Name: Zebrafish의에서 콩팥 세포 독소 미세 주입은 급성 신장 손상을 모델링하기 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
Description: 배우세요 제브라피시를 이용한 신장독성 물질 미세주입 기법으로 급성 신장 손상을 모델링하는 방법을 실시간 영상으로 세포 손상과 재생 과정을 관찰하여 신장 질환 연구에 활용하세요.

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이 작품은 NIH 보조금 DP2OD008470에 의해 부분적으로 지원되었다. 또한, RAM은 노트르담 대학원 대학교에서 제공하는 자금에 의해 부분적으로 지원되었다. 우리는 줄기 세포 및 노트르담 대학의 재생 의학을위한 생물 과학학과, Zebrafish의 연구를위한 센터 및 센터의 직원을 감사드립니다. 우리는 특히 신장 생물학,이 작품에 대한 자신의 도움이 피드백에 대한 토론을 결합하기위한 실험실의 구성원을 감사드립니다.

이 프로토콜에 설명 된 제브라 피쉬 배아 작업을위한 절차는 노틀담 대학에서 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. 솔루션 1. 준비 <ol><li> RT에서 73.0 g의 NaCl, 3.15 g의 KCl, 9.15 g의 CaCl2를 증류수 5 L의 9.95 g의 황산 및 저장을 혼합하여 E3 배아 매체 50X 스톡 용액을 만든다. </li><li> 제브라 피쉬 배아의 배양를 들어, 다음 매 1 살균제 역할을 1 배 E3의 L, 및 상점에 0.05 % 메틸렌 블루의 200 μl를 추가, 증류수 1X 작업 솔루션 E3 배아 미디어 주식의 50 배 원액을 희석 RT. </li><li> 0.06 mg을 PTU와 50X E3 재고 40ml를 조합하여 0.003 %, 1- 페닐 -2- 티오 우레아 (PTU)와 E3 배아 매체 색소 블로킹 용액을 만든다. 증류수 2 L의 총 부피를 가져온다. </li><li> 솔루션에 PTU 분말을 얻을 RT에서 E3 / PTU의 O / N를 저어. 그런 다음에 E3 / PTU를 저장RT. E3 / PTU는 약 1 주일의 수명을 가지고 있으며, 이전 솔루션은 제브라 피쉬 애벌레에 색소 침착 개발을 차단 덜 효과​​적 일 것입니다 있습니다. </li><li> 500㎖의 증류수에 Tricaine 1 g을 첨가하여 0.2 % Tricaine (MS-222)의 마취제 용액을 1 M 트리스, pH가 9.5 7.2 pH를 조정한다. </li><li> Tricaine 4 ℃에서 추가 0.2 %의 1/10 번째 볼륨, 1X E3 (NO 메틸렌 블루)의 용액을 배치하여 촬상하는 2 % 메틸 셀룰로오스 용액을 준비. 주 : 메틸 셀룰로오스 용액을 부드럽게 현미경 살아있는 배아를 안정화하기 위해 사용되는 두꺼운 투명한 용액이다. 조작이 수행 된 후 배아는 동물의 부상과 같은 시편의 후속 단계에서 현미경을 사용하지 않고 메틸 셀룰로오스를 용해 1 배 E3에서 세척 할 수 있습니다. </li><li> 4 ° C로 냉각하면 볶음 접시에 적극적으로 1 배 E3 / Tricaine 솔루션을 저어 점차 메틸의 적절한 금액을 추가셀룰로오스 분말을 격렬히 교반하면서 계속. 점차적 메틸 불용성 응집체의 형성을 방지하기 위해 용액에 분말을 추가한다. </li><li> 모든 분말이 2 % 메틸 셀룰로즈 / E3 / tricaine 용액에 혼합 한 후 39 ° C 냉장실 O / N의 합성 용액을 교반한다. 참고 : 차가운 온도가 완전히 분말을 용해에 가장 적합합니다. 