Name: 접근 방법은 등쪽 뿌리 신경절 뉴런의 정렬 및 수초를 강화하는 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 48 s
Description: 배우세요 등쪽 뿌리 신경절 뉴런의 축삭 정렬 및 수초 형성을 강화하는 정적 인장 배양 시스템을 이용한 방법입니다. 슈반 세포와의 공동 배양을 통해 신경 조직 공학 연구에 활용할 수 있습니다.

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저자는 PDMS 기판의 제조에 그의 도움을 에릭 바스 감사드립니다, 유용한 제안 및 DRG 분리의 훈련을위한 미시간 대학에서 박사 마리나 마타의 실험실에서 박사 Shiyong 왕, 박사 마크 Tuszynski 박사 . UC 샌디에고 W. 마리 캄파는 SC 격리를위한 유용한 제안 및 프로토콜. 이 연구는 국립 과학 재단 (CBET 0,941,055 및 CBET 1,510,895), 국립 보건 연구소 (R21CA176854, R01GM089866 및 R01EB014986)에 의해 부분적으로 지원되었다.

세포의 분리에 관한 모든 절차는 미시간 주립 대학에서 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. 사전 뻗어 이방성 표면의 1. 준비 <ol><li> 베이스와 경화제의 1 용액과 조직 배양 접시 (12cm 직경)로 혼합물을 부어 : 10을 섞는다. 4,900 mg의베이스와 총 가교 혼합물에 대한 경화제 490 mg을 사용합니다. </li><li> 기포를 제거하기 위해 20 분 동안 진공 하에서 겔 혼합물을 유지한다. </li><li> 60 ° C에서 밤새 경화 오븐에서 혼합 겔을 놓습니다. </li><li> PDMS의 막을 경화 한 후, 165 mTorr의 3 분의 2와 O 65 sccm의 흐름을위한 플라즈마 클리닝 / 에칭 시스템을 사용하여 산소 플라즈마로 표면을 처리한다. </li><li> 인식되는 것은 어느 쪽하는 산소 처리하는 동안, 접시에서 직사각형 막 (5 × 3.5 cm)의 조각을 잘라 확인 산소 처리 된면이 직면을하고 스트레칭 프레임에 고정합니다. A의 프레임을 배치<html> 무대를 스트레칭과 균등하게 10 % 신장에 도달 할 때까지 무대에 노브를 돌려 스트레칭 (또는 다른 미리 정해진 스트레칭, 신장 직접 연신 단계에서 읽을 수 있습니다) 긴 축 9. 프레임의 나사를 조여 스트레칭을 수정합니다. </li><li> 무대에서 프레임을 제거합니다. 막 표면이 건조하고 먼지가 무료입니다 확인 후 막에 단단히 부착 챔버의 접착면을 허용하는 막에 실리콘 실을 배치합니다. 주 : 실리콘 챔버는 PDMS 막에 셀 매체를 유지하기위한 우물을 제공한다. 장치 설계는도 1에 도시되어있다. </li><li> 10 분 동안 UV와 표면을 소독. </li><li> 추가 1 ml의 폴리 -L- 라이신 플라즈마 처리 6 시간 내에 상기 챔버 내부의 PDMS 표면 (PLL) (인산염 완충 염수 중 0.01 %), 37 ℃에서 2 시간 동안 부화 DRG 신경 세포를 파종 전에. 이 세포 부착을 향상시킵니다. </li></ol>DRG의 제작 &quot;&gt; 2. 격리 <ol><li> DRG 뉴런 표준 성장 매체를 준비합니다. </li><li> 단리하기 전에, 분리 장치 및 필터 시약 압력솥. 6 잘 플레이트 잘 하나에 분리 버퍼의 5 ML을 추가하고, 얼음에 플레이트를 놓습니다. 9 ml의 0.05 %의 트립신 - EDTA (1 ㎎ / ㎖)에 콜라게나 A (500 U / ㎖) 1 ㎖를 추가하여 해리 배지 10 ㎖를 준비 얼음에 0.22 μm의 필터와 장소 솔루션을 필터링 할 수 있습니다. </li><li> 절연 7 일 &#39;된 흰쥐 - 열 다섯 열둘을 사용합니다. 75 % 이소프로판올 새끼 스프레이 및 잘린 희생. </li><li> 뒤쪽에서 척수를 덮는 피부를 절개하고 척추 주위에 초과 조직을 제거합니다. 에 수술 스폿 조명 수술 돋보기에서 한 컷 가위로 양쪽에서 척추를 따라 다음 목에서 첫 번째 절개를합니다. 새끼의 몸에서 척추를 분리하고 과도한 근육을 제거합니다. 그런 다음, 경도 따라 절단 가위를 사용척추와 사용 핀셋의 g 축이 완전히 척추를 열고 멸균 15 ML 튜브로 절연 버퍼와 DRGs를 전송하는 큰 구멍을 만드십시오 피펫에서 척추 cord.Remove에게 팁을 추출합니다. </li><li> 핀셋의 벌금 쌍을 사용하여 뼈 주머니에서 신경절을 제거하고 약 10 수집 - 양쪽에서 16 DRG를. 