCC, RyR 및 SERCA2a에 의해 같은 비정상적인 칼슘 처리로 병에 걸린 심장 1-4에서 장애인 수축과 이완의 기본 메커니즘을 고려하고있다. 2 + 총 세포 내 칼슘의 약 1 %에 대한 EC 커플 링 계정의 메신저와 칼슘의 대부분 같은 기능은 세포 내 칼슘 2 + 버퍼 5,6에 바인딩 무료 세포질 칼슘. 이는 다양한 칼슘 버퍼의 SR에 예를 들어, 막 인지질, ATP, 크레아틴 인산, 칼 모듈 린, parvalbumin, 근원 섬유 TNC, 미오신, SERCA2a 및 calsequestrin 심장 근육 세포에 풍부 사실이다. 5,6,7. 그 중, SERCA2a 및 TNC가 지배적 인 칼슘 2 + 버퍼 5,6,7입니다. 또한, 칼슘 2 +의 버퍼 바인딩 트 동안 역동적 인 과정이며, 추가 원인을 결합 칼슘의 변화 2+ (예를 들어, 2 + 칼슘의 30 % ~ 50 %는 2 + 과도 7 TNC에 결합 칼슘 동안 그것에서 해리) 진한 2+ 세포 내 칼슘의 변화에, 세포질 무료 칼슘의 결과를 &quot;해제&quot;entration. 그 결과, 세포 내 칼슘 수준의 교란은 수축 기능 장애 및 부정맥 8,9의 전구체입니다 이상 myofilament의 움직임을 유도한다. (생리 및 병리 모두) 많은 요인 myofilament 칼슘 버퍼링 및 myofilament 칼슘 감도 8-10 영향을 myofilament 단백질의 전사 후 변형의 원천이 될 수 있습니다. 최근에는 칼슘 2 + 과도, 비정상적인 칼슘 2 + 릴리스 및 부정맥 8의 일시 정지에 의존 증강을 유발, myofilament 단백질의 돌연변이가 칼슘 결합 친화 및 세포 내 칼슘 처리를 늘리는 것이보고되었다. 이 개념에 맞춰, 우리는 또한 높은 이완기 및 수축기 칼슘 수준과 연관된 신경 세포의 산화 질소 합성 효소의 업 규제 이차 고혈압 쥐의 마음이 myofilament 칼슘 탈감작을 보여 주었다결과적으로, 칼슘 의존적 불 활성화 (12)에 LTCC의 취약성을 증가 11. 따라서, myofilament 칼슘 감도는 세포 내 칼슘 항상성 및 심근 수축 기능의 &quot;활성&quot;레귤레이터이다. 그것은 myofilament와 칼슘 사이의 상호 작용을 분석 할 필요가있다 2+ 심근 EC 커플 링 및 심장 기능의 철저한 조사를 위해 단백질을 처리. 여기, 우리는 고립 된 심장 근육 세포에 myofilament 칼슘 감도의 변화를 평가하는 프로토콜을 설명합니다. 세포 내 칼슘 2 + 프로필의 종합 분석, myofilament 칼슘 감도 및 수축 새로운 메커니즘을 기본 심근 역학을 발굴합니다.