용액을 하룻밤 후에 명확하지 않으면, 추가적인 업무 시간 및 / 또는 제 O / N 동안 교반한다. </li><li> 30 분 또는 2 시간까지 4 ° C에서 고속 (12,000 XG)에서 1.5 ml의 튜브와 스핀에 2 % 메틸 셀룰로오스 / E3 / tricaine 솔루션 나누어지는 혼합물로부터 기포를 제거합니다. </li><li> 장기간 저장을 4 ℃에서 2 % 메틸 셀룰로즈 / E3 / Tricaine 용액을 놓는다. 참고 : 이전에 사용에 분취 량은 제브라 피쉬 표본 작업을위한 RT에 미리 예열해야합니다. </li></ol> 도구 2. 준비 <ol><li> 포에 사용되는 배아의 조작 도구를 준비5 &quot;직선 해부 바늘의 끝 부분에 젤 로딩 팁을 부착하여, 미세 주입을 위해 배아를 sitioning, 테이프 나 순간 접착제로 고정합니다. </li><li> 먼저 불을 배치하여 바늘 풀러를 사용하여 미세 주사 바늘을 준비 악기에 필라멘트와 10cm의 붕규산 유리를 연마 핸들을 조여 붕규산 유리를 고정합니다. </li><li> 미세 테이퍼 바늘을 패션 할 붕규산 유리를 잡아 당깁니다. 다음 설정을 사용 : (540)를 가열, (245), 속도 (200), 시간 (125)를 잡아 당깁니다. </li><li> 모델링 점토의 스트립을 중단 페트리 접시 안에 장소 바늘, 바늘 끝을 보호하고 먼지 축적을 방지하기 위해 덮여 접시를 유지합니다. </li><li> microinjections 용 바늘을 준비 완료하려면 약 0.05-0.1 mm의 직경을 가진 예리한 각도 분사구를 만들 바늘의 인출 단부를 절단하는 면도날 에지 또는 미세 핀셋을 사용한다. </li><li> 마이크로 인젝션 트레이를 확인하기 위해, 10에서 1.5 % 아가 로스 / E3 용액을 조제0 ㎖의 삼각 플라스크 후 약 10 분 동안 실온에서 냉각 할 수 있도록 전자 레인지에 종기에 E3를 가열하여 아가 로스를 녹인다. </li><li> 약 0.5 cm의 깊이 기반을 만드는 페트리 접시로 냉각 아가 / E3 용액을 붓는다. 이 약 0.3 cm의 깊이와 제 2 층을 부어과 조립식 배아 잘 금형을 삽입하고 아가로 오스 실온에서 고화 할 수 응고합니다. 주 : 기포의 수를 감소시키는 각도로 아가로 주형을 두는 상단 한천 / E3 층에 몰드를 삽입 할 때. </li><li> 전체 미세 주입 트레이가 설정되면, 조립식 배아 그럼 4 ° C에서 E3 솔루션 및 저장과 접시를 작성, 천천히 그리고 신중하게 scoopula를 사용하여 성형 올립니다. </li></ol> 3. 배아 준비 <ol><li> 상대 챔버에 칸막이를 배치하여 제브라 피쉬 상대 탱크를 설정하고 시스템 물을 채우십시오. </li><li> 디바이더 (S)의 각 측면에 하나의 물고기를 배치UCH는 각 결합 챔버는 한 여성과 한 남성 물고기를 포함하고, 각각의 결합 챔버를 포함하는 것이. </li><li> 다음날 아침, 산란을 사용할 수 있도록 칸막이를 제거합니다. </li><li> 후 약 30 분, 그리고 수족관에 성인을 반환 한 후, 미세 와이어 메쉬 스트레이너 도구를 통해 상대 탱크의 물을 통과하여 태아를 수집 물고기를 확인합니다. </li><li> 페트리 접시 위에 스트레이너를 반전하고 배아를 수집 E3 씻어. </li><li> 28.5 ° CO / N에서 배아를 품어. </li><li> 배아는 24 ~ 26 체절 단계 (26)에 도달하면, 배아의 각 접시에 50 ㎎ / ㎖ 프로 나제의 100 μl를 추가하고 약 15 RT의 요리 (23 ° C)를 배양하여 dechorionate 다음 E3 미디어의 대부분을 가만히 따르다 분. 