Name: 유동 세포 계측법에 의해 쥐의 신장에서 대 식세포의 표현형 특성 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 14 s
Description: 배우세요 쥐 신장 대식세포의 유동 세포 계측법 분석 프로토콜을 통해 세포 표현형을 정량화하고 특성화하는 방법을 익히세요. 이 기술은 신장 질환 연구와 면역학 연구에 활용됩니다.

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이 연구는 FIS/FEDER(Programa Miguel Servet: CP10/00479, PI13/00802 및 PI14/00883), 스페인 죽상동맥경화증 학회, 스페인 신장학회 및 Fundaciòn Renal Iñigo Alvarez de Toledo (FRIAT)의 보조금으로 후안 안토니오 모레노에게 지원되었습니다. FIS/FEDER는 PI14/00386 및 Instituto Reina Sofìa de Investigaciòn Nefrològica를 Jesús Egido에 지원합니다. Fundaciòn Conchita Rabago to Melania Guerrero Hue. Fundaciòn Renal Iñigo Alvarez de Toledo (FRIAT)에서 Alfonso Rubio Navarro로.

이 프로토콜은 지침 유럽 의회의 63분의 2,010 / EU 및 국가 가이드 라인 2천13분의 53 다음 지역 기관 동물 케어 및 사용위원회에 의해 승인되었다. 시약 및 솔루션 1. 준비 <ol><li> 무균 조건 하에서 모든 시약 및 솔루션을 준비하고 층류 후드 사용합니다. 4 ° C에서 솔루션을 유지합니다. </li><li> 염색 버퍼를 준비 (2 % 태아 소 혈청 1 배 둘 베코의 PBS에서 (FBS)). </li><li> 식염수의 각 ml의 콜라게나 제 0.5 mg을 추가하여 콜라겐 솔루션을 준비합니다. </li><li> 케타민 / 자일 라진의 마취 솔루션을 준비합니다 (2 : 1 v / v)로. </li></ol> 2. 신장 관류 및 추출 <ol><li> 케타민 / 자일 라진의 복강 내 주사 (75 밀리그램 / 12 ㎎ / ㎏ 체중)로 쥐를 마취. 조심스럽게 동물이 충분히 마취되어 있는지 확인하기 위해, 피부의 작은 배를 꼬집어. 그런 다음, 마취 동안 건조를 방지하기 위해 수의사 연고와 눈을 다룹니다. 참고 : 4 월을일짜리 위 스타 쥐이 분석에 사용됩니다. </li><li> 쥐가 완전히 마취되면, 앙와위에서 수술 테이블에 놓습니다. </li><li> 복부에 70 % 에탄올을 적용합니다. </li><li> 흉막과 복강을 노출, 흉곽의 치골에서, 복부 피부와 복막을 통해 중앙 절개를합니다. </li><li> 모든 혈액 신장에서 제거 될 때까지 관류 시스템을 사용하여 신장을 관류하는 복부 대동맥에 생리 식염수 (0.9 %)을 주입한다. 피를 해제하기 위해 복부 수준에서 대동맥을 잘라. </li><li> 신장 폐문 (신장 정맥, 동맥과 요관)에서 절단하여 쥐에서 모두 신장을 제거합니다. 신장을 디 캡슐주의 깊게 캡슐 (11)을 분리, 손가락을 사용하여 신장의 가장자리를 누른다. </li><li> 행크스 &#39;균형 소금 용액에 신장을 놓습니다. </li></ol> 3. 신장의 소화와 세포 현탁액 <ol><li> 작은 조각으로 가위 신장의 절반을 잘라 넣어1.5 ML 튜브에 조각. 참고 : 모든 다음의 농도는 1 샘플 (1/2 쥐의 신장)에 대해 계산된다. </li><li> 콜라게나 제 용액 1 ㎖를 첨가하고 30 분 동안 37 ℃에서 배양한다. 콜라게나 제 용액을 전체 조직에 접근하는지 확인 반전하여 매 5 분 혼합한다. </li><li> 솔루션을 수집하고 플런저의 도움으로 스트레이너 (40 μm의)를 통해 통과하고, 염색 버퍼 10ml에 그것을 재현 탁. </li><li> 15 분 동안 400 XG에 원심 분리기. </li><li> 1 ml의 ACK (암모늄 - 염화 - 칼륨) 용균 버퍼에 펠렛을 다시 일시 중지합니다. 