Name: 사용 환경 샘플에서 새로운 Faustoviruses의 분리에 대한 신속한 전략 Vermamoeba의 vermiformis (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 27 s
Description: 학습하세요 Vermamoeba vermiformis를 이용한 Faustovirus 신속 분리 전략으로, 대형 바이러스 고립을 위한 flow-cytometry 기반 검출법을 활용합니다. 이 방법은 바이러스 용해를 더 민감하게 탐지하여 새로운 바이러스 계통 연구에 기여합니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

저자는 인정할 말이 없습니다.

1. 샘플 컬렉션 <ol><li> 서로 다른 환경과 지역의 70 샘플을 수집합니다. 세인트 피에르 드 Meyzoargues (프랑스), 마르세유 (프랑스) 파크 Borély의 호수에서 15 샘플의 마을에서 5 더러운 물 샘플,이 경우, 다음을 사용 (15) 바다 물 25 강 물 샘플 알프스 (프랑스)에서 마르세유 Samena (프랑스)에서 바위 입구에서 퇴적물과 샘플, 그리고 마지막으로, 라 시오타의 하수에서 10 샘플 (프랑스). </li><li> 어떠한 처리없이 실온에서 1 분 동안, 접종 전에 균질화 소용돌이 샘플. </li></ol> 2. 격리 절차 <ol><li> 블라인드 문화 절차 및 샘플 예방 접종에 대한 준비 호스트 <ol><li> 사용 V. 공동 배양을위한 세포 지원과 같은 vermiformis (주 CDC19). </li><li> (프로테아제 - 펩톤 - 효모 추출물 포도당 매체의 30ml를 가진 75cm 2 세포 배양 플라스크에, PY를 28 ° C에서 아메바를 유지지). 표 1에 PYG 구성을 확인하시기 바랍니다. 참고 : 48 시간 후, 아메바는 정상적인 카운트하여 카운트 슬라이드 (예 Kovaslides)에 의해 정량화된다. </li><li> 10 분 동안 720 × g으로 원심 분리하여 5 × 5 6 세포 / ㎖, 펠렛 아메바 (10)의 농도로 세포를 수확. </li><li> 흡인에 의해 뜨는을 제거하고 멸균 페이지의 amoebal 식염수 (PAS) 표 1의 30 ml의에서 아메바 펠렛을 다시 일시 중지합니다.이 세정 절차를 반복합니다. </li><li> 약 106 아메바 / ml의 농도의 항생제 및 항진균제 혼합물 기아 배지 30 ㎖에서 아메바를 다시 일시. 기아 매체는 encystment 또는 곱셈없이 살아 남기 위해 그것을 가능하게하는 아메바에 대한 생존 매체입니다. 표 1의 구성을 확인합니다. 주 : 항균제 혼합물은 10 μg의 / ㎖ 반코마이신 10 μg의 / ㎖ 이미페넴, 20 μg의 / ㎖ 시프로플록사신, 20 μ 포함g / ㎖ 독시사이클린, 20 μg의 / ㎖ 보리 코나 졸. 이 조합은 감소 또는 바이러스 증식을 변경할 수 있습니다 세균과 곰팡이 오염을 줄이기 위해 봉사했다. </li><li> 직접 습한 환경이 포함 된 가방 안에 젖은 압축을 배치하는 구성 (아메바의 준수를 선호하는 96 웰 플레이트 평평한 바닥에 200 μL의 아메바 단일 층에 각 샘플의 25 μl를 접종하고 습한 환경에서 30 ° C에서 부화 )의 증발을 방지하기 위해 판. 이 프리모 문화입니다. 모든 샘플 접종없이 아메바의 두 우물을 남겨; 이는 음성 대조군으로 작용한다. 사흘 동안이 프리모 문화를 품어. </li><li> 사흘 첫 번째 접종, 하위 문화 모든 현미경 관찰하지 않고 상기 한 바와 같이 신선한 아메바에 프리모 문화 판 후. 프리모 배양과 동일한 조건 하에서 3 일 동안 새로운 플레이트를 인큐베이션. </li><li> 배양이 세 번째 일 후와 동일한 방법으로 최종 배양을 수행전자 primo- 및 하위 문화. 이틀 동안 최종 문화를 품어. 그런 다음 검출로 진행합니다. </li></ol></li><li> 자동 유동 세포 계측법에 의해 용해의 검출 참고 : 흐름과 함께 시각 장애인의 문화는 세포 계측법 분리의 이전 표준 시스템 다르다. 그것은 더 민감한 정밀하고 자동화합니다. 검출 목적을 위해, 우리는 높은 속도 및 현미경 관찰없이 용해를 검출하기 위해 개발 된 새로운 기술을 적용 하였다. 이 기술은 검사 샘플 유리하고 이전 기술보다 더 나은 감도를 가지고있다. 7-9 <ol><li> 용해를 검출하는 최종 공동 배양 96 웰 플레이트를 사용한다. </li><li> 세포 계측기의 전원을 켜고 제조 업체의 프로토콜에 따라 낮은 소음을 얻기 위해 깨끗하고 세정주기를 실행합니다. </li><li> 높은 처리량 샘플러 사이토 자동으로 96 웰 플레이트에서 샘플을로드하고 accordin 40 분 이내에 완전히 자동화 된 수집을 수행하는 흐름과 결합 (HTS)을 실행제조 업체의 프로토콜 g. </li><li> 다음과 같이 HTS를 설정 : 샘플 볼륨을 150 μl를, 볼륨 50 μl를 혼합 속도 (180), 혼합 (5)의 수를 혼합, 각 시료 400 ㎕를 사이에 세척 볼륨, 속도 2.5 μL / 초, 기록 된 이벤트 만의 수를 흐른다. </li><li> 게이트에 제 위해 아메바 인구 최종 공동 배양 마이크로 플레이트의 음성 대조군 웰을 평가하고 그 물리적 특성에 따라 이러한 셀 호스트의 비율을 결정한다. 균일 한 아메바 인구와 파편과 소음에 해당하는 낮은 이벤트의 두 번째 인구를 가지고해야합니다. 참고 :이 게이팅 절차는 앞으로 산란에 의해 예상 크기에 의해 하나의 세포에서 세포 내 파편과 덩어리를 구분합니다. 정확하게 최상의 게이팅 방법을 이용하여 각각의 인구의 비율을 결정하는 것이 중요하다. 이 비율은 원생 동물의 많은 유형을 사용하는 경우 특히, 다를 수 있습니다, 그래서 그것은 negativ을 가지고 항상 중요하다샘플의 나머지 기준 인구로서 사용될 수있는 전자 제어. </li><li> 취득 샘플을 클릭하여 게이트를 시작합니다. </li><li> 10,000 건의 이상 이벤트의 수를 기록한다. </li><li> 화살표를 사용하여 관심있는 아메바 인구 지역화. 