Name: 계층화 된 알긴산를 구축 : 이기종 세포 인구의 공동 문화를위한 플랫폼 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 57 s
Description: 배우세요 이중층 알긴산 하이드로겔 디스크 제작법을 통해 다양한 세포 집단 간 상호작용을 3D 공동 배양 환경에서 연구하는 방법을. 이 기술은 조직 공학 및 기계적 자극 연구에 경제적이고 재현 가능한 플랫폼을 제공합니다.

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이 연구는 미국 국립과학재단(CBET 0845754, AHH)의 지원을 받았습니다.

알긴산 디스크의 형성 1. 준비 <ol><li> 4 % 준비 (W / V), 37 ° C 수조 첨가 염화칼슘 또는 염화 마그네슘이없는 장소 1X 둘 베코 인산염 완충 식염수 알지네이트 용액. 알지네이트 용액의 농도는 다를 수 있지만, 1~4% (W / V) 알긴산 용액을 사용하는 것이 좋습니다. </li><li> 원하는 세포 유형 따뜻한 세포 배양액베이스로 한 (예를 들면, 둘 베코 변형 이글 매체.) : 1의 비율로 알지네이트 용액을 혼합한다. 알기 네이트 농도가 이제 원래 농도의 절반 즉., 2 % (W / V). 멸균 된 0.2 ㎛의 나일론 주사기 필터를 사용 알긴산 / 미디어 용액 살균. </li><li> (- 300㎖의 ~ 200)을 주형 잠수함 충분한 용액을 멸균 무균 102 mM의 염화 칼슘 이수화 물 목욕을 준비한다. </li><li> 멸균 &quot;겔 형성 금형&quot;알루미늄 플레이트 × 3의 3 (6mm 직경 X 3mm 높이의 원통형 우물을 수집, 참조 <strong&gt; 그림 1)과 종판 (바닥 : 하나의 알루미늄 판에 × 3에서 3 위 : 알루미늄 플레이트 × 3 한 1.5) 다음과 같이 금형을 준비 : <ol><li> 약 1 분 두꺼운 종이 필터 (흡착 여과지) 및 상부 및 하부 종판의 크기의 셀 마이크로 시브 막 (10 ㎛의 공극 크기)을 차단시키고, 포화 될 때까지 염화 칼슘 욕에 배치. 필요하다면, 사용하기 전에 30 분 동안 오토 클레이브 또는 자외선을 통해 두꺼운 종이 필터와 마이크로 시브 막 살균. </li><li> 설정 금형 구조의 절반 (하단 참조). <ol><li> 다음 순서에 따라 서로 꼭대기 다음 항목을 넣고 멸균 주걱을 사용하여 부드럽게 : 큰 단부 판 두께 여과지하고 마이크로 시브 막 (3 × 3의 단위). </li><li> 전환 과량의 염화칼슘 용액의 손실을 보장하기 위해 종이 타월의 스택 상에 몰드를 누른다. </li><li> ㄴ 위에 원통형 웰과 &#39;겔 형성 몰드 &quot;놓고엘의 마이크로 시브 막 부드럽게 좌우 양측에 바인더 클립을 이용하여 양면에 함께 몰드를 고정. 완전히 나중에 우물을 충당하기 위해 (의 × 3 1.5) 상단 엔드 플레이트에 대한 충분한 공간을두고 있는지 확인합니다. </li></ol></li><li> 설정 금형 구조 하반기 (위쪽 절반). <ol><li> 다음과 같은 순서로 서로 꼭대기 다음 항목을 놓고 부드럽게 : 작은 엔드 플레이트, 두꺼운 종이 필터, 마이크로 시브 막을. </li><li> 반전 및 초과 염화칼슘 용액의 손실을 보장하기 위해 종이 타월의 스택에 금형이 절반을 누릅니다. 이 때 바인더 클립을 사용하여 금형의 끊임 고정하지 마십시오. </li></ol></li></ol></li><li> 문화 전지는 제조업체의 지침에 따라 권장합니다. 층상 알지네이트 하이드로 겔에 포함 할 원하는 세포를 수확. 권장 세포 밀도는 1 - 2 × 106 세포 / ㎖, 그러나 이것은 실험 목적에 따라 변화 될 수있다. 참고 :이 방법을 사용하는 경우다른 세포 유형의 레이어를 만들기 위해, 레이어에 대한 병렬 문화 두 가지 세포 유형을 확인합니다. 중간 엽 줄기 세포 (MSC들)이 1 × 106 세포의 세포 밀도로 접종 / ㎖가 다음과 같은 프로토콜을 일례로서 사용한다. 