Name: 형광 활성화 된 셀 정렬 (FACS)와 신선한 및 냉동 쥐 뇌 조직 FOS를 발현하는 신경 세포의 유전자 발현 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 37 s
Description: 배우세요 FACS를 이용해 신선하거나 냉동된 쥐 뇌 조직에서 Fos 발현 신경 세포를 분리하고 유전자 발현을 분석하는 방법을. 이 기법은 행동 활성화 신경원의 분자 신경 적응을 연구하는 데 활용됩니다.

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이 작업은 NIDA 교내 연구 프로그램(Bruce T. Hope, Yavin Shaham)의 지원을 받았습니다.F.J.R.은 미국 국립보건원(National Institutes of Health)이 후원하고 오크리지 과학교육연구소(Oak Ridge Institute for Science and Education)가 관리하는 NIDA 연구 참여 프로그램(Research Participation Program)에 임명되어 지원을 받았으며, CONICYT 및 Universidad de los Andes가 관리하는 Becas-Chile 장학금으로부터 추가 재정 지원을 받았습니다. 칠레 산티아고. 존스 홉킨스 FACS 핵심 시설은 미국 국립보건원(National Institute of Health)의 국립 관절염 및 근골격 및 피부 질환 연구소(National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases)로부터 P30AR053503 수상의 지원을 받았습니다.