<table><tbody><tr><td>Sprague Dawley rat</td><td>Koatech</td><td></td><td>8-12</td></tr>주 <tr><td>펜토바르비탈 나트륨</td><td>한림제약(한국)</td><td>AHN901</td><td>보험 코드:645301220</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S9625</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P4504</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Sigma</td><td>S8282</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>시그마</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>포도</td>당 <td>시그마</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Biosesang</td><td>C2002</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Biosesang</td><td>M2001</td><td></td></tr><tr><td>만니톨</td><td>시그마</td><td>M4125</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4</td><td>Sigma</td><td>M5921</td><td></td></tr><tr><td>나트륨 피루베이트</td><td>시그마</td><td>P2256</td><td></td></tr><tr><td>타우린</td><td>머크</td><td>8.08616.1000</td><td></td></tr><tr><td>Na2HPO4&nbsp; </td><td>Sigma</td><td>71649</td><td></td></tr><tr><td>소 태아 알부민</td><td>Sigma</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>콜라겐분해효소 유형 2</td><td>Worthington</td><td>LS004177</td><td></td></tr><tr><td>프로테아제</td><td>Sigma</td><td>P6911</td><td></td></tr><tr><td>Fura-2 (AM)</td><td>Molecular Probes</td><td>F1221</td><td></td></tr><tr><td>Pluronic F127 DMSO</td><td>Invitrogen</td><td>P3000MP</td><td></td></tr><tr><td>의 20% 용액쉐이킹 워터 배스</td><td>Chang Shin Scientific</td><td>Model: C-108</td><td></td></tr><tr><td>IonWizard Softwae Suite</td><td>IonOptix Ltd</td><td>Experimental Builder</td><td>Myocytes</td></tr><tr><td>Myocyte Calcium & 수축성 기록 시스템</td><td>IonOptix Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>순환 수조</td><td>BS-Tech</td><td>BW2-8</td><td></td></tr><tr><td>Myocyte 형광 현미경</td><td>Nikon</td><td>DIATPHOTO 200</td><td></td></tr><tr><td>MyoCam-S Power</td><td>IonOptix</td><td></td><td></td></tr><tr><td>형광 및 비디오 검출</td><td>IonOptix</td><td>MyoCam-S</td><td></td></tr><tr><td>CFA300</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PMT400</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>형광 및 시스템 인터페이스</td><td>IonOptix</td><td>FSI700</td><td></td></tr><tr><td>여기 광원</td><td>IonOptix</td><td>mSTEP</td><td></td></tr><tr><td>고강도 ARC 램프 전원 공급 장치</td><td>케른 Reseach</td><td></td><td></td></tr><tr><td>필터 휠 컨트롤러</td><td>IonOptix</td><td>GB/MUS200</td><td></td></tr><tr><td>디지털 자극기</td><td>의료 시스템 Corportion</td><td>S-98 Mutimode</td><td></td></tr><tr><td>Compositions of Experimental Solutions</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>코멘트</td></tr><tr><td>Isolation Solution (pH: 7.4, NaOH)NaCl</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td></td><td>Sigma</td><td>S9625</td><td>농도(mmol) 135</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P4504</td><td>농도 (mmol) 5.4</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>H3375</td><td>농도 (mmol) 5</td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Sigma</td><td>G8270</td><td>농도 (mmol) 5</td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Biosesang</td><td>M2001</td><td>농도 (mmol) 3.5</td></tr><tr><td>Taurine</td><td>Sigma</td><td>CB2742654</td><td>농도 (mmol) 20</td></tr><tr><td>Na2HPO4&nbsp; </td><td>Sigma</td><td>71649</td><td>농도(mmol) 0.4</td></tr><tr><td>저장 용액(pH: 7.4, NaOH)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S9625</td><td>농도(mmol) 120</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P4504</td><td>농도(mmol) 5.4</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma</td><td>H3375</td><td>농도(mmol) 10</td></tr><tr><td>포도</td>당 <td>Sigma</td><td>G8270</td><td>농도 (mmol) 5.5</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Biosesang</td><td>C2002</td><td>농도 (mmol) 0.2</td></tr><tr><td>Mannitol</td><td>Sigma</td><td>M4125</td><td>농도 (mmol) 29</td></tr><tr><td>MgSO4</td><td>Sigma</td><td>M5921</td><td>농도 (mmol) 5</td></tr><tr><td>나트륨 피루브산</td><td>Sigma</td><td>P2256</td><td>농도 (mmol) 5</td></tr><tr><td>Taurine</td><td>Sigma</td><td>CB2742654</td><td>농도(mmol) 20</td></tr><tr><td>관류 용액(티로드 용액, pH: 7.4, NaOH)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S9625</td><td>농도(mmol) 141.4</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P4504</td><td>농도(mmol) 4</td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Sigma</td><td>S8282</td><td>농도(mmol) 0.33</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>시그마</td><td>H3375</td><td>농도 (mmol) 10</td></tr><tr><td>포도</td>당 <td>시그마</td><td>G8270</td><td>농도 (mmol) 5.5</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Biosesang</td><td>C2002</td><td>농도 (mmol) 1.8&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; Fura 2AM 로딩의 경우 CaCl2 농도는 0.25mM 및 0.5mM</td></tr><tr><td>MgCl2</sub</td><td>>Biosesang</td><td>M2001</td><td>농도(mmol) 1</td></tr><tr><td>Mannitol</td><td>Sigma</td><td>M4125</td><td>농도(mmol) 14.5</td></tr><tr><td>Collangenase 용액 1</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>분리 용액(30mL)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>소 태아 알부민(BSA 용액 5ml)</td><td></td><td></td><td>농도 (mmol) 1.67 mg/mL</td></tr><tr><td>콜라겐 분해 효소 유형 2</td><td>Worthington</td><td>LS004177</td><td>농도 (mmol) 1 mg/mL</td></tr><tr><td>프로테아제</td><td>Sigma</td><td>P6911</td><td>농도 (mmol) 0.1 mg/mL</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Biosesang</td><td>C2002</td><td>농도 (mmol) 0.05 mM</td></tr><tr><td>Collangenase 용액 2</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>분리 용액 ( 20mL)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>소 태아 알부민(BSA 용액 3.3mL)</td><td></td><td></td><td>농도(mmol) 1.67mg/mL</td></tr><tr><td>콜라겐분해효소 유형 2</td><td>Worthington</td><td>LS004177</td><td>농도(mmol) 1mg/mL</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Biosesang</td><td>C2002</td><td>농도(mmol) 0.05mM</td></tr><tr><td>BSA 용액</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>분리 용액( 40mL)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>소태아 알부민</td><td>시그마</td><td>A7906</td><td>농도(mmol) 400 mg</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Biosesang</td><td>C2002</td><td>농도(mmol) 1mM</td></tr></tbody></table>