필요에 따라 휴대폰 번호 및 디스크 번호는 실험을 위해 확장 할 수 있습니다. <ol><li> 기저 성장 배지 10 ㎖ (둘 베코 변형 이글 중간 10 % 태아 소 혈청, 2 % L 글루타민, 1에서 5,000 세포 / ㎠ - 1 ~ 2 주 전에 3000의 세포 밀도에서 시드 중간 엽 줄기 세포를 포함하는 T-75 플라스크 % 비 필수 아미노산, 1 % 페니실린 / 스트렙토 마이신). </li><li> 3 일 세포가 80 때까지 기저 성장 미디어 10 ㎖로 교체 - - 매 2 소모 된 용지를 제거 90 % 합류. </li><li> 추가 염화칼슘 또는 세포를 세척하는 염화 마그네슘없이 1 배 둘 베코 인산염 완충 생리 식염수 3 ㎖를, 세포를 수확 동안 미디어를 제거하고, 피펫합니다. 피펫, 0.25 %의 시도 3 ㎖를이 솔루션을 제거T-75 플라스크에서 성장 세포 상에 psin-EDTA를, 37 ℃에서 5 분 동안 품어. 기저 성장 미디어의 9 ml의 - 세포가 부착 표면에서 해제 한 후, (6)을 추가합니다. </li><li> 원심 엽 줄기 세포는 실온에서 5 분 동안 600 XG에서, 상등액을 흡인하고, (1)에 다시 일시 - 기저 성장 배지 5 ㎖. 디바이스 명령어를 이용하여 혈구를 사용하여 세포를 카운트. </li><li> 원심 동일한 조건을 이용하여, 총 부유 셀에서 1 × 106 세포를 제거하고, 상층 액을 흡인. </li></ol></li></ol> 셀 시드 알긴산 디스크 2. 형성 <ol><li> 1 × 106 세포 / ml의 세포 밀도를 달성하기 위해 무균 알긴 / 미디어 용액 1 ㎖로 세포 펠렛을 다시 일시. 세포가 적절하게 혼합되면, 셀 알긴산 혼합물 외관 균일 흐린 것이다. </li><li> 피펫 금형의 하단에 여섯 6mm 직경 X 3mm 높이 우물에 세포 알긴산 혼합물의 130 μL기포를 생성하지 않도록 적하를 구성. 약간 볼록 메 니스 커스가 아니라 각각의 가장자리 위에 표시해야한다. </li><li> 조심스럽게 멸균 주걱을 사용하여 금형 구조의 위쪽 절반을 부드럽게하고 셀 마이크로 시브 멤브레인은 우물의 상단에 위치하도록 뒤집습니다. 몰드 셀 완전히 알긴산 혼합물을 함유하는 웰을 덮 확인한 웰 위에 구축 놓는다. </li><li> 중앙에 단단히 누른 상태에서,로드 된 금형 구조를 올리고, 바인더는 금형 구조의 상단과 하단 반쪽을 고정하는 나머지 두 측면 (상단과 하단)를 클립. 세포 - 알지네이트 용액을 안전하게 이때 우물에 자리한다. </li><li> 전체 구조가 침수되어 있는지 확인하고, 102 mM의 염화칼슘 화장실에서 고정 금형 구조를 담가. 90 분 동안 실온에서 세포 배양 후드에서 인큐베이션. </li><li> 90 분의 끝에, 102 mM의 염화칼슘의 금형 구조를 제거세포 배양 후드에 종이 타월의 스택에 목욕 및 장소. 네 바인더 클립을 제거하고 금형 구조의 두 부분을 분리합니다. 우물에 형성된 하이드로 겔은 거품이 안 완전히 우물을 작성해야합니다. </li><li> 주걱을 사용하여 조심스럽게주의 깊게 풀고 하이드로 겔을 쐐기 하이드로 겔을 함유하는 웰의 에지를 추적. 몰드 구조체에서 하이드로 겔을 분리 한 후, 직접 칼슘, 염화 마그네슘과 1X 둘 베코 인산염 완충 염수 욕조로 하이드로 놓는다. 5 분 - 1 초과 염화칼슘 용액을 씻어 완전히 겔을 커버. </li><li> 완전히 하이드로 겔을 포함 원하는 요리의 기초 성장 미디어 솔루션 (예., 6 웰 플레이트)에 하이드로 겔을 전송합니다. 37 ° C에서 세포 배양 인큐베이터에 최소한 1 시간 5 % 축성 단계를 계속하기 전에 CO 2 품어. 