Name: 인간의 기본 영양막 세포 멜라토닌에 대해 저산소증의 보호 효과를 연구하기 위해 세포 배양 모델 / 재산 소화에 의한 혼란 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-30T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 2 s
Description: 배우세요 저산소증 및 재산소화 조건에서 멜라토닌이 인간 융모 세포영양막 세포에 미치는 보호 효과를 연구하는 세포 배양 모델을 사용하는 방법입니다. 이 기법은 산화 스트레스 관련 임신 합병증의 치료 가능성을 탐구하는 데 활용됩니다.

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캐나다 자연과학 및 공학 연구 위원회(NSERC) (no. 262011-2009)에서 CV 및 CV 및 JTS에 대한 March of Dimes Social and Behavioral Sciences Research 보조금(#12-FY12-179)의 보조금으로 지원됨; Ministère de l'éducation, de l'Enseignement supérieurs et de la recherche (MEESR)-Fonds de recherche du Québec (FRQ)-Nature et technologies (NT) 및 Fondation Universitaire Armand-Frappier INRS에서 LSF로 학생 지원, Réseau Québécois en Reproduction-NSERC-CREATE의 HC, 캐나다 보건 연구소 (CIHR) 및 FRQ-Santé의 AAHT, NSERC의 JBP로; Conselho Nacional de Desenvolvimento Cientìfico e Tecnològico (CNPq) 및 Programme de bourses d'excellence pour étudiants étrangers MEESR-FRQNT의 EMAS 펠로우십을 통해.