이 문을 정의하는 방법이다. </li><li> 자동으로 전체 판을 실행 게이팅 후, HTS의 자리를하자 또는 &#39;홈&#39;을 클릭하여 플레이트를 찾습니다. 크기와 구조 매개 변수에 따라 데이터 수집 및 분석을 수행 (각각, FSC (전방 산란)와 SSC (사이드 분산)). 참고 : 아메바 - 게이트 인구의 손실을 감지하는 아메바 용해에 대한 책임 병원성 에이전트의 존재를 알립니다. 바이러스 감염과 연관된 원충 용해 분석기에 의해 게이트와 신뢰성있는 음성 대조군으로 사용 된 것과 같은 비 - 감염된 인구 비교 아메바 인구의 50 %를 용해하는 임의로 설계 임계 값이 검출된다. </li></ol></li></ol><p클래스 = &quot;jove_title&quot;&gt; 3. 용해 감지 후 새로운 균주 특성 <ol><li> 예비 염색 자이언트 바이러스의 존재를 공개 <ol><li> 유동 세포 계측법에 의해 용해 감지 한 후, 나머지 아메바을 중단하는 용해 공동 문화를 피펫. 그런 다음 직접 10 분 동안 800 XG에서 현탁액의 50 μl를 cytocentrifuge. </li><li> 원심 분리 후, 순수 메탄올 용액과 슬라이드를 고정한다. 블루 에오신 / 아주르 및 DAPI 염색 상업적 빠른 염색을 이용하여 슬라이드를 얼룩과 바이러스 공장의 존재를 확인하기 위해 1000 배의 배율에서의 광학 현미경 하에서 관찰한다. <ol><li> 빠른 염색 들어, 제 에오신 용액에 슬라이드를 뛰어 후 인산 완충 용액으로 45 초 동안 슬라이드 린스 마지막 6 초 블루 아주르를 포함하는 제 2 고정 용액에 슬라이드 급락에 직접 전달하고, (4 초간 3 회 반복) pH가 7.2. 다음 observati로 진행, 실온에서 건조 슬라이드를 남겨주세요에. </li><li> DAPI 염색, 보증금 고정 건조 슬라이드 상에 DAPI 상업 원액의 15 μl를하십시오. 빛으로부터 보호는 관찰로 진행합니다. </li></ol></li></ol></li><li> 전자 현미경 <ol><li> 슬라이드의 제 1 식별 한 후, 배양 상청을 전자 현미경으로 관찰 거대 바이러스의 존재를 평가한다. </li><li> 예금 글로우 방전 그리드 상에 긍정적 인 샘플의 5 μL. 실온에서 약 20 분 동안 기다립니다. </li><li> 거기에 10 초 동안 1 %의 몰리브덴 산 암모늄의 작은 방울을주의 깊게 그리드와 보증금을 건조시킵니다. 5 분 동안 건조 그리드를 남겨주세요. </li><li> 200 keV의에서 현미경을 전자로 이동합니다. </li><li> 홀더에 그리드를 배치; 현미경으로 홀더를 소개합니다. 해당 아이콘을 클릭하여 진공 개요를 확인합니다. 닫기 밸브는 스폿 사이즈 5에서 관찰을 시작하고, X 25,000의 배율. </li><li> ImageJ에 또는 직접를 사용하여 거대한 바이러스를 측정취득 화면에있는 현미경의 측정 도구를 사용하여 현미경 LY. 주 : 약 200 nm의 캡시드 크기로 Faustovirus 그룹으로 샘플을 분류. </li></ol></li><li> 분자 생물학 주 :이 확인 후, 분자 생물학 시험 전자 현미경 하에서 동일한 캡시드의 크기 및 모양을 갖는다 Marseillevirus에서 Faustovirus를 구별하기 위해 확인에 중요한 있었다 동일한 호스트 특이성을 갖고 있지 않는다. Marseillevirus이 Vermamoeba에 성장하지 수 있으며, Faustovirus이 Vermamoeba 날짜에 실패 같은 가시 아메바와 같은 다른 아메바에 성장하는 모든 시도에 따라 다릅니다. 설계 및 Reteno 등의 작품에 나열된 특정 프라이머 / 프로브 시스템의 응용 프로그램입니다. 바이러스 유전자의 증폭 및 염기 서열을 통해 새롭게 절연 바이러스보다 정확한 예비 분류 할 수 있었다. <ol><li> 전의제조사의 프로토콜에 따라 자동 추출 시스템을 사용하여 배양 양성 샘플에서 요로 DNA. </li><li> Reteno 등의 설명에 따라 PCR은 열 순환기를 사용하여 실시간을 수행합니다. 19 </li><li> 증폭에 사용 된 동일한 프라이머를 사용하여 시퀀스. DNA 지시 RNA 폴리머 라제 서브 유닛 1 유전자를 대상으로 프라이머를 사용 Fstv_S2F 5&#39;-CCA GGA의 CAT GAT GGT CAC ATA G-3 &#39;(앞으로) 및 Fstv_S2R 5&#39;-TTG CAC CTC CGC는 AGT TAA A-3&#39;(역)와 Fstv_S2P FAM-TATGCTCCAATGGCCTTCAACGACA-TAMRA 프로브. </li></ol></li></ol> 4. 바이러스 생산, 정제 및 게놈 시퀀싱 <ol><li> 엔드 포인트 희석 복제에 대한 하나의 바이러스 아메바 문화를 배양. </li><li> 제조 : PYG 30 ㎖, 10 Vermamoeba의 vermiformis ㎖의 이미 작은 플라스크에 웰로부터 전송 절연 바이러스 5 ㎖를 함유하는 20 플라스크를 준비한다. </li><li> 완료 될 때까지 30 ° C에서 품어아메바의 용해. 모든 아메바가 용해 될 때까지 거꾸로 광학 현미경으로 매일 관찰한다. </li><li> 완전 용해 후,받는 사람에 모든 플라스크를 풀. 파편을 제거하기 위해 0.45 μm의 필터로 필터링. </li><li> 75 분 동안 89,800 XG에서 초 원심 분리하여 정제를 시작합니다. 원심 분리를 시작하기 전에 튜브의 무게를 조정해야합니다. </li><li> 원심 분리 후, 흡인 각 튜브의 상등액을 제거하고 원심 분리를 반복하기 전에, 보정에 사용 된 것과 동일한 부피 PAS의 펠릿을 다시 일시. </li><li> 이와 같이, 상층 액을 제거하고 인산 완충 식염수 1 ㎖ (PBS)의 모든 펠릿을 다시 일시. </li><li> (0.22 μm의 필터로 여과 PBS 100ml에 수크로오스 27.5 g)의 25 % 슈 크로스를 이용하여 생성 된 바이러스를 정제. <ol><li> 자당의 8 mL 및 바이러스 현탁액 2 ㎖를 사용합니다. 1 시간 15 분 동안 89,800 XG에 원심 분리기. PBS 1 ㎖에 펠릿을 다시 일시. -80 ° C에서 보관하십시오. </li&gt; </ol></li></ol>