주 : 세포를 함유하는 하이드로 겔을 유지할 수있다3 일 - 다른 세포 집단으로 겔 레이어까지 이때 무한정 세포 배양기는 매체마다 변경이 완료되었는지 제공 요구된다. </li></ol> 알긴산 디스크의 3 레이어링 <ol><li> 1 시간 보육의 마지막 시간 반 동안 수집하고 젤을 어닐링에 대한 멸균 금형 및 솔루션을 준비합니다. <ol><li> X는 (AN 단부 판에 3 (알루미늄 판에서 X 3 3 6 mm 직경 X 1.5 mm 높이 웰)은 &quot;겔 형성 몰드&quot;의 높이 웰 반을 갖는 금형을 체결하여 &quot;절단 금형&quot;준비 좌우의 바인더 클립을 사용하여 알루미늄 판 3). </li><li> X에서 ((알루미늄 판에 × 3의 3 9mm 직경이 X 3mm 높이 우물)는 단부 판에 &quot;겔 형성 금형&quot;보다 직경이 3mm 큰 금형을 체결하여 3은 &quot;열처리 금형을&quot;준비 좌우의 바인더 클립을 사용하여 알루미늄 판 3). </li><li> 의 솔루션을 준비100 mM의 시트르산 나트륨 / 30 mM의 EDTA 멸균 수 (구연산 나트륨 이수화 물, 에틸렌 디아민 테트라 아세트산의 테트라 나트륨 염 이수화 물). </li></ol></li><li> 원하는 세포 인구의 젤 제거합니다 (이 예에서, 두 중배엽 줄기 세포의 디스크) 접시에있는 미디어에서, 그리고는 &quot;절단 금형&quot;우물에 배치합니다. 각 겔 금형 위에 돌출 겔의 절반 우물에 잘 맞도록해야한다. </li><li> 메스를 사용하여, 금형의 표면을 따라 겔 (이 반 하이드로 겔을 절단한다) 조각. 겔의 상단 절반 플립 오픈 금형 우물에 배치합니다. 겔의 절반도 잘 금형에 잘 맞해야하지만, 지금은 모두 반 겔은 보이는 잘라 내면 몰드의 높이를해야한다. 두 번째 젤 반복합니다. 참고 : 경고 : 만 내부 절단면은 레이어 디스크를 형성 할 것이다. 외면을 사용하면 반 분리 될 것이다. 이 겔 표면 방지에 전사 마이크로 시브 막에서 그 질감을 의심어닐링 공정의 성공. </li><li> 마이크로 시브 막을 어닐링하는 겔 절반 모두와 접촉하는 것을 확인하고 완전히 덮어서 웰의 상부에 건전지 마이크로 시브 막 조각을 놓는다. 완전히 젤을 포함해야하고, 마이크로 시브 막 위에 두꺼운 종이 필터를 놓습니다. </li><li> 이 포화 될 때까지 필터 두꺼운 용지에 100 mM의 시트르산 나트륨 / 30 mM의 EDTA (구연산 나트륨 이수화 물, 에틸렌 디아민 테트라 아세트산의 테트라 나트륨 염 이수화 물)의 용액을 피펫. 약 750 ㎕의 네 우물에 충분하다. </li><li> 실온에서 1 분 동안 인큐베이션 젤. 이어서, 세포 마이크로 시브 막 두께 여과지를 제거하고 폐기. 바인더 클립을 제거하고 곰팡이를 엽니 다. </li><li> 각 어닐링 젤, 절단면이 위쪽으로 향하도록 준비 &quot;어닐링 몰드&quot;로 하이드로 겔의 일 시트르산 나트륨 / EDTA 처리 반 옮긴다. 이것은 어닐링 CONST의 절반 것ruct. </li><li> 절단면이되어 있으므로,이 후반 겔을 내리고, 이미 &quot;어닐링 몰드&quot;의 겔상에서 (다른 셀 타입을 포함 할 수있다) 주걱, 리프트를 이용하여 제 시트르산 나트륨 / EDTA 처리 반 겔 배치 이미 &quot;어닐링 몰드&quot;의 겔의 절단 표면에 접촉. </li><li> 부드럽게 아래로 두 젤에 사이의 거품을 제거하기 위해 주걱을 사용하여 두 젤 누릅니다. 그들은 서로의 상단에 직접적 있는지 확인하기 위해 필요에 따라 또한, 젤의 위치를​​ 변경. </li><li> 부드럽게 &quot;어닐링 주형&quot;을 올리고, 30 분 동안 102 mM의 염화칼슘 욕에서 잠수함. 엔드 플레이트와 우물을 덮지 마십시오. </li><li> 30 분 배양 한 후, &quot;열처리 금형&quot;을 제거하고 종이 타월 위에 놓습니다. 바인더 클립을 제거하고 엔드 플레이트에서 금형을 분리합니다. </li><li> 어닐링 젤을 수집하고 염화칼슘 및 m와 1 배 둘 베코 인산염 완충 생리 식염수로 배치, 주걱을 사용하여agnesium 염화 목욕 젤을 씻어. 이어서, 소망의 접시에 세포 배양 배지 어닐링 하이드로 겔을 트랜스퍼 (예. 6 웰 플레이트) 배양. </li></ol>