myofilament 칼슘의 평가<sup&gt; 2 +</sup&gt; 감도 근본적인 심장 여진 수축 커플 링

Assessment of Myofilament Ca2+ Sensitivity Underlying Cardiac Excitation-contraction Coupling

심부전 및 심장 부정맥은 전 세계적으로 사망률과 이환율의 주요 원인입니다. 그러나, 병에 걸린 마음의 병인과 심근 고장의 메커니즘은 완전히 명확 일이다. 최근 강력한 증거가 myofilament 칼슘 2 + 감도의 변화가 심장 근육 세포에서 세포 내 칼슘 항상성 및 이온 채널 활동에 영향을 미칠 것으로 보여, 건강하고 병에 걸린 마음에 심장 활동 전위과 수축을 담당하는 핵심 메커니즘. 사실, (예를 들어, 나 +, 칼슘 2 +와 K + 채널과 나 + -ca 2+ 기) 및 세포 내 칼슘 2 + 처리 단백질 (예., ryanodine 수용체와 칼슘을 심장 활동 전위를 기본 이온 채널의 활동 및 운송 근질 세망 (SERCA2a) 또는 phospholamban과 인산화)에서 2 + -ATPase 종래 evalu 측정된다심장 자극 - 수축 (EC) 커플 링의 기본 메커니즘을 먹었다. myofilament이 수축과 이완의 기능 부이고, myofilament 칼슘 감도 근원 섬유 성능의 구현에 필수적인 반면, 멤브레인 및 세포 내 칼슘의 변화 모두 전기 활동은 EC 결합의 트리거 신호이다. 이 연구의 초점이 아닌 그럼에도 불구하고, 몇몇 연구는 심근의 기능 분석에 myofilament 칼슘 감도를 통합합니다. 여기, 우리는 근절 단축 / 재 연장과의 Fura-오전 2시 (비율 계량 감지)와 쥐 마음에서 심장 근육 세포에 myofilament 칼슘 감도의 변화를 평가를 사용하여 세포 내 칼슘 수준을 측정하는 프로토콜을 설명합니다. 주요 목적은 칼슘 감도 역학적 분석 EC 결합에서 고려되어야한다는 myofilament을 강조하는 것이다. 난의 종합 조사번역 및 치료 가치보다 효과적인 전략을 설계에 대한 유용한 정보를 제공 할 것이다 건강하고 병에 걸린 마음에서 심근 수축력의 기초 채널, 이온 수송, 세포 내 칼슘 처리 및 myofilament 칼슘 감도에.