모든 실험은 실험 동물 (16)의 관리 및 사용을위한 건강 가이드의 국립 연구소의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 따라 수행 하였다. 참고 : 달리 명시되지 않는 한 얼음에 보관 된 사용 낮은 결합 원심 분리기 튜브 아래의 모든 단계. 조직 컬렉션 전에 1. 준비 <ol><li> 4 O C.에 원심 분리기를 설정 </li><li> 화재 폴란드어 감소 약 1.3의 직경, 0.8, 각 샘플에 대한 0.4 mm와 3 개의 유리 파스퇴르 피펫 세트. </li><li> 감기 버퍼 1 ml에 포함 된 표시 1.7 ml의 튜브를 준비하고 얼음에 튜브를 유지. </li><li> 매트릭스, 주걱과 절개를 수행 할 유리판 (또는 반전 유리 페트리 접시)를 슬라이스 뇌를 포함하는 얼음 트레이를 준비합니다. t을 눌러 모든 악기를 건조 유리 접시와 사용 조직 종이에 사전 진정 두 개 이상의 면도날발행물. </li><li> 조직 수집 전에, 30 분 동안 실온 (RT)에서의 효소 용액을 해동. </li></ol> 2. 조직 수집 및 해부 <ol><li> 조직 수집하기 전에 행동이나 약물 치료 90 분을 시작합니다. 참고 : 여기에 표시된 결과를 위해, 새로운 환경 (테스트 조건)과 순진한 쥐 쥐 5 ㎎ / ㎏ 메스 암페타민의 급성 복강 내 주사는 자신의 홈 케이지 (제어 조건)에 보관을 시행 하였다. </li><li> 포화 이소 플루 란과 유리 데시 케이 터 항아리에 배치하여 쥐를 마취와 쥐 (30) 목을 벨 - 60 초 후에 단두대를 사용. 머리의 피부와 근육을 제거하고 두개골을 노출 가위를 사용합니다. 두개골을 잘라 난원 매그넘을 열고 두개골의 뒤쪽 부분을 제거하는 rongeurs을 사용합니다. 뇌를 노출 두개골의 상단 가장자리를 따라 잘라 rongeurs을 사용합니다. 뇌 손상되지 않도록주의하십시오. 부드럽게 언더 퍼 위해 작은 주걱을 사용하여뇌를 상승 거라고. 뇌를 올리고 뇌가 17 될 때까지 신경을 잘라. </li><li> 면도날을 사용하여 조직의 해부. 참고 : 다음 방법 중 하나를 사용하여 조직 샘플을 얻습니다 (2.3.1) 갓 해부 조직을; 절개 후 (2.3.2) 냉동 조직; 또는 (2.3.3) 냉동 조직을 냉동 전체 뇌 해부. 해부를 통해 뇌 슬라이스 매트릭스, 면도날과 유리 접시를 건조하게 유지하고 응축 물과 같은 프로세스를 닦지하는 것은 세포의 저장성 용균 될 수 있습니다. 정확한 해부을 보장하기 위해 돋보기 안경을 사용합니다. <ol><li> 갓 해부 조직의 경우, 얼음에 냉각 된 뇌 슬라이스 매트릭스 (1mm 간격으로 면도날 슬롯이있는 쥐의 뇌 모양의 금형)에 갓 추출 된 뇌를 놓습니다. 관심있는 뇌 영역 (들)을 포함 코로나 조각을 잘라 슬롯에 두 개 이상의 사전 냉장 면도날을 삽입합니다. 냉장 유리 접시에 잘라 슬라이스를 놓습니다. 참고 : 뇌 레지오을 해부하다냉장 유리 접시에 관심 NS. </li><li> 절개 후 동결 조직 들어 2.3.1에서 상술 된 것과 유사한 새롭게 추출 뇌 조각에서 관심있는 뇌 영역 (들)을 해부. 마이크로 튜브로 해부 조직을 놓고 빠른 속도로 20 초 동안 -40 ºC의 이소 펜탄에서 마이크로 튜브를 침지하여 조직을 동결. 추가 처리까지 -80 ºC의 냉장고에 항상 냉동 해부 조직을 유지합니다. </li><li> 냉동 조직의 경우, 즉시 최대 6 개월 -80 ºC에서 밀폐 된 가방 -40 ºC의 이소 펜탄 및 저장소에 갓 추출 된 두뇌를 동결. <ol><li> 해부의 날, 약 설정 저온 유지 장치에 고정 된 뇌를 배치 -20 ºC (더 따뜻한 -18보다 ºC)를 약 2 시간 동안 온도를 평형. 참고 훨씬 낮은 온도 안전하게 절단 뇌 너무 취성 만드는 동안 뇌는이 온도에서 용이하게 절단 할 수있다. </li><li> 의 2mm 관상 조각 - 1을 잘라 면도날을 사용하여그라 이오 스탯에 얼어 붙은 두뇌. 동결 조건이 조각에서 티슈 펀치를 얻기 위해 평활화 12 16 게이지 바늘을 사용한다. 추가 처리 할 때까지 항상 냉동 해부 조직을 유지합니다. </li></ol></li></ol></li><li> 닦지 전에 해부 조직을 충당하기 위해 버퍼 (A)의 2 방울 - 1을 추가합니다. 분쇄 공정의 나머지 동안 뉴런의 손실을 방지하기 위해 두 개의 면도날을 사용하여 조직으로부터 백색 물질의 대부분을 제거한다. 냉동 된 조직으로 시작하는 경우, 조직의 버퍼에게 솔루션을 적용하기 전에 더 이상 1 분 동안 차가운 유리판 위에 해동 할 수있다. </li><li> 냉장 유리 접시에 면도날로 조직 각 직교 방향으로 100 번을 말하다. 닦지 때 유리판에 수직 면도날 잡아. 주 : 철저한 닦지 모든 프로토콜 단계에 중요합니다. </li><li> Ke에 5 회 - 튜브 3을 전환 냉 버퍼 A. 1 ㎖를 함유하는 마이크로 원심 튜브에 다진 조직을 전송 면도날을 사용하여용액 모든 다진 조직 EP. </li></ol> 3. 세포 해리 참고 : 다음 단계의 모든 혼합 끝 이상을 사용하여 부드러운 끝. 볼텍스 혼합기를 사용하여 세포 손상의 원인이 기포를 방지하지 않는다. <ol><li> 4 ºC에서 2 분 동안 110 XG에서 샘플 튜브를 원심 분리기. 폐기 뜨는. 천천히 마이크로 튜브의 내벽 다운 냉간 신선하게 해동 된 효소 용액 (단백질 분해 효소의 조합을 포함) 1 ㎖를 추가한다. 즉시 다진 조직 펠렛을 분산 적당히 큰 팁 직경 피펫 만 4 번을 피펫과 아래로 부드럽게 전체 펠렛을 빨아합니다. </li><li> 바닥에 달라 붙는 펠렛을 방지하고 4 오 ℃에서 30 분 동안 엔드 오버 엔드 혼합과 샘플을 부화 즉시 마이크로 튜브를 반전 </li><li> 효소 조직 소화 한 후, 원심 분리기 4 ºC에서 2 분 동안 960 XG에 튜브. 상층 액을 제거하고 차가운 버퍼 A. Immediatel 0.6 ml에 추가Y 버퍼를 추가 한 후, 아래로 5 회 전체 펠릿을 흡입하여 펠렛을 분산하기 위해 동일한 피펫 팁을 사용하여 부드럽게 피펫합니다. </li><li> 기계적 소화 조직을 씹다하고 다음 단계를 사용하여 15 ml의 튜브에 수집합니다. 각 샘플에 대해, 라텍스 전구에 부착 약 1.3, 0.8 및 0.4 mm의 직경을 내림차순로 3 화재 - 광택 유리 파스퇴르 피펫의 별도의 세트를 사용합니다. <ol><li> 조심스럽게 각 시료를 1.3 mm의 유리 피펫 10 번 씹다. 샘플 (바닥에 정착 할 파편과 해리되지 않은 세포) 얼음에 2 분 동안 정착하자. 15 ml의 원추형 튜브에 상청 (~ 0.6 ml) 및 전송 부담 (튜브 # 1). </li><li> 나머지 펠릿에 대한 해결책 버퍼 ㎖로 0.6를 추가합니다. 샘플을 0.8 mm의 유리 피펫 10 번 씹다. 샘플을 얼음에 2 분 동안 정착하자. 동일한 15 ml의 상층 액 (~ 0.6 ml) 및 전사 수집 원뿔 튜브 # 1. </li><li> 나머지 PELLE에 대한 해결책 버퍼 ㎖로 0.6 추가티. 샘플을 0.4 mm의 유리 피펫 10 번 씹다. 샘플을 얼음에 2 분 동안 정착하자. (비 - 해리 세포 펠렛을 건드리지 않고 ~ 0.6 ㎖)과 같은 15 ML 원뿔 튜브 # 1로 전송 뜨는를 수집합니다. 참고 : 다음 분쇄 단계의 튜브 # 1에서 0.4 mm 직경의 피펫을 유지합니다. </li><li> 단계를 반복 3.4.3 별도의 15 ML 원뿔 튜브에 3 개의 작은 유리 피펫 (~ 0.4 mm 직경)를 사용하여 시간 및 상층 액을 수집 (튜브 # 2). </li><li> 0.4 mm 유리 피펫을 사용하여 10 회 이상에 대한 튜브 # 1과 # 2의 수집 세포 현탁액을 씹다과 얼음에 보관하십시오. </li></ol></li></ol> 4. 셀 고정 및 Permeabilization <ol><li> 100 % 차가운 에탄올 800 μl를 추가하여 (튜브 # 2에서 셀 관 # 1에서 셀이 모세관과 2 개) 샘플 당 4 모세관을 준비 각각의 튜브에 (사용 전에 -20 ℃로 저장) 및 얼음에 보관하십시오 . 참고 : 최종 에탄올농도가 50 % 일 것이다. </li><li> 피펫 ~ 800 냉 에탄올을 함유하는 튜브를 4 각으로 (튜브 # 1, # 2 튜브)에서 세포 현탁액 μL와 샘플을 혼합하여 튜브를 반전한다. </li><li> 튜브를 5 분마다 반전하면서 15 분 동안 얼음에서 인큐베이션 튜브. </li><li> 고정 / permeabilization 후, 4 ºC에서 4 분 동안 1,700 XG에서 튜브를 원심 분리하고 상층 액을 버린다. 세포의 손실을 방지하기 위해 용액 50 μl를 떠난다. 