2016년 12월 5일
RNA에 N 6 -methyladenosine (m 6 A) 변형을 측정하기위한 수정 북부 블로 팅 방법을 설명한다. 현재의 방법은 여러 가지 실험 설계에 따라 다양한 RNA를에서 수정 및 컨트롤을 감지 할 수 있습니다.
변형된 노던 블로팅 기법의 전반적인 목표는 RNA에서 N6-메틸아데노신, n6A 변형을 측정하고 다양한 RNA에서 변형을 검출하는 것입니다. 이 방법은 N6-메틸아데노신 변형과 같은 RNA 후성유전학의 역할에 대한 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 RNA의 효과적인 분리, 실험 설계를 위한 더 나은 표준화 및 RNA의 n6A 변형에 대한 명확한 묘사를 제공한다는 것입니다.
이 방법은 RNA의 n6A 변형에 대한 통찰력을 제공할 수 있으며 다른 검출 항체를 가진 다른 RNA 변형에도 적용할 수 있습니다. 실험을 시작하려면 종이 타월에 리보뉴클레아제 오염 제거 용액을 뿌리고 피펫과 실험실 벤치 표면을 닦습니다. 뉴클레아제가 없는 물로 종이 타월을 적시고 피펫과 실험실 벤치 표면을 다시 닦습니다.
섭씨 4도로 유지되는 RNA 분리 용액을 얻고 약 75mg의 마우스 조직에 1ml의 용액을 추가합니다. 오버헤드 교반기를 사용하여 조직을 균질화합니다. 다음으로, 시료 균질액 1밀리리터당 100마이크로리터의 1-브로모-3-클로로프로판 또는 BCP를 추가합니다.
15초 동안 튜브를 세게 흔든 후 RNA를 완전히 분리합니다. 분광 광도계를 사용하여 260 나노 미터 및 280 나노 미터에서 흡광도를 기록하여 RNA 농도를 결정합니다. 0.8%아가로스 겔 전기영동을 수행하여 RNA 샘플 품질을 확인합니다.
모든 전기영동 장비를 디에틸피로카보네이트 또는 DEPC 물로 헹굽니다. 아가로스 2.5g, DEPC 물 215ml를 삼각 플라스크에 넣고 혼합물을 전자레인지에 완전히 녹입니다. 용액이 녹은 후 12.5mL의 10X MOPS 버퍼를 추가합니다.
그리고 플라스크에 37 % 포름 알데히드 22.5 밀리리터. 그런 다음 1.5mm 두께의 빗으로 용액을 전기 영동 장치에 붓습니다. 깨끗한 빗을 사용하여 거품을 젤 가장자리로 밀어 넣습니다.
젤이 실온에서 응고되도록 합니다. 다음으로, 이전에 준비된 1X MOPS 러닝 버퍼를 사용하여 젤의 웰을 헹구고 젤을 미리 실행합니다. RNA 샘플을 겔의 웰에 넣은 다음 겔을 실행합니다.
다음 날, 자외선 아래에서 젤을 검사하고 사진을 찍습니다. 전사를 준비하려면 젤을 자르고 사용하지 않은 부분을 제거하십시오. 500mL의 10X 식염수 구연산나트륨 또는 SSC 완충액을 준비합니다.
10X SSC 버퍼로 젤을 두 번 세척합니다. 젤을 덮을 수 있을 만큼 충분히 큰 여과지 시트를 자릅니다. 여과지 4장을 젤과 같은 크기로 자릅니다.
다음으로, 양전하를 띤 나일론 멤브레인 한 장을 젤과 같은 크기로 자릅니다. 젤과 멤브레인에 노치를 표시하여 적절한 방향을 보장하기 위한 마커로 표시합니다. 멤브레인을 2X SSC 버퍼에 담그십시오.
500mL의 10X SSC 버퍼를 전사 트레이에 붓습니다. 유리판에 큰 여과지 시트를 놓고 전사 버퍼로 여과지를 적십니다. 그런 다음 피펫을 사용하여 거품을 굴립니다.
미리 자른 여과지 두 장을 전사 버퍼에 담그고 여과지 중앙에 놓습니다. 거품을 제거합니다. 그런 다음 젤의 윗면이 아래로 향하게 하여 여과지 위에 멤브레인을 놓고 젤과 멤브레인의 노치를 정렬해야 합니다.
다음으로, 멤브레인 위에 미리 절단된 여과지 두 조각을 놓습니다. 레이어 사이의 거품을 제거합니다. 젤 주위에 플라스틱 랩을 적용하여 수건이 젤과 멤브레인을 통과하는 완충액만 흡수하도록 합니다.
그런 다음 여과지 위에 종이 타월을 쌓습니다. 수건 위에 대형 유리판을 놓고 스택 위에 무게를 싣고 RNA가 밤새 젤에서 멤브레인으로 이동하도록 합니다. 이송 후 멤브레인을 2X SSC 버퍼에 축축하게 유지합니다.
여과지 두 장을 10X SSC 버퍼로 담근 다음 시트를 UV 크로스 링커에 넣습니다. RNA 흡수면이 위를 향하고 있는지 확인한 다음 멤브레인을 여과지 위에 놓습니다. 자동 크로스 링크 모드를 선택하고 시작 버튼을 눌러 조사를 시작합니다.
UV 겔 이미지 캐처로 멤브레인과 겔을 검사하여 겔에서 멤브레인으로의 RNA 전달을 확인합니다. TBST 완충액에 있는 5% 무지방 우유의 멤브레인을 실온에서 1시간 동안 차단합니다. 섭씨 4도의 m6A 항체 용액에서 멤브레인을 밤새 배양합니다.
다음 날, TBST 완충액으로 15분 동안 멤브레인을 세 번 세척합니다. 다음으로, HRP 접합 당나귀 항토끼 항체 용액에 멤브레인을 실온에서 1시간 동안 배양합니다. 1시간 후 15분 동안 TBST 완충액으로 멤브레인을 세 번 세척합니다.
향상된 화학발광 기질을 적용합니다. 디지털 이미저로 화학발광을 캡처하십시오. 마지막으로, m6A 정량화로 이동하여 이미지 J.Mouse 간 RNA를 사용하여 상대적인 m6A 화학발광 강도를 측정합니다.
rRNA, mRNA 및 small RNA의 메틸화가 명확하게 감지되었습니다. 대표적인 m6A 블롯은 야생형 마우스의 간에서 rRNA가 없는 총 RNA에 대해 수행되었습니다. 이 기술을 숙달하면 제대로 수행하면 4일 안에 완료할 수 있습니다.
개발 후 이 기술은 RNA 후성유전학 분야의 연구자들이 일주기 리듬 및 비만과 관련된 인간 생리학에 미치는 영향을 탐구할 수 있는 길을 열었습니다.
이 기사는 RNA의 N6-메틸아데노신(m6A) 수식을 측정하기 위한 수정된 노던 블로팅 방법을 설명합니다. 이 기술은 다양한 RNA 샘플의 수식을 감지할 수 있으며, 다양한 실험 설계에서 적용 가능합니다.
Accurate measurement of RNA N6-methyladenosine (m6A) modifications supports target validation in RNA epigenetics by enabling quantitative assessment of epitranscriptomic regulation. This method enhances predictive confidence in mechanistic studies linking m6A to physiological processes such as circadian rhythms and metabolism. It provides a standardized, reproducible platform for de-risking therapeutic hypotheses in discovery biology.
The method fits within the discovery biology to lead identification continuum by providing epigenetic layer validation that complements transcriptional and proteomic profiling.