신경 뿌리를 손질하고 얼음처럼 차가운 분리 버퍼에 신경을 전송합니다. </li><li> 멸균 15 ML 튜브로 절연 버퍼와 DRGs를 전송하는 큰 구멍을 만드십시오 피펫에서 팁을 제거합니다. 화학 분리 한 후, 원심 분리기 900 XG에 5 분 동안 4 ℃에서 신경절. </li><li> 조직이 튜브 바닥에 침전 부드럽게 상부에 분리 완충액을 제거하고 분리 관에 배지 10 ㎖를 추가하자. </li><li> 10 분 - 튜브 매 5 진탕하면서 1 시간 동안 37 ° C의 물을 용기에 해리 배지에서 해부 조직을 인큐베이션. </li><li> 후화학 물질 분해, 원심 분리기 900 XG에 신경 및 5 분 동안 4 ° C. </li><li> 상층 액을 제거하고 10 ml의 표준 성장 미디어와 소용돌이의 펠렛을 다시 일시 중지합니다. </li><li> 다시 섹션 2.9에서 나타낸 바와 같이, 해리 된 세포를 원심 분리기. </li><li> , 상층 액을 제거 표준 성장 미디어와 소용돌이의 12 ml의의 펠렛을 다시 일시 중지합니다. </li></ol> 사전 뻗어 표면에 DRG 3. 문화 <ol><li> 세포를 시딩 챔버에서 PLL 용액을 제거하고 멸균 공기 건조하여 PDMS 표면을 린스하기 전에. </li><li> 2 분 파편이 튜브의 바닥에 정착 할 수 있도록 - 세포를 다시 일시 중단 후 1 서스펜션 설정을 할 수 있습니다. 각 스트레칭 챔버에 세포 현탁액의 1.5 ML을 추가하고 5 % CO 2에서 37 ° C에서 품어. </li><li> 10 μL (15 μL) 플루오로 -2- 데 옥시 우리 딘 및 우리 딘 (FDU-U) 주식의 soluti의 혼합물을 추가, 체외에서 일일 (DIV)에서, 아교 세포를 제거하려면(재료의 표 참조) 물론 각에. 7 시간 후, 신선한 표준 성장 매체와이 매체를 교체하고 5 % CO 2와 37 ° C 배양기에서 사전 뻗어 문화 장치를 배치합니다. </li><li> 세포 배양 기간 동안 (2 - 3 주), 신선한 배지로 절반을 보냈다 매체를 대체하여 매 2 일 매체를 변경합니다. 참고 : 2 주 동안 뻗어 미연 신 표면에 배양 한 후, 정제 SCS는 챔버에 추가되고 다른 주 (단계 4.7) 배양. </li></ol> 사전 뻗어 표면에 DRG 신경 세포와 슈반 세포 (희주)의 4. 공동 문화 <ol><li> 박사 캄파의 그룹 이전에 (15)에 의해 설명 된 바와 같이 희주를 분리합니다. <ol><li> 요약하면, 1 일 이전 강아지에서 희주을 격리 할 것. 수집하고 기계적으로 좌골 신경 화학적 (트립신 - EDTA와 콜라게나 A) 모두와 (18 게이지 바늘 / 10 ML의 주사기) 15 해리. </li><li> 폴리 D 라이신 (PDL) 공동으로 해리 세포를 시드5 % CO 2에서 37 ° C에서 ated T25 플라스크 문화. 5 일째에, 안티 네 1.1 항체 및 토끼 보체를 사용하여 항체의 선택을 통해 세포를 정제 및 통로 (2) 정제 된 세포를 계대 배양 - 둘 베코 변형 이글 중간 (DMEM), 10 % 소 태아 혈청을 함유 4. 배양 배지 (FBS) 1 % 페니실린 / 스트렙토 마이신 (펜 / 연쇄상 구균), 21 μg의 / ㎖ 소 뇌하수체는 (BPE)를 추출, 4 μM 포스 콜린. </li></ol></li><li> SCS에에서 배지를 제거하고 플라스크에 5 ml의 0.05 % 트립신 - EDTA를 추가합니다. 3 분 - 2 5 % CO 2에서 37 ° C에서 세포를 품어. </li><li> 들이 플라스크에서 올려이라면 참조 배지 5 ㎖를 추가하고, 플라스크 내의 세포와 혼합하여 10 배 대물 렌즈를 사용하여 광학 현미경으로 세포를 확인한다. </li><li> 200 XG에 15 ML의 원심 분리기 튜브와 원심 분리기에 세포 현탁액을 추가하고 5 분 동안 20 ° C. </li><li> 상층 액을 제거하고 7 ㎖의 표준 DRG 성장 의대에 펠렛을 재현 탁아이오와. </li><li> , 0.5 ml의 마이크로 원심 튜브에 세포 현탁액 10 μL을 트리 판 블루 10 μL와 혼합 한 다음, 10 배 대물 렌즈를 사용하여 광학 현미경 하에서 혈구를 이용하여 세포 수를 카운트. DRG 성장 배지를 첨가하여 5,000 ml의 세포의 세포 현탁액을 희석. </li><li> 연신 실에서 DRG 문화에서 매체의 0.5 ml의를 제거하고 DRG 문화에 SC 현탁액 0.5ml를 추가합니다. </li><li> 문화 37 ° C, 5 % CO 2. 변경에 일주에 대한 세포 미디어 DRG에 대한 새로운 표준 성장 매체와 반 동안 매체를 대체하여 이틀. 일주 공동 배양 한 후, 프로세스 면역 조직 화학 (10)에 의해 세포. </li></ol>