LV의 근육 세포는 정상 및 고혈압 쥐의 마음에서 격리됩니다. 필드 자극에 응답 분명 줄무늬 (근섬유 분절을 대표하는) 안정 수축과 막대 모양의 근육 세포가 최적의 근육 세포로 간주하고 녹음 (그림 2A) 선택됩니다. F의 igure 2a에 도시 된 예에서의 Fura 오전 2시 좌심실 심근 수평 위치와 근세포는 기록 필드 최소 배경 영역의 대부분이 포함되어 차지하도록 카메라의 조리개 조정 -loaded. 기록 필드 (녹화 프로그램을 통해)를 클릭하고 컴퓨터 화면이 상자를 드래그하여 보라색 상자의 크기를 조정합니다. 평균 근절 길이가 하나의 선명한 빨간색 피크를 표시되면 (그림 2A, 낮은 이미지)를 기록 시작합니다. 근절 길이 및 세포 내 칼슘 2 +...

이 논문은 쥐의 심장에서 분리된 심장 근세포에서 수축하는 동안 myofilament Ca2+ 감도의 변화를 평가하는 프로토콜에 대해 설명합니다. 심장 전기생리학, 수축기/이완기 세포질 Ca2+ 수치 및 수축/이완과 함께 이 측정은 건강한 심장과 질병이 있는 심장에서 심장 흥분-수축 결합을 매개하는 메커니즘을 뒷받침하는 데 필수적입니다.

Myofilament 칼슘의 평가<sup&gt; 2 +</sup&gt; 감도 근본적인 심장 여진 수축 커플 링

Heart failure and cardiac arrhythmias are the leading causes of mortality and morbidity worldwide. However, the mechanism of pathogenesis and myocardial ...