참고 :이 단계에서 펠렛은 흰색이며, permeabilization 이전보다 튜브의 벽에 덜 스틱. 그러므로, 펠릿이없는 곳 마이크로 튜브의 벽을 터치하여 조심스럽게 상층 액을 제거하고 천천히 마이크로 피펫을 이용하여 상층 액을 그립니다. </li></ol> 5. 셀 여과 <ol><li> 다음과 같이 차가운 PBS와 단계 4.4에서 펠렛을 다시 일시 : <ol><li> 튜브 # 1에서 나오는 두 개의 모세관 중 하나에 차가운 PBS 550 μl를 추가하고, 적당히 큰 직경의 파이를 사용pette 팁은 부드럽게 세포 현탁액의 상하 5 회 피펫합니다. 하나의 마이크로 튜브는 튜브 # 2에서 오는 동일한를 반복합니다. </li><li> 동일한 피펫을 사용하여 튜브 # 1 셀, 제 2 펠릿 제 세포 현탁액을 전송. 부드럽게 결합 된 세포 현탁액의 상하 5 회 피펫 팅하여 두 번째 펠렛을 재현 탁. </li><li> 튜브 2로부터 셀, 재현 탁 및 5.1.2에 기술 된 바와 같이 펠렛 (즉, 세 번째와 네 번째 모세관)를 결합한다. </li></ol></li><li> 별도로 셀 스트레이너의 두 개의 서로 다른 쌍 (100 μm의 40 μm의 기공 크기) 다음을 사용하여 단계 5.1.2과 5.1.3에서 두 세포 현탁액을 필터링 : <ol><li> 스트레이너의 내부에 PBS를 첨가하여 예비 습윤 각 셀 스트레이너. 스트레이너의 외부에서 과량의 PBS를 제거하기 위해 피펫을 사용합니다. </li><li> 균일하게 100 μm의 세공 크기를 갖는 제 1 셀 스트레이너로 단계 5.1.2에서 세포 현탁액을 피펫. 얼음에 50 ㎖ 튜브에 관류 수집. 파이를 사용하여셀 스트레이너의 외측 저면에 부착 통해 pette는 플로우 기반을 수집한다. </li><li> 40 μm의 셀 스트레이너로 100 μm의 셀 스트레이너에서 관류를 전송하는 동일한 피펫을 사용한다. 얼음 다른 50 ML 튜브에서이 흐름을 통해 수집합니다. 40 μm의 셀 스트레이너에서를 통해 흐름을 전송하는 경우, 100 μm의 셀 스트레이너에서 오염을 방지하기 위해 새로운 피펫 팁을 변경합니다. </li><li> 필터의 새로운 세트를 사용하여 단계 5.1.3에서 세포 현탁액에 대해 이러한 단계를 반복합니다. </li></ol></li><li> 샘플 당 약 1 ml의 최종 용적은 각 시료로부터 두 관류 수확기. </li></ol> 항체 6. 배양 참고 : 이전에 주요 샘플을 실행에 설정 사이토 적절한 흐름을 설정하기위한 다수의 제어 샘플을 준비하는 뇌 세포 현탁액의 작은 분취 량을 사용합니다. 각 항체에 표지의 경우, 항체 만 자체를 포함하지 대조 시료를 준비다음 condary 항체 (또는 다른 형광 라벨), 두 일차 및 이차 항체 (또는 다른 형광 표지). 유동 세포 계수기의 비특이적 라벨링 대 특정 분리 문을 설정하는 이러한 컨트롤을 사용합니다. 가능하면 보상을 필요로하지 않는 형광 색소를 사용합니다. 이전에 일차 항체를 추가로 PBS를 첨가하여 700 ㎕의 최종 부피로 게이팅 대조 시료의 최종 부피를 증가시킨다. <ol><li> 1.7 ml의 마이크로 튜브로 여과 셀 100 μL 샘플을 전송함으로써 광산란 및 DAPI 제어 샘플을 준비한다. 핵 염색 1 μg의 / ㎖ DAPI와 차가운 PBS 600 μl를 추가합니다. 엔드 오버 엔드 혼합 10 분 동안 품어하고 (단계 6.4.5에 6.4.2에 표시된대로) 흐름 cytometer를 통과하기 전에 세척. 참고 :이 샘플 만 FACS 기계에 남아있는 세포를 정렬하기 전에 셀 / 핵 게이트를 설정하는 데 사용됩니다. </li><li> 100 &amp; #을 전송하여 하나의 immunolabeled 제어 샘플을 준비(181), 1.7 ml의 마이크로 튜브에 필터링 된 세포의 리터. (예를 들어, NeuN 항체) 한 항체와 차가운 PBS 600 μl를 추가합니다. 다른 항체 (예를 들어,에 Fos 항체)와 마이크로 튜브에 차가운 PBS 600 μl를 추가합니다. 이 직접 접합 된 일차 항체가 아닌 경우, 해당 이차 항체를 추가한다. 주 : 이들 샘플은 적절한 광전자 증 배관 (PMT) 전압을 결정하고, 필요하다면 두 개의 형광 신호의 중첩을 평가하기 위해 사용된다. 항체 농도는 모든 채널에서 최고의 신호 - 대 - 잡음 비율을 달성하기 위해 적정한다. 중복 형광 신호는 사이토 플로우 내의 상이한 형광 채널 내부 캘리브레이션에 의해 보상 될 수있다. </li><li> 1.7 ml의 마이크로 튜브에 필터링 된 세포를 100 μl를 전송하여 이중 형광 표지 된 음성 대조군 샘플을 준비합니다. 혼자 차 항체 IgG를 직접 복합 일차 항체와 차가운 PBS 600 μl를 추가합니다. 참고 : 티S 컨트롤 샘플은 각 형광의 배경 형광을 결정하기 전에 정렬 될 때마다 사용될 수있다. </li><li> 주요 샘플을 준비하는 분류합니다. <ol><li> 1.7 ml의 마이크로 튜브로 필터링 된 세포를 700 μl를 전송합니다. 주 NeuN 항체의 피코 에리 트린 (안티 NeuN-PE)에 직접 결합 : 알렉사 플 루어 647 (항에 Fos-AF647) 1.4 μL (500 1)에 직접 결합 차에 Fos 항체 : 7 μL (100 일)를 추가합니다. 엔드 오버 엔드 혼합 4 ºC에서 30 분 동안 튜브를 품어. </li><li> 인큐베이션의 끝에, 메인 시료 및 대조 시료를 포함하여 각 마이크로 튜브에 차가운 PBS 800 μl를 추가하고, 반전하여 혼합한다. </li><li> 원심 분리기 모세관 4 ºC에서 3 분 동안 1,300 XG에. 세포 손실을 방지하기 위해 50 μl의 상층 액을 떠나, 상층 액을 버린다. </li><li> 적당히 큰 팁 직경과 피펫을 사용하여 펠렛과에 resuspend 세포에 차가운 PBS 1 ML을 추가합니다. </li><li> 4 ºC에서 3 분 동안 1,300 XG에 원심 분리기. 디뜨는을 iscard. </li><li> 다시 정지 500 μL의 펠렛 차가운 PBS를 (최종 부피 펠렛의 크기를 따라 조정). </li><li> 전송 및 셀 스트레이너 캡 (40 μm의)와 함께 둥근 바닥 FACS 샘플 튜브에 현탁액을 필터링 할 수 있습니다. 얼음에 immunolabeled 세포를 유지하고 즉시 FACS를 수행합니다. 참고 : 필터링의 경우, 스트레이너 캡에 수직으로 피펫 팁을 터치하고 그것을 통해 세포 현탁액을 누릅니다. </li></ol></li><li> 제어 샘플을 사용하여 게이트 사이토 설정 흐름. <ol><li> 전체 이벤트 및 세포 파편에서 신경 세포 인구를 식별하기 위해 광산란 및 DAPI 제어 샘플을 사용합니다. 참고 : - 총 이벤트 (나머지는 파편과 깨진 세포 과정이다)의 2 %이 준비 세포 기관은 1입니다. DAPI 형광 신호 (표시 핵) 및 전달 산란 (셀의 크기)에 근거은 뒤로 앞으로 및 측면에 따라 세포 기관 및 게이트를 찾을 수의 속성을 광 산란셀 (도 1 A, B 참조). </li><li> PMT를 전압 설정을 확인하고, 다른 필터 / 채널 (예를 들어, 알렉사 플 루어 488 / FITC 또는 Phycoerythrine)에 하나의 특정 형광 색소에서 배출의 유출을 분석 한 immunolabeled 제어 샘플을 사용합니다. 형광 신호가 겹치는 경우에는 수동으로 보정 레벨을 조정하여 중첩을 수정한다. </li><li> 긍정적 인 인구에 대한 임계 값을 설정하는 이중 형광 표지 된 음성 대조군을 사용합니다. 주 :이 샘플에서 나오는 신호는 양성으로 간주 될 수있는 자동 형광이 임계 값 위에있는 주요 시료의 세포에 의한 것으로 생각된다. 일반적으로, 정렬을위한 임계 파라미터는 더 엄격한 약 음성 대조군 상기 표지 셀의 상부 2/3 실제로 분류되어있다. </li></ol></li><li> 1.7 ML의 마이크로 튜브에 FACS에 의해 메인 샘플에서 정렬 뉴런. RNA의 50 μL로 세포를 수집추출 버퍼입니다. 정렬 와류 원심 분리 튜브 및 상기 튜브의 벽에 모든 정렬 균체를 회수 아래로 10 번을 피펫 팅에 의해 현탁 혼합 후. </li><li> 모든 세포가 RNA 추출 이전에 용해되어 있는지 확인하고 4 ºC에서 2 분 동안 2,800 XG에 원심 분리기 30 분 동안 42 ºC에서 정렬 된 세포 현탁액을 품어. </li><li> 13-15 앞서 설명한 바와 같이, RNA 분리, cDNA 합성, 표적 유전자 사전 증폭 qPCR에 대한 샘플을 처리 즉시 -80 ºC 장기 보존 용의 RNase가없는 튜브로 상청액을 전송하거나. </li></ol>