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저자는 공개할 이해 상충이 없습니다.

사전 뻗어 표면에 축삭 배향을 유도하기 위해 두 가지 중요한 단계가 있습니다 : 1) PDMS 막을와 균일 한 두께의 평면이어야합니다 2) 신경 교세포가 DRG로부터 제거되어야한다. PDMS의 가교제와 혼합하고 오븐에서 경화 후, PDMS 가교 겔 평평한 작업대 위에 보관 및 틸팅을 피하기 위해주의 깊게 취급되어야한다. 플라즈마 처리 후 (세포 부착을 위해 요구되는) 표면의 친수성이 시간에 감쇠 이후 PDMS 막의 산소 플라즈마 처리는 PLL 코팅 법에 의해 6 시간 내에 따라야한다. 플라즈마 처리는 상기 멤브레인의 한쪽면에 도포되어 있기 때문에, 관리는 플라즈마 처리 된 표면에 세포가 위로 향하게한다, 즉, 상기 프레임에 배치되는 올바른 쪽을 위해 접시 오프 PDMS 박리 후에 수행해야 에 연결합니다. DRGs는 척추와 함께 정렬 뼈 포켓 내부에 있습니다. 척추의 색은 흰색이므로젊은 새끼, 상기 척추로부터 DRGs를 구별하기 어렵다. 이 경우에는, 스폿 광에 가까운 척추를 ...