태반은 정보를 환자의 동의와 윤리위원회 (CHUM - 세인트 루크 병원 INRS - 인스 티 투트 아르망 - Frappier의 승인을 즉시 미끼 - 세인트 루크 병원, 몬트리올, QC, 캐나다에서 복잡하지 않은 임신에서 자연 질식 분만 후 얻었다 라발, QC, 캐나다). 산모 Cytotrophoblast 세포의 1. 분리 및 정제 <ol><li> 솔루션 및 미디어 <ol><li> 보완하여 전송 매체를 준비 둘 베코의 이글의 중간 높은 포도당 1 % 부피 /의 부피 항생제와 (DMEM-HG) (10,000 단위 / ml의 페니실린 G, 100 ㎎ / ㎖ 스트렙토 마이신 황산염) 및 저장 4 ℃에서 수정. </li><li> 10 % 부피 / 부피 소 태아 혈청 (FBS), 25 mM의 4- (2- 히드 록시 에틸) -1- 피페 라진 에탄 술폰산 (HEPES), 1 % 부피 / 부피 항생제 (10,000 단위 / 가진 DMEM-HG를 보충하여 일차 배양 배지를 준비 ml의 페니실린 G 4 ° C에서 100 ㎎ / ㎖ 스트렙토 마이신 황산염) 및 저장. 37 ° C에 따뜻한 미디어 전용도. </li><li> 생리 식염수 (0.9 % 중량 / 부피의 염화나트륨)의 4 L를 준비한다. </li><li> HBSS (PH 7.4) 1x에서 25 mM의 HEPES를 추가하여 행크의 균형 소금 솔루션 (HBSS)를 수정 준비합니다. </li><li> (변성 (1.1.4에서 제조) HBSS, 황산 마그네슘 (MgSO4로), 염화칼슘 (CaCl2를) 트립신, 데 옥시 리보 뉴 클레아 제의 IV (DNase의 4) 및 1 % 부피 / 부피 항생제 분해 용액 신선 네병 준비 표 1에 나타낸 바와 같이 10,000 단위 / ㎖ 페니실린 G, 100 ㎎ / ㎖ 스트렙토 마이신 설페이트). </li><li> 밀도 원심 분리 미디어 구배를 준비 <ol><li> 10 % 부피 /의 부피 HBSS 10 배와 밀도 원심 분리 미디어를 보완하여 밀도 원심 분리 미디어 솔루션을 준비합니다. </li><li> 표 2에 기재된 바와 같이, 밀도 원심 미디어 용액 변성 HBSS 14 분석 튜브를 준비한다. </li><li> 적극적으로 그라데이션에 내용을 추가하기 전에 각각의 밀도 솔루션 (단계 1.1.6.2)를 섞는다. 부드럽게가장 높은 농도 (70 %)을 시작으로 연동 펌프 (1 ㎖ / 분)을 50 ㎖의 유리 원심 관에 밀도 솔루션을 추가한다. 구배의 각 층의 적절한 거리를 유지하기 관벽 용액을 배출하여 물방울을 피한다. <ol><li> 연동 펌프의 부재에서, 파스퇴르 피펫으로 매우 부드럽게 층을 적용합니다. </li></ol></li></ol></li><li> 실행중인 버퍼를 보완하여 최종 실행 버퍼를 준비 (10,000 단위 / ml의 페니실린 G, 100 ㎎ / ㎖ 스트렙토 마이신 설페이트), 항진균제 2 % 부피 / 부피 항생제 /과 (재료의 표 참조). 4 ℃에서 보관하십시오. </li></ol></li><li> 융모 cytotrophoblast 분리 참고 : 사용 무균 수술 장비, 유리, 피펫, 플라스크 등 <ol><li> 융모 cytotrophoblast 분리 날에, 37 ℃의 수욕 및 FBS 70 ㎖ (단계 1.1.5에서)를 digestions 용액을 가온. 주 : FBS 50ml의 사용은 digestions 및 인터럽트 할일단 해동 얼음에 배치 할 수있는 냉동 공정 (1.2.22) 20 ml의 나머지. </li><li> 전달 후, 수 (이하, 1 시간) 빨리 (1.1.1)에서 빙냉 전송 매체에 실험실 태반을 가져온다. </li><li> 취소 전송 매체 및 액체 쓰레기통에 태반 혈액. 태반의 무게를 차가운 생리 식염수에 담가. </li><li> 측정하고 다음과 같은 기능 분석 : 탯줄의 길이; 탯줄 현지화; 태반 길이, 폭, 모양 (타원형 원반 모양); 막 색상; 떡잎 구조 병변. 주 : 데이터는 결과 섹션에 표시됩니다. </li><li> (코드 주위에 추가 1cm 반경 원과의 기지에서, 즉)의 태반 삽입과 함께 탯줄을 잘라. 이상 조직 학적 분석 학적 조직 고정액 수용액 (포르말린 10 %) 300 ㎖에 담근다. </li><li> 5 × 5 × 5cm의 큐브로 전체 태반을 잘라. 식염수 졸 (4 시간 X ~ 1 분) 철저하게 세척생리 식염수가 선명해질 때까지의 ution (0.9 %)는 혈액 세포를 제거한다. 액체를 씻어 버리십시오. </li><li> 시계 유리, 혈관 석회화를 제거하는 태반 막과 말하다 조직을 제거합니다. 집게로 단단히 혈관을 잡고 Metzenbaum 가위의 뒷면을 사용하여 조직을 제거합니다. <ol><li> 흡인 여과기에 다진 태반을 놓습니다. 식염수 버퍼의 약 100 ㎖로 씻어. 다진 조직의 35g (보트와 규모 무게 사용 플라스틱)를 얻을 수있다 - (30)가 될 때까지 닦지 계속합니다. 35g 제제 - 필요한 경우, 추가로 30 세까지 얻었다 태반의 나머지 말하다. 이 시간 동안 얼음에 무게 보트에 다진 조직을했습니다. 참고 :이 단계는 1 시간에 약 45 분 소요됩니다. </li></ol></li><li> trypsinizing 플라스크에 35g 다진 태반 조직 - 30를 추가합니다. 전송 150 trypsinizing 플라스크에 준비된 소화 용액 1 (표 1)의 용액과 잘 혼합한다. </li><li> 에 trypsinizing 플라스크를 배치무 50 사이클 / 분의 속도로 30 분 동안 수욕 진탕 수동 trypsinizing 플라스크를 균일 소화 매 5 분 동안 혼합한다. </li><li> 제 소화의 끝에, 수욕에서 trypsinizing 플라스크를 분리하고 태반 조직을 1 분 침강 대 (45)를 기울. 10 ㎖의 멸균 피펫으로 제거하고 상층 액의 약 80 ml의 폐기합니다. 조직을 흡입하지 마십시오. </li><li> 전송합니다 trypsinizing 플라스크 소화 용액을 100㎖의 2 (표 1); 잘 혼합 단계 1.2.9를 반복합니다. </li><li> 제 소화의 끝에, 수욕에서 trypsinizing 형틀을 제거하고 1 분 정도 45 ° 기울. 10 ㎖의 멸균 피펫으로, 80 ml의 상층 액을 제거하고 부드럽게 셀 스트레이너 (100 μm의 메쉬)와 원심 분리기 튜브로 전송할 수 있습니다. FBS 2 ㎖ 원심 분리 튜브가 가득마다 들어있는 비이커에 여과하여 상층 액을 이동. </li><li> 기술 한 바와 같이 제 소화를 수행병행하여 75 ml의 소화 용액 (3)을 사용하여 초 소화 (1.2.11 및 1.2.12)은, 소화 2 1.2.16.1에 단계 1.2.15를 수행합니다. </li><li> 소화 용액 (4) (75 ㎖)를 사용하여 제 소화 정확히 제 소화를 수행하지만, 상등액의 최대 양을 수집한다. 소화 3 병렬 1.2.16.1에 단계 1.2.15를 수행하고, 마지막으로 소화 4. </li><li> 제 (digestions이 3 내지 4), 13.5 mL의 상층 액 부분으로 한 15 mL의 원심 분리 튜브에 나누어지는 각 부품. 22.8 cm 길이 유리 파스퇴르 피펫으로 아주 부드럽게 천천히 개별 층을 생성하기 위해 각 튜브의 하단 FBS 1.5 ㎖에 놓는다. FBS와 상층 액을 혼합하지 마십시오. 실온에서 1,250 × g으로 20 분 동안 브레이크없이 튜브를 원심 분리기. 참고도 1에 나타낸 바와 같이 원심 분리 후에, 4 층의 튜브를 볼 수 트립신 및 영양막 세포의 분리 과도한 세포 분해를 피한다.. </li><li> 진공 펌프와 aspir먹고 두 층 사이에 백탁 막을 포함 상청액 (분해 용액) 및 FBS 층을 버린다. 