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</ol>

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

FACS는 어느 신선하거나 냉동 성인 뇌 조직의 신경 세포 및 다른 세포 유형을 정렬하기 위해 사용될 수있다. 서론에서 언급 한 바와 같이, 냉동 조직을 사용하는 능력은 중독 연구에 자기 관리 및 재발 연구 등 복잡하고 연장 된 행동 절차를받은 동물에서 샘플의 최적 활용을 할 수 있습니다. 2 시간 이상, 모든 동물이 필요합니다 - 이러한 행동 절차는 보통 1 소요됩니다 - 같은 날 13,18 테스트 할 (10 ~ 20 총). 그것은 뇌 해부, 세포 분리, permeabilization 및 immunolabeling를 포함 4 갓 해부 뇌 조직 샘플을 처리하기 위해 ~ 4 시간이 걸립니다. 30 분 - 처리 후, FACS에 의해 각각의 샘플을 분류하면 (20) 사이에 걸립니다. 용해 버퍼에 정렬 된 셀을 가열하고 최종 단계는 추가로 30 분을 필요로한다. 총 ~ 7 시간은 최종 RNA 함유 세포 용해 액 단계로 뇌 해부에서 필요합니다. 그러나, 전체 꼰 로프를 고정 할 수있게되었습니다NS 또는 갓 즉시 테스...

학습하는 동안, 동물은 매우 구체적인 자극의 복잡한 세트 사이의 연결을 형성한다. 이것은 고해상도 정보 신경 앙상블이라 띄엄 띄엄 분산 된 뉴런의 특정 패턴 내의 변화에​​ 의해 인코딩 될 것으로 생각된다. 신경 앙상블은 최근 강하게 행동이나 큐 노출시 활성화 된 예에 Fos, 아크 및 Zif268 및 신경 세포에서의 단백질 제품으로 즉시 초기 유전자 (IEGs)의 유도에 의해 확인되었다. 특히 상황과 큐 - 특정 배운 행동 1-4에 인과 역할을하는 것으로 나타났다 신경을 FOS는 발현. 따라서, 이러한 활성화에 Fos 발현하는 신경 세포 내에서 고유 분자 neuroadaptations은 중독과 외상 후 스트레스 장애 (PTSD) 5 정상적으로 학습과 이상 학습 장애 동안 형성된 협회를 알게 인코딩 신경 메커니즘에 대한 상위 후보입니다. Fluore에서 scence 활성화 된 셀 정렬 (FACS)는 최근에 Fos 발현하는 신경 세포 내에서 고유 분자 neuroadaptations의 분석을 허용했다. 유세포 셀은 광 산란 특성에 따라 면역 세포를 특성화하고 분리 1960 -6,7- 개발되었다 정렬 및 긴 면역학 및 암 연구에 사용되었다. 그러나 유동 세포 계측법 및 FACS는 성인 뇌 조직에서 얻기 어려운 해리 하나의 세포가 필요합니다. FACS는 제 8,9 항체 표지가 필요하지 않은 트랜스 제닉 마우스로부터의 선조체 뉴런 발현 분리하고 (GFP)에 녹색 형광 단백질을 분석하는데 사용 하였다. 우리는 분리 및 야생형 동물 11-15에서 약물 및 / 또는 단서에 의해 활성화 된 뉴런에 Fos가 발현 분자 변화를 평가하는 항체 기반 FACS 방법 (10)을 개발했다. 강하게 신경 세포를 활성화하는 동안이 방법에서는, 신경 세포는 일반적으로 신경 세포 마커 NeuN에 대한 항체로 표시되어 있습니다에 Fos에 대한 항체로 표시되어 있습니다. 우리의 초기 방법은 신선한 조직 샘플 당 최대 10 쥐의 풀링을 요구하지만, 프로토콜의 이후의 변경은 단일 쥐 13-15에서 분리 된 뇌 영역에 Fos 발현 뉴런과 정량적 중합 효소 연쇄 반응을 (qPCR에) 분석 FACS 분리 허용 . 전반적으로, 독특한 분자 변경은 중독 연구 12,14,15의적인 상황과 큐 활성화 행동의 다양한 동안 활성화 뉴런에 Fos가 발현에서 발견되었다. 신선한 조직에 FACS를 수행와 주요 물류 문제는 FACS에 의해 조직 및 프로세스를 해리 하나 하루 종일 걸리는 것입니다. 또한, 약 4 개의 샘플은 하루에 처리 될 수있다. 이것은 일반적으로 하나의 뇌 영역마다 뇌에서 평가 될 수 있고, 나머지 뇌 영역을 폐기해야하는 것을 의미한다. 이것은 자기 관리 및 멸종 TRAI 낮은 처리량 행동 절차에 대한 주요 문제수술과 집중적 인 훈련의 많은 주를 필요로 닝. 또, 시험 당일에 길고 복잡한 행동 절차 어려운 당일 FACS를 수행 할 수있다. 이것은 중요한 이점을 즉시 행동 시험 후 동물로부터 뇌를 고정 할 수있을하고 조사자 선택한 다른 시간에 하나 이상의 뇌 영역 FOS를 발현하는 신경 세포를 분리한다. 여기서 우리는 FACS 프로토콜 신선한 냉동 모두 뇌 조직 FOS를 발현하는 신경 세포 (및 다른 유형의 세포)를 분리하기 위해 사용될 수 있음을 보여준다. 예를 들어, 우리는 급성 필로폰 주사 후 주사 (제어 조건)없이 순진한 쥐에서 쥐 선조체의 신경 세포에 Fos가 발현입니다. 그러나이 프로토콜은 FACS 어떤 행동 또는 약물 치료 다음 사용될 수있다. 우리의 샘플의 후속의 qPCR 분석은 이들 세포 타입에서 유전자의 발현이 미으로 평가 될 수 있다고 지적신선한 냉동 모두 조직에서 LAR 효율.