<ol><li>Raoult, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+1.2-megabase+genome+sequence+of+Mimivirus%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The 1.2-megabase genome sequence of Mimivirus.</a> Science. 306 (5700), 1344-1350 (2004).</li>
<li>Claverie, J. -M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+viruses+in+the+oceans%3A+the+4th+Algal+Virus+Workshop%5BTitle%5D)+AND+%22Virol+J%22%5BJournal%5D)">Giant viruses in the oceans: the 4th Algal Virus Workshop.</a> Virol J. 2, 52-52 (2004).</li>
<li>Monier, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marine+mimivirus+relatives+are+probably+large+algal+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Audio%2C+Transactions+of+the+IRE+Professional+Group+on%22%5BJournal%5D)">Marine mimivirus relatives are probably large algal viruses.</a> Audio, Transactions of the IRE Professional Group on. 5, 12-12 (2007).</li>
<li>Monier, A., Claverie, J. M., Ogata, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taxonomic+distribution+of+large+DNA+viruses+in+the+sea%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Taxonomic distribution of large DNA viruses in the sea.</a> Genome Biol. , (2008).</li>
<li>Claverie, J. -M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mimivirus+and+Mimiviridae%3A+Giant+viruses+with+an+increasing+number+of+potential+hosts%2C+including+corals+and+sponges%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invertebr+Pathol%22%5BJournal%5D)">Mimivirus and Mimiviridae: Giant viruses with an increasing number of potential hosts, including corals and sponges.</a> J Invertebr Pathol. 101 (3), 9-9 (2009).</li>
<li>Colson, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+of+the+megavirome+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Virol%22%5BJournal%5D)">Evidence of the megavirome in humans.</a> J Clin Virol. 57 (3), 191-200 (2013).</li>
<li>La Scola, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tentative+characterization+of+new+environmental+giant+viruses+by+MALDI-TOF+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Intervirology%22%5BJournal%5D)">Tentative characterization of new environmental giant viruses by MALDI-TOF mass spectrometry.</a> Intervirology. 53 (5), 344-353 (2010).</li>
<li>Boughalmi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+isolation+of+giant+viruses+of+the+Mimiviridae+and+Marseilleviridae+families+in+the+Tunisian+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Microbiol%22%5BJournal%5D)">High-throughput isolation of giant viruses of the Mimiviridae and Marseilleviridae families in the Tunisian environment.</a> Environ Microbiol. , (2012).</li>
<li>Pagnier, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+decade+of+improvements+in+mimiviridae+and+marseilleviridae+isolation+from+amoeba%5BTitle%5D)+AND+%22Intervirology%22%5BJournal%5D)">A decade of improvements in mimiviridae and marseilleviridae isolation from amoeba.</a> Intervirology. 56 (6), 354-363 (2012).</li>
<li>Philippe, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pandoraviruses%3A+Amoeba+Viruses+with+Genomes+Up+to+2.5+Mb+Reaching+That+of+Parasitic+Eukaryotes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Pandoraviruses: Amoeba Viruses with Genomes Up to 2.5 Mb Reaching That of Parasitic Eukaryotes.</a> Science. 341 (6143), 281-286 (2013).</li>
<li>Legendre, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thirty-thousand-year-old+distant+relative+of+giant+icosahedral+DNA+viruses+with+a+pandoravirus+morphology%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Thirty-thousand-year-old distant relative of giant icosahedral DNA viruses with a pandoravirus morphology.</a> PNAS. , (2014).</li>
<li>Saadi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((First+Isolation+of+Mimivirus+in+a+Patient+With+Pneumonia%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">First Isolation of Mimivirus in a Patient With Pneumonia.</a> Clin Infect Dis. , (2013).</li>
<li>Saadi, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shan+virus%3A+a+new+mimivirus+isolated+from+the+stool+of+a+Tunisian+patient+with+pneumonia%5BTitle%5D)+AND+%22Intervirology%22%5BJournal%5D)">Shan virus: a new mimivirus isolated from the stool of a Tunisian patient with pneumonia.</a> Intervirology. 56 (6), 424-429 (2013).</li>
<li>Claverie, J. -M., Abergel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mimivirus%3A+the+emerging+paradox+of+quasi-autonomous+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Genet+%3A+TIG%22%5BJournal%5D)">Mimivirus: the emerging paradox of quasi-autonomous viruses.</a> Trends Genet : TIG. 26 (10), 431-437 (2010).</li>
<li>Colson, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viruses+with+more+than+1%2C000+genes%3A+Mamavirus%2C+a+new+Acanthamoeba+polyphaga+mimivirus+strain%2C+and+reannotation+of+Mimivirus+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol+Evol%22%5BJournal%5D)">Viruses with more than 1,000 genes: Mamavirus, a new Acanthamoeba polyphaga mimivirus strain, and reannotation of Mimivirus genes.</a> Genome Biol Evol. 3 (0), 737-742 (2010).</li>
<li>Claverie, J. -M., Abergel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open+questions+about+giant+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Virus+Res%22%5BJournal%5D)">Open questions about giant viruses.</a> Adv Virus Res. 85, 25-56 (2013).</li>
<li>Fischer, M. G. M., Allen, M. J. M., Wilson, W. H. W., Suttle, C. A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+virus+with+a+remarkable+complement+of+genes+infects+marine+zooplankton%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Giant virus with a remarkable complement of genes infects marine zooplankton.</a> PNAS. 107 (45), 19508-19513 (2010).</li>
<li>Van Etten, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Another+really%2C+really+big+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Viruses%22%5BJournal%5D)">Another really, really big virus.</a> Viruses. 3 (1), 32-46 (2011).</li>
<li>Reteno, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Faustovirus%2C+an+asfarvirus-related+new+lineage+of+giant+viruses+infecting+amoebae%5BTitle%5D)+AND+%22J.Virol%22%5BJournal%5D)">Faustovirus, an asfarvirus-related new lineage of giant viruses infecting amoebae.</a> J.Virol. , (2015).</li>
<li>Coşkun, K. A., Ozçelik, S., Tutar, L., Elaldı, N., Tutar, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+identification+of+free-living+amoebae+from+tap+water+in+Sivas%2C+Turkey%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+res+Int%22%5BJournal%5D)">Isolation and identification of free-living amoebae from tap water in Sivas, Turkey.</a> Biomed res Int. 2013, 675145(2013).</li>
<li>Bradbury, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Free-living+amoebae+recovered+from+human+stool+samples+in+Strongyloides+agar+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+microbiol%22%5BJournal%5D)">Free-living amoebae recovered from human stool samples in Strongyloides agar culture.</a> J Clin microbiol. 52 (2), 699-700 (2014).</li>
<li>Pagnier, I., Valles, C., Raoult, D., La Scola, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+Vermamoeba+vermiformis+and+associated+bacteria+in+hospital+water%5BTitle%5D)+AND+%22Microb+Pathog%22%5BJournal%5D)">Isolation of Vermamoeba vermiformis and associated bacteria in hospital water.</a> Microb Pathog. 80, 14-20 (2015).</li>
<li>Ogata, H., Toyoda, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remarkable+sequence+similarity+between+the+dinoflagellate-infecting+marine+girus+and+the+terrestrial+pathogen+African+swine+fever+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Virol+J%22%5BJournal%5D)">Remarkable sequence similarity between the dinoflagellate-infecting marine girus and the terrestrial pathogen African swine fever virus.</a> Virol J. 6, 178-178 (2008).</li>
<li>Tarutani, K., Nagasaki, K., Itakura, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+a+virus+infecting+the+novel+shellfish-killing+dinoflagellate+Heterocapsa+circularisquama%5BTitle%5D)+AND+%22Aquat+Microb+Ecol%22%5BJournal%5D)">Isolation of a virus infecting the novel shellfish-killing dinoflagellate Heterocapsa circularisquama.</a> Aquat Microb Ecol. 23, 103-111 (2001).</li>
</ol>