신경 손상에서, 근위 및 원위 신경 그루터기는 종종 인해 병변 사이트에 1-2로 신경 다발의 직접 재배치 방지 할 수있다. 일반적으로, 축삭 책자는 연결의 복잡한 네트워크를 형성 축삭의 높은 순서 정렬 번들로 구성된다. 그러나, 신경 재생이 제대로 구성 축삭 정렬 3-4으로 인해 혼란스러운 과정이다. 따라서, 병변 부위를 해소 축삭 재생의 충분한 수를 생성하는 것이 아니라 축삭 조직 배향을 유도 할 필요가있다. 또한, 탈수 초화는 부상 사이트에서 myelinating 세포의 죽음으로 인한 신경 손상을 수반. 탈수 초화가 강하게 축삭 생존의 도전 능력을 손상 때문에, 탈수 초화를 대상으로 또는 재유 수화를 촉진 치료는 신경 손상 (5) 후 기능 회복을 위해 중요하다. 따라서이 프로토콜의 목적은 두 가지 문제를 해결하는 설계 방법을 예시하는 것이다신경 재생의. 재료의 물리적, 기계적 성질, 상이한 축을 따라 측정 할 때의 차이로 정의되는 표면 이방성은 셀의 배향의 성장 및 이동 6-7 영향을인가하고있다. 지형뿐만 아니라, 이방성을 유도하는 다른 방법이있다. 이전에, 우리는 폴리 디메틸 실록산 (PDMS) 멤브레인의 기계적 정적 사전 스트레치에 의해 유도 된 표면 이방성을 조사 하였다. &quot;큰 부과 작은 변형 SUPER&quot;이론은 세포가 연신 방향 감지 유효 강성은 수직 방향과 다른 것을 예측하고 효과적인 강성 차이는 이방성 8면에 기인한다. 미리 연신 PDMS 막에서 배양 된 중간 엽 줄기 세포 (MSC들)을 적극적 표면 당겨 그 결과 이방성을 감지 전 연신 방향 (9)으로 정렬 할 수있다. 마찬가지로, 이방성 표면 AR기계 사전 뻗어면에서 유망한 것은 후근 신경절의 정렬뿐만 아니라 성장과 수초 (DRG) 10 축삭에 영향을 미칩니다. 여기에서 우리는 축삭 재생 (10)을 향상시키기 위해 정적 사전 뻗어 PDMS 기판에 표면 이방성을 유도하기위한 프로토콜을 제공합니다. 축삭 정렬, 원하는 패턴 위상 기능을 유도하기 위해 정렬 섬유 및 채널 6,11-12를 통해 연락처 지침을 제공하는 것으로보고, 축삭 정렬 11,13을 용이하게 입증되었다. 그러나, 섬유, 채널 및 패턴 등의 위상 기능을 통해 축삭 정렬을 유도하는 기술을보고, 길게과 축삭의 두께를 증가 할 수 없습니다. 반면에, 기계는 점진적 스트레치 (14)의 크기를 증가 길고 두꺼운 축색과 스트레칭 방향으로 정렬 축삭 연신되었다. 그러나, 생체 내에서 모터 구동 장치를 포함하는 것은 아니다실행할 수 있는. 반대로, 정적 프리 연신 유도 이방성은 덜 복잡하고보다 용이하게 생체 내 응용 프로그램의 장래 지지체 디자인에 혼입 될 수있다. 이 프로토콜에서, 고정 전 신장 세포 배양 시스템은 위상 기능이없는 표면 이방성을 유도하기 위해 사용된다. 막 프레임 상에 고정되고 소정의 스트레칭 정도는 연신 단계에 적용 그러자 예비 연신 배양 시스템하는 PDMS 막, 신축성 프레임 및 연신 단계로 구성된다. 최대 21 일간 전 배양 연신 표면에 갓 절연 DRG 신경 세포 축삭 정렬 및 두께에 대해 모니터링된다. 그 후, 슈반 세포 (희주) 수초에 대한 모니터링 정렬 된 축삭와 공동 배양. 사전 스트레칭에 의한 표면 이방성을 통합함으로써 우리는 중간 엽 줄기 세포 및 DRG 뉴런 각각 9 ~ 10의 세포 정렬 분화 및 축삭 정렬 성장을 향상 할 수 있었다.