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여기, 우리는 예를 들어 생리 학적으로 계층화 된 조직에서 그, 연골 등 여러 세포 집단의 공동 문화를 연구하는 계층화 된 알지네이트 하이드로 겔 디스크의 형성을위한 프로토콜을 설명합니다. 이러한 기재된 배양 플랫폼으로서 계층화 구조, 동일한 배양 환경이나 하중 하에서 행하여 두 개의 별개의 세포 집단 사이의 상호 작용을 조사 할 수있다. 알긴산은 생체 것으로 밝혀졌다 성공적 연골 생물학, 조직 공학 연구 (12, 14)에 사용 된 음이온 성 선형 다당류이다. 알긴산 하이드로 겔은 가교 가의 양이온을 이용하여 형성된 예를 들어., 칼슘 이온. 이러한 가교는 시트르산 나트륨 또는 EDTA 등의 킬레이트 제를 이용하여 양이온을 제거함으로써 취소 될 수 있으며,이 과정은 겔 3,4,12에서 배양 한 연골 세포를 분리하기 이전에 사용되었다. 마찬가지로, 동일한 원리성공적 이중층 또는 알긴산 비드 ...

이러한 관절 연골이나 척추 디스크와 같은 압축 하중 베어링 조직은 조직에서 모두 생체 역학적 기능과 적절한 메카-전달에 중요한 이종 조직 영역으로 구성되어 있습니다. 뿐만 아니라이 세포 조직과 다른 지역의 구별을 작동하지만, 세포 외 기질 (ECM)도 조성 및 조직의 변화된다. 예를 들어, 관절 연골은 다양한 세포 형태, 기계 기능, ECM와 세 가지 주요 영역으로 구성되어 있습니다. 로드 베어링 책임을 차등 그들의 ECM 리드의 차이; 중간과 깊은 영역이 압축 1 응답을 주로 책임있는 동안 표면 층은 주로로드 인장 응답에 참여하고있다. 마찬가지로, 추간판에 겔상 수핵은 라멜라 환형 섬유화에 의해 둘러싸인 이들 두 개의 별개의 영역 내에서 세포 생 물리적 자극의 종류를 경험티슈가 겪는 기계적인 힘에 반응로 (2). 티슈 층 내의 조직, 세포 및 세포 외 매트릭스의이 종류가 서로 상호 작용한다. 이러한 이종 조직 구조의 재현부는 조직 공학 및 재생 의학에 도전 남아 있고, 생물학적 중요성에 대한 우리의 이해는 제한됩니다. 일 구조에서 세포 개체군의 층상 조직과 공동 배양 분석 플랫폼 배양이 필요하다. 관절 연골 조직 공학에서, 비계없는 계층 구조는이 조직 3,4의 다른 레이어를 모방하는 다양한 ECM을 증착하는 동서 연골 세포의 능력을 활용하여 구성되어있다. 그러나, 적층 구조 하이드로 겔 독립적 견고한 조직을 형성하는 능력이 부족한 세포 집단 다양한 형태의 상호 작용을 연구하기위한 기회를 제공한다. 예를 들어, 다른 팝업중간 엽 줄기 세포의 ulations 계층화 구조물 내에 공 배양 할 수있다. 이러한 층상 지지체는 연골 향상된 조직 공학 5 중간 엽 줄기 세포의 분화를 모두 사용되어왔다. 뿐만 아니라, 다른 세포 집단 유사한 겔 층에서 배양-협력 할 수 있지만, 하나의 세포 유형은 세포 -6,7- 상이한 반응을 유도하는 다양한 강성 또는 생화학 함량을 갖도록 조작 한 층 내에서 배양 될 수있다. 다양한 생체 하이드로 겔은 폴리에틸렌 글리콜 또는 폴리 비닐 알콜을 사용하여 염기 7-9 것과 연골 조직 공학을위한 세포 집단 레이어하는데 사용되어왔다. 그러나, 알지네이트 하이드로 겔은 공동 문화에서 이종 세포 인구를 공부 계층 발판을 만드는에서 간단한 생체 재료 중 하나입니다. 아가 로스 하이드로 겔은 쉽게 형성되지만, 알지네이트 하이드로 겔은 쉽게이 허용하는 추가 혜택을개별 세포의 분석을 위해 3-D 구조에서 셀 olation 이전 10 설명한 바와 같이. 이전의 연구에서, 이중 층 알지네이트 하이드로 겔은 얇은 시트에 형성되었으며, 이러한 시트에서, 섹션 분리되었다 (예., 생검 펀치 사용) 등의 생화학 적 내용이나 계면 전단 특성 (11, 12)의 분석과 같은 특정 응용 프로그램을. 알긴산 얇은 시트를 형성하기위한 다른 방법은 복수의 층으로 층화의 가능성을 설명 하였지만, 여전히 기계적 시험 (13)에 사용하는 하이드로 겔에 대한 변경을 필요로한다. 여기서는 재현성 세포를 공동 배양하는 다른 집단에서 사용하기위한 이중층 알긴산 겔 디스크를 생성하기위한 방법을 제시한다. 이것은 알긴 디스크 플랫폼은 여러 가지 장점을 가지고있다. 주로, 재생 가능한 형상과 작은 크기 생검 PU 없이도 내장 세포의 기계적 자극 도움이되는NCH​​ 또는 여러 응용 프로그램의 하이드로 겔에 다른 물리적 변경. 또한, 세포 생존율은 레이어링 공정 동안 높게 유지하고, 겔 형성 후에 겔 내의 두 개의 세포 집단의 명확한 분리가없는 초기의 중복 영역으로 볼 수있다.