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

Faustovirus이 ASFV에 가까운 새로운 Megavirales 가족의 첫 번째 구성원이 될 수 있다는 가능성을 먼저 Reteno 등., (19)에 의해 제안했지만 약간의 차이는 여전히 구별 할 수있다. Faustovirus이 Asfarviridae 가족에 가입해야할지 대신 새로운 추정 바이러스 제품군을 형성할지 여부를 명확 나타납니다. 이 문제는 추가 조사, 그 형태의 특히보다 포괄적 인 특성, 숙주 범위, 복제주기 및 유전자 레퍼토리가 필요합니다. 더 Faustovirus 유전자형을 위해 팬 - 게놈을 확장하고 더 나은이 바이러스 그룹 또는 가족의 기원과 친척을 이해하기에 격리되어야한다. 우리가 사용하는 기술은 우리가이 잠재적 인 새로운 가족의 새로운 구성원을 분리 계속할 수있었습니다. 이 기술은 잘 검출하는 농축 단계의 역할을 약간 수정 공 배양 기술과 결합된다. 후 데이터의 취득을위한 유동 세포 계측법에 의해 요구되는 시간샘플 ndreds 이전 표준 공존 배양 시스템에 비해 중요...

거대 바이러스의 Megavirales 순서에 속하는 특히 이들의 발견은 완전히 입경 게놈의 복잡성의 관점에서 바이러스의 세계를 바꾸었다. 바이러스는 이전 소기업 것으로 생각하고 Mimivirus 모든 규칙을 위반 등장 하였다. 1 군 유전체학 데이터 환경에서 2-5뿐만 아니라, 인간에서뿐만 아니라 거대 바이러스의 편재를 제안한다. (6) 따라서, 여전히 필요가있다 대규모 이러한 바이러스를 검색 할 수 있습니다. 이 거대한 바이러스의 다양성이 인간의 샘플 12, 13 및 환경 시료의 다양한 선별하여, 전 세계적으로도 7-11하지만를 수생 환경의 다양성과 관련 퇴적물뿐만 아니라 샘플링하여 평가 하였다. 7,9 가시 아메바의 풍뎅이 아목의 mimivirus이었다 식세포 원생 생물, 주로 가시 아메바 종을 사용하여 공동 문화입니다. 14-16 거대 바이러스의 전체 컬렉션은 또한 다음이었다과학계는 가시 아메바 종에 대한 연구 및 격리 절차를 제한 만든이 지정된 원생 호스트에서입니다. 분명히 하나의 호스트 종에이 신뢰는 바이러스의 많은 부분이 간과되고 가져왔다. 거대 바이러스 CroV가 높은 운동성 해양 원충 카페테리아 roenbergensis 절연 있다는 사실은 17,18 새로운 계통 또는 거대 바이러스 패밀리를 발견하기 위해 원생 동물의 넓은 범위를 사용할 필요성을 나타낸다. Reteno 등은. 이전에 사용 된 적이 셀 호스트와 같은 다른 원생 동물을 선택 관리, 거대한 바이러스의 새로운 아스파 관련 계통 (새로 명명 된 Faustovirus를)입니다. (19) 이 바이러스 계통의 구성원을 확장하기 위해 새로운 Faustovirus 유전자형을 분리하기위한 시도에서, 우리는 우리의 격리 절차를 수정하고 새로운 Faustoviruses을 수확 할 수있는 환경 시료를 선별를 사용했다. 우리 다음새로운 균주의 특성을하기 위해 전체 프로토콜을 설명했다. 우리는 Vermamoeba의 vermiformis, 이미 첫 번째 Faustovirus 프로토 타입 E12. 19 현재 여전히 호스트 특정되어 Faustovirus에 대한이 원생 생물의 분리에 사용되는 인간 환경에서 발견 된 가장 일반적인 자유 생활 원생 생물, 20-22을 평가 하였다. 우리는 우리의 실험실은 아메바 용해 또는 바이러스 성장을 보였다에 더 시도가 다른 거대한 바이러스를 성장하지 있기 때문에 알려진 거대한 바이러스의 것도,이 아메바에 대한 병원성 없다는 것을 알고 있었다. 이러한 이유로 생각 V. vermiformis 새로운 Faustoviruses을 분리하는 것으로 알려져 최고의 가장 독특한 세포 지원입니다.

<table><tbody><tr><td>LSR FORTESSA 세포분석기&nbsp;</td><td>BD 바이오사이언스</td><td>프랑스&nbsp;</td><td>649225B4</td></tr><tr><td>TECNAI G2 F20</td><td>FEI</td><td>독일&nbsp;</td><td>5027/11</td></tr>년<tr><td>광학 도립 현미경</td><td>leica&nbsp;</td><td>프랑스</td><td>72643</td></tr><tr><td>DNA 추출</td><td>Qiagen EZ1 고급 XL 추출 로봇</td><td>프랑스&nbsp;</td><td>L106A0452</td></tr><tr><td>PCR Cycler CFX96</td><td>Bio rad</td><td>France</td><td>785BR06298</td></tr><tr><td>PYG 매체, PAS, 기아 매체</td><td>자체 실험실 생산&nbsp;</td><td>마르세유 URMITE</td><td>x</td></tr><tr><td>아메바 균주 CDC-19</td><td>ATCC</td><td>France</td><td>50237</td></tr><tr><td>플레이트</td><td>Cellstar</td><td>France</td><td>655180</td></tr><tr><td>PCR 재료, 프라이머.&nbsp;</td><td>eurogentec</td><td>France</td><td>Primers</td></tr>는 <tr><td>그리드가 있는 유리 슬라이드 10에 인용되었습니다.</td><td></td><td>미국</td><td>H899871441F</td></tr><tr><td>Eosin/blue Azur-Hemacolor stain</td><td>Merck milipore&nbsp;</td><td>프랑스</td><td>111955,6,57,109468</td></tr><tr><td>진공 구동 필터</td><td>Thermo scientific</td><td>프랑스</td><td>BPV4550 / 20170115</td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수</td><td>Thermo Fisher scientific&nbsp;</td><td>프랑스&nbsp;</td><td>제10010-023</td></tr>호<tr><td>DAPI 염색</td><td>라이프 테크놀로지스&nbsp;</td><td>프랑스&nbsp;</td><td>D1306 (영어</td></tr>)<tr><td>사이토스핀 4 세포원심분리기</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>France</td><td>10522013JT184-31</td></tr><tr><td>Single cytology tunnel</td><td>Biomedical polymers inc.</td><td>프랑스</td><td>BMP-cyto-S50</td></tr><tr><td>탄소 그리드&nbsp;</td><td>유로메덱스</td><td>프랑스&nbsp;</td><td>FCF400NI</td></tr><tr><td>암모늄 몰리브데이트</td><td>VWR 국제&nbsp;</td><td>프랑스&nbsp;</td><td>21276185</td></tr><tr><td>플라스크&nbsp;</td><td>SARSTEDT</td><td>, 독일</td><td>,</td></tr><tr><td>833911 0.22 &mu; M 필터&nbsp;</td><td>밀렉스 밀리포르&nbsp;</td><td>프랑스</td><td>SE2M229104</td></tr><tr><td>초원심분리기 Sorval WX 80</td><td>Thermo scientific</td><td>프랑스</td><td>9102448</td></tr><tr><td>급류 필터</td><td>Nalgene</td><td>France</td><td>450-0020</td></tr></tbody></table>

사용 환경 샘플에서 새로운 faustoviruses의 분리에 대한 신속한 전략<em&gt; vermamoeba의 vermiformis</em

A Rapid Strategy for the Isolation of New Faustoviruses from Environmental Samples Using Vermamoeba vermiformis