1 분, 실온에서 30 초 후, 반응을 중지 염색 완충액 10 ㎖를 추가한다. </li><li> 10 분 동안 400 XG에 원심 분리기. </li><li> 다시 중단 완충액 (1 ml)로 염색 적절한 부피 펠릿 및 스트레이너 (30 μm의)을 사용하여 세포 현탁액을 필터. </li><li> 혈구에 트리 판 블루 배제를 이용하여 세포의 수를 세어 STA하는 1.5 ㎖의 튜브에 2 백만 세포를 추가ining. </li></ol> 4. 세포 염색 및 유동 세포 계측법 분석 <ol><li> 5 분 100 XG에 원심 분리기 세포. </li><li> Fc 수용체를 차단하기 위해 39 ° C에서 10 분 동안 : 다시 일시 래트 혈청 100 ㎕에서 펠렛 (1 : 100 희석). </li><li> 5 분 동안 염색 버퍼와 원심 분리기 (100) XG 1 ㎖을 첨가하여 세척 하였다. </li><li> 살아있는 세포 (1,000 3) 감지 및 솔루션 CD45 APC-Cy7 (1 : 100), CD163 A647 (100 4) 각 조건에 대한 염색 버퍼 100 ㎕의 세포 표면 얼룩에 대한 항체를 섞는다. </li><li> 어둠 속에서 4 ° C에서 20 분 동안 항체 믹스 세포 펠렛을 다시 일시 중지합니다. </li><li> 5 분 동안 100 XG에 염색 버퍼 원심 1 ㎖을 첨가하여 세척 하였다. 이 단계를 반복합니다. </li><li> 어둠 속에서 4 ° C에서 20 분 동안 고정 / Permeabilization 솔루션의 600 μl를 추가합니다. </li><li> 5 분 동안 170 XG에 1 ml의 Permeabilization / 워시 버퍼와 원심 분리하는 과정을 2 회 반복한다. </li><li> intracel의 경우 : CD68 FITC 항체 (1000 35)를 추가각 조건에 대한 Permeabilization / 워시 버퍼 100 ㎕에적인 다공질 염색. </li><li> CD68 항체 용액에 펠렛을 다시 중단하고 어둠 속에서 4 ° C에서 50 분을 품어. </li><li> 5 분 동안 170 XG에 1 ml의 Permeabilization / 워시 버퍼와 원심 분리기로 씻으십시오. </li><li> , Permeabilization / 워시 버퍼 100 ㎕의 펠렛을 다시하면 일시 중지 CD86PE 항체 (35 : 1000)를 추가하고 어둠 속에서 4 ° C에서 20 분 동안 품어. </li><li> 5 분 동안 100 XG에서 버퍼와 원심 분리기 Permeabilization / 워시 1 ㎖를 추가하여 씻으십시오. </li><li> Permeabilization / 워시 버퍼 100 ㎕의 펠렛을 다시 중단하고 관 세포 계측법 흐름에 전달합니다. </li><li> 유동 세포 계측법에 의해 샘플을 분석 할 수 있습니다. 측면 산란 빛 / 앞으로 산란 빛 (SSC / FSC) 창에 문이 살아있는 세포에서 CD45 염색을 결정합니다. 제 2 단계에서, CD68 + 세포에서 CD86 및 CD163의 발현을 분석한다. </li></ol>

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</ol>

저자는 공개 아무것도 없어.

대 식세포는 신장 질환 등 다양한 염증 질환에 중요한 역할을 이종 세포이다. 각 모집단 식세포는 사구체 신염, 당뇨 성 신장 병증 및 신장 암 14-16에서보고 된 바와 같이, 신장 손상의 발달에 다른 방식으로 기여하기 때문에 신장 질환 식세포 서브 세트의 특성에 대한 관심이 높아지고있다. 급성 신장 손상의 초기 단계에서, M1 식세포의 우세는 관상 괴사 및 염증 촉진이 관찰된다. 그러나, 이후의 단계에서 M2 식세포의 높은 함량은 염증을 해결하고 조직 재 형성에 참여 관찰된다. M1이 우세 할 따라서 증가 및 염증성 신장 손상을 영속 수 있지만 만성 신장 질환에서 M1과 M2의 대 식세포 모두 동시에 공존. 따라서, 신장 질환에서 대 식세포 아형의 병태 생리 학적 역할에 대한 지식을 증가하는 것이 중요하다. 면역 조직 화학적 연구는 강력한 방법으로 17 대 식세포 부분 집합의 비율을 확인할 수 없습니다. 따라서, 양적으로 다른 식세포 표현형을 결정하는 신장 염증 반응에 대한 이들 세포의...