참고 :이 방법 설명 및 28.5 ° C에서 O / N을 배양 수집하는 경우 배아가 24 ~ 26 체절 단계에 도달하는 것은 수정의 시간에서 약 24 ~ 25 시간이 소요됩니다. </li><li> 와 접시를 채우다음 E3 및 배아에서 chorions을 제거하기 위해 부드럽게 소용돌이 친다. </li><li> E3 / 프로 나제​​를 가만히 따르다와 신선한 E3 25 ㎖로 접시를 씻어. 반복 세정 단계는 모든 프로 나제​​를 제거합니다. </li><li> 색소 침착의 개발을 차단하려면 E3를 가만히 따르다 및 배아가 24 시간 게시물 수정에 도달 한 신선한 E3 / PTU 25 ㎖로 교체하십시오. 참고 : 실험은 며칠에 걸친를 들어, 깨끗한 접시를 유지하기 위해 하루에 한 번씩 신선한 미디어와 함께 E3 / PTU 솔루션을 교체합니다. </li></ol> 콩팥 세포 독소 솔루션 4. 미세 주입 <ol><li> 주사 당일, 해당 차량 제어와 함께 원하는 콩팥 세포 독소 용액을 제조 하였다. </li><li> 소용돌이 또는 약물 (들)을 보장하기 위해 부드럽게 섞어 물 컬럼의 튜브 톱의 측면을 검사 / 솔루션에 있습니다. 주 : 콩팥 세포 독소 용액은 미세 주입 효율을 감시하고 또한 subseq에서 신장 클리어런스를 평가하기 위해 형광 접합 된 덱스 트란 미량 포함하도록 제조 될 수있다uent 시간은 20,28 포인트. </li><li> 바늘의 뒷면에 미세한 젤 로딩 팁을 스레딩에 의해 콩팥 세포 독소의 ~ 2-3 μL와 트림 미세 주사 바늘을 넣고 용액이 중력에 의해 트리밍 바늘 끝을 채울 수 있도록 테이프의 조각 수직으로 바늘을 일시 중지합니다. </li><li> 바늘 끝이 가득되면, 미세 조작기에로드 된 바늘을 고정합니다. </li><li> 마이크로 미터 슬라이드에 미네랄 오일 방울을 배치하여 미세 주입 부피를 시험하여 액적 크기를 평가하기 위해 오일에 주입. 500 (PL)의 주입량은 0.1 mm의 직경을 갖는다. </li><li> 인큐베이터에서 배아의 접시를 제거하고 배아 접시에 약 0.2 % Tricaine 5 ㎖를 추가하여 마취. </li><li> 전체 마취를 보장하기 위해, 부드럽게 배아 조작 도구의 끝 배아를 터치합니다. 운동 부족은 충분한 마취를 나타냅니다. </li><li> 성공적인 마취 후, TRANSF으로 사출 금형 배아 전송어 피펫. </li><li> 트렁크가 우울증 함께 달려 꼬리가 우울증에서 올라 스틱 것을 잘 등의 깊은 영역에 머리를 배치하는 금형의 다른 우물에 각 배아를 기동. </li><li> 미세 조작기로 채워진 바늘을 삽입하고 배아 옆에 바늘 끝의 위치. </li><li> 부드럽게 전방으로 조이스틱을 움직여서 꼬리기에 바늘을 삽입하고 미세 주입을 전달하기 위해 풋 페달을 누르기. 참고 : 성공적인 주입은 액체를 보면서 계측 할 수있다 순환을 입력합니다. 또한, 형광 접합 된 덱스 트란과 nephrotoxicant의 공동 주입 절차 이후 성공적으로 주사를 확인하기 위해 연구를 할 수 있습니다. </li><li> 조심스럽게 배아에서 바늘을 제거하기 위해 조이스틱을 뒤로 당기십시오. </li><li> 주입 후, 깨끗한 접시에 배아를 전송하고 Tricaine를 제거하고 신선한 E3 / PTU로 교체하는 린스. </li><li> 엉덩이에 원하는 시점에 배아 부화원하는대로 실험 분석을 위해 메틸 설치 미디어 또는 과정에서 촬영으로 설명 할 수의 형태. 주 : 배아 신장 회복은 일반적으로 상처를 나타낸다 부종, 개인의 비율을 결정하기 위해 평가되어야한다. </li></ol>