거대한 바이러스의 분리는이 거대한 바이러스가 원생 ​​생물에 관한 특히 때문에, 바이러스학의이 새로운 시대에 큰 관심이다. 자이언트 바이러스는 원생 생물의 많은 종에 대한 잠재적 병원성 수 있습니다. 그들은 Megavirales의 최근 기술 된 순서에 속한다. 하수 시료에서 분리 된 새로운 계보 Faustovirus는 포유 동물의 병원체 아프리카 돼지 열병 바이러스에 먼 관련이있다. 이 바이러스는 또한 amoebal 호스트, Vermamoeba의 vermiformis, 건강 관리 물 시스템에 공통 원생 생물에 고유합니다. 그것의 유전자형 수집을 확대하고 팬 게놈을 연구하기 위해 새로운 Faustovirus 유전자형을 분리 계속 중요합니다. 우리는 아메바 공동 배양 세균 및 진균 오염물을 방지하기 위해 항생제 및 항진균제의 조합의 사용을 개선하고 바이러스 증식을 선호하여 추가 균주의 분리를위한 새로운 전략을 개발했다. 우리는 또한 새로운 starvatio를 구현N 매체 V.을 유지할 바이러스 공동 배양을위한 최적의 조건에서 vermiformis. 마지막으로, 우리는 세포 병변 효과를 검출하기 위해, 시간 소모적 인 유동 세포 계측법보다는 현미경 관찰을 사용했다. 우리는 더 나은 자신의 환경, 호스트 특이성 유전자 내용을 이해하기 위해,이 방법의 효율성을 증명함으로써 Faustoviruses의 수집을 확대, 하수 시료에서 두 균주를 획득했습니다.

이 원고에서 공부 시스템은 두 개의 새로운 Faustoviruses을 분리하여 개념의 증거를 검증. 테스트 (70) 샘플, 용해의 두 에피소드는 우리의 신뢰할 수있는 음성 대조군 대조적으로 검출되었다. 용해에 대한 음성 대조군은 86 % 아메바 인구가 포함되어 있습니다. 대조적으로, 긍정적 인 샘플 (세인트 피에르 드 Meyzoargues에 대한 ST1)와 (라 시오타 샘플 9 LC9)는 게이트 아메바의 급격한 감소를 보였다; 아메바의 60 % 이상이 파편의 가장 높은 비율로 용해시켰다. 우리의 방법의 검출 단의이 강력한 결과를 그림 1에 표시됩니다. 에오신 / 블루 아주르와 DAPI 염색도 2에 도시 된 아메바 내부 바이러스 공장의 존재를 확인했다. 전자 현미경은 정 이십 면체의 캡시드와 Megavirales의 전형적인 모습을 보여 크기가 200 나노 미터, 및 부족 원 섬유 (그림 3).</...

여기에서는 거대 바이러스의 새로운 아스파르바이러스 관련 계통인 파우스토바이러스의 새로운 유전자형을 특성화하기 위한 바이러스 분리의 최신 발전에 대해 설명합니다. 이 프로토콜은 바이러스, 특히 아메바를 감염시키는 거대 바이러스의 고처리량 격리에 적용할 수 있습니다.

사용 환경 샘플에서 새로운 Faustoviruses의 분리에 대한 신속한 전략<em&gt; Vermamoeba의 vermiformis</em

The isolation of giant viruses is of great interest in this new era of virology, especially since these giant viruses are related to protists. Giant ...