<table><tbody><tr><td>알긴산 나트륨 소금</td><td>시그마 알드리치</td><td>A1112</td><td>DPBS (-/-)</td></tr><tr><td>1x Dulbecco의 인산염 완충 식염수 (-/-)</td><td>Gibco Life Technologies를</td> 사용하여 wt%로 만든 용액;<td>14190</td><td></td></tr><tr><td>1x Dulbecco's Phosphate Buffered Saline (+/+)</td><td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>14190</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco의 변형된 독수리 매체</td><td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>11965</td><td>예. 원하는 중간 유형</td></tr><tr><td>주사기 필터(0.02 &#956; m 나일론)</td><td>FisherBrand</td><td>0979C</td><td></td></tr><tr><td>염화칼슘 이수화물</td><td>Fisher Bioreagents</td><td>BP510</td><td>멸균수에 용액 준비</td></tr><tr><td>Criterion Blotter Filter Paper</td><td>Biorad</td><td>1704085</td><td>곰팡이 형성을 위한 종판 크기로 절단</td></tr><tr><td>Cell Microsieve Membrane (10 &#956; m 기공 크기)</td><td>Biodesign Inc of New York</td><td>N10R</td><td>곰팡이 형성을 위한 엔드플레이트의 크기로 자르기</td></tr><tr><td>시트르산나트륨 디하이드레이트</td><td>FisherScience</td><td>S93364</td><td></td></tr><tr><td>에틸렌디아민테트라아세트산 테트라소듐 염 디하이드레이트 (EDTA)</td><td>FisherBioreagent</td><td>BP121</td><td></td></tr><tr><td>태아 소 혈청&nbsp;</td><td>Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>26140</td><td>중간엽 줄기세포 기초 성장 매체</td></tr><tr><td>Penicilin/Streptomycin (10,000 U/ml)</td><td>에 사용됨Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>15140</td><td>중간엽 줄기세포 기저 성장 매체</td></tr><tr><td>L-Glutamine (200 mM)</td><td>에 사용됨Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>25030081</td><td>중간엽 줄기 세포 기초 성장 배지</td></tr><tr><td>비필수 아미노산 (100x)</td><td>에 사용됨Gibco Life Technologies&nbsp;</td><td>11140050</td><td>중간엽 줄기 세포 기초 성장 배지의 예에 사용됩니다</td></tr></tbody></table>.

계층화 된 알긴산를 구축 : 이기종 세포 인구의 공동 문화를위한 플랫폼

Layered Alginate Constructs: A Platform for Co-culture of Heterogeneous Cell Populations

많은 하중지지 조직은 구조적으로나 기능적으로 뚜렷한 영역을 가지고 있으며, 일반적으로 차등적인 메카노센싱 특성을 가진 서로 다른 세포 표현형을 동반합니다. 이러한 조직 유형에 대한 엔지니어링 및 분석은 여전히 과제로 남아 있습니다. 층상 하이드로겔 구조체는 단일 구조체 내에서 여러 세포 집단 간의 상호 작용을 조사할 수 있는 기회를 제공합니다. 알긴산 하이드로겔은 생체 적합성이 있으며 실험 후 세포를 쉽게 분리할 수 있습니다. 여기에서는 소형 2층 알기네이트 하이드로겔 디스크의 개발 방법을 설명합니다. 이 과정은 형성 과정에서 인간 중간엽 줄기세포의 높은 세포 생존력을 유지하며, 이러한 층상 디스크는 연골 형성을 겪고 있는 hMSC의 자극에 일반적으로 사용되는 제한되지 않은 순환 압박을 견딜 수 있습니다. 이러한 층상 구조는 잠재적으로 추가 수준을 포함하도록 확장될 수 있으며 층화 후 초기에 세포 집단을 분리하는 데에도 사용할 수 있습니다. 이 이중층 알긴산 하이드로겔 배양 플랫폼은 하중을 견디는 조직의 세포 엔지니어링 및 분석과 다른 세포 유형의 공동 배양을 포함한 다양한 응용 분야에 사용할 수 있습니다.

도 1은 알긴산 하이드로 겔의 형성 및 레이어를 도시한다. 이러한 하이드로 겔 계층화 높은 벌크 하이드로 비교 남아 내에 내장 인간 중간 엽 줄기 세포의 그림 2. 세포 생존)에 도시 된 바와 같이,도 3에서와 같이 세포 집단의 전체 초기 거리를 나타내는 이중층 겔 완료. 생존력을 평가 하였다 어닐링 후, 다음 가운데에 액세스 할 수 수직 젤 슬라이스와 에티 디움 호모 다이머-1은 제조업체의 지침을 사용하여 함께 라이브 셀 추적, CMFDA (녹색)과 죽은 세포 (적색)로 어닐링 젤의 살아있는 세포를 염색. 공 촛점 Z - 스택은 약 100 μm의 겔로를 형광 현미경을 사용하여 절단면의 촬영 하였다. 이러한 이미지는 하나의 2D 이미지로 예상했다. 라이브와 죽은 세포는 그 다음이었다 ImageJ에 소프트웨어의 입자 분석기 기능을 사용하여 정량화. <p<html> FO 클래...