따뜻한 세포 배양 배지 1 mL를 펠렛합니다 (trophoblasts과 적혈구 층) 재현 탁한다 (단계 1.1.2 아니오 FBS없이 HEPES로). <ol><li> 모든 관에서 재 부유 세포를 수집하고 1 관에서 그들을 결합. 튜브 모든 digestions이 끝날 때까지 실온에 서 보자. 참고 : 모든 digestions 후, 보통의 수율은 재현 탁 세포 (소화 당 하나)의 3 관입니다. </li></ol></li><li> 따뜻한 세포 배양 배지 15 ml의에 볼륨을 확인합니다. 실온에서 10 분 동안 1250 × g으로 원심 분리기. 진공 펌프와 뜨는을 제거합니다. 펠렛을 흡입하지 마십시오. </li><li> 부드럽게 따뜻한 세포 배양 배지 1 ㎖로 3 개의 튜브에서 얻은 펠렛을 재현 탁. 1 관에서 자신의 콘텐츠를 풀. 8 ml의 수득 따뜻한 세포 배양 배지 부피를 완료. </li><li> 아주 부드럽게 분리 래드에 세포 현탁액 레이어파스퇴르 피펫 ient. 실온에서 507 XG에 30 분 동안 브레이크없이 원심 분리기. </li><li> 원심 분리 후, 다시 조명 기울기에 세포의 다른 레이어를 식별합니다. 밀도 원심 분리 매체의 50 % - 레이어 영양막 세포를 포함하는 40 사이에 세포 오염을 찾습니다. 진공 펌프로, 상위 계층들 (&gt; 50 %)을 제거한다. </li><li> 파스퇴르 피펫 관심 층에있는 세포를 수집하고 50 ML의 원심 분리기 튜브로 전송할 수 있습니다. 세포 배양 배지 50 ㎖에 볼륨을 확인합니다. 상온에서 1,250 XG에서 10 분 동안 원심 분리기. </li><li> 멸균 조건 하에서, 상층 액을 제거 FBS 20 ㎖로 펠렛을 재현 탁하고 혈구를 이용하여 세포의 수를 계산. 얼음 멸균 디메틸 설폭 사이드 (DMSO) 2.22 mL를 추가하고 젖혀 부드럽게 혼합한다. 저온 바이알에 세포 현탁액의 분취 량 1.5 ㎖를, -​​80 ° C에서 밤새 냉동 및 액체 질소 탱크로 옮긴다. </li></ol></li> &lt;리&gt; 영양막 세포 정화 <ol><li> 헹굼 및 실행 버퍼와 제조업체의 지침에 따라 자기 정화 장비에 새 필터 컬럼을 설치합니다. 음 1, 양 1, 양 2 포트를 청소하고 제조업체의 지침에 따라 각 포트에서 50 ml의 튜브를 소개하는 &quot;클린 프로그램&quot;을 수행합니다. </li><li> 37 ° C의 물을 욕조에 빠르게 단계 1.2.22에 동결 된 세포를 해동. 50 ㎖의 튜브에 세포를 전송 천천히 차가운 완충액 20 ㎖로 재현 탁 셀. 450 XG에 5 분, 4 ℃로의 튜브를 원심 분리기. </li><li> 상층 액을 버린다. 차가운 버퍼로 세척 단계를 반복합니다. 생존을 결정하는 혈구를 사용하여 세포를 계산합니다. 원심 분리를 반복합니다 (5 분, 4 ° C에서 450 XG의 경우). 조심스럽게 뜨는을 제거합니다. 1 % 권 / 마우스 항 - HLA-ABC 항체의 부피를 포함하는 차가운 버퍼의 1 ML을 추가합니다. 30 분 동안 4 ° C에서 품어, 믹시부드럽게 매 5 분 ng를. </li><li> 차가운 버퍼 6 ML을 추가합니다. 450 XG에 5 분, 4 ° C에 대한 원심 분리기. 뜨는을 취소하고이 단계를 반복합니다. 10 % 부피 / 항 - 마우스 이차 항체 결합 된 자성 비드의 체적을 포함하는 차가운 완충액 1 ㎖에 재현 탁 된 세포. 부드럽게 매 5 분을 혼합, 15 분 동안 4 ° C에서 품어. </li><li> 차가운 버퍼 6 ML을 추가합니다. 450 XG에 5 분, 4 ° C에 대한 원심 분리기. 5 ml의 차가운 버퍼에 뜨는에 resuspend 폐기하십시오. </li><li> 자기 정화 장비를 사용하여 영양막 세포를 분리합니다. 부정적인 포트에서 세포를 수집하고 차가운 버퍼 20 ㎖를 추가합니다. 주 : 영양막 세포는 복잡한 HLA-ABC 포함하지 않으며, 따라서 음의 1 포트쪽으로 다른 유형의 세포로부터 분리에 관한 것이다. </li><li> 450 XG에 5 분, 4 ° C에 대한 원심 분리기. 뜨는을 취소하고 부드럽게 20 ㎖ 따뜻한 차 배지에서 세포를 재현 탁. 저기서 세포를 계산조지아 혈구는 가능성을 확인합니다. </li><li> 판 다음 밀도의 세포 : 0.15 × 10 6 세포 / 웰에서 96 웰 플레이트, 1.6 × 10 6 세포 / 웰에서 24 웰 플레이트 4.5 × 10 6 세포 / 웰 6 웰 플레이트. 37 ° C와 5 % CO 2에서 접시를 품어. </li><li> 16, 17 계측법 및 / 또는 18 면역 세포에 의해 흐름에 의해 영양막 세포의 순도를 확인합니다. 주 : immunopurified 세포의 순도는 사이토 케라틴 -7- 멘틴 및 17-19에 대해 FITC 접합 된 모노클로 날 항체를 사용하여 측정 하였다. 이 프로토콜은 Lanoix 등의 알 잘 상세한입니다. 2008 년 7. </li><li> 적어도 4 시간 후 비 부착 세포를 제거하고 8 % O 2 (도 2, 섹션 2 참조)로 구성된다 normoxia 챔버에 플레이트를 전송하는 따뜻한 배지로 두 번 세포를 씻어. </li></ol></li></ol> 2. 체외 유도 전열Normoxia의 n 및 저산소증 / 재산 소화 <ol><li> 인큐베이터 챔버 작업 (셋업에 대한도 2A 참조). <ol><li> 층류 후드에서 건조 함을 방지하기 위해 인큐베이터 챔버의 바닥에 멸균 수를 함유하는 페트리 접시로; 그 실의 우수한 가구에 미리 제조 세포 배양 플레이트 또는 플라스크 (단계 1.3.10)을 배치했다. </li><li> 후드 이외의 가스 호스 챔버 (입구 포트) 연결 (그림 2A : 5A, B 및 C) 가스 (8 % O 2 0.5 % O 2)의 튜브에 도달하는 (그림 2A : 7). 챔버의 양쪽 입구와 출구 포트를 엽니 다. 이 때, 가스 레귤레이터 (그림 2A : 4) 폐쇄 상태를 유지해야합니다. </li><li> 조심스럽게 가스 조절 밸브를 엽니 다 (그림 2A : 4). 25 L의 공기 흐름을 4 분 동안 세척 / min으로 완전히 챔버 내부의 공기를 대체한다. </li><li> 챔버를 세척 한 후, 그 입구 및 OU를 가스 조절기를 닫고챔버의 tlet 포트. </li><li> 유량계 출구 호스 빼고 (도 2a를 : 5C) 상기 챔버의 입구로부터 37 ℃ 세포 배양 인큐베이터 챔버를 배치했다. </li><li> 단계 2.1.3 후 가스를 1 시간으로 챔버를 작성하여 배지에서 현재 판, 플라스크에 존재하는 용존 공기를 교체합니다. </li><li> 를 반복하여 다른 가스 조성에 대한 2.1.6에 2.1.1 단계 (예를 들어, 2 % 임신 초기의 영양막 세포 배양 9 O 2). </li></ol></li><li> 산소 비율을 확인 (도 2B-C) <ol><li> 상기 챔버 내부 (셀)없이 세포 배양 배지 내의 산소의 농도를 확인하기 위해, 산소 어댑터에 연결된 산소 전극을 사용한다. 전압계에 산소 전극을 연결합니다. </li><li> 동일한 용액에서 검량선을 작성 (예를 들어, 세포 배양 배지) 공지의 산소 함량 (기체로 용액에 노출시킴으로써 예를 들어, 0 % 및21 % 산소). 판독은 각 농도에 대해 안정화 된 후, 챔버 내의 매질에 전극을 소개한다. 주 : 산소 농도 10 편견을 피하기 위해 동일한 깊이에서 모든 측정을 수행. </li></ol></li><li> trophoblasts에서 normoxia 및 저산소증 / 재산 소화 유도. <ol><li> 적절한 세포 배양 플라스크, 플레이트 또는 페트리 접시에 차 영양막 세포를 추가 한 후, 필요에 따라 치료를 수행합니다. </li><li> 병행하여, 챔버 내부 특정 조건마다 24 시간 (도 3)를 재생하기 원하는 가스 혼합물에 셀을 노출. </li></ol></li></ol>