<table><tbody><tr><td>브레인 매트릭스</td><td>CellPoint Scientific</td><td>69-2160-1</td>은 <td>관상 뇌 절편을 얻기 위해</td></tr><tr><td>Hibernate A 저형광</td><td>Brain Bits</td><td>HA-lf</td><td>Buffer A는 프로토콜의 해리에서 고정 단계까지 조직과 세포를 처리하는 데 사용됩니다</td></tr><tr><td>프로토콜의 Accutase</td><td>Millipore</td><td>SCR005</td><td>효소 용액은 trituration</td></tr> <tr><td>전에 조직의 효소 분해에 사용됩니다.Protein LoBind Tube 1.5 ml, 프로토콜</td><td>중 세포 손실 방지를 위한</td><td>PCR clean Eppendorf</td><td>22431081</td></tr><tr><td>Cell Strainer, 40 &micro; m</td><td>BD Falcon</td><td>352340</td><td>- 세포 현탁액</td></tr><tr><td>Cell Strainer, 100 &micro; m</td><td>BD Falcon</td><td>352360</td><td>세포 현탁액을 필터링하기</td></tr> 위해 <tr><td>Falcon 5 ml 라운드 바닥 폴리스티렌 시험관 세포 여과기 스냅 캡</td><td>BD Bioscience</td><td>352235</td> 유세포 분석기 파스퇴르 피펫을 <td>통과하기 전에 세포 현탁액을 필터링하기 위해</td></tr><tr><td>, 유리</td><td>NIH 공급</td><td>6640-00-782-6008</td><td>조직 분쇄</td></tr><tr><td>Milli-Mark Anti-NeuN-PE, 클론 A60 (마우스 단클론) 항체</td><td>EMD Millipore</td><td>FCMAB317PE</td><td>뉴런을 감지하는 항체</td></tr><tr><td>Phospho-c-Fos (Ser32) (D82C12) XP Rabbit (Alexa Fluor 647 Conjugate)&nbsp;</td><td>세포 신호 전달 기술&nbsp;</td><td>Fos 발현 세포를 검출하는</td> <td>8677</td> 항체</tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma</td><td>D8417</td><td>은 핵</td></tr><tr><td>PicoPure RNA 분리 키트</td><td>Applied Biosystems</td>를 라벨링합니다.<td>KIT0204</td><td>이 키트에는 6.14단계를 위한 RNA 추출 버퍼가 포함되어 있습니다. RNA</td></tr> TaqMan PreAmp Master Mix Applied Biosystems<tr><td>에서 cDNA를 합성하기 위해</td>분류된 세포<td>Superscript III 첫 번째 가닥 cDNA 합성 시스템</td><td>Invitrogen</td><td>18080-051</td>을</tr> 수집하는 데 사용됩니다<tr><td></td><td>.</td><td>cDNA</td><td></td></tr> <tr><td>TaqMan Advance Fast Master</td>에서 표적 사전 증폭을 수행하는 4391128 방법&nbsp;<td>응용 바이오시스템.</td><td>TaqMan 프로브를 사용하여 PCR을 수행하는</td> <td>4444963</td></tr><tr><td>Fos TaqMan 프로브</td><td>Applied Biosystems.</td><td>Rn00487426_g1</td><td>TaqMan 프로브/primers</td></tr><tr><td>NeuN TaqMan 프로브</td><td>Applied Biosystems.</td>신경 유전자 마커에 대한 <td>CACTCCAACAGCGTGAC</td><td>뉴클레오티드 서열</td></tr><tr><td>NeuN Forward primer</td><td>Applied Biosystems.</td><td>신경 유전자 마커에 대한</td> <td>GGCCCCTGGCAGAAAGTAG</td> 뉴클레오티드 서열</tr><tr><td>NeuN 리버스 프라이머</td><td>응용 바이오시스템.</td>신경 유전자 마커에 대한 <td>TTCCCCCTGGTCCTTCTGA</td><td>뉴클레오티드 서열</td></tr><tr><td>Gfap TaqMan 프로브</td><td>응용 바이오시스템.</td><td></td><td>Rn00566603_m1 astrocityc 유전자 마커용 TaqMan 프로브/프라이머</td></tr><tr><td>iba-1 TaqMan 프로브</td><td>응용 바이오시스템.</td><td></td><td>Rn00574125_g1 마이크로글리아 유전자 마커용 TaqMan 프로브/프라이머</td></tr><tr><td>Gapdh TaqMan 프로브</td><td>Applied Biosystems.</td><td>참조/하우스키핑을 위한</td> <td>CTCATGACCACAGTCCA</td> 뉴클레오티드 서열</tr><tr><td>Gapdh Forward primer</td><td>Applied Biosystems.</td><td>참조/하우스키핑을 위한</td> <td>GACAACTTTGGCATCGTGGAA</td> 뉴클레오티드 서열</tr><tr><td>Gapdh Reverse primer</td><td>Applied Biosystems.</td><td>참조/하우스키핑을 위한</td> <td>CACAGTCTTCTGAGTGGCAGTGA</td> 뉴클레오티드 서열</tr><tr><td>Oligo2 TaqMan 프로브</td><td>Applied Biosystems.</td><td>Rn01767116_m1&nbsp;</td><td>희소돌기아교세포 유전자 마커를 위한 TaqMan 프로브/프라이머</td></tr><tr><td>P1000 피펫터</td><td>Rainin</td><td>17014382</td><td>경증 조직 분쇄의 경우 3.1 및 3.3 단계, 세포 재현탁을 위한 6.7 단계에서 팁 직경이 큰 피펫으로 언급됩니다</td></tr><tr>.<td>7500 Fast Real-time PCR 시스템</td><td>Applied Biosystems.</td><td></td><td>정량 PCR</td></tr><tr><td>FACSAria I 세포 분류기</td><td>BD Biosciences</td><td>FACS 분류를 위한</td> 446985 <td></td></tr></tbody></table>