이질적인 세포 집단을 가진 하중지지 조직의 엔지니어링 및 분석은 여전히 어려운 과제입니다. 여기에서는 하나의 구조 내에서 다양한 세포 집단의 공동 배양을 위한 플랫폼으로서 이중층 알기네이트 하이드로겔 디스크를 만드는 방법을 설명합니다.

Many load bearing tissues possess structurally and functionally distinct regions, typically accompanied by different cell phenotypes with differential ...

본 절차의 전반적인 목표는 3D 공동 배양 중에 서로 다른 세포군 사이의 관계를 조사하기 위해 재현 가능하게 이층 알긴산 하이드로겔 디스크를 제작하는 것입니다. 이 방법은 공간적으로 불균일한 3D 배양 내에서 여러 세포군 간의 상호작용 연구를 용이하게 하며, 이는 조직 공학 및 하중 지지 조직의 생리학에 관한 핵심 질문을 해결하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 기계적 자극에 구조적으로 유리한 세포가 파종된 다층 알긴산 하이드رو겔을 구축하는 간단하고 경제적이며 재현 가능한 방법을 제공한다는 점입니다.본 절차의 시연은 저희 연구실의 대학원생인 Poonam Sharma가 진행하겠습니다. alginate 디스크를 형성하려면, 먼저 3x3인치 엔드 플레이트 위에 두꺼운 여과지를 쌓고, 그 위에 세포 마이크로시브 막을 올립니다. 멸균된 스패튤라를 사용하여 막과 여과지를 평평하게 폅니다.그런 다음, 적층물을 종이 타월 더미 위에 뒤집어 놓고 재료를 압착하여 과잉의 염화 칼슘 용액을 제거합니다. 이어서, 원통형 웰이 있는 겔 형성 몰드를 마이크로시브 막 위에 배치하고, 바인더 클립을 사용하여 몰드를 좌우측의 엔드 플레이트에 부드럽게 고정합니다. 이제, 두꺼운 여과지 한 장을 작은 엔드 플레이트 위에 쌓고, 그 위에 마이크로시브 막 한 장을 얹은 다음, 방금 시연한 것과 같이 적층물을 뒤집어 과잉의 염화 칼슘을 제거합니다.몰드 양쪽 절반이 모두 준비되면, 멸균된 alginate 배지 1mL당 관심 세포 1x10⁶개를 다시 현탁합니다. 세포가 적절하게 분산되면 혼합물은 균일하게 탁한 상태로 보입니다. 그런 다음, 몰드 구조체의 하단 절반에 있는 직경 6mm, 높이 3mm의 개별 웰에 세포 130µL를 한 방울씩 옮깁니다.각 웰의 가장자리에 약간 볼록한 메니스커스가 보여야 합니다. 모든 세포의 파종이 완료되면, 멸균 스패튤라를 사용하여 몰드 구조의 상단 절반을 조심스럽게 매끄럽게 펴줍니다. 그런 다음, 마이크로시브 멤브레인이 웰 위에 오도록 몰드를 뒤집은 후, 세포와 알긴산 혼합물이 포함된 웰을 완전히 덮도록 주의하며 웰 위에 몰드를 배치하십시오.몰드가 제자리에 위치하면, 로딩된 몰드 구조물을 들어 올리고 중앙을 단단히 누른 상태에서 나머지 두 면에 바인더 클립을 설치하여 몰드의 상하반부를 고정합니다. 세포 알긴산 용액이 웰 안에 안정적으로 자리 잡아야 합니다. 다음으로, 전체 몰드 구조물을 세포 배양 후드 내의 실온에서 102 millimolar 염화칼슘 용액에 90분 동안 담급니다.배양이 끝나면 구조물을 종이 타월 더미 위로 옮기고, 상단 엔드 플레이트를 몰드에 고정하고 있던 두 개의 바인더 클립을 제거하십시오. 구조물의 두 부분을 분리합니다. 웰 내에 형성된 하이드로젤에는 기포가 없어야 하며, 웰을 완전히 채우고 있어야 합니다.남은 두 개의 바인더 클립을 제거하고 하이드로젤이 포함된 몰드를 남은 엔드 플레이트에서 분리합니다. 스패튤라를 사용하여 하이드로젤이 들어 있는 웰의 가장자리를 조심스럽게 따라가며 젤을 살살 떼어냅니다. 