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치료제의 다양한 수는 AKI (29)과 연관되어있다. 예컨대 아미노 글리코 사이드 겐타 마이신 (30) 및 널리 사용되는 항암제 시스플라틴 31,32 많은 개별 화합물에 의해 유도 된 손상을 이해하는데 상당한 연구가 진행되어왔다. 이러한 조건에 관련된 일부 병리학 적 변화하지만, 지속적인 연구의 대상이 남아있다. 한 긴급 과제는 여러 약물에 악영향 같은 중요한 관리 설정에서 그 노인 29으로, 위험이 높은 집단에서 특히이 환자에 미치는 영향을 이해 남아있다. 따라서, 약물 유발 AKI의 효과에 대한 추가적인 세포 기초 연구를 가능 모델은이 상태의 검출을 향상시키고 다이내믹 약물 상호 작용을 감상하는 데 중요한 역할을 수행. 마우스와 쥐 등의 포유 동물 모델에 대한 작업은 AKI에 따라 신장에서 세포 변화를 설정할 통합되었습니다, 버퍼이러한 시스템으로 제한 한 t 직접 실시간 관찰로 인해 구조적 복잡...

AKI 충격적 건강 한 결과로 이어질 수있는 신장 기능의 급격한 손실이다. AKI는 더 높은 중요한 치료의 경우 30 % ~ 50 %의 요금과 노인, 그리고 50-70% 1-3의 사망률로 인해 입원 환자 중 약 20 %의 높은 빈도로 세계적으로 중요한 건강 문제입니다. 불행하게도, AKI의 유병률은 증가하고있다 인한 항생제 등 nephrotoxins에 수술 후 스트레스, 허혈, 노출을 포함 AKI을 유도 할 수있는 요인의 다양성에 부분적으로 향후 10 년간 더욱 확대 할 것으로 예상된다 화학 요법 약물 4. AKI 일반적 필수적인 기능 단위이며, 혈액 필터 및 중앙 포집 관 (1)에 소변 배수 세그먼트 세뇨관으로 구성되어 네프론, 발생, 신장 내의 급격한 세포 손상을 포함한다. 경우 네프론의 상당수는AKI 중에 손상, 즉각적인 효과가 죽고 죽어가는 세포 1에서 장애물로 인해 네프론을 통해 순환 폐기물 통관의 중단 및 축소 또는 폐지 유체 유동을 포함한다. 시간이 지남에 관 폐쇄가 영구적으로 신장 기능 1을 줄여 전체 네프론의 퇴보로 이어질 수 있습니다. AKI 다음과 같은 신장의 생리 학적 변화는 만성 흉터 1로 이어질 수 복잡한 염증성 이벤트를 포함한다. 이러한 성과에도 불구하고, 네프론은 관 상피 5,6 재구성 AKI 후 재생을 받아야하는 몇 가지 능력을 가지고있다. 네프론 재생의 증가 분자량이 이해되었지만, 메커니즘은 많은 관해서 애매 남아 조사 7을 계속 필요로한다. AKI는 영구적 인 신장 손상을 초래하는 정도는 알 수없는 남아 있습니다. 현재의 연구는 신장에 대한 회생 가능성이있다 제안가장 높은 더 두드러 또는 반복 에피소드가 만성 신장 질환 (CKD)으로 이어질하면서, AKI 덜 심한 경우는 다음과 생명을 구하는 이식 또는 투석 8,9가 필요 말기 신장 질환 (ESRD) 절정에 달하다. 또한, 이미 CKD으로 고통받는 사람들은 AKI 8,9의 심각한 에피소드를 계약의 더 높은 위험에 노출됩니다. 함께 찍은, 기초 및 임상 연구, 이해하고 치료하고 AKI을 방지하기 위해 매우 중요합니다 계속이 분명하다. 동물 모델 연구 AKI (10) 중에 발생하는 지역 및 환경 변화의 진행을 감상하는 수단이되고있다. 이러한 이해를 확장 할뿐만 아니라, 새로운 치료법을 개발하기 위해, 제브라 피쉬 동물 모델은 가지 (11, 12)의 다양한 사용되어왔다. 제브라 피쉬 신장의 네프론은 배아와 성인 모두에서, 포유류 13 ~ 16과 보존의 높은 수준을 표시합니다. ZE에서 또한, 네프론 상피 부상brafish는 관 세포의 지방 파괴가 관내 증식과 네프론 구조 17-19의 재설정 다음된다 높은 척추 동물에서 프로세스를 닮았다. 배아 그러나, 시스플라틴 같은 nephrotoxins에서 광범위한 세뇨관 손상은 치사 (20, 21)와 연결되어 있습니다. 이에 비해, 제브라 피쉬 성인 AKI를 생존과 신장에 실질적인 재생 능력을 나타낸다. 예를 들어, 아미노 글리코 시드 계 항생제 겐타 마이신에 노출 된 다음, 제브라은 세뇨관 상피 손상을 재생하고 새로운 네프론 단위뿐만 22-24 성장. 이 겐타 마이신에 의한 AKI 연구는 다양한 nephrotoxins에서 신장 손상을 이해하는 귀중한 정보를 제공하고 있지만 효과 손상 (25)의 다른 유형에 대한 반응을 평가하는 중요한 남아있다. 제브라 피쉬 배아 인해 크기, 투명도, 유전 취급 용이성에, 콩팥 세포 독소 연구를위한 많은 장점이 있습니다 &lt;마이크로 인젝션 (20, 21)의 방법은 조사를 위해 분자 (들)을 관리하는 데 사용됩니다 SUP&gt; 25. 네프론은 24 시간 게시물 수정 (HPF)에 의해 형성된 약 48 HPF (26, 27)에 의해 혈액을 필터링하기 시작한다. 따라서, 배아 신장의 신속한 형성 및 함수는 실험적 분석을 용이하게한다. 그러나, 마이크로 인젝션 프로세스 기술적 과제를 가지고 기술 습득에 가파른 학습 곡선이있을 수있다. 이 비디오 문서에서는, 우리는 microinjections을 수행하고 성공적인 주사의 속도를 향상시키기 위해 문제 해결 팁을 제공하는 방법에 대해 설명합니다.