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포유 동물에서 태아의 발달은 적절한 태반 기능에 직접적으로 의존한다. 건강 장애의 발달 기원은 이후의 삶에서 나타난 질환의 원인은 초기 개발 및 태반 태아 프로그래밍 30-32에서 기계적 역할을하고 있음을 다시 추적 될 수 있다는 가설에 기초한다. 그것은 영양 전달을 조절 유해한 노출 방지 및 주요 내분비 기능을 가지고 : 태반은 태아의 성장과 발전의 중요한 매개체이다. Kliman 등으로 개발. 실행 가능한 기본 cytotrophoblasts을 분리하는 재현 기술의 정상 및 비정상 태반 기능 (6)의 연구의 이정표입니다. 많은 연구자 태반 18,20,33,34 생리를 이해 시험 관내에서 특정 조건을 재현하기 위해이 기술을 채택했다. Petroff 등의 알에 의해 설명 된 바와 같이. 많은 단계가 격리 된 사이토의 정제하고 강력한 수율을 보장하는 것이 중요합니다영양막 세포 18. 예를 ...

인간 임신 중, 단핵 줄기 세포 인 cytotrophoblast 태반 세포는 빠르게 증식 또는 융모 extravillous cytotrophoblast 세포로 분화하거나. Extravillous cytotrophoblasts는 침략과 자궁 벽의 나선형 동맥을 개조. 융모 cytotrophoblasts 반면에, 다핵는 syncytiotrophoblast합니다 (syncytium) (1)를 형성하기 위해 증식 분화 퓨즈 계속한다. 융모 영양막 세포의 항상성의 유지 보수는 태아 웰빙과 건강한 임신을 위해 필수적이다. 사실, 융모 trophoblasts는 산소와 영양소의 모체 - 태아의 교환을 허용하고, 임신을위한 필수적인 호르몬을 생산하고 있습니다. 또한,는 syncytiotrophoblast는 모체 혈액 순환과 직접 접촉만을 셀형이며 필수적인 물리적 면역 장벽을 제공한다. 따라서,는 syncytiotrophoblast는 항상성 유지를위한 세포 사멸 및 교체를 받아야하고 AVO하기아이디 태반은 2-5 병리. 인간의 태반에서 차 융모 cytotrophoblasts를 분리하기 위해 1986 년 Kliman 등. (6)에 의해 개발 된이 기술은 융모 영양막 세포의 분화에 관여하는 분자 메커니즘 연구를 허용하여 태반 연구에 혁명을 일으켰습니다. 밀도 원심 분리 미디어에서 분리 한 다음 트립신과 DNase를 순차적 효소 digestions에 따라이 고전적인 기술은, (콜로 이달 실리카 입자는 폴리 비닐 피 롤리 돈에 의해 코팅, 또는 퍼콜)는 지금 융모 cytotrophoblast 세포를 분리하기위한 황금 표준으로 인식하고 있습니다. 이 기술은 자기 immunopurification, 이들 세포의 표면에 특이 항원의 발현 차이에 기초하여 비 융모 세포 융모 cytotrophoblasts 분리 절차에 의해 최적화 될 수있다. 우리 때문에 융모 membran 세포에 발현의 부재에 사람 백혈구 항원 ABC (HLA-ABC)를 선택한전자 7, 8. 태반은 임신 중 산소 수준에 극적인 변화를 겪는다 기관이다. 임신 초기에, 산소 비율은 생리 매우 낮음 (2 % O 2) 그러나 두 번째 및 세 번째 임신에서 산소화 온화한 수준 (8 % O 2)로 증가한다. 툴리 등. (9)는 태반 융모 내부 영양막 환경 시험 관내 재생 산소화 수준의 도전 및 변형도 표현형 변화를 초래할 수 있음을 설명했다. 따라서, 임신 8,9의 세 번째 임신시 태반 융모에있는 산소 장력을 모방 normoxia로 8 % 산소를 도입하는 것을 제안한다. Chen 등. (10)는 광범위 영양막 세포 배양 산소 장력과 관련된 여러 변수를 검토하고 pericellular 환경에서의 산소 농도를 결정하는 중요성을 입증 하였다. 융모의 산소 농도가 증가하는 경향혈관 생성에 기인. 계속 태반 융모 증가 혈류량과 과산화수소의 수준 (풍부한 반응성 산소 종) 혈관 형성 (11, 12)을 제어하는 중요한 신호이다. 임신 합병증, 혈관 생성의 결핍은 저산소증, 더욱 중요한 것은, 산소 간헐적 변동 (호출 저산소증 / 재산 소화)를 생성한다. 이러한 조건은 태반과 태아의 생존 13,14 타협 산화 스트레스의 비정상적인 증가로 이어집니다. 융모 cytotrophoblasts 그들이는 syncytiotrophoblast로 분화 될 때까지 정상 산소 상태 (8 % O 2)에서 유지되는 다음과 같이 영양막 세포가 저산소증 / 재산 소화의 에피소드 중 생체 내에서 받아야 변화는 시험 관내에서 모방 할 수 있습니다. 그들은 다음 normoxia (재산 소화)의 추가 18 시간 뒤에, 4 시간 동안 저산소 조건 (0.5 % O 2)을 실시한다. 이 저산소증 / 재산 소화 방식을 사용하여, 예를 trophoblasts특정 임신 합병증에서 관찰 된 바와 같이, 하이드 록시 에틸는, 산화 환원 상태 및 고유 세포 사멸 (8)의 증가 수준을 규제 완화. 따라서, 이는 태반 저산소증 / 재산 소화와 관련 임신 합병증을 방지하기 위해 새로운 예방 및 치료 방법을 평가하기 위해 시험 관내 모델에서 유용하다. 태반 세포는 산화 스트레스와 태반 기능 부전 (15)를 미연에 방지 할 수있는 능력 등 여러 가지 중요한 기능을 가지고 멜라토닌을 생산하고 있습니다. 여기, 우리는, 분자 세포 및 기능 수준 8시 태반의 영양막 세포에서 멜라토닌의 보호 효과를 입증하는 데 사용되는 실험 방법 및 세포 모델을 제시한다.