이 절차의 전체적인 목표는 마이오필라멘트(myofilament)의 칼슘 민감도를 측정하여 건강한 심장과 질환이 있는 심장의 수축 기저 메커니즘에 대한 이해를 높이는 것입니다. 이 방법은 심부전 및 심부전으로 인한 울혈과 관련된 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 이온 채널, 이온 운반체 및 세포 간 칼슘 처리와 결합하여, 건강한 상태 및 심장 질환 상태의 생쥐 심장 수축력의 기저 메커니즘에 대한 종합적인 이해를 제공한다는 점입니다.이 절차를 시작하려면, 두 개의 항온수조를 37°C로 가열합니다. 25 mL의 collagenase solution one에 5 mL의 칼슘 제거 BSA 용액을 추가하고, 16.7 mL의 collagenase solution two에 3.3 mL의 칼슘 제거 BSA 용액을 추가합니다. 그다음, Langendorff 관류 시스템의 column one에 100 mL의 분리 용액을, column two에 30 mL의 collagenase solution one을 추가합니다.Langendorff 관류 시스템의 산소 연결 튜브를 통해 1열과 2열에 있는 분리 용액과 콜라게나제 용액 1을 산소화합니다. 마찬가지로, 진탕 수조에 있는 콜라게나제 용액 2와 BSA 용액을 산소 연결 튜브를 통해 100% 산소로 산소화합니다. 이 단계에서는 펜토바르비탈 나트륨을 복강 내 주사하여 SD 랫트를 마취시킨 후, 발가락 꼬집기와 회피 반사 소실 여부를 통해 마취 상태를 확인합니다.그 후, 쥐를 해부 트레이로 옮깁니다. 쥐를 앙와위(supine position)로 눕히고, 테이프를 사용하여 네 다리를 몸체 양측에 고정합니다. 그런 다음, 미세 핀셋으로 대동맥을 집고 즉시 Langendorff 관류 시스템의 캐뉼라를 장착합니다.그 후, 대동맥 위의 봉합사를 단단히 묶습니다. 1번 컬럼의 밸브를 열고 미리 데워진 산소 공급 분리 용액으로 분리된 심장을 10분 동안 관류합니다. 이어서 2번 컬럼의 밸브를 열고 콜라게나제 용액 1로 심장을 8~10분 동안 관류합니다.그 후, 대동맥을 절단하여 소화된 심장을 제거하고 신선한 분리액이 담긴 플라스크로 옮깁니다. 미세 가위와 핀셋을 사용하여 중격을 포함한 LV 유리벽의 대부분을 작은 조각으로 자릅니다. 다음으로, 조직을 미리 가온하고 산소를 공급한 신선한 collagenase solution two가 담긴 플라스크로 옮깁니다.그 후, 10분 동안 흔들어 섞으며 콜라게나제가 포함된 심근세포 용액을 산소화된 상태로 유지합니다. 이어서 심근세포 현탁액을 10 mL 원심분리 튜브로 옮기고 BSA가 포함된 칼슘 용액을 첨가합니다. 2분 동안 원심분리합니다.2분 후, 상층액을 제거하고 심근세포 펠렛을 5 mL의 BSA 용액에 재현탁합니다. 그런 다음, 다시 원심분리하여 상층액을 제거합니다. 이어서 심근세포 펠렛을 분산시키고, 실험이 끝날 때까지 심근세포를 사전 산소화된 보존액 10 mL에 담아 실온에서 보관합니다.이제 LV 심근세포에 2 µM의 acetoxymethyl ester Fura-2AM을 로딩합니다. 심근세포 현탁액 1 mL를 10초 동안 원심분리합니다. 그 후, 상층액을 제거하고 저농도 칼슘 Tyrode 용액 1 mL에 심근세포 펠렛을 재현탁합니다.그 다음, 근세포에 Fura-2AM과 2 µL의 poloxamer 407을 첨가합니다. 근세포 현탁액을 부드럽게 분산시키고 혼합물을 실온에서 15분 동안 유지합니다. 15분 후, 혼합물을 5초 동안 원심분리합니다.상층액을 제거하고 500 µM calcium이 포함된 관류액 1 mL에 심근세포 펠렛을 분산시킵니다. 10분 후, 혼합물을 5초 동안 원심 분리하고 상층액을 제거합니다. 다음으로, 신선한 관류액을 첨가하고 Fura-2AM이 로딩된 심근세포 펠렛을 기록을 위해 이 용액에 보관합니다.기록 전, 워터 재킷을 통해 연결된 관류 튜브를 36 °C Tyrode 용액으로 채웁니다. 그 후, Fura-2AM이 로딩된 LV 심근세포 현탁액 몇 방울을 도립 형광 현미경의 챔버에 떨어뜨리고 5~8분 동안 대기합니다. 2.2 mL/min의 속도로 Tyrode 용액을 천천히 관류합니다.그런 다음, 디지털 자극기의 전면 패널에 있는 시작 버튼을 눌러 2 Hz로 전기 자극을 시작합니다. 안정적으로 수축하는 심근세포를 선택하여 기록합니다. 여기에는 가짜 수술군(sham) 및 고혈압 쥐의 좌심실(LV) 심근세포에서 측정된 근절 단축 및 Fura-2 비율 측정의 원시 파형이 나타나 있습니다.여기 근절 길이와 Fura-2 신호의 평균 트레이스가 있습니다. 그리고 여기 두 그룹의 근절 길이에 따른 Fura-2 비율의 위상 평면 도표가 있습니다. 궤적 루프가 오른쪽으로 이동해 있으며 고혈압군에서 EC50이 더 높아지는 경향을 보이는데, 이는 근필라멘트 칼슘 탈감작을 시사합니다.이 절차를 시도하기 전에, Fura-2AM 로딩 없이 심근세포의 수축을 검출하여 분리된 심근세포인 cortium을 테스트하는 것이 중요하다. 또한, 과부하를 방지하기 위해 Fura-2AM 로딩 후에도 항상 심근세포의 수축을 확인해야 한다. 이 절차 이후에는 추가적인 질문에 답하기 위해 패치 클램프(patch clamp) 기법과 같은 다른 방법들을 수행할 수 있다.예를 들어, A-type Ca 채널 활성, 즉 심근세포의 흥분-수축 결합을 분석할 수 있습니다. 이 기술의 개발 이후, 향후 심장 생리학 연구자들은 인간의 심장 질환에 대해 더 많은 통찰력을 탐구할 수 있는 길을 열게 되었습니다. 반복적인 실습을 통해 마이오필라멘트 칼슘 채널 활성을 분석하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.건강한 심장과 질환이 있는 심장에서 심장 흥분-수축 결합을 매개하는 메커니즘을 더 잘 이해하기 위해.

assessment-myofilament-ca2-sensitivity-underlying-cardiac-excitation

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

우리는 직접의 근육 힘, 근육 힘, 수축성 속도론 및 절연 골격 근육의 fatigability를 측정하는 방법을...

절연 골격근의 수축성, Fatigability 및 Alternans의 예 VIVO 평가

뮤린 좌심실 유두근는 체외에서 심근 수축력을 조사하는데 사용될 수있다. 이 문서 자세히 분리 실험 프로토콜 심장 수축 특성을 연구에 대해 설명합니다.