신장 질환은 전 세계적인 건강 문제로, 유병률이 증가하고 이환율 및 사망률 증가와 관련이 있습니다1. 신장 손상의 진행과 발달에 관여하는 가장 중요한 메커니즘 중 하나는 주로 대식세포에 의해 유발되는 염증입니다. 대식세포는 신장 질환을 포함한 많은 염증성 질환에서 중추적인 역할을 합니다2. 따라서 급성 신장 손상(AKI) 또는 만성 신장 질환(CKD) 환자의 생검에서 침투하는 대식세포의 존재가 증가한 것으로 보고되었습니다3,4. 최근 연구에 따르면 신장 질환의 장기적인 결과는 대식세포에 의해 조절될 수 있다고 합니다5,6. 국소 미세환경에 대한 반응으로, 대식세포는 다양한 생물학적 기능을 수행하는 다른 표현형으로 분화될 수 있습니다7. 두 가지 잘 분화된 대식세포 표현형이 확립되었습니다: 고전적으로 활성화된 대식세포(M1 대식세포)와 대안적으로 활성화된 대식세포(M2)8. M1 대식세포는 염증을 촉진하는 반면, M2 대식세포는 항염증 역할을 하며 조직 복구에 관여한다9. 따라서 대식세포 이질성에 대한 더 나은 지식은 대식세포의 조절과 신장 병리학에 대한 기여도를 이해하고 새로운 치료 접근법을 개발하는 데 필요합니다. 
쥐와 쥐 모델 모두 신장 손상과 관련된 분자 및 세포 메커니즘을 이해하는 데 널리 사용되어 왔다10. 그러나 이러한 설치류 간의 대식세포 표현형을 식별하는 데 사용되는 다양한 마커에는 상당한 차이가 있습니다. 따라서 F4/80 또는 Ly6C와 같은 여러 쥐 마커는 쥐에서 사용되지 않으므로 이러한 종 간의 발견 외삽을 제한합니다. 더욱이, 쥐의 대식세포 표현형을 설명하는 마커의 수는 제한되어 있으며, 이는 쥐와 비교하여 이러한 동물의 대식세포 이질성을 분석하는 연구가 부족하다는 것을 설명합니다. 따라서 쥐의 신장 질환 모델에서 대식세포의 역할을 이해하기 위해 대식세포 하위 집합 특성화를 위한 새로운 전략이 필요합니다. 
이 원고는 유세포 분석을 통해 쥐 신장에서 채취한 대식세포의 표현형 및 정량적 분석을 위한 프로토콜을 설명합니다. 이 기술은 세포 분류 및 mRNA 또는 단백질 발현 연구를 포함한 여러 분석법을 통해 신장 질환에서 대식세포의 역할을 심층적으로 특성화할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>층류 후드</td><td>더 빠르거나</td><td></td><td>이에 상응하는 장비</td></tr><tr><td>원심분리기</td><td>Hettich</td><td></td><td>또는 동급 장비</td></tr><tr><td>유세포 분석기 (FACSAria)</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fetal bovine serum</td><td>BioWest</td><td>S1820-500</td><td></td></tr><tr><td>PBS 10x</td><td>LONZA</td><td>BE17-515Q</td><td></td></tr><tr><td>콜라겐 분해 효소</td><td>시그마-알드리치</td><td>12/1/9001</td><td></td></tr><tr><td>ACK 용해 버퍼</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A10492-01</td><td></td></tr><tr><td>유세포 분석 스트레이너</td><td>BD Biosciences</td><td>340626</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 세포 스트레이너</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>유세포 분석 튜브</td><td>Falcon</td><td>352052</td><td>5 ml 폴리스티렌 라운드 바닥 튜브</td></tr><tr><td>원심분리기 튜브</td><td>Corning centristar</td><td>430791</td><td></td></tr><tr><td>수조</td><td>Memmert GmbH + Co. KG</td><td>WNE 7</td><td>37 &#176; C</td></tr><tr><td>고정/투과화 용액 또는 투과화/세척 완충액</td><td>BD Biosciences</td><td>554714</td><td></td></tr><tr><td>Rompum(자일라진)</td><td>바이엘</td><td></td><td>또는 이에 상응하는</td></tr><tr><td>케탈라(케타민)</td><td>화이자</td><td></td><td>또는 동급의</td></tr><tr><td>행크스 평형 염 용액</td><td>시그마-알드리치</td><td>H8264-500ML</td><td></td></tr><tr><td>식염수 브라운</td><td></td><td></td><td></td>622415</tr><tr><td>Anti-CD45 (클론:OX-1) APC-Cy7</td><td>Biolegend</td><td>202216</td><td>1:100</td></tr><tr><td>Anti-CD68 (클론: ED1) FITC</td><td>Bio-RAD</td><td>MCA341F</td><td>35:1,000</td></tr><tr><td>anti-CD86 (클론: 24F) PE</td><td>Biolegend</td><td>200307</td><td>35:1,000</td></tr><tr><td>anti-CD163 (클론: ED2) Alexa Fluor 647</td><td>Bio-RAD</td><td>MCA342R</td><td>4:100 희석</td></tr> 염색/<tr><td>사체 염색&nbsp;</td><td>분자 프로브</td><td>L34955</td><td>희석 3:1,000</td></tr></tbody></table>