<table><tbody><tr><td>곡선 형 Metzenbaum 가위</td><td>Shandon</td><td>9212</td><td>수술 장비 (세포 분리) (2 개)</td></tr> <tr><td>스플린터 집게 미세 41/2 인치</td><td>Fisherbrand</td><td>13-812-42</td><td>수술 장비 (세포 분리) (2 개)</td></tr><tr><td>가위 4.5 Str 해부</td><td>Fisherbrand</td><td>08-940</td><td>수술 장비 (세포 분리) (2 개)</td></tr><tr><td>거즈 스폰지 10cm x 10cm</td><td>Cardinal Health</td><td></td><td></td></tr><tr><td>361020733 직사각형 유리 베이킹 디쉬</td><td>Pyrex</td><td>1105397</td><td>유리제품 (2.8 L)</td></tr><tr><td>Funnel Buchner</td><td>Coorstek Inc</td><td>10-356E</td><td>유리제품 (지름 114mm)</td></tr><tr><td>시계 유리&nbsp;</td><td>pyrex</td><td>9985100EMD</td><td>유리 제품</td></tr><tr><td>포르말린 용액, 중성 완충, 10%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128-4L</td><td>조직학적 조직 고칠 용액</td></tr><tr><td>Trypsinizing Flasks</td><td>Wheaton</td><td>355395</td><td>Glassware (1 unit)</td></tr><tr><td>일회용 배양 튜브</td><td>Kimble</td><td>73750-13100</td><td>유리 제품</td></tr><tr><td>붕규산 유리 파스퇴르 피펫(22.8cm)</td><td>Fisherbrand</td><td>K63B1367820C</td><td>유리제품</td></tr><tr><td>250 ml 유리 비커</td><td>Fisherbrand</td><td>KFS14005250</td><td>유리제품</td></tr><tr><td>유리 미디어 병 캡 포함</td><td>Fisherbrand</td><td>KFS14395250</td><td>유리제품 (8개)</td></tr><tr><td>50 ml Corex Tube&nbsp;</td><td>Corning</td><td>8422-A</td><td>(1 unit)</td></tr><tr><td>15 ml 폴리스티렌 원심분리기 튜브</td><td>Corning</td><td>430791</td><td></td></tr><tr><td>50 ml 폴리스티렌 원심분리기 튜브</td><td>Corning</td><td>430829</td><td></td></tr><tr><td>10 ml 혈청학적 피펫</td><td>Corning</td><td>11415038</td><td></td></tr><tr><td>세포 여과기 100 &mu; m 나일론</td><td>코닝</td><td>431752</td><td></td></tr><tr><td>흡수 라이너</td><td>사이언스웨어</td><td>1199918</td><td></td></tr><tr><td>500&nbsp; ml 병 상단 필터</td><td>코닝</td><td></td><td>모공: 0.22&nbsp; &마이크로; m / medium 및 HBSS 준비</td></tr><tr><td>2 ml Criogenic 바이알</td><td>Corning</td><td>430488</td><td></td></tr><tr><td>냉동 용기, Nalgene Mr.</td><td>Frosty Sigma-Aldrich</td><td>C1562-1EA</td><td></td></tr><tr><td>연동 펌프</td><td>Pharmacia Fine Chemicals</td><td>P3 모델</td><td></td></tr><tr><td>흔들리는 수조</td><td>피셔</td><td>모델 127</td><td></td></tr><tr><td>진공 펌프</td><td>ABM</td><td>4EKFS6CX-4</td><td></td></tr><tr><td>염화나트륨</td><td>Fisherbrand</td><td>EC231-598-3</td><td>식염수 0.9%</td></tr><tr><td>행크' s 완충염 용액 (Hbss)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>H2387</td><td>수량 : 소화 용액 1 L에 대해 9.25 (1 바이알)</td></tr><tr><td>Hydroxypiperazineethansulphonic Acid (Hepes)</td> <td><a name = "RANGE! B29">Life Technologies</A></td><td>15630-080</td><td>25ml(1M) 분해액 1L용</td></tr><tr><td>트립신 I형</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8003</td><td>9,888 U</td></tr><tr><td>Deoxyribonuclease Type Iv Roche</td><td></td><td>10-104-159-001</td><td>402,000 U</td></tr><tr><td>염화칼슘</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C4901</td><td>100mM</td></tr><tr><td>황산 마그네슘</td><td>베이커</td><td>2500-01</td><td>800mM</td></tr><tr><td>둘베코' s Modified Eagle Medium High Glucose (Dmem)</td> <td>Life Technologies</td><td>10564-045</td><td></td></tr><tr><td>페니실린 / 스트렙토 마이신 황산염</td><td>Hyclone</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Corning</td><td>35-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>Percoll</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1644</td><td>밀도 원심 분리 매체 구배. 용량: 36 ml</td></tr><tr><td>이소프로판올</td><td>아크로스</td><td>42383-0010</td><td>50 ml</td></tr><tr><td>디메틸 설폭사이드</td><td>시그마-알드리치</td><td>472301</td><td></td></tr><tr><td>오토맥스 자기 분리기&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>모델 003</td><td></td></tr><tr><td>오토맥&nbsp; 칼럼&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-021-101</td><td></td></tr><tr><td>자동 실행 버퍼&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-091-221</td><td></td></tr><tr><td>http://www.miltenyibiotec.com/~/media/Images/Products/Import/0001100/IM0001131.ashx?force=1 자동 헹굼 솔루션&nbsp;</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-091-222</td><td>http://www.miltenyibiotec.com/en/products-and-services/macs-cell-separation/cell-separation-buffers/automacs-rinsing-solution.aspx</td></tr><tr><td>Anti-Human Hla Abc 정제 클론 W6/32</td><td>Affymetrix eBioscience</td><td>14-9983-82</td><td>안티-마우스 항체</td></tr><tr><td>Anti Mouse Igg Microbeads</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130048401</td><td></td></tr><tr><td>다중 웰 플레이트 -&nbsp; 6 웰 포함 뚜껑</td><td>Corning</td><td>3335</td><td>셀 바인딩 표면</td></tr><tr><td>다중 웰 플레이트 -&nbsp; 뚜껑이 있는 24</td>웰 <td>Corning</td><td>3337</td><td>셀 바인딩 표면</td></tr><tr><td>다중 웰 플레이트 -&nbsp; 뚜껑이 있는 96</td>웰 <td>Corning</td><td>3300</td><td>셀 바인딩 표면</td></tr><tr><td>모듈식 인큐베이터 챔버&nbsp;</td><td>Billups-Rothenberg</td><td>MIC-101</td><td>두 개 세트는 정상 산소 및 저산소증/재산소 조건을 동시에 생성하는 데 필요합니다</td></tr><tr><td>. 단일 유량계</td><td>Billups-Rothenberg</td><td>SFM3001</td><td></td></tr><tr><td>50mm 인라인 필터</td><td>Whatman</td><td>6721-5010</td><td>PTFE, 기공: 1.0 &마이크로; m</td></tr><tr><td>가스 레귤레이터</td><td>Pro Star</td><td>PRS301233</td><td>노르목시아와 저산소/재산소 조건을 동시에 생성하기 위해 두 세트가 필요합니다</td></tr><tr><td>. 가스 호스 Class Vi Clear 5/16&nbsp;</td><td>Parker</td><td>100-05070102</td><td>3개 ~ 0.5 m</td></tr><tr><td>17 mm 조절 가능한 가스 호스 클램프</td><td>타이랩</td><td>THCSS-16</td><td></td></tr><tr><td>Normoxia 가스 실린더&nbsp;</td><td>Praxair</td><td>NI CDOXR1U-K</td><td>사이즈 K (3rd 삼분기 구성: 5% CO2, 8% O2, Bal. N2)</td></tr><tr><td>Normoxia 가스 실린더&nbsp;</td><td>Praxair</td><td>NI CDOXR1U-K</td><td>크기 K (3rd 삼분기 구성: 5% CO2, 0.5% O2, Bal. N2)</td></tr><tr><td>산소 미세전극 Mi-730</td><td>미세전극 INC</td><td>84477</td><td></td></tr><tr><td>산소 어댑터</td><td>미세전극 INC</td><td>3572</td><td></td></tr><tr><td>ROS 검출 시약: CM-H2DCFDA&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>C-400</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-hCG ELISA 키트&nbsp;</td><td>DRG internatinal</td><td>EIA-4115</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Vimentin 정제 항체</td><td>eBioscience</td><td>14-9897</td><td>호스트: 마우스</td></tr><tr><td>Anti-Cytokeratin 7 (FITC) 항체&nbsp;</td><td>Abcam</td><td>ab119697</td><td>호스트: 마우스</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 염소 안티 무스 IgG H& L 항체</td><td>Life Technologies</td><td>A-11029</td><td></td></tr></tbody></table>