그런 다음, 하이드로젤을 염화 칼슘과 염화 마그네슘이 포함된 DPBS 수조로 직접 옮깁니다.1분에서 5분 후, 하이드로젤을 6-웰 플레이트의 개별 웰로 옮깁니다. 각 웰에는 37°C, 5% CO2 조건에서 최소 1시간 동안 젤이 완전히 잠길 수 있을 만큼 충분한 바질 성장 배지 용액을 채웁니다. 배양 마지막 30분 동안, 젤 형성 몰드 높이의 절반 크기인 웰이 있는 몰드를 왼쪽과 오른쪽의 3x3인치 또는 3x1.5인치 알루미늄 엔드 플레이트에 바인더 클립으로 고정하여 커팅 몰드를 만듭니다. 그 다음, 젤 형성 몰드보다 웰 직경이 3mm 더 큰 몰드를 3x3인치 알루미늄 엔드 플레이트의 좌우 양측에 클립으로 고정하여 어닐링 몰드를 만듭니다.이제 하이드로젤을 절단 몰드 웰로 옮깁니다. 각 젤은 웰에 꼭 맞게 들어가야 하며, 젤의 절반이 몰드 위로 돌출되어야 합니다. 그다음 메스를 사용하여 몰드 표면을 따라 잘라 하이드로젤을 반으로 절단합니다.겔의 상단 절반을 뒤집어 개방형 몰드 웰에 넣습니다. 겔 조각이 웰에 딱 맞게 들어가야 하며, 이제 두 절반 모두 몰드 높이와 동일해야 하고 절단된 내부 표면이 보여야 합니다. 다음으로, 건조된 세포 마이크로시브 막(cell microsieve membrane) 조각을 웰 위에 덮어 막이 어닐링될 모든 겔 절반과 접촉하게 한 후, 막을 두꺼운 거름종이 조각으로 덮습니다.겔이 완전히 덮이면 EDTA가 첨가된 소듐 시트레이트로 여과지를 적신 후, 겔을 상온에서 배양합니다. 1분 후, 세포 마이크로시브 막과 두꺼운 여과지를 제거하고 바인더 클립을 풉니다. 그다음 몰드를 열고, 절단면이 위를 향하도록 하여 겔 절반을 준비된 어닐링 몰드로 옮깁니다.스패튤라를 사용하여, 절단면이 첫 번째 겔의 절단면과 맞닿도록 처리된 두 번째 반쪽 겔을 첫 번째 겔 위에 옮깁니다. 모든 겔을 배치한 후, 스패튤라로 겔을 가볍게 눌러 기포를 제거하고, 어닐링 몰드를 염화칼슘 배스에 조심스럽게 잠기게 합니다. 30분 후, 어닐링 몰드를 페이퍼 타월 위에 옮기고 바인딩 클립을 제거합니다.그런 다음, 몰드를 엔드 플레이트에서 분리하고 겔을 DPBS 배스에 잠시 옮긴 후, 적절한 세포 배양 배지에 침전시킵니다. 완성된 이층 겔은 초기에 세포군이 완전히 분리된 상태를 보이며, 이는 녹색 또는 적색 세포 추적 염료로 표지된 293 FT 세포 이미지에서 확인할 수 있습니다. 어닐링 후 내장된 인간 중간엽 줄기세포의 생존율은 벌크 하이드로겔에서 관찰되는 세포 생존율과 유사하게 층상 하이드로겔 내에서 높게 유지됩니다.4시간 동안의 비구속 반복 압축 시험에서 각 주기별 최대 응력을 분리한 결과, 세포가 없는 층상 하이드로겔은 벌크형 비층상 세포 제거 하이드로겔에 비해 반복 압축에 대한 응답 크기가 현저히 작게 나타났으며, 두 가지 유형의 하이드로겔 모두 배양 7일 후에도 구조가 유지되었습니다. 모든 재료 준비를 포함하여 이 기술을 숙달하면 적절히 수행했을 때 4시간 30분 이내에 완료할 수 있습니다. 이 절차를 수행할 때는 오류를 방지하고 서로 다른 샘플들을 더 쉽게 추적하기 위해 신중하고 천천히 작업하는 것이 중요합니다.이 절차 이후, 기계적 자극 및 면역 염색과 같은 다른 방법들을 수행하여 형성될 수 있는 세포 외 기질 내 서로 다른 세포 집단 간의 상호작용에 관한 추가적인 질문들에 답할 수 있습니다. 이 기술을 통해 기계생물학 및 조직 공학 분야의 연구자들은 중간엽 줄기세포, 연골세포, 추간판 속핵 세포와 같은 서로 다른 세포 집단 간의 관계를 더 쉽게 조사할 수 있을 것입니다. 날카로운 도구, 생물학적 물질, 특히 인체 세포를 다루는 것은 매우 위험할 수 있으며, 이 절차를 수행하는 동안 적절한 개인 보호구를 착용하는 것과 같은 예방 조치를 항상 취해야 함을 잊지 마십시오.