<table><tbody><tr><td>염화나트륨</td><td>미국 생물 분석</td><td>AB01915</td><td></td></tr><tr><td>염화 칼륨</td><td>미국 생물 분석</td><td>AB01652</td><td></td></tr><tr><td>염화 칼슘</td><td>미국 생물 분석</td><td>AB00366</td><td></td></tr><tr><td>N-페닐 티오우레아 (PTU)</td><td>알드리치 화학</td><td>P7629</td><td></td></tr><tr><td>에틸 3-아미노벤조에이트(트리카인)</td><td>플루카 분석</td><td>A5040</td><td></td></tr><tr><td>붕규산 유리</td><td>Sutter Instruments Co.</td><td>BF100-50-10</td><td></td></tr><tr><td>화염/갈색 마이크로피펫 풀러</td><td>Sutter Instruments Co.</td><td>Mo. P097</td><td></td></tr><tr><td>UltraPure Agarose</td><td>Invitrogen</td><td>15510-027</td><td></td></tr><tr><td>황산 마그네슘</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7506</td><td></td></tr><tr><td>메틸렌 블루</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M9140</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Diposable Petri Dish, sterile, Corning:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>60 mm x 15 mm</td><td>VWR</td><td>25373-085</td><td></td></tr><tr><td>100 mm x 15 mm</td><td>VWR</td><td>25373-100</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;( microinjection tray) 150 mm x 15 mm</td><td>VWR</td><td>25373-187</td><td></td></tr><tr><td>저온 인큐베이터</td><td>Fischer Scientific</td><td>11 690 516DQ</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 해부 핀셋</td><td>Roboz Surgical Instruments Co.</td><td>RS-5010</td><td></td></tr><tr><td>마이크로미터</td><td>테드 펠라, Inc.</td><td>2280-24</td><td></td></tr></tbody></table>년

zebrafish의에서 콩팥 세포 독소 미세 주입은 급성 신장 손상을 모델링하기

Nephrotoxin Microinjection in Zebrafish to Model Acute Kidney Injury

신장은 혈류에서 필터링 화학 물질에 노출 해에 민감하다. 이는 신장 기능 및 급성 신장 손상 (AKI)로 알려진 임상 증후군의 개발의 급격한 감소와 관련된 장기 부상으로 이어질 수 있습니다. 약학 제제는 개별적으로 투여 될 때 세균 감염 암 범위 의학적 상황을 치료하는 데 사용하거나 다른 약제와 함께, AKI을 개시 할 수있다. 제브라 피쉬는 인간을 포함한 척추 동물 이상으로 보존된다 네프론 기능 유닛 이루어진 배아 신장 형성으로 유용한 동물 모델 생체 내에서 신장 기능의 화학적 효과를 연구한다. 또한, 피쉬는 AKI의 세포 및 분자 패싯 명료 및 nephroprotective 분자 식별 치료 적 전략을 개발시킬 기회를 제공 유전 화학 스크린을 수행하는데 이용 될 수있다. 여기에, 우리는에 얼마나 미세 주입을 보여제브라 피쉬 배아 콩팥 세포 독소 연구를위한 패러다임으로서 이용 될 수있다.

설정된 미세 주입 스테이션은 실체 현미경, 미세 조작기 및 압력 조절기 (그림 1A)를 포함한다. 분사 플레이트 Transillumination이 절차 (도 1b) 중에 시료를 확인하는 것이 바람직하다. 주사 바늘의 제조 백로드 바늘 끝과 절단 가장자리를 제조 하였다 적절한 붕규산 유리를 당기는 것을 포함한다. 최적으로, 바늘 끝이 절단 과정 동안 (도 1C)와 같은 미세 겸자로 크게 절단기구의 가장자리를 구부려서 만든 컷을 둔보다 경사져 (그림 1D). 이 경 사진 가장자리는 매우 중요하고 매우 부드럽게 제브라 피쉬에 바늘을 삽입 할 수있는 능력에 영향을 미칠 것입니다. 주사 당일, 배아 견고하지만 유연한...