인간의 기본 영양막 세포 멜라토닌에 대해 저산소증의 보호 효과를 연구하기 위해 세포 배양 모델 / 재산 소화에 의한 혼란

Human Primary Trophoblast Cell Culture Model to Study the Protective Effects of Melatonin Against Hypoxia/reoxygenation-induced Disruption

이 프로토콜은 융모 세포영양세포세포(villous cytotrophoblast cells)가 연속적인 효소 분해에 의해 만삭 태반에서 분리된 후 밀도 원심분리, 배지 구배 분리 및 면역자기 정제를 수행하는 방법을 설명합니다. in vivo에서 관찰된 바와 같이, 1차 배양에서 단핵 융모 세포영양아세포 세포는 72시간 후에 다핵 세포영양아세포 세포로 분화합니다. 정상산소(8% O2)와 비교했을 때, 저산소증/재산소화(0.5% / 8% O2)를 겪는 융모 세포영양세포세포는 산화 스트레스와 내인성 세포사멸(ininsic apoptosis)이 증가하는데, 이는 생체내에서 관찰되는 임신 중 임신 합병증(preeclampsia, 조산, 자궁 내 성장 제한)과 같은 합병증과 유사합니다. 이러한 맥락에서, 저산소증/재산소 조건에서 배양된 1차 융모막아세포는 인간 태반에서 변형되는 메커니즘과 신호 전달 경로를 더 잘 이해하고 특정 임신 장애를 예방하는 효과적인 약물을 찾는 것을 용이하게 하는 독특한 실험 시스템을 나타냅니다. 인간 융모영양아세포(villous trophoblast)는 멜라토닌을 생성하고 합성 효소와 수용체를 발현합니다. 멜라토닌은 자간전증과 자궁 내 성장 제한에 대한 치료법으로 제안되었는데, 이는 멜라토닌의 보호 항산화 효과 때문입니다. 이 논문에 기술된 1차 융모 세포영양아세포 모델에서 멜라토닌은 정상 산소 상태의 영양막세포에 영향을 미치지 않지만 저산소증/재산소화에 의해 파괴된 세포융합세포의 산화환원 균형을 회복시킵니다. 따라서 1차 배양에서 인간 융모 영양막 세포는 저산소증/재산소화 중 태반 기능에 대한 멜라토닌의 보호 효과 뒤에 있는 메커니즘을 연구하는 훌륭한 접근 방식입니다.

질식 분만에 의해 얻어진 일반 용어 태반에서 분리 및 융모 cytotrophoblast 세포의 immunopurification 1 × 10 8 가능한 세포를 얻었다. 태반은 350g 무게 원반 모양과 투명 막에 4cm 높이 직경 19cm였다. 더 자엽 기형은 발견되지 않았다. 탯줄은 paracentral 현지화 및 56cm의 길이를 가지고 있었다. 순도는 멘틴 및 사이토 케라틴-7 마커를 사용하여 유동 세포 계측법에 의해 평가되었다. 세포의 98 % 이상은 immunopurification 얻은 융모 trophoblasts 세포의 순도를 확인하는 사이토 케라틴-7 멘틴 대한 음성 및 양성이었다. 융모 cytotrophoblast 세포는 1mM의 멜라토닌의 존재 또는 부재하에 정상 산소의 조건 하에서 96 웰 배양 플레이트에 첨가 하였다. 융모 cytotrophoblasts의 생화학 적 분화는 β-인간 융모 성 성선 자극 호르몬의 수준을 결정하여 모...

이 원고는 저산소증/재산소화 하에서 배양된 면역정제된 인간 융모 세포영양아세포 세포의 독특한 체외 모델을 제시합니다. 이 모델은 멜라토닌과 같은 유망한 치료법이 산화 스트레스 증가 및 태반 기능 변화와 관련된 임신 합병증에 대한 보호 효과를 연구하는 데 적합합니다.

This protocol describes how villous cytotrophoblast cells are isolated from placentas at term by successive enzymatic digestions, followed by density ...