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Research

연구

JoVE Journal

Bioengineering

생명공학

이 프로토콜에서는, 우리는 기술의 기반이되는 수직 전이 게시물의 마이크로 액추에이터 어레이의 제조 방법 및이 기본 기술이 모두 2 차원 입체 문화에 높은 처리량 기계 역동적인 세포 배양을 실시하도록 수정할 수 있습니다을 증명 패러다임.

기계 다이나믹 셀 문화 Microfabricated 플랫폼

그들의 입체적인 맥락에서 정상 세포의 문화 세포 변형 및 tumorigenesis에 필요한 초기 이벤트를 연구하는 다른 방법을 나타냅니다. 이 방법은 난소암 형성 초기에 이벤트를 연구 정상 난소와 oviductal 세포를 성장하는 데 사용됩니다.

난소와 Oviducts의 3 차원 조직 문화 알긴산의 Hydrogels

다음 섹션에서 우리는 생명 의학 애플 리케이션에서 사용할 수 알지네이트요 microspheres의 준비 절차를 설명합니다. 우리는 특히 1 형 당뇨병에 대한 잠재적인 치료로서 세포 및 단백질 캡슐의 이중 목적 multilayered 알지네이트요 microspheres를 만들기위한 기술을 설명합니다.

바이오 메디컬 응용 프로그램을위한 알긴산 Microspheres의 생성

수성 2 단계 시스템은 세포 동시에 패턴 여러 사람들에게 사용되었습니다. 세포 패터닝을위한이 빠르고 쉬운 방법은 dextran과 폴리에틸렌 글리콜 및 두 개의 폴리머 솔루션 사이에 존재 계면 장력의 수성 솔루션의 위상 분리의 장점을 걸립니다.

수성 2 단계 시스템을 사용하여 셀 공동 문화 패턴

우리는 동축 노즐을 사용하여 만능 줄기 세포(PS 세포)를 알기네이트 하이드로겔 캡슐에 캡슐화하는 방법을 확립했습니다.  이는 세포가 과도하게 응집되는 것을 방지하고 현탁 배양에서 세포가 겪는 전단 응력을 제한합니다.  이 기술은 PS 세포의 대량 생산과 줄기 세포 틈새 시장에 대한 연구에 적용할 수 있습니다.

동축 노즐을 사용하여 다 능성 줄기 세포의 알긴산 캡슐화

다음 프로토콜은 2차원(2D)과 3차원(3D) 세포 환경 사이의 중간 단계로 사용할 샌드위치와 같은 배양을 조립하는 절차를 설명합니다. 엔지니어링된 시스템은 현미경 검사, 생체 역학, 생화학 및 세포 생물학 분석에 적용할 수 있습니다.

샌드위치 같은 미세 환경은 셀 / 재료의 상호 작용을 활용하는

우리는 독립형 형태로 조립 및 조작할 수 있는 간단한 프로세스를 사용하여 미세 패턴화된 하이드로겔 시트의 제작을 설명합니다. 이러한 모듈식 하이드로겔 시트를 사용하면 제어된 세포 미세환경으로 간단한 매크로 스케일 3D 세포 배양 시스템을 생성할 수 있습니다.

미세 패턴 매크로 스케일 3D 셀룰러 아키텍처 모듈 형 하이드로 겔 시트의 건설

알긴산 비드의 3차원 배양은 단순성과 재현성으로 인해 뇌하수체 선종 세포를 유지하기 위해 선택되었습니다. 이 절차에는 초기 효소 분해 및 종양 조직의 기계적 해리가 포함되었으며, 후속 세포 현탁액은 알긴산 비드로 캡슐화되었습니다.

인간의 뇌하수체 선종 세포의 3 차원 알긴산 비드 문화

현재 bilayer 문화 모델 vivo에서 microenvironments 모방 기능 생체 외에서 연구에 대 한 허용 하지 않습니다. 폴 리 에틸렌 글리콜과 산화 아연 템플릿 메서드를 사용 하 여이 프로토콜에 설명 합니다 ultrathin biomimetic 지하실 막의 개발을 가변 강성, 다공성와 밀접 하 게 비보에 모방 하는 생 화 확 적인 구성 세포 외 매트릭스입니다.

듀얼에 대 한 생체 모방 지하실 멤브레인으로 ultrathin Porated 탄성 Hydrogels 세포 배양

이 연구는 자가 치유 어닐링 가능한 입자-세포외 기질 복합체 내부의 신경 줄기 세포의 자유형 임베디드 3D 프린팅을 위한 프로토콜을 설명합니다. 이 프로토콜은 높은 충실도로 상호 연결된 인간 신경 조직 구조의 프로그래밍 가능한 패터닝을 가능하게 합니다.

인간 신경 구조물의 임베디드 3D 프린팅을 위한 마이크로겔-세포외 기질 복합체 지원

이 프로토콜은 3차원(3D) 프린팅 골격으로 두 종류의 부착 세포주의 생물학을 재현할 수 있는 새로운 체외 실험 모델을 보여줍니다. 이 모델의 구성과 세포 준비 및 세포 배양에서 분석 및 평가에 이르는 운영 절차에 대해 설명합니다.

두 가지 유형의 부착 세포주를 사용한 공동 배양 모델

배우세요 이중층 알긴산 하이드로겔 디스크 제작법을 통해 다양한 세포 집단 간 상호작용을 3D 공동 배양 환경에서 연구하는 방법을. 이 기술은 조직 공학 및 기계적 자극 연구에 경제적이고 재현 가능한 플랫폼을 제공합니다.

계층화 된 알긴산를 구축 : 이기종 세포 인구의 공동 문화를위한 플랫폼

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