형광 활성화 된 셀 정렬 (facs)와 신선한 및 냉동 쥐 뇌 조직 fos를 발현하는 신경 세포의 유전자 발현 분석

Fluorescence Activated Cell Sorting (FACS) and Gene Expression Analysis of Fos-expressing Neurons from Fresh and Frozen Rat Brain Tissue

신경 가소성 및 학습 행동의 분자 변화의 연구는 협회를 알게을 중재 신경 앙상블라고 띄엄 띄엄 분산 활성화 된 뉴런의 특정 세트의 연구에 전체 뇌 영역의 연구로 전환된다. (FACS)을 정렬 형광 활성 세포는 최근 성인 쥐의 뇌 조직에 최적화 신경 마커 NeuN과에 Fos 단백질, 강력하게 활성화 된 신경 세포의 마커에 대한 항체를 사용하여 활성화 된 뉴런의 분리를 허용하고있다. 지금까지에 Fos 발현하는 신경 세포와 다른 세포 유형은 긴 처리 일 길고 복잡한 행동 절차 후 평가하기 위해 뇌 샘플을 허용 매우 제한된 숫자를 수반 신선한 조직에서 분리 하였다. 이십일일 - 여기에서 우리는 등쪽 선조체의 신경과에 Fos mRNA의 별점이 발현의 수익률이 3 -80 ºC에서 동결 갓 해부 조직과 조직 사이의 유사한 것으로 나타났다. 또, 표현형 확인냉동 조직은 또한의 FACS 분리에 사용할 수 있음을 나타냅니다 신경의 평가 유전자 발현 (NeuN), 성상 세포 (GFAP), oligodendrocytic (Oligo2) 및 microgial (Iba1) 마커에 의한 NeuN 양성 및 NeuN 음성 분류 세포의 아교 세포 유형. 전반적으로, 이는 수집 해부 복수 FACS 세션을위한 뇌 조직을 고정 할 수있다. 이것은 종종 길고 복잡한 행동 절차를 거친 유용한 동물 대상에서 획득 된 데이터의 양을 최대화한다.

급성 필로폰 주사 후 한 쥐에서 신선한 냉동 등쪽 선조체 조직 FOS를 양성과에 Fos 음이 신경 세포를 정렬. 위에서 설명한 프로토콜은 필로폰 (5 ㎎ / ㎏)의 복강 내 주사 후 한 쥐의 등쪽 선조체 90 분 FOS를 양성과에 Fos 음이 신경 세포를 정렬하기 위해 사용되었다. 자신의 홈 케이지에서 순진한 쥐를 대조군으로 사용 하였다. 지느러미 선조체 조직이 처리 된 중 즉시 모음 (신선한 조직) 또는 냉동 및 1, 7, 21 일 -80 ºC에 저장 후 처리 후. 이러한 동결 시점의 결과는 서로 차이가 없었다 때문에 데이터 모았다. 악기에 정렬 조건을 설정하려면, 하나 홈 케이지 제어 또는 methampheta에서 (전술) 제어 샘플내 주입 그룹이...

여기에서 우리는 신선한 냉동 모두 뇌 조직에서 신경 앙상블 별점이 발현 분자 변화를 연구하는 형광 활성화 된 셀 정렬 (FACS) 프로토콜을 제안한다. 동결 조직의 사용은 유용한 동물 피험자의 사용을 최대화하기 위해 다수의 세션을 통해 많은 뇌 영역의 FACS 분리 할 수​​있다.

형광 활성화 된 셀 정렬 (FACS)와 신선한 및 냉동 쥐 뇌 조직 FOS를 발현하는 신경 세포의 유전자 발현 분석

The study of neuroplasticity and molecular alterations in learned behaviors is switching from the study of whole brain regions to the study of specific ...