이 절차의 전체적인 목표는 저산소증 또는 재산소화 조건에서 배양된 면역 정제 일차 인간 융모 세포영양막 세포를 사용하여 멜라토닌의 보호 효과를 연구하는 것입니다. 이 방법은 저산소증 및 재산소화 상태의 태반과 관련된 임신 합병증의 메커니즘과 신호 전달 경로를 이해하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 산화 스트레스 증가와 관련된 임신 장애에 대해 멜라토닌과 같은 유망한 치료법을 연구하는 데 적합하다는 점입니다.일반적으로 이 방법을 처음 접하는 연구자들은 조직 다지기와 밀도 원심분리 매질 구배 준비와 같은 융모 세포영양막 분리 단계에서 어려움을 겪습니다. 이 방법은 임신 후기 trophoblast에 대한 통찰을 제공할 수 있을 뿐만 아니라, 임신 초기 태반이나 다른 종의 태반과 같은 다른 시스템에도 적용될 수 있습니다. 많은 단계가 직접 보지 않고는 배우기 어렵기 때문에 이 방법의 시각적 시연은 중요하며, 이를 통해 재현성을 높이고 학습 시간을 단축할 수 있습니다.본 절차의 시연은 저희 연구실의 대학원생인 Andree-Anne Hudon-Thibeault, Philippe Wong Yen, Eugenia Assuncao가 진행하겠습니다. 먼저 탯줄의 태반 삽입 부위를 따라 절단한 후, 조직학적 분석을 위해 300 ml의 조직 고정액에 보관하십시오. 그다음 태반 전체를 큐브 모양으로 절단하십시오.식염수가 투명해질 때까지 큐브를 식염수로 반복해서 세척하여 혈구 세포를 제거합니다. 다음으로, 태반막을 제거하고 조직을 잘게 다져 혈관을 추가로 제거하고 석회화 부위를 노출시킵니다. 그 후 핀셋으로 혈관을 단단히 잡고 다져진 조직들을 제거합니다.그 후, 잘게 다진 태반을 뷰크너 깔때기에 넣고 100 ml의 식염 완충액으로 조직을 헹굽니다. 30에서 35 g의 다져진 조직이 얻어질 때까지 계속 다진 후, 얼음 위에 놓인 칭량 보트에 담습니다. 이어서, 다진 태반 조직을 트립신 처리 플라스크에 넣습니다.그 다음, 준비된 소화액 1 150 ml를 트립신 처리 플라스크에 옮기고 잘 섞습니다. 트립신 처리 플라스크를 진탕 항온수조에 30분 동안 두고, 소화가 균일하게 이루어지도록 5분마다 플라스크를 수동으로 섞어줍니다. 1차 소화가 끝나면 트립신 처리 플라스크를 수조에서 꺼내어 45도 각도로 1분간 기울여 태반 조직을 침전시킵니다.10 ml 멸균 피펫을 사용하여 조직이 흡입되지 않도록 주의하며 상층액 약 80 ml를 제거하여 버립니다. 그 후, 소화 용액 2 100 ml를 트립신 처리 플라스크에 옮기고 잘 섞어줍니다. 트립신 처리 플라스크를 진탕 수조에 30분 동안 넣고, 균질한 소화를 위해 5분마다 플라스크를 수동으로 섞어줍니다.두 번째 소화 과정이 끝나면 트립신 처리 플라스크를 항온수조에서 꺼내고 1분 동안 45도 각도로 기울입니다. 상층액 80 ml를 제거하여 100 µm 메쉬의 셀 스트레이너가 장착된 원심분리 튜브로 조심스럽게 옮깁니다. 세 번째와 네 번째 소화를 수행하고, 두 번째, 세 번째, 네 번째 소화에서 얻은 상층액을 15 ml 원심분리 튜브에 13.5 ml씩 분주합니다.그다음, 별도의 층을 형성하기 위해 각 튜브 바닥에 1.5 ml의 FBS를 천천히 조심스럽게 첨가합니다. 실온에서 20분 동안 튜브를 원심분리합니다. 그 후, 두 층 사이에 형성된 흰색 막을 포함하여 상층액과 FBS 층을 흡입하여 제거합니다.펠릿을 1 ml의 따뜻한 세포 배양 배지에 다시 현탁합니다. 모든 튜브에서 현탁된 세포를 수집하여 소화 1회당 하나의 튜브로 합칩니다. 다음으로, 따뜻한 세포 배양 배지를 사용하여 전체 부피를 15 ml로 맞춥니다.상온에서 10분 동안 세포를 원심분리합니다. 그 후, 진공 펌프를 사용하여 상층액을 제거하되 펠렛이 흡입되지 않도록 주의합니다. 이어서, 따뜻한 세포 배양액 1 ml로 펠렛을 부드럽게 재현탁합니다.모든 소화 반응 튜브의 내용물을 하나로 모읍니다. 부피가 8 ml가 되도록 따뜻한 세포 배양 배지를 추가합니다. 다음으로, 세포 현탁액을 분리 기울기 층 위에 조심스럽게 층 형성시키고 실온에서 30분 동안 원심 분리합니다.원심분리 후, 백라이트를 사용하여 밀도 구배 내의 서로 다른 세포층을 확인합니다. 40%에서 50% 밀도의 원심분리 매질 사이에 위치한 영양막 세포 및 오염 세포 층을 찾고, 진공 펌프로 상층부를 제거합니다. 그 후, 목적하는 세포가 포함된 층의 세포를 수집하여 50 ml 원심분리 튜브로 옮깁니다.세포 배양 배지를 사용하여 부피를 50 ml로 맞춘 후, 상온에서 10분 동안 원심분리합니다. 멸균 조건 하에서, 단계 1.2.22에서 동결시킨 세포를 37°C 항온수조에서 빠르게 해동합니다. 해동된 세포를 50 ml 튜브로 옮기고 20 ml의 차가운 running buffer로 부드럽게 재부유시킵니다.다음으로, 튜브를 4 °C에서 5분 동안 원심 분리합니다. 상층액을 제거하고 차가운 running buffer를 사용하여 세척 단계를 반복합니다. 그 후, 헤모사이토미터를 사용하여 세포 수를 측정해 생존율을 결정하고, 원심 분리를 다시 반복합니다.그 후, 상층액을 조심스럽게 제거하고 1% 부피당 부피의 마우스 anti-HLA ABC 항체가 포함된 차가운 running buffer 1 ml를 세포에 첨가합니다. 세포를 4 °C에서 30분 동안 배양하며, 5분마다 부드럽게 섞어줍니다. 배양이 끝나면 차가운 running buffer 6 ml를 추가하고 4 °C에서 5분 동안 원심분리합니다.상층액을 제거하고 이 단계를 반복합니다. 그런 다음, 부피 대비 10%의 anti mouse secondary antibody 결합 마그네틱 비드가 포함된 차가운 running buffer 1 ml에 세포를 재부유시킵니다. 이후 4 °C에서 30분 동안 세포를 배양하며, 5분마다 다시 부드럽게 혼합합니다.그 후, 6 ml의 차가운 러닝 버퍼를 추가하고 4 °C에서 5분 동안 원심분리합니다. 상층액을 제거하고 세포를 5 ml의 차가운 러닝 버퍼에 다시 현탁합니다. 이어서, 자기 정제 장치를 사용하여 영양막 세포를 분리하고 음성 포트(negative port)에서 세포를 수집합니다.냉각된 running buffer 20 ml를 세포에 추가하고 4 °C에서 5분 동안 원심분리합니다. 상층액을 제거하고, 세포 생존율을 측정하기 위해 세포 수를 세기 전 10% FBS가 포함된 따뜻한 일차 세포 배양 배지 20 ml에 세포를 부드럽게 재현탁합니다. 이제 세포를 플레이트에 분주하고 37 °C, 5% CO2 조건에서 배양합니다.최소 4시간 후, 부착되지 않은 세포를 제거하기 위해 따뜻한 배양액으로 세포를 두 번 헹굽니다. 그런 다음, 8%O2로 채워질 상온 산소 챔버로 플레이트를 옮깁니다. 후드 밖에서 챔버 입구 포트를 가스 호스에 연결하여 가스 튜브에 닿게 합니다.챔버의 입구 및 출구 포트를 모두 열고 가스 레귤레이터는 닫힌 상태로 유지합니다. 그 후, 가스 레귤레이터 밸브를 조심스럽게 열고 분당 25 liters의 공기 흐름으로 4분 동안 퍼지하여 챔버 내부의 공기를 완전히 교체합니다. 챔버 퍼지를 마친 후, 가스 레귤레이터를 닫고 이어서 챔버의 입구 및 출구 포트를 닫습니다.유량계 배출 호스를 챔버의 입구 포트에서 분리하고, 챔버를 37 °C의 세포 배양 인큐베이터에 1시간 동안 둡니다. 25 L/min의 유량으로 4분 동안 챔버에 가스를 다시 채워 플레이트, 플라스크 및 배양액에 용해되어 있는 기존 공기를 교체합니다. 이 그림은 융모성 영양막 분화 과정 중 멜라토닌이 beta human chorionic gonadotropin 분비에 미치는 영향을 보여줍니다.絨毛 세포성 영양막세포(villous cytotrophoblasts)의 합성영양막세포(syncytiotrophoblasts)로의 생화학적 분화는 beta human chorionic gonadotropin 수치의 증가로 결정되었으며, 여기에 나타난 바와 같이 세포 배양 72시간 후에 최대치에 도달했습니다. 멜라토닌 처리는 vehicle 대조군과 비교했을 때 8% oxygen 환경에서 배양된 세포성 영양막세포의 분화에 영향을 미치지 않았습니다. 여기에 제시된 것은 배양 72시간 후 정상산소(normoxia) 또는 저산소-재산소화(hypoxia reoxygenation) 상태의 합성영양막세포 내 세포간 활성산소종(reactive oxygen species) 수준에 1 millimolar 멜라토닌이 미치는 영향입니다.멜라토닌 처리는 활성 산소 수준을 정상 산소 농도 수준으로 회복시켜, 저산소-재산소화로 인해 증가된 산화 스트레스로부터 합포체성 영양막세포를 보호합니다. 이 도식은 일차 합포체성 영양막세포에서 저산소-재산소화로 유도된 산화 스트레스 및 미토콘드리아 세포 사멸에 대한 멜라토닌의 광범위한 세포 간 보호 효과를 보여줍니다. 숙달되면 분리 기술은 8시간 이내에 완료할 수 있으며, 적절하게 수행될 경우 정제된 영양막세포를 얻는 데 3시간이면 충분합니다.저산소-재산소화 기법을 이용한 cytotrophoblast의 분리 정제 및 일차 세포 배양 기술이 개발됨에 따라, 임신 합병증을 더 잘 이해하고 태반 및 태아의 건강을 개선할 수 있는 길이 열렸습니다. 이 절차를 수행할 때 면역 정제 종료 후 융모 영양막 세포의 순도를 평가하는 것이 중요하며, 예를 들어 유세포 분석법을 통해 확인할 수 있습니다.이 영상을 시청한 후에는 면역 정제된 일차 융모 세포영양막 세포를 분리하고 이를 저산소-재산소화 조건에서 배양하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