<table><tbody><tr><td>Neurobasal 매체 1x</td><td>GibcoBRL</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>B27 보충제 50x</td><td>GibcoBRL</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>Glutamax-I 100x</td><td>GibcoBRL</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Albumax-I</td><td>GibcoBRL</td><td>11020-021</td><td></td></tr><tr><td>신경 성장 인자 -7S</td><td>Invitrogen</td><td>13290-010</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신</td><td>GibcoBRL</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>0.05% 트립신-EDTA/1 mM EDTA</td><td>GibcoBRL</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>폴리-L-라이신</td><td>트레비젠</td><td><a href="http://www.trevigen.com/item/2/7/64/220/Cultrex_PolyLLysine/">3438-100-01</a></td><td></td></tr><tr><td>Poly-D-Lysine</td><td>Sigma</td><td>p-6407</td><td></td></tr><tr><td>플루오로-2 데옥시-우리딘</td><td>Sigma</td><td>F0503</td><td></td></tr><tr><td>우리딘</td><td>시그마</td><td>U3003</td><td></td></tr><tr><td>행크 s Balanced Salt Solution (HBSS)</td><td>Invitrogen</td><td>14170-112</td><td>Isolation Buffer</td></tr><tr><td>Type I Collagenase</td><td>Worthington</td><td>LS004196</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Gibco</td><td>11885</td><td></td></tr><tr><td>Heat inactivated Fetal Bovine Serum</td><td>Hyclone</td><td>SH30080.03</td><td></td></tr><tr><td>BPE</td><td>Clonetics</td><td>CC-4009</td><td></td></tr><tr><td>Forskolin</td><td>Calbiochem</td><td>344270</td><td></td></tr><tr><td>실리콘 챔버</td><td>Greiner bio-one</td><td>FlexiPERM ConA</td><td></td></tr><tr><td>플라즈마 세척/에칭 시스템</td><td>March Instruments</td><td>PX-250</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Thy 1.1 항체</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>M7898</td><td></td></tr><tr><td>Rabbit Complement</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>S-7764</td><td></td></tr><tr><td>표준 성장 배지</td><td></td><td></td><td>500ml Neurobasal Medium 1x의 경우 B-27 50x 10ml, Glutamax-I 100x 5ml, 페니실린/스트렙토마이신(Penn/Strep) 2.5ml, Albumax-I 1ml 및 1&mu를 추가합니다. NGF의 l-- 7S (50 &mu; g/ml)입니다.</td></tr><tr><td>FDU 우리딘 원액</td><td></td><td></td><td>FDU 100 ml의 ddH2O (10 mg/ml)의 10 ml, 후드에 여과하고 500 &mu로 나눕니다. l 분취량은 -20 &ordm;C. Uridine 5g에서 166.7 ml의 ddH2O (33 mg/ml)에 저장하고, 후드에 필터, 200 &mu로 나눕니다. l 부분 표본 및 -20 &ordm;C에 보관합니다.
테이크 61.5 &mu; FDU (10 mg/ml) 및 20.5 &mu의 l; 우리딘 (33 mg / ml)의 l, 4,918 &mu를 추가하십시오. l의 ddH2O를 최종 재고 농도로 계산한 다음 1ml 분취량으로 나누어 -20 &ordm;C에서 보관합니다.</td></tr></tbody></table>

접근 방법은 등쪽 뿌리 신경절 뉴런의 정렬 및 수초를 강화하는

An Approach to Enhance Alignment and Myelination of Dorsal Root Ganglion Neurons

축삭 재생은 주로 조직화되지 않은 축삭 정렬로 인한 혼란스러운 과정입니다. 따라서 충분한 수의 재생된 축삭이 병변 부위를 연결하기 위해서는 적절하게 조직된 축삭 정렬이 필요합니다. 신경 손상 후 탈수초는 살아남은 축삭돌기의 전도 능력을 크게 손상시키기 때문에 재생된 신경의 성공적인 기능을 위해서는 재수초화가 중요합니다. 이전에는 중간엽 줄기세포(MSC)가 사전 스트레치 유도 이방성 표면에 정렬된 것을 입증했는데, 이는 세포가 수직 방향보다 늘어난 방향에서 더 큰 유효 강성을 감지할 수 있기 때문입니다. 우리는 또한 기계적으로 미리 늘어난 표면에서 발생하는 이방성 표면이 정렬뿐만 아니라 축삭의 성장 및 수초화에 유사하게 영향을 미친다는 것을 보여주었습니다. 여기에서는 사전 연신된 이방성 표면을 준비하기 위한 자세한 프로토콜, 사전 연신된 표면에서 등뿌리 신경절(DRG) 뉴런의 분리 및 배양을 제공하고, 사전 연신된 표면에서 DRG 뉴런과 슈반 세포(SC)의 공동 배양의 수초화 거동을 보여줍니다.