화학 요법으로 항생제에 이르기까지 약물을 포함 nephrotoxins에서 발생하는 신장 손상은, 그 발병 기전 불완전하게 이해 남아 복잡한 질환이 발생할 수 있습니다. 이 프로토콜은 제브라는 신장 보호 대책의 식별에 적용 할 수있는 이러한 조건의 질병 모델에 사용할 수있는 방법을 보여준다.

Zebrafish의에서 콩팥 세포 독소 미세 주입은 급성 신장 손상을 모델링하기

The kidneys are susceptible to harm from exposure to chemicals they filter from the bloodstream. This can lead to organ injury associated with a rapid ...

본 프로토콜의 전반적인 목표는 제브라피시를 이용하여 gentamicin 또는 cisplatin과 같은 신독성 물질의 영향을 관찰함으로써 급성 신손상 모델을 구축하는 것입니다. 이 기술의 주요 장점은 제브라피시 모델을 통해 급성 신손상 후의 세포 손상 및 재생 과정을 실시간 영상으로 확인할 수 있다는 점입니다. 이 절차를 시작하기 위해, 5인치 직선 해부침 끝에 겔 로딩 팁을 부착하고 테이프나 순간접착제로 고정하여 미세 주입 시 배아를 배치하기 위한 배아 조작 도구를 준비하십시오.다음으로, 피펫 풀러를 사용하여 필라멘트로 화염 연마된 붕규산 유리를 당겨 가늘고 테이퍼진 미세 주입 바늘을 준비합니다. 그런 다음, 면도날이나 미세 핀셋 끝을 사용하여 바늘 끝을 잘라 날카롭고 각진 주입 팁을 만듭니다. 이어서, 바늘 끝을 보호하기 위해 페트리 접시 안의 모델링 클레이 조각 위에 바늘을 놓습니다.미세 주입 트레이를 제작하려면, 100 mL 삼각 플라스크에 agarose와 E3를 넣고 전자레인지로 가열하여 녹여 1.5% agarose E3 용액을 준비합니다. 그다음, 혼합물을 실온에서 약 10분 동안 식힙니다. 식힌 agarose E3 용액을 페트리 접시에 부어 깊이가 약 0.5 cm인 바닥층을 만듭니다.응고된 후, agarose E3 용액을 두 번째 층으로 붓습니다. 그다지 기포가 생기지 않도록 각도를 조절하여 미리 제작된 배아 웰 몰드를 아가로스에 삽입하고, 실온에서 아가로스가 응고되도록 둡니다. 마이크로 인젝션 트레이 전체가 굳으면, 미리 제작된 배아 웰 몰드를 천천히 조심스럽게 들어 올린 다음, 디쉬를 E3 용액으로 채워 4 °C에서 보관합니다.본 절차에서는 교배 챔버에 구분 칸막이를 설치하고 시스템 워터로 채워 제브라피쉬 교배 수조를 준비합니다. 다음으로, 각 교배 챔버에 암컷 한 마리와 수컷 한 마리가 들어가도록 구분 칸막이 양쪽에 물고기를 각각 한 마리씩 배치하고 두 교배 챔버를 덮개로 덮습니다. 다음 날 아침, 산란이 가능하도록 구분 칸막이를 제거합니다.약 30분 후, 탱크 바닥에 배아가 있는지 확인합니다. 그런 다음, 물고기를 수조로 돌려보내고 교배 탱크의 물을 미세 와이어 메시 스트레이너 도구에 통과시켜 배아를 수집합니다. 다음으로, 스트레이너를 페트리 접시 위로 뒤집고 E3로 헹구어 배아를 수집합니다.그 후, 배아를 28.5 °C에서 하룻밤 동안 배양합니다. 배아가 24~26 somite 단계에 도달하면, E3 배지를 대부분 따라냅니다. 그런 다음, E3 배지를 추가하고 배아가 들어있는 각 디쉬에 50 mg/mL pronase 100 µL를 넣은 후, 배아를 28 °C에서 15분 동안 배양하여 난막을 제거합니다.15분 후, 디쉬에 E3를 채운 다음 부드럽게 흔들어 배아에서 난막을 분리합니다. 그다음 E3 pronase를 따라내고 25 milliliters의 신선한 E3로 디쉬를 헹굽니다. 색소 침착의 발달을 차단하기 위해, 수정 후 24시간이 지나면 E3를 25 milliliters의 신선한 E3 PTU로 교체합니다. 여러 날에 걸쳐 진행되는 실험의 경우, 디쉬의 청결을 유지하기 위해 하루에 한 번 E3 PTU 용액을 신선한 배지로 교체하십시오.