유동 세포 계측법에 의해 쥐의 신장에서 대 식세포의 표현형 특성

Phenotypic Characterization of Macrophages from Rat Kidney by Flow Cytometry

신장 질환의 발병과 진행에서 염증과 대식세포의 중요한 역할을 시사하는 증거가 증가하고 있습니다. 대식세포(macrophage)는 신장 손상과 관련된 이질적인 세포입니다. 대식세포는 두 가지 다른 표현형으로 분류될 수 있습니다: 전염증성 사이토카인을 방출하고 섬유증을 촉진하는 고전적으로 활성화된 대식세포(M1 대식세포); 및 대안적으로 활성화된 대식세포(M2 대식세포)는 면역조절 및 조직 리모델링 기능과 관련이 있습니다. 이러한 대식세포 표현형은 신장 손상에 대한 기여도를 결정하기 위해 구별하고 분석해야 합니다. 그러나 염증성 신장 질환 모델, 특히 쥐에서 대식세포 아형에 대한 일관된 표현형 및 기능적 정보를 보고하는 연구는 거의 없습니다. 이 사실은 생쥐와 달리 쥐에서 사용되는 제한된 대식 세포 마커와 관련이있을 수 있습니다. 따라서 이러한 침투 세포의 신장 함량을 신뢰할 수 있는 방식으로 정량화하고 특성화하기 위한 새로운 전략이 필요합니다. 이 원고는 신장 소화를 위한 프로토콜과 유세포 분석을 통한 쥐 신장의 대식세포에 대한 추가 표현형 및 정량적 분석을 자세히 설명합니다. 간략히, 신장을 콜라겐분해효소로 배양하고 살아있는 세포에서 CD45(백혈구 공통 항원) 및 CD68(PAN 대식세포 마커)의 이중 존재에 따라 총 대식세포를 식별했습니다. 그 후 CD86(M1 마커) 및 CD163(M2 마커)의 표면 염색이 수행되었습니다. 쥐 복막 대식세포는 유세포 분석에 의한 대식세포 마커 검출을 위한 양성 대조군으로 사용되었습니다. 당사의 프로토콜은 세포 폐사율을 낮추고 다양한 세포 내 및 표면 단백질 마커의 특성을 분석할 수 있게 하여 다른 프로토콜에서 관찰되는 세포 무결성의 손실을 제한했습니다. 또한 이 절차를 통해 세포 분류 및 mRNA 또는 단백질 발현 연구를 포함한 추가 기술에 대식세포를 사용할 수 있습니다.