사전 신장 세포 배양 시스템 DRG 축삭 배향 (10)을 추진. DRG 뉴런 12 일 동안 사전 뻗어 미연 신 표면에 배양 하였다. 축삭은 정렬을 입증하는 β-III-tubulin에 대한 염색 하였다. (2) 문화의 12 일 후 사전 뻗어 미연 신 PDMS 기판에 축삭 방향을 비교 한 그림. 그들은 임의의 배향을 보여 미연 신 PDMS 기판상의 상호 연결된 네트워크를 형성하는 반면, DRG 축삭은 연신 방향에 평행하게 정렬. 축삭 배향을 유도하는 것 외에도 미리 스트레칭 유도 이방성 축삭의 속상 향상. 연결된 축삭 네트워크에서 차이가 연신 표면에 형성 축삭 번들에 정렬 된 축삭은 미연 신 표면에서 관찰. 사전 뻗어 표면이 fascicular 번들은 신경 조직의 TR을 닮은에...

이 프로토콜은 랫트에서 분리된 등뿌리 신경절(DRG) 뉴런의 분리와 축삭 정렬을 향상시키기 위한 정적 사전 스트레치 세포 배양 시스템에서 DRG 뉴런의 배양을 설명하며, 이후 슈반 세포(SC)의 공동 배양은 수초화를 촉진합니다.

Axon regeneration is a chaotic process due largely to unorganized axon alignment. Therefore, in order for a sufficient number of regenerated axons to ...