이 새로운 분리 전략의 전반적인 목표는 새로운 바이러스 분리주의 수를 확대하여 이 새로운 바이러스 과의 범유전체(pan-genome)를 연구하고, 이들의 생태계와 인간에 대한 잠재적 병원성을 더 잘 이해하는 것입니다. 이 방법은 바이러스학 분야의 핵심 질문들에 답함으로써, 거대 바이러스 및 특히 Faustovirus 탐사에 관심이 있는 전 세계 바이러스학자들에게 도움을 줄 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 항생제 및 항진균제 혼합물, 아메바에 맞게 조정된 새로운 기아 배지, 그리고 더 빠르고 민감한 용해 검출을 위한 유세포 분석법의 사용과 같이 여러 단계에서 새로운 개선 사항을 보여준다는 점입니다. 텍스트 프로토콜에 따라 오염된 물 샘플을 수집한 후, 30 mL의 protease peptone yeast extract glucose(PYG 배지)가 담긴 75 cm² 세포 배양 플라스크에 아메바를 추가하여 숙주 세포인 V. vermiformis를 준비하고 28 °C에서 48시간 동안 배양합니다. 계수 슬라이드를 사용하여 아메바 수를 측정하고, 농도가 5 × 10⁵ ~ 10⁶ cells/mL에 도달하면 720 ×g에서 10분 동안 원심 분리하여 세포를 회수합니다.상층액을 흡입하여 제거하고, 30 milliliters의 멸균된 Page's amoebal saline 또는 PAS를 사용하여 아메바 펠릿을 재현탁합니다. 펠릿을 두 번째로 세척한 후, 항생제와 항진균제가 포함된 30 milliliters의 기아 배지(starvation medium)를 사용하여 세포를 milliliters당 약 10⁶마리의 아메바로 재현탁합니다. 기아 배지는 아메바가 포낭 형성이나 증식 없이 생존할 수 있도록 합니다.다음으로, 96-well flat bottom plate의 웰에 200 µL의 아메바를 분주하고 30 °C에서 30분 동안 배양합니다. 그런 다음, 실온에서 물 샘플을 1분 동안 vortexing한 후, 각 샘플 25 µL를 아메바 세포에 접종하며, 두 개의 웰은 샘플을 넣지 않고 음성 대조군으로 둡니다. 증발을 방지하기 위해 1차 배양액이 담긴 플레이트를 젖은 압축 솜과 함께 봉투에 넣고, 플레이트가 들어 있는 가습 챔버를 30 °C 인큐베이터에 넣습니다.첫 번째 접종 3일 후, 현미경 관찰 없이 방금 시연한 방법대로 1차 배양 플레이트를 아메바가 들어 있는 새로운 96-웰 플레이트에 계대 배양합니다. 30°C에서 3일 동안 배양합니다. 그다음, 이 계대 배양물을 사용하여 앞서 설명한 방식대로 세 번째 플레이트에 접종하고 2일 동안 배양합니다.최종 공동 배양 플레이트에서 용해(lysis)를 검출하려면, 사이토미터를 켜고 제조사의 프로토콜에 따라 세척 및 린스(clean and rinse)를 수행하여 배경 노이즈를 줄입니다. 40분 동안의 완전 자동 수집을 수행하려면, 제조사 프로토콜에 따라 96-웰 플레이트에서 샘플을 자동으로 로드할 수 있도록 고속 샘플러(high throughput sampler) 또는 HTS를 실행합니다. HTS 설정을 여기에 나열된 대로 프로그래밍하는데, 여기에는 샘플 부피 150 µL, 혼합 부피 50 µL, 혼합 속도 180, 혼합 횟수 5회, 샘플 간 세척 부피 400 µL, 유속 2.5 µL/s, 기록 이벤트 수 10,000개가 포함됩니다. Home을 클릭하여 HTS가 플레이트의 위치를 파악하도록 합니다. 그다음, 아메바 군집을 게이팅(gate)하고 물리적 특성에 따른 세포 백분율을 결정하기 위해 숙주 아메바 세포가 포함된 음성 대조군 웰을 먼저 평가합니다. 이때 균질한 아메바 군집과 데브리 및 노이즈에 해당하는 더 적은 이벤트 수의 두 번째 군집이 나타나는지 확인하십시오. 이어서 acquire sample을 클릭하여 게이팅을 시작합니다.그다음, 게이트를 정의하는 화살표를 사용하여 관심 있는 아메바 집단을 국소화합니다. 최소 10,000개의 이벤트를 게이팅한 후, run을 클릭하여 HTS가 전체 플레이트를 자동으로 실행하도록 합니다. 전방 산란(forward scatter) 크기 파라미터와 측방 산란(side scatter) 구조 파라미터에 따라 데이터 획득 및 분석을 수행합니다. 자세한 내용은 본문을 참조하십시오.유세포 분석기로 용해 여부를 확인한 후, 용해된 공동 배양물을 피펫팅하여 남은 아메바를 현탁시킵니다. 