주사 당일에 적절한 용매 대조군을 사용하여 원하는 신독성 물질 용액을 준비합니다. 볼텍스 또는 부드럽게 혼합합니다. 그 후, 튜브의 측면과 수층 상단을 확인하여 약물이 용액에 완전히 용해되었는지 확인합니다.미세 젤 로딩 팁을 바늘 뒷부분에 삽입하여 다듬어진 미세 주입 바늘에 2~3 µL의 신독소를 충전하고, 테이프를 이용해 바늘을 수직으로 고정하여 중력에 의해 용액이 다듬어진 바늘 끝까지 채워지도록 합니다. 바늘 끝이 가득 차면, 충전된 바늘을 마이크로 매니퓰레이터에 고정합니다. 마이크로미터 슬라이드 위에 미네랄 오일 한 방울을 떨어뜨리고 오일에 주입하여 액적의 크기를 확인함으로써 미세 주입 부피를 테스트합니다.다음으로, 배아가 담긴 디쉬를 인큐베이터에서 꺼내고 0.2% tricaine 5 mL를 배아 디쉬에 첨가하여 마취시킵니다. 그 후, 전이 피펫을 사용하여 배아를 주입 몰드로 옮깁니다. 각 배아를 몰드의 서로 다른 웰로 이동시키며, 몸통이 오목한 부분에 놓이고 꼬리가 약간 밖으로 나오도록 머리 부분을 웰의 가장 깊은 곳에 위치시킵니다.이제, 충전된 바늘을 마이크로 조작기에 삽입하고 바늘 끝을 배아 옆에 위치시킵니다. 미세 주입을 위해 바늘을 꼬리 정맥에 조심스럽게 삽입하십시오. 이 절차에서 가장 중요한 단계는 미세 주입입니다.성공적인 실험을 위해서는 바늘을 날카로운 각도로 절단해야 하며, 배아 옆의 정확한 위치까지 주의 깊게 이동시켜야 합니다. 주입이 성공적이라면 액체가 순환계로 들어가는 것을 확인할 수 있습니다. 신독성 물질을 형광 결합 덱스트린과 함께 공동 주입하면, 연구자는 시술 후 주입 성공 여부를 검증할 수 있습니다.그 후, 배아에서 바늘을 조심스럽게 제거합니다. 배아를 깨끗한 디쉬로 옮기고 신선한 E3 PTU로 헹구어 트리케인(tricaine)을 제거합니다. 그런 다음, 배아를 원하는 시점까지 배양하여 형태를 평가하며, 이는 메틸 셀룰로오스(methyl cellulose) 마운팅 용액 내에서 사진 촬영을 통해 기록할 수 있습니다.또는 원하는 대로 실험 분석 과정을 진행하십시오. 주입 후 12~24시간마다 배아의 회복 상태를 평가하여 신장 손상을 일반적으로 나타내는 부종이 발생한 개체의 비율을 확인해야 합니다. 제브라피시 배아의 투명성은 미세 주입 절차를 용이하게 하며, 일반적인 실험 기간 동안 색소 침착의 발달을 줄이기 위해 24 hpf에 PTU 화학 처리를 통해 투명도를 더욱 높일 수 있습니다.본 실험에서는 배아 표본을 72 hpf 단계까지 성장시킨 후, 모의 주입(mock injection)을 하거나 식염수 용매를 미세 주입하거나, 또는 2.5 mg/mL gentamicin을 미세 주입하였습니다. 이후 주입 1일 및 2일 후에 실체 현미경의 투과 조명을 사용하여 살아있는 상태로 관찰을 수행하였습니다. 모의 주입 또는 식염수 주입 배아와 비교했을 때, gentamicin을 주입한 개체에서만 부종의 발생이 관찰되었습니다.이 사례의 경우, 이전에 발표된 관찰 결과와 일치하게 정상적인 신장 기능의 상실을 시사하는 심낭 부종이 나타났습니다. 이 절차 이후에는 신독소 노출 후의 유전자 발현 변화를 확인하기 위해 whole mount C2 hybridization과 같은 다른 방법들을 수행할 수 있습니다.

nephrotoxin-microinjection-in-zebrafish-to-model-acute-kidney-injury

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

우리는 이일 이후 fetilization (DPF) 급성 신장 손상 (아키)를 유도하기 위해 zebrafish의 유충에 aminoglycoside, gentamicin을 microinjecting의 기술을 설명합니다. 우리는 또한 전체 탑재 immunohistochemistry하는 방법을 설명, 플라스틱 포함하고 아키 인한 손상을 시각화하기 위해 zebrafish 애벌레의 sectioning.