마우스의 심장 수축력의 조사에 대 한 격리 유두 근육의 수축력 측정

이 문서에서는 랑겐 돌프 - 관류 토끼 심장의 상세한 프로토콜과 횡단 전위 (V 분)의 이중 광학 매핑 및 무료 내 근질 세망 (SR)에 필요한 장비 칼슘을 설명합니다. 이 방법은 그대로 심장에 직접 관찰 및 V (M)의 정량 및 SR 칼슘 역학 수 있습니다.

인트라 근질 그물 자리 칼슘의 광학 매핑<sup&gt; 2 +</sup&gt;와 랑겐 돌프 - 관류 토끼 심장에 막 횡단 잠재력

이 프로토콜은 피부 심장 근구를 사용하여 심장 기능의 추출 및 평가 기술을 단계별로 설명하는 것을 목표로합니다. 이 방법론은 마우스에서 남성에 이르기까지 다른 심장 위치에서 수집 할 수있는 작은 냉동 생검을 사용하여 myofilament 기능의 측정 및 급성 변조를 허용합니다.

피부 심근세포를 이용한 심장 기능의 체외 평가

우리는 토끼 심근 세포에서 GtACR1 활성화의 전기 기계적 효과를 평가하기위한 프로토콜을 제시한다. 당사는 세포 격리, 배양 및 아데노바이러스 전이, 패치 클램프 및 탄소 섬유 기술로 기능적 실험에 대한 자세한 정보를 제공합니다.

광유전학적으로 변조된 심근세포 활동의 전기기계적 평가

여기에 제시 나노 뉴턴 해상도와 스트라이드 근육 myofibrils의 수축 특성을 평가하는 프로토콜입니다. 이 프로토콜은 간섭 계기반 광학 힘 프로브를 사용하여 설정을 사용합니다. 이 설정은 높은 신호 대 잡음 비율로 데이터를 생성하고 myofibrils의 수축 운동의 평가를 가능하게합니다.

골격 근육 생검에서 Myofibrils를 분리하고 나노 뉴턴 해상도 포스 트랜스듀서로 수축 기능을 결정합니다.

이 프로토콜은 적극적으로 수축심장 trabecula ex vivo에서sarcomere, 칼슘 및 거시적 기하학적 기하학적 데이터의 컬렉션을 제공합니다. 이러한 동시 측정은 세 가지 이미징 양식의 통합에 의해 가능하게됩니다.

동시 브라이트필드, 형광, 및 수축 심장 Trabeculae Ex Vivo의 광학 일관성 지형 이미징

분리된 쥐 근세포에서 칼슘(Ca 2+) 과도 측정과 함께 근절 길이 검출을 통한 수축 기능의 측정을 설명하는 일련의 프로토콜이 제시됩니다. 심부전 동물 모델에서의 연구에 대한이 접근법의 적용도 포함됩니다.

설치류 근육 세포에서 심장 수축 기능 장애 및Ca 2+ 과도 현상 분석

이 프로토콜은 전임상 개발 중 약물에 의한 수축성 변화를 평가하기 위한 신뢰할 수 있는 플랫폼인 MyoBLAZER 시스템을 사용하여 기증자 심장에서 성인 인간 원발성 심근세포의 수축성을 측정하는 방법을 설명합니다.

고립된 성인 인간 원발성 심근세포의 심장 수축성 측정

기능적 부위 지정 형광 측정법은 단백질 도메인 동작을 실시간으로 연구하는 방법입니다. 천연 세포에 적용하기 위해 이 기술을 수정하면 이제 쥐 격리 골격근 섬유의 전압 개폐 Ca2+ 채널에서 단일 전압 센서 동작을 감지하고 추적할 수 있습니다.

골격근 흥분성을 연구하기 위한 천연 세포의 기능적 부위 지정 형광 측정

학습하세요 심근세포의 myofilament Ca²⁺ 감도 평가 방법을 통해 심장 수축 메커니즘을 이해하세요. Fura-2 AM 형광 현미경법으로 흥분-수축 결합을 분석하고 심부전 및 고혈압에서의 기능 변화를 탐구합니다.

Myofilament 칼슘의 평가

더 많은 동영상 탐색