각 샘플 50 µL를 슬라이드 위에 피펫팅한 후, 현탁액을 800 ×g에서 10분 동안 직접 세포원심분리(cytocentrifuge)합니다.다음으로, 순수 메탄올을 사용하여 슬라이드를 고정한 후 상온에서 건조시킵니다. 고정 후, 슬라이드를 ESN 용액에 4초씩 세 번 담갔다가 뺀 다음, blue-azur에 6초 동안 담급니다. 마지막으로, 슬라이드를 PBS에 45초 동안 담급니다.관찰 단계로 넘어가기 전에 슬라이드를 실온에서 건조하십시오. 새로 고정된 슬라이드를 DAPI로 염색하려면, 건조된 슬라이드에 DAPI 15 µL를 피펫으로 분주하십시오. 광학 현미경을 사용하여 1000배 배율로 슬라이드를 관찰하여 바이러스 공장(virus factories)의 존재 여부를 확인하십시오.전자현미경 관찰을 위해, 글로우 방전(glow-discharge) 처리된 그리드 위에 양성 시료 5 µL를 점적하고 실온에서 약 20분 동안 배양합니다. 그리드를 조심스럽게 건조시킨 후, 1% 몰리브덴산 암모늄을 소량 첨가하고 10초 동안 배양합니다. 액적을 조심스럽게 제거한 후, 그리드를 5분 동안 건조시킵니다. 다음으로, 전자현미경을 200 keV로 설정합니다. 그 후 그리드를 홀더에 거치하고 홀더를 현미경 내부로 삽입합니다. 진공 개요 아이콘을 클릭하여 진공 상태를 확인합니다. 이어서 밸브를 닫고, 관찰을 시작하기 전에 스폿 크기(spot size)를 5로, 배율을 25,000배로 설정합니다. 획득 화면에서 거대 바이러스를 찾은 후, 측정 도구를 사용하여 바이러스의 크기를 측정합니다.텍스트 프로토콜에 따라 분자 생물학 및 바이러스 게놈 시퀀싱을 수행하십시오.이 그림은 신뢰할 수 있는 음성 대조군과 비교한 두 종류의 Faustovirus 검출 결과를 보여줍니다. 용해 음성 대조군은 86%의 아메바 집단을 포함하고 있었습니다. 이와 대조적으로, 양성 샘플에서는 가장 높은 잔해 비율과 함께 아메바의 60% 이상이 용해되었습니다.여기서 볼 수 있듯이, ESN 및 blue-azur 염색은 감염되지 않은 아메바 세포와 감염된 아메바 세포의 핵, 그리고 감염된 세포 내부의 바이러스 팩토리(virus factories)의 존재를 염색합니다. DAPI 염색 또한 아메바 내부에 바이러스 팩토리가 존재함을 확인시켜 줍니다. 이 이미지들에서 전자현미경 관찰 결과, 섬유질이 없는 정이십면체 캡시드로 구성되어 있으며 크기가 200 nanometers인 메가바이러스(mega-virus)의 전형적인 외형을 가진 Faustovirus의 존재가 드러납니다.숙련된 후 공동 배양을 거치면, 적절히 수행했을 때 이 용해 검출 및 바이러스 특성 분석 기술은 1시간 이내에 완료할 수 있습니다. 이 절차를 수행하는 동안 아메바의 생존력을 제어하고 가능한 오염 여부를 확인하는 것이 중요합니다. 이 절차 이후에는 거대 바이러스를 표적으로 하는 분자 생물학적 방법 등의 다른 분석을 수행하여 바이러스 과 또는 유전형과 같은 추가적인 의문점을 해결할 수 있습니다.이 기술의 개발 이후, 바이러스학 분야의 연구자들은 해당 바이러스 과와 그들의 특정 숙주, 그리고 잠재적인 병원성을 탐구할 수 있는 길을 열었습니다. 이 영상을 시청한 후, 샘플의 수와 종류를 확대하고 최적의 숙주 세포 및 배양 조건을 선택함으로써 거대 바이러스를 쉽게 분리하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다. 하수 샘플의 경우 특히 위험할 수 있으므로, 인간에게 잠재적으로 병원성인 바이러스를 다루는 작업은 매우 위험할 수 있다는 점을 잊지 마십시오.따라서 본 절차를 수행할 때는 항상 보안 조건이 갖춰진 SB2 실험실에서 작업하는 것과 같은 예방 조치를 취해야 합니다.

a-rapid-strategy-for-isolation-new-faustoviruses-from-environmental

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

연구는 산악 표준시 도구로 제안 인간 / 돼지의 / 소 DNA 바이러스, adenoviruses과 polyomaviruses의 특정 부량에 대한 qPCR을 사용하여 물속에서 nitrates에 의해 배설물 / 소변 오염 또는 오염의 소스의 식별을위한 비용 효율적인 방법을 설명합니다.