우리는 신장에서 대 식세포 침투의 증가 존재와 관련된 신 손상의 염증 실험 모델에서 대 식세포의 이질성을 분석 하였다. 이전 12보고 된이 모델에서 신장 손상, 위 스타 쥐 3 주 동안 물을 마시는 알도스테론 (1 mg의 -1 kg -1 일)을 더한 소금 (염화나트륨 1 %)의 투여에 의해 유도했다. 우리 실험 스케줄이도 1에 도시되어있다. 우선, 신장 세포를 분리 하였다 기계적 방법 및 콜라겐 (도 1a)와 상기 소화 효소를 사용. 그 후, 적혈구가 용해시켰다 신장 식세포는 유동 세포 계측법을 사용하여 검출 하였다. 세포 막 탐지 및 CD68 세포 염색 (그림 1B)에 대한 CD45, CD86 및 CD163에 ...

이 원고는 표현형 및 유동 세포 계측법에 의해 쥐의 신장에서 거주하는 대 식세포의 정량 분석을위한 상세한 프로토콜을 설명합니다. 얻어진 염색 된 세포는 이에 실험 모델에서 얻어진 정보를 증가, 세포 선별, 유전자 발현 분석 또는 기능적 연구를 포함하는 다른 응용에 사용될 수있다.

There is increasing evidence suggesting the important role of inflammation and, subsequently, macrophages in the development and progression of renal ...

이 절차의 전반적인 목표는 유세포 분석법을 통해 쥐 신장의 거주 대식세포를 정량화하고 특성화하는 것입니다. 이 방법은 신장 손상 시 각 대식세포 유형의 기여도가 무엇인지와 같은 유동성 관련 핵심 질문에 대한 답을 제시할 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 서로 다른 단백질 마커의 신장 카테터화를 가능하게 한다는 점입니다. 따라서 세포 무결성의 제한을 보여주게 됩니다. 이 절차는 Complutense 대학교의 A.P.A.S.D. 학생인 Elena Olivares와 For의 A.P.A.S.D. 학생인 Melania Guerrero가 시연할 것입니다. 신장 관류 및 적출을 위해, 먼저 피부를 살짝 집어 쥐가 적절한 진정 수준에 도달했는지 확인하십시오. 그리고 안연고로 눈을 덮어줍니다. 동물을 수술대 위에 배와 등을 위로 향하게 한 앙와위로 놓습니다. 그리고 복부를 70% ethanol로 소독합니다. 다음으로, 치골에서 갈비뼈까지 복부 피부와 복막을 통해 중앙 절개를 하여 흉강과 복강을 노출시킵니다. 관류 시스템을 사용하여 0.9% saline 용액을 복부 대동맥에 주입하여 신장을 세척합니다. 혈액 배출을 돕기 위해 복부의 대동맥을 절단합니다. 신장에서 모든 혈액이 제거되면 신문(renal hilum)을 절단합니다. 그런 다음 각 신장의 가장자리를 눌러 조심스럽게 피막을 제거합니다. 그리고 적출한 신장을 신선한 H.B.S.S.로 옮깁니다. 단일 신장 세포 현탁액을 만들기 위해, 가위로 한쪽 신장의 절반을 작은 조각으로 자릅니다. 조직 조각들을 1.5 mL 튜브로 옮기고, 신선하게 준비된 collagenase 1 mL를 튜브에 추가하여 37°C에서 30분 동안 배양합니다.

phenotypic-characterization-macrophages-from-rat-kidney-flow

Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

쥐의 간 세포의 주요 문화 macrophages를 얻을 소설 방법을 설명합니다. 이 방법은 플라스틱 요리 선택적 첨부하여 문화 flasks 및 정화의 흔들림 다음 문화 macrophages의 확산을 활용합니다. 이 기술은 효율적으로 복잡한 장비와 기술없이 간 macrophages을 제공합니다.

성인 간세포의 혼합 차 문화에서 Macrophages을 분리하는 간단하고 효율적인 방법

여기, 우리는 폐에 타고난 면역 세포를 거주하고 polyanhydride의 nanoparticles와 공동으로 문화에 대한 응답으로 자신의 활성화를 검토하고 있습니다 murine 폐포 macrophages를 수확을위한 프로토콜을 설명합니다.