급성 신장 상해를 공부하기 위해 Zebrafish 애벌레의 정맥 Microinjections

인간의 급성 신장 상해 (아키)는 신장 nephrons을 구성하는 상피 세포 손상으로 인한 일반적인 임상 문제, 그리고 아키는 50~70% 1 높은 사망률 속도와 연결되어 있습니다. 이 현상을 안내하는 메커니즘과 한계가 제대로 이해 남아 있지만 상피 세포의 파괴에 따라 nephrons은 재생에 제한 기능이 있습니다. 이 비디오를 문서에서, 우리는 타겟 레이저 zebrafish 배아 신장의 신장 nephron 세포의 박리 또는 pronephros위한 기술을 설명합니다. 새로운 방법은 아키의 nephrotoxicity 유도된 모델을 보완하고 신장 nephron의 상피 조직이 재생된과 관련된 세포 및 분자 변경의 고해상도 이해하는 데 사용할 수 있습니다.

Zebrafish의 Pronephros의 레이저 절제는 신장 상피 조직이 재생된를 공부

이 비디오는 신장 기능에 대한 화학적 영향을 연구하기 위해 제브라피시 배아의 꼬리 정맥에 네프로톡신을 정맥 미량 주입하는 방법을 보여줍니다.

제브라피시 배아에 네프로톡신의 정맥 미량 주입: 제브라피시 배아의 혈류로 신독성 물질을 전달하는 기술

제브라 피쉬의 성인 신장은 신장 재생과 질병 연구를위한 훌륭한 시스템입니다. 이러한 연구의 중요한 양태는 네프론의 구조와 기능의 평가이다. 이 프로토콜은 네프론의 세뇨관 조성물을 평가하기 위해 신장 재 흡수를 평가하도록 구현 될 수있는 몇 가지 방법론을 설명한다.

성인 Zebrafish의 신장에서 네프론의 구성 및 기능 분석

여기에서는 겐타마이신 주사로 급성 신장 손상을 유발하여 성인 신장 재생을 연구하는 신뢰할 수 있는 방법을 제시합니다. 우리는 부상이 겐타마이신 투여량과 환경 온도에 따라 달라진다는 것을 보여주며, LHX1a+가 새로운 네프론을 개발하기 위해 현장 교잡법을 사용합니다.

겐타 마이신 유도 부상으로 성인 Zebrafish의에서 신장 재생

이 작품은 신장 GFP 유전자 변형 제브라 피쉬를 사용하여 부분적인 신장 손상의 새로운 생체 내 모델을 제시합니다. 이 모델은 신장 상피 세포의 표적 절제를 유도하여 네프론 손상 및 수리의 세포 기작을 보여줍니다.

Zebrafish 개발에 급성 신부전 모델링을위한 정확한 세포 제거 방법

이 프로토콜은 신장 독성 제로 cisplatin를 사용하여 성인 얼룩말 피시에 급성 신장 상해 (AKI)를 유도하는 절차를 설명합니다. 신장 조직에서 염증및 세포사멸을 분석하기 위한 기술과 2가지 기술의 재현성을 평가하는 단계, 각각 세포측정및 TUNEL을 상세히 설명했다.

성인 얼룩말 피시에 있는 Cisplatin에 의해 유도된 급성 신장 상해 모형

성인 Zebrafish의 전체 신장 마로우의 이식

Microinjection은 수정된 zebrafish의 배아에 이물질을 소개하는 잘 설립하고 효과적인 방법입니다. 여기, 우리는 강력한 mRNA의 overexpression을 수행하기위한 microinjection 기술 및 zebrafish에서 morpholino의 oligonucleotide 유전자 최저 연구를 보여줍니다.

Zebrafish 태아의 mRNA와 Morpholino의 안티 센스 Oligonucleotides의 Microinjection.

이 동영상은 morpholino 또는 mRNA가 감소 또는 후속 개발 중에 특정 유전자 제품의 수준을 높일 수있는 한 세포 단계에서 zebrafish 배아에 주입 수있는 방법을 보여줍니다.

유전자 기능을 분석 Zebrafish 배아들 중 Microinjection

배우세요 제브라피시를 이용한 신장독성 물질 미세주입 기법으로 급성 신장 손상을 모델링하는 방법을 실시간 영상으로 세포 손상과 재생 과정을 관찰하여 신장 질환 연구에 활용하세요.

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