특정 인간과 동물 바이러스를 사용하여 미생물 소스 추적을위한 비용 효율적인 방법

Amoebal 공 배양 선택적 같은 아메바 및 대 식세포와 같은 식세포에 저항 할 수 세포 내 병원체를 성장 자기편 아메바를 사용하여 세포 배양 시스템이다. 그것은 따라서 새로운 감염원을 발견 할 수있는 중요한 도구를 나타냅니다. Amoebal 농축 새로운 amoebal 종과 특정 세포 내 박테리아의 발견을 할 수 있습니다.

Amoebal 공 배양 및 Amoebal 심화 접근에 의한 새로운 세포 내 병원균의 발견

EPA Method 1615는 전기 양성 필터를 사용하여 엔테로바이러스와 노로바이러스를 환경 및 음용수에 농축합니다. 이 원고는 Method 1615 분석을 위한 샘플 수집 절차를 설명합니다.

엔테로 바이러스 및 문화 RT-qPCR에 의해 물에서 노로 바이러스의 발생의 EPA 방법 1615 측정. 바이러스 샘플의 I. 컬렉션

여기에서는 Buffalo Green Monkey 신장 세포주를 사용하여 총 배양 가능한 바이러스를 측정하는 절차를 제시합니다. 이 절차는 환경 및 음용수에서 감염성 바이러스의 발생을 측정하기 위한 표준화된 도구를 제공합니다.

엔테로 바이러스 및 문화 RT-qPCR에 의해 물에서 노로 바이러스의 발생의 EPA 방법 1615 측정. II. 총 배양 가능한 바이러스 분석

여기에서는 역전사-정량적 PCR을 사용하여 환경 및 음용수에서 엔테로바이러스와 노로바이러스를 정량화하는 절차를 제시합니다. EPA Method 1615의 표준화된 절차를 통해 지하수에서 바이러스가 회수되는 평균 비율은 소아마비 바이러스의 경우 20%, 쥐 노로바이러스의 경우 30%였다.

엔테로 바이러스 및 문화와 RT-qPCR에 의해 물에서 노로 바이러스의 발생의 EPA 방법 1615 측정. 파트 III. RT-qPCR에 의한 바이러스 검출

여기에서 우리는 VirWaTest를 제시, 이는 사용 시점에서 물 샘플에서 바이러스의 농도 및 검출을위한 간단하고 저렴하고 휴대용 방법입니다.

VirWaTest, 물 샘플에서 바이러스 검출을 위한 사용 시점 방법

여기서, 우리는 감염된 아메바의 분리를 위한 단일 세포 마이크로 흡인 방법을 기술한다. 파우스토바이러스와 알려지지 않은 거대 바이러스에 감염된 Vermamoeba vermiformis의 바이러스 하위 집단을 분리하기 위해, 우리는 아래에 자세히 설명된 프로토콜을 개발하고 두 개의 저풍부 신규 거대 바이러스를 분리하는 능력을 입증했습니다.

거대한 바이러스 혼합물 분리를 위한 형광 활성화 세포 분류에 대한 대체 전략으로서의 단일 세포 마이크로 포부

이 프로토콜은 필드의 천연 기판에서 살아있는 선충을 효율적으로 추출하는 방법을 간략하게 설명합니다.

베어만 퍼널에 의해 야생 선충의 신속한 격리

수많은 새로운 바이러스 유사 서열이 시퀀싱 기술의 광범위한 사용으로 인해 모기에서 발견되었습니다. 우리는 척추동물 및 모기 세포주를 사용하여 바이러스를 분리하고 증폭하는 효과적인 절차를 제공하며, 이는 모기 매개 및 모기 특이적 바이러스를 포함한 모기 관련 바이러스에 대한 향후 연구의 기초가 될 수 있습니다.

현장에서 채취한 모기로부터 모기 관련 바이러스 분리

환경 용수 및 폐수 샘플의 바이러스 농도는 주로 바이러스의 식별 및 정량화를 위해 수행되는 어려운 작업입니다. 여러 바이러스 농축 방법이 개발되고 테스트되었지만, 여기서는 다양한 샘플 유형을 가진 RNA 바이러스에 대한 한외여과 및 탈지유 응집의 효과를 입증합니다.

탈지유 응집 및 한외여과를 사용한 환경 용수 및 폐수 샘플의 바이러스 입자 농도

여기에서는 시아노파지(및 그 숙주)를 분리하기 위해 해양 및 담수 생태계의 유쾌한 영역에서 샘플링하는 방법과 단일 유전자형을 풍부하게 하고 바이러스-숙주 상호 작용 역학을 특성화하는 사후 샘플링 프로세스에 대해 설명합니다.

광합성 미생물 및 바이러스의 환경 샘플링: 현장에서 실험실까지

학습하세요 Vermamoeba vermiformis를 이용한 Faustovirus 신속 분리 전략으로, 대형 바이러스 고립을 위한 flow-cytometry 기반 검출법을 활용합니다. 이 방법은 바이러스 용해를 더 민감하게 탐지하여 새로운 바이러스 계통 연구에 기여합니다.

사용 환경 샘플에서 새로운 Faustoviruses의 분리에 대한 신속한 전략

더 많은 동영상 탐색