Polyanhydride의 Nanoparticles에 의해 유도된 Murine Macrophages 폐포 수확 및 평가 세포 활성화

대 식세포는 방어 면역과 항상성에 결정적인 역할을하는 조혈 시스템의 플라스틱 세포입니다. 이 보고서에서 우리는 관용적 조건 하에서 이식 장기에 축적되는 이식편 침윤 조절 macrophage를 표현형 및 기능적으로 특성화하기 위해 최적화 된 시험 관내 기술을 설명합니다.

이식 반응 면역을 억제하는 조절 성 마크로파지의 기능적 특성 규명

신장 면역 세포를 분리하기 위해 신뢰할 수 있고 효율적인 기술이 다운스트림 응용 프로그램에 필요합니다. 이를 위해서는 소수의 신장 면역 세포에 대한 표면 항체 라벨링이 필요합니다. 여기에서는 이 목표를 달성하는 것처럼 보이는 신장 면역 세포를 분리하는 간결한 방법을 설명합니다.

신장 면역 세포의 신뢰성 및 고효율 추출

이 프로토콜은 유행 세포 계측법에 의한 성체 마우스 중추 신경계에서 대 식세포 모집단의 분석을 제공하며, 이들 세포에 의해 표현되는 다중 마커의 연구에 도움이됩니다.

유동 세포 계측법에 의한 중추 신경계에서 유래 된 대장 세포 및 단구 세포 유래 대 식세포의 분석

이 문서에서는 지방 조직 및 cytometry 사용 하 여 이후 분석에서 면역 세포의 고립에 의해 지방 조직의 면역 세포 콘텐츠를 분석 하는 방법을 설명 합니다.

Cytometry 사용 하 여 인간 지방 조직에서 면역 세포의 특성

이 연구는 cytometry 반응성 산소 종 (선생님) 생산은 FcγR의 활성화에서 결과 검색의 사용을 보여줍니다. 항균 및 산화 환 원 신호 면역성이 있는 복합물, opsonized 미생물, 또는 직접 FcγR cross-linking에 식 세포의 기능을 평가 하기 위해이 메서드를 사용할 수 있습니다.

선생님 FcγR Cross-linking에 대 식 세포에서 생산의 흐름 Cytometric 측정

본 프로토콜은 단핵세포, 마이크로글리아, 대식세포 및 수지상 세포를 포함하는 특정 안구 단핵 교핵 세포집단을 식별하기 위해 다중 파라미터 유동 세포측정 분석을 목적으로 전체 눈을 단일 세포 현탁액으로 소화하는 방법을 제공한다.

단일 핵 세포세포의 다중 파라미터 흐름 세포측정 분석을 위한 마우스 눈 전체의 소화

이 프로토콜은 유세포 분석을 위한 여러 막 결합 마커의 염색을 통해 지방 세포에서 고품질 RNA를 얻는 방법론과 SVF-대식세포의 표현형을 포함하여 단일 공정에서 인간 내장 지방에서 생존 가능한 지방 세포 및 기질 혈관 분획-SVF 세포를 분리하기 위한 효율적인 콜라겐분해효소 분해 방법을 제공합니다.

RNA 분석 및 대식세포 표현형에 적합한 인간 내장 지방 조직에서 생존 가능한 지방 세포 및 기질 혈관 분획 분리

human CD59/intermedilysin cell ablation 도구를 사용하여 신장 대식세포의 재생을 연구하기 위한 신장 대식세포의 선택적 절제에 대한 프로토콜이 여기에 보고되어 있습니다. 이 방법은 신장, 간 및 지방 조직에 있는 다른 세포 집단의 기능 및 재생을 연구하는 데에도 적용할 수 있습니다.

Human CD59/Intermedilysin Cell Ablation Tool을 사용한 신장 대식세포의 급격한 고갈

이 연구는 분리된 쥐 대식세포에 의한 이종(인간) 및 동종(쥐) 적혈구의 식균 작용 속도를 정량화하고 비교하기 위한 표준화된 시험관 내 프로토콜을 설명합니다.

시험관 내 쥐 대식세포에 의한 동종 및 이종 적혈구의 식균작용에 대한 정량적 평가

배우세요 쥐 신장 대식세포의 유동 세포 계측법 분석 프로토콜을 통해 세포 표현형을 정량화하고 특성화하는 방법을 익히세요. 이 기술은 신장 질환 연구와 면역학 연구에 활용됩니다.

유동 세포 계측법에 의해 쥐의 신장에서 대 식세포의 표현형 특성

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