이 절차의 전반적인 목표는 형광 활성 세포 분류법(fluorescence activated cell sorting, FACS)을 위해 신선하거나 냉동된 성체 쥐의 뇌 조직에서 Fos 발현 뉴런을 분리하는 것입니다. 이 방법은 행동 활성화된 뉴런의 고유한 분자 신경 적응을 확인하기 위해 관심 있는 신경 세포를 분리하는 데 사용될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 냉동 조직을 사용할 수 있어, 서로 다른 날에 여러 뇌 영역에서 세포를 분리하는 것이 용이하다는 점입니다.신선한 뇌 조직을 처리하려면, 미리 냉각시킨 면도날 두 개 이상을 매우 차가운 뇌 슬라이싱 매트릭스의 슬롯에 삽입하여 관심 뇌 영역이 포함된 1~2 mm 두께의 관상면 절편을 자르고, 절단되는 즉시 냉각된 유리판 위에 놓습니다. 먼저 관심 뇌 영역을 박리하고 다른 부위는 폐기하며 백질을 제거합니다. 조직을 동결하려면 샘플을 마이크로튜브로 옮긴 후, -40 °C의 이소펜탄에 튜브를 20초 동안 담근 다음 추가 처리가 필요할 때까지 -80 °C에서 보관합니다.조직을 잘게 다지기 위해, 샘플을 차가운 유리판 위에서 1분 이내로 해동시킨 후 Buffer A 용액을 1~2방울 떨어뜨려 샘플을 덮어줍니다. 다음으로, 면도날을 유리판과 완전히 수직이 되게 잡고 각 직교 방향으로 조직을 100회씩 다집니다. 조직을 철저하게 다지기 위해서는 Buffer A로 조직을 계속 젖은 상태로 유지하고, 지정된 다지기 횟수와 방향을 준수하는 것이 매우 중요합니다.조직 절단 시 백색질의 대부분을 제거하는 것이 매우 중요하며, 다지기 효율을 높이고 세포의 건강 상태를 유지하기 위해 조직이 Buffer A에 잠겨 있도록 해야 합니다. 조직 처리가 완료되면, 면도날을 사용하여 조각들을 1 mL의 차가운 Buffer A가 들어 있는 마이크로원심분리 튜브로 옮기고, 튜브를 3~5회 뒤집어 다져진 모든 조직이 용액에 완전히 잠기게 합니다. 조직 파편을 단일 세포 현탁액으로 해리하기 위해, 원심분리를 통해 샘플을 펠렛화합니다.상층액을 제거합니다. 그런 다음, 차갑고 갓 해동한 효소 용액 1 mL를 마이크로튜브의 내벽을 따라 천천히 첨가합니다. 그리고 직경이 큰 팁의 피펫을 사용하여 각 펠렛 전체를 즉시 4회 흡입 및 분사하여 잘게 절단된 조직 조각들을 분산시킵니다.다음으로, 펠렛이 튜브 바닥에 달라붙는 것을 방지하기 위해 마이크로튜브를 빠르게 뒤집고, 4°C에서 30분 동안 엔드-오버-엔드(end-over-end) 방식으로 혼합하며 배양합니다. 소화 과정이 끝나면 튜브를 다시 원심 분리하고, 세포에 차가운 Buffer A 0.6 mL를 첨가합니다. 동일한 피펫 팁을 사용하여 펠렛을 즉시 5회 흡입 및 분사합니다.그런 다음, 1.3 millimeter 유리 피펫을 선택하여 샘플을 10회 천천히 트리튜레이션(trituration)합니다. 샘플을 얼음 위에 2분 동안 두어 부유물과 해리되지 않은 세포가 튜브 바닥에 가라앉도록 합니다. 이후, 상층액을 새로운 15 milliliter 튜브로 옮깁니다.다음으로, 남은 펠렛에 600 µL의 Buffer A 용액을 첨가하고, 0.8 mm 직경의 피펫을 사용하여 샘플을 10회 더 트리튜레이션(triturate)합니다. 방금 시연한 것과 같이 조직이 가라앉을 때까지 기다린 후, 상층액을 첫 번째 세포 현탁액과 합치고 펠렛에 버퍼 600 µL를 추가로 첨가합니다. 그런 다음, 0.4 mm 피펫을 사용하여 샘플을 트리튜레이션하고, 튜브를 얼음에 2분 동안 두어 조직이 가라앉도록 합니다.성공적인 분리(sorting)를 위해서는 프로토콜의 기계적 마쇄(trituration) 단계를 따르는 것이 중요합니다. 그 후, 상층액을 해리된 세포와 합칩니다. 그다음, 샘플에 600 microliters의 Buffer A를 첨가하고, 0.4 millimeter 피펫 마쇄를 3회 더 반복합니다.세포가 가라앉을 수 있도록 튜브를 2분 동안 얼음에 둡니다. 그런 다음, 상층액을 두 번째 15 milliliter 튜브에 모읍니다. 가장 작은 유리 피펫을 사용하여 trituration 과정을 3회 더 반복하면, 이후의 sorting을 위한 세포 회수율을 유의미하게 높일 수 있습니다.모든 상층액을 수집한 후, 얼음 위에 놓인 4개의 마이크로튜브에 -20 °C의 100% 에탄올 800 µL씩을 각각 넣습니다. 그런 다음, 수집된 첫 번째 상층액 튜브에서 세포 800 µL를 취해 에탄올이 담긴 첫 두 개의 튜브에 각각 옮기고, 두 번째 상층액 튜브에서 세포 800 µL를 취해 나머지 두 개의 에탄올 튜브에 각각 옮깁니다. 튜브를 반전시켜 샘플을 혼합합니다.그 다음, 샘플을 얼음 위에 15분 동안 두고 5분마다 도립 혼합하여 섞어줍니다. 배양이 끝나면 세포를 원심분리합니다. 그런 다음, 마이크로튜브의 벽면만 접촉하도록 하여 마이크로피펫을 이용해 각 상층액의 마지막 50 µL를 제외한 모든 양을 천천히 제거합니다.두 종류의 세포 현탁액을 각각 서로 다른 두 쌍의 세포 스트레이너를 사용하여 개별적으로 필터링합니다. 이후 세포는 관심 있는 세포 마커에 대한 항체로 라벨링하고 유세포 분석기로 분리할 준비가 됩니다. 신선한 뇌 조직 샘플과 냉동된 뇌 조직 샘플을 분석하면 크기와 과립성이 유사한 신경세포의 작고 균질한 집단이 존재함을 알 수 있습니다.작고 균질한 세포 집단은 게이팅을 통해 세포 응집물을 제외할 수 있으며, 뉴런은 NeuN 및 DAPI 양성 여부로 식별할 수 있습니다. 신선 조직 및 동결 조직 샘플 모두에서 NeuN mRNA 수준은 NeuN 음성 집단보다 NeuN 양성 집단에서 유의하게 더 높게 나타납니다. 반면, 글리아 및 희소돌기아교세포 표지자 mRNA 수준은 NeuN 양성 집단보다 NeuN 음성 집단에서 더 높습니다.통계적으로 유의미하지는 않았으나, NeuN 음성군에서도 마이크로글리아 세포 마커 mRNA 수준이 높아지는 유사한 경향이 관찰되었습니다. 또한 Fos mRNA 수준은 Fos 음성 뉴런보다 Fos 양성 뉴런에서 더 높게 나타났는데, 신선 조직 유래 Fos 양성 뉴런에서는 Fos mRNA가 3배 증가하였고, 냉동 조직 유래 Fos 양성 뉴런에서는 11배 증가하여, 신선 및 냉동 조직 조건 모두에서 유세포 분석으로 분류된 세포로부터 특정 관심 유전자를 식별하는 이 방법의 타당성이 확인되었습니다. 이 절차를 수행할 때, 세포 용해 방지를 위한 중요한 단계들을 반드시 준수해야 함을 기억하시기 바랍니다.이 절차 이후, 형광 활성 세포 분리법(fluorescence activated cell sorting)과 같은 다른 방법을 수행하여 추가적인 다운스트림 분자 분석을 위해 관심 있는 세포 하위 집단을 분리할 수 있습니다. 냉동 조직을 사용하면 서로 다른 날짜에 샘플을 분리할 수 있으며, 이는 조직 수확 및 준비 과정이 길고 복잡한 실험에서 매우 중요합니다. 이 기술은 또한 수개월 또는 수년 동안 보관된 사후 냉동 인간 뇌 샘플을 유세포 분석을 통해 분리하기 위해 준비하는 데 사용할 수 있습니다.이 기술은 신경과학 분야의 연구자들이 Fos 발현 뉴런 또는 관심 있는 다른 면역 표지 야생형 세포의 행동 기저에 있는 분자 메커니즘을 탐구할 수 있는 길을 열어주었습니다. 이 영상을 시청하고 나면, 관심 있는 뉴런 또는 세포 유형의 형광 활성 세포 분류(FACS)를 위해 신선하거나 냉동된 쥐 뇌 조직에서 세포를 분리하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 프로토콜은 아닌 방사성을...