이 프로토콜의 전반적인 목표는 정적 사전 신장(pre-stretched) 세포 배양 시스템을 사용하여 등쪽뿌리신경절(dorsal root ganglion) 뉴런의 축삭 정렬과 수초화를 향상시키는 것입니다. 이 방법은 축삭의 정렬 및 두께 성장과 같이 신경 조직 공학 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 이러한 사전 신장 방법이 축삭 정렬을 향상시킬 뿐만 아니라 수초화를 촉진한다는 점입니다.이 절차를 시작하려면, 염기와 경화제 혼합물을 조직 배양 접시에 붓습니다. 기포를 제거하기 위해 겔 혼합물을 20분 동안 진공 상태로 유지합니다. 그런 다음, 겔 혼합물을 60 °C의 오븐에 넣어 하룻밤 동안 경화시킵니다.PDMS 막이 경화된 후, 플라스마 세정 및 식각 시스템을 사용하여 표면을 3분 동안 산소 플라스마로 처리합니다. 그 다음, 디시에서 직사각형 모양의 막 조각을 잘라냅니다. 이를 산소 처리된 면이 위를 향하도록 신축 프레임에 고정합니다.그 다음 프레임을 신장 스테이지 위에 놓고, 긴 축 방향으로 10% 신장률에 도달할 때까지 스테이지의 노브를 돌려 고르게 늘립니다. 이어서 프레임의 나사를 조여 신장 상태를 고정합니다. 그 후 스테이지에서 프레임을 분리합니다.실리콘 챔버를 멤브레인 위에 올리기 전에 멤브레인 표면이 건조하고 먼지가 없는지 확인하십시오. 챔버의 접착면이 멤브레인에 단단히 부착되도록 합니다. 그 다음 UV를 사용하여 표면을 10분 동안 멸균합니다.그 후, 플라스마 처리 후 6시간 이내에 1 mL의 PLL을 챔버 내 PDMS 표면에 첨가합니다. 다음으로, 세포 부착을 강화하기 위해 DRG 뉴런을 분주하기 전 37 °C에서 2시간 동안 배양합니다. 이 단계에서 DRG 뉴런을 위한 표준 성장 배지를 준비합니다.분리 전, 분리 장비와 필터 시약을 오토클레이브하여 멸균합니다. 6-웰 플레이트의 한 웰에 분리 버퍼 5 mL를 넣고 플레이트를 얼음 위에 둡니다. 그다지 0.05% Trypsin-EDTA 9 mL에 collagenase A 1 mL를 추가하여 해리 배지 10 mL를 준비합니다.용액을 0.22 micrometer 필터로 여과한 후 얼음에 보관하십시오. 그 후, 5~7일 된 SD 랫 10~12마리를 희생시키고 각 개체의 등 쪽에서 척수를 덮고 있는 피부를 절개하여 제거합니다. 척수 주변의 불필요한 조직을 모두 제거하십시오.수술용 확대경 하에서 목 부분부터 첫 절개를 가한 다음, 가위를 사용하여 척추 양측을 따라 각각 한 번씩 절개합니다. 강아지의 몸체에서 척추를 분리하고 과도한 근육을 제거합니다. 그런 다음 척추의 장축을 따라 절개하고 핀셋을 사용하여 척추를 완전히 열어 척수를 추출합니다.다음으로, 골포켓에서 신경절을 제거합니다. 신경근을 다듬고 신경절을 얼음처럼 차가운 분리 완충액으로 옮깁니다. 양측에서 약 10~16개의 DRG를 수집합니다.나머지 새끼 쥐들에 대해서도 동일한 해부 절차를 반복합니다. 이제, 분리 버퍼가 담긴 DRG를 멸균된 15-milliliter 튜브로 옮깁니다. 조직이 튜브 바닥에 가라앉을 때까지 기다린 후, 상층의 분리 버퍼를 조심스럽게 제거합니다.그런 다음 튜브에 해리 배지 10 milliliters를 추가합니다. 5분에서 10분마다 튜브를 흔들어주면서, 적출된 조직을 해리 배지에 넣고 37-degree Celsius 항온수조에서 1시간 동안 배양합니다. 화학적 해리가 완료되면, 신경절을 4-degree Celsius에서 5분 동안 원심 분리합니다.5분 후, 상층액을 제거하고 펠렛을 10 milliliters의 표준 성장 배지에 재현탁한 후 볼텍싱합니다. 그 후, 분리된 세포를 다시 한 번 원심분리합니다. 이어서 상층액을 제거하고 펠렛을 12 milliliters의 표준 성장 배지에 재현탁한 후 볼텍싱합니다.세포를 파종하기 전에 챔버에서 PLL 용액을 제거합니다. PDMS 표면을 멸균수로 헹구고 공기 중에서 건조시킵니다. 세포를 재부유시킨 후, 부유액을 1~2분 동안 그대로 두어 잔해물이 튜브 바닥에 가라앉도록 합니다.다음으로, 각 신장 챔버에 세포 현탁액 1.5 milliliters를 넣고 37 degrees Celsius, 5%CO2 조건에서 배양합니다. in vitro 배양 1일 차에 글리아 세포를 제거하기 위해, 각 웰에 FDU-U 혼합물 스톡 용액 10 microliters 또는 15 microliters를 첨가합니다. 7시간 후, 이 배지를 신선한 표준 성장 배지로 교체하고 사전 신장된 배양 장치를 37-degree Celsius, 5%CO2 인큐베이터에 넣습니다.세포 배양 기간 동안, 소모된 배지의 절반을 새 배지로 교체하여 2일마다 배지를 갈아줍니다. 이 과정에서 Schwann 세포로부터 배양 배지를 제거하고 0.05% Trypsin-EDTA 5mL를 플라스크에 첨가합니다. 세포를 37°C, 5% CO2 조건에서 2~3분 동안 배양합니다.10X 대물렌즈를 사용해 광학 현미경으로 세포가 플라스크에서 떨어졌는지 확인합니다. 그런 다음 플라스크 내의 세포에 배지 5 mL를 첨가하고 혼합합니다. 이어서, 세포 현탁액을 15 mL 원심분리관에 옮기고 20 °C에서 5분 동안 원심분리합니다.그런 다음 상층액을 제거하고 펠릿을 7 mL의 표준 DRG 성장 배지로 재부유시킵니다. 이어서, 세포 현탁액 10 µL를 0.5 mL 마이크로원심분리 튜브에 옮깁니다. 이를 Trypan blue 10 µL와 혼합한 후, 10X 대물렌즈를 사용하여 혈구계수기로 세포 수를 측정합니다.DRG 성장 배지를 첨가하여 세포 현탁액을 밀리리터당 5,000 cells로 희석합니다. 다음으로, 연신 챔버 내의 DRG 배양액에서 0.5 milliliters의 배지를 제거하고, 0.5 milliliters의 슈반 세포 현탁액을 DRG 배양액에 첨가합니다. 세포를 37 °C, 5% CO2 조건에서 일주일 동안 배양합니다.이틀마다 사용한 배지의 절반을 신선한 표준 성장 배지로 교체하여 배지를 변경합니다. 신장된 표면과 신장되지 않은 표면에서 2주 동안 배양한 후, 정제된 Schwann 세포를 챔버에 추가하고 일주일 더 배양했습니다. 여기에는 신장된 표면의 axon에 대한 beta-III tubulin 염색 결과가 나와 있습니다.이것은 신장된 표면에서 beta-III tubulin과 P0 염색을 중첩한 이미지로, 슈반 세포가 축삭에 부착되어 있으며 수초화가 진행 중일 가능성을 시사합니다. 이 이미지는 신장되지 않은 표면에서 축삭에 대한 beta-III tubulin 염색 결과를 보여줍니다. 또한 신장되지 않은 표면에서 beta-III tubulin과 P0 염색을 중첩한 결과는 슈반 세포가 축삭에 부착되지 않았음을 시사합니다.이 기술을 숙달하면 적절하게 수행했을 때 3~4시간 내에 완료할 수 있습니다. 이 절차를 시도할 때는 PDMS 막을 평평하게 유지하고 두께를 균일하게 만드는 것이 중요합니다. 이 절차 이후에는 축삭 렌즈 및 슈반 세포 이동과 같은 추가적인 질문에 답하기 위해 사전 신장된 미세유체 채널과 같은 원자화 장치를 수행할 수 있습니다.이 기술이 개발되면, 조직 공학 분야의 연구자들이 척수 및 좌골 신경의 신경 재생에서 표면 이방성의 역할을 탐구할 수 있는 길이 열릴 것입니다. 이 영상을 시청하고 나면, 사전 신장 장치를 사용하여 축삭 정렬 및 수초화를 유도하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