전통적인 2 차원 세포 배양 기술은 종종 차별화 마커, 크린 시토킨 및 성장 요인과 관련하여 변경된 특성의 결과. extravillous trophoblast 세포 라인과 함께 그림과 같이 회전 세포 배양 시스템의 세 가지 차원 세포 배양 (RCCS)는 이러한 요소 중 많은 표현 reestablishes.

인간 세포 배양을위한 회전 세포 배양 시스템 : 모델로 인간 Trophoblast 셀

여기에서는 뼈 형태 생성 단백질 4 및 Activin/Nodal 경로의 억제제를 사용하여 인간 만능 줄기 세포에서 인간 융막 세포를 효율적으로 생성하는 프로토콜을 제시합니다. 이 방법은 인간 만능 줄기 세포의 효율적인 분화에 적합하며 유전자 조작을 위해 많은 양의 세포를 생성할 수 있습니다.

인간 다 능성의 체외 분화에서 융모 세포로 줄기 세포

여기에 제시 된 인간 placental villous 조직의 기본 세포 배양에 대 한 cytotrophoblasts의 격리 다음 샘플링에 대 한 프로토콜이입니다. TNFα와 trophoblasts의 치료 비만 자궁내 환경에 염증이 분자 대상 산 모 비만과 염증 반응과에 의해 규제의 발견을 촉진 한다.

태에서 Autophagy의 규제에 모성 비만과 관련 된 염증의 효과 연구 하는 기본 인간 Trophoblast 모델

여기, 우리는 3 개의 생체 외 분석 실험을 사용 하 여 인간의 trophoblast 셀에 셀 운동 평가 위한 매우 액세스할 수 있는 프로토콜 제시: 스크래치 분석 결과, transwell 침략 분석 결과 및 세포 확산 분석 실험.

마이그레이션, 침공, 불멸 하 게 인간의 첫 번째 임신 Trophoblast 셀 라인의 확산을 평가를 생체 외 분석 실험에서

여기에서, 우리는 시험관내 이식 기간을 통해 그(것)들을 배양하고, 단 하나 세포로 소화하고 추가 조사를 위한 초기 trophoblast 세포를 수집하는 유리한 인간 blastocysts를 온난화하는 방법을 기술합니다.

페리 이식 단계 인간 배아에서 트로포 블라스트 세포의 단일 세포 수집

심근 보호에 저체온증의 다른 정도의 뚜렷한 영향은 철저하게 평가되지 않았습니다. 본 연구의 목표는 인간 심근세포 기반 모델에서 다른 저체온증 치료에 따른 세포 사멸 의 수준을 정량화하여 미래의 심층 분자 연구의 토대를 마련하는 것이었습니다.

인간 심장 근세포 모델에서 저체온증-사전 조절 에 따른 심근 보호의 체외 평가

이 연구는 절제 처리 중 망막 무결성을 손상시키는 것을 방지하는 새로운 인간 organotypic 망막 문화 (HORC) 모형을 개발하는 것을 목표로 합니다. 이것은 과대 유리체와 근본적인 망막 안료 상피 코로이드 (RPE-choroid) 및 clera로 망막을 배양해서 달성됩니다.

소설 인간 오르가노피 망막 문화 기술의 특성화

여기서는 고대사성 근위 소관 상피 세포에서 저산소증/산소 재산화 손상을 모델링하는 시험관 내 프로토콜을 설명합니다. 이 모델은 대사 스트레스 유발 손상을 유도하도록 설계되었으며, 근위 세뇨관 손상 지표의 발현과 미토콘드리아 호흡 기능 평가를 통해 측정할 수 있습니다.

근위 관 상피 세포에서 저산소증/재산소화 손상 모델링

자가 조립식 인간 심장 오가노이드(hCOs)는 인간 심장 발달과 질병을 모델링하기 위한 신흥 시스템입니다. 여기서는 저산소 재산소화를 통한 hCO의 생성 및 손상 방법론과 손상 후 예상되는 조직학적 및 기능적 결과에 대한 세부 정보를 제공합니다.

자가 조립 인간 심장 세포에서의 저산소증-재산소화 손상 모델

tBHP를 이용한 HNM 조기 노화 유도 표준화 프로토콜, 성장 정지, SA-β-갈락토시다제 활성, SASP 인자 등 주요 노화 지표 분석의 표준화 프로토콜.

테르트-부틸 하이드로퍼옥사이드를 이용한 스트레스 유발 조기 노화 유도 프로토콜

배우세요 저산소증 및 재산소화 조건에서 멜라토닌이 인간 융모 세포영양막 세포에 미치는 보호 효과를 연구하는 세포 배양 모델을 사용하는 방법입니다. 이 기법은 산화 스트레스 관련 임신 합병증의 치료 가능성을 탐구하는 데 활용됩니다.

인간의 기본 영양막 세포 멜라토닌에 대해 저산소증의 보호 효과를 연구하기 위해 세포 배양 모델 / 재산 소화에 의한 혼란

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