더블 형광 현장에서</em신선한 두뇌 섹션> 하이브 리다이 제이션

여기 세미 두께 뇌 조각의 이미지 찬란 표시된 셀에 신속하고 간단한 방법을 설명합니다. , 고정 깔끔히 및 광학 뇌 조직을 취소하여 우리는 표준 epifluorescent 또는 공촛점 이미지가 손상 신경 조직 내의 개별 세포의 연결 네트워크를 시각화하는 데 사용할 수있는 방법에 대해 설명합니다.

세미 두께 뇌 조각의 고해상도 형광 이미징에 대한 빠른 접근

태아 마우스 조직에서 신경 능선 - 파생의 연결을 progenitors 정화 최적화된 절차를 설명합니다. 이 방법은 형광 활성화된 셀 정렬 (FACS)에 의해 이산 인구를 분리하기 위해 형광등 기자 대립 유전자로부터 표현의 활용합니다. 기술은 개발 전반에 걸쳐 또는 성인 조직에서 subpopulations의 연결을 분리하여 적용할 수 있습니다.

태아 쥐의 내장 장기에서 자율 신경 Progenitors의 형광 - 활성 셀 정렬 (FACS) 절연을위한 최적화된 절차

이 비디오는 뉴런, 성상세포, 미세아교세포를 포함한 쥐 해마로부터 세포를 분리하는 프로토콜을 보여줍니다.

쥐 해마에서 다양한 신경 세포 집단 얻기

이 비디오는 효소 분해와 기계적 분쇄를 사용하여 얼어붙은 쥐의 뇌 조직을 단세포 현탁액으로 해리하는 방법을 보여줍니다. 준비된 세포는 유세포 분석 또는 유전자 발현 분석과 같은 다운스트림 응용 분야를 위해 에탄올로 고정되고 투과화됩니다.

Obtaining a Single-Cell Suspension from Frozen Rat Brain Tissue

이 프로토콜의 목표는 형광 활성화 세포 분류(FACS) 기술을 사용하여 세포 유형별 유전자 발현, 후성유전학적 마커 및/또는 단백질 발현의 후속 분석을 위해 특정 유형의 신경 세포를 분류하는 것입니다.

쥐 뇌 조직 검사 정렬 형광 활성 셀을 사용하여 셀 타입 별 유전자 발현

이 연구의 목적은 쥐의 지방과 설탕의 소설 섭취 후 도파민 경로 및 터미널 사이트에서 동시에 변화를 측정하기 위해 휴대 C-FOS 활성화를 사용하여 신뢰할 수있는 면역 조직 기술을 서술하여 보상 관련 분산 뇌 네트워크를 식별하는 것입니다.

흰쥐의 나이브 설탕과 지방 섭취에 따라 변연계와 Mesocortical 도파민 보상 사이트에서 C-에 Fos 활성화의 동시 검출

이 프로토콜 수동을 정렬 mRNA 증폭 높은 깊이 단일 셀 RNA 시퀀싱 전사 기반 생체 외에서 다음 단일 붙일 레이블된 신경 세포를 분리 하는 절차에 설명 합니다.

단일 셀 RNA 시퀀싱 시퀀싱 (디바-Seq) 절대 수 수동 정렬 및 두 배 전사 생체 외에서 를 사용 하 여 붙일 레이블이 마우스 뉴런의

여기서, 우리는 뇌 영역에서 단백질을 분석 하기 위해 면역 조직 화학 및 고해상도 스캔과 함께 근 적외선 염료를 사용 하는 프로토콜을 제시 합니다.

근 적외선 형광 및 고 분해능 주사를 사용 하 여 설치류 뇌의 단백질 발현 측정

이 프로토콜은 다중 표지 FISH 및 형광 IHC 신호를 달성하는 것을 목표로 신선 냉동 및 고정 마우스 뇌 절편 모두에서 형광 in situ hybridization(FISH)과 형광 면역조직화학(IHC)을 결합하는 방법을 설명합니다. IHC는 세포질 및 막 부착 단백질을 표적으로 삼았습니다.

Multiplex Fluorescence In Situ Hybridization with Fluorescent Immunohistochemistry on Fresh Frozen or Fixed Mouse Brain Section(신선 냉동 또는 고정 마우스 뇌 절편에서 Multiplex Fluorescence In Situ Hybridization과 형광 면역조직화학의 결합)

형광-활성화된 세포 분류-방사성리간드 처리된 조직(FACS-RTT)은 알츠하이머병에서 세포 규모로 18kDa 트랜스로케이터 단백질 또는 세로토닌 5HT2A-수용체 발현의 역할을 연구하는 강력한 도구입니다. 이 프로토콜은 TgF344-AD 래트 모델에서 FACS-RTT의 생체외 적용을 기술한다.

형광-활성화된 세포 분류-방사성 신호의 세포 기원을 결정하기 위한 방사성리간드 처리조직(FACS-RTT)

배우세요 FACS를 이용해 신선하거나 냉동된 쥐 뇌 조직에서 Fos 발현 신경 세포를 분리하고 유전자 발현을 분석하는 방법을. 이 기법은 행동 활성화 신경원의 분자 신경 적응을 연구하는 데 활용됩니다.

형광 활성화 된 셀 정렬 (FACS)와 신선한 및 냉동 쥐 뇌 조직 FOS를 발현하는 신경 세포의 유전자 발현 분석

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