여기서 우리는 지느러미 루트 신경의 culturing 감각 뉴런에 compartmented 회의소 준​​비 및 유지 관리의 기법을 설명합니다.

Compartmented 문화의 도설 루트 신경의 뉴런의 준비 및 유지 관리

교양 성인 지느러미 루트 신경절의 신경 세포와 축삭 재생의 유전 연구

이 비디오는 배측근신경절(DRG) 뉴런과 슈반 세포의 공동 배양을 보여줍니다. DRG 뉴런은 정렬된 축삭 성장을 위해 미리 늘어난 막에서 먼저 성장합니다. 그런 다음 슈반 세포(Schwann cell)를 도입하여 축삭돌기에 부착하여 축삭을 절연하고 신경 세포의 생존과 기능을 촉진합니다.

Pre-Stretched Membrane에서 Schwann 세포와 DRG 뉴런의 공동 배양

이 비디오는 면역을 통해 등쪽 신경절의 신경 배양을 풍부하게 하여 신경학 연구를 위한 순도와 유용성을 향상시키는 프로토콜을 보여줍니다.

Immunopanning에 의한 등뿌리 신경절의 신경 농축

이 비디오는 등쪽 뿌리 신경절 이식과 슈반 세포의 공동 배양 모델을 보여줍니다. 공동 배양 조건에서 아스코르브산은 슈반 세포가 수초화 형태로 분화되는 것을 촉진합니다. 슈반(Schwann) 세포는 축삭돌기를 여러 번 감싸 신경 기능에 필수적인 미엘린 수초(myelin sheath)를 만듭니다.

Neuron Myelination을 위한 Schwann Cells와 Dorsal Root Ganglion Explant의 공동 배양

출처: Li, Q. et al. 포유류 축삭 재생 조사: 성체 마우스 후근 신경절의 생체 내 전기천공. J. Vis. 경험. (2018년)이 비디오는 축삭 재생을 연구하기 위해 마우스 DRG 뉴런의 전기천공 매개 형질감염을 보여줍니다. DRG 뉴런에 핵산 구조물을 전달하고, 좌골 신경 손상을 유도하고, 축삭 재생을 평가하는 단계를 간략하게 설명합니다.

감각 축삭 재생을 촉진하기 위한 마우스 등근 신경절의 전기천공 매개 형질감염

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루트 신경절 신경 세포와 차별화 된 지방 유래 줄기 세포를 이룬다 :<em&gt; 체외</em&gt; 공동 문화 모델은 주변 신경 재생을 연구하는

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접근 방법은 등쪽 뿌리 신경절 뉴런의 정렬 및 수초를 강화하는

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