Name: 히스톤 - miniSOG에서 사용 Optogenetic 무작위 돌연변이 유발 C. 엘레 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-14T15:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 51 s
Description: 배우세요 C. elegans에서 히스톤-miniSOG를 이용한 광유전학 돌연변이 유발 방법을. 이 기술은 독성 화학물질 없이 유전체 전체의 유전적 돌연변이를 유도하여 전진 유전학 스크리닝과 형질도입에 활용됩니다.

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이 작업은 HHMI에서 지원합니다. 프로토콜 테스트와 원고 수정에 도움을 주신 연구실 구성원들에게 감사드립니다.

LED가 조명기 1. 건설 주 : 필요한 장비는 LED 자재 목록에 요약 하였다. 전체 LED 설치가 작고, 우리는이 웜 (4)의 빛 노출을 제어하는 어두운 방에 배치 할 것을 권장하지만, 실험실에서 삽입 될 수 있습니다. <ol><li> 케이블 (그림 1A, D)와 컨트롤러에 LED를 연결합니다. </li><li> BNC 케이블 (그림 1A, C, D)와 디지털 함수 발생기 / 앰프 컨트롤러를 연결합니다. </li><li> 사용자 정의 홀더 (그림 1A)를 사용하여 스테이지 위의 LED 조명 10cm를 수정합니다. 참고 : 우리는 금속 부품 홀더를했다. </li><li> 부분적으로 LED 조명 설치를 커버하지만, 웜 아프게 축열 (그림 1B)를 피하십시오. 참고 : 우리는 개방 상단과 하단 (그림 1A)와 주문 제작 하드 플라스틱 커버를 사용합니다. 커버는 돌연변이 자체에 요구되지 않으며, t를 사용오 주위에 푸른 빛의 불필요한 노출을 제한합니다. 우리는 벌레의 과열을 방지하기 위해 LED 설치 완전히 (그림 1B)를 포함하지 않는 것이 좋습니다. </li><li> 레이저 보호 안경을 착용 할 것. 주 : 빛이 매우 밝은이기 때문에 우리는 레이저 보호 안경을 착용하십시오. 선글라스가 잘 작동 할 수 있습니다. </li><li> 에 LED 컨트롤러의 레버 스위치 &#39;지능을.&#39; 연속 조명 (그림 1D)의 최대 전력 (그림 1C)의 65 %로 설정합니다. </li><li> 벌레는 제조 업체의 프로토콜을 사용하여 배치 단계에있는 푸른 빛의 강도를 측정하는 광도계를 사용합니다. 설정은 연속 조명 아래 2.0 mW의 / mm 2를 제공합니다. </li></ol> 2. 블루 라이트 치료 참고 :. 인증 기관은-UNC가-119 (+) Pmex-5-HIS-72 : miniSOG - 3&#39;UTR (TBB-2) +] UNC-119 (ED3) III 4 균주를 사용할 수있는 변형 CZ20310 juSi164를 사용하여 Caenorhabditis 엘레 유전학 센터 (CGC에서, HTTP: //www.cgc.cbs.umn.edu/). <ol><li> E. 표준 선충의 성장 배지 (NGM)에 어둠 속에서 그의-mSOG의 피로를 유지 판 대장균 OP50 표준 프로토콜 10, 11 다음. 참고 : 주변 광에 따라, juSi164 함유 균주가 자발적 비율 4 위의 돌연변이 속도를 표시하지 않습니다. 일반적뿐만 아니라 돌연변이를 일으키지 않는 할로겐 램프와 해부 범위를 사용 루틴 변형 통로. 그럼에도 불구하고, 치료는 표준 어두운 내부 배양기에서 긴장을 유지, 또는 호일로 변종을 포함, 예를 들어 빛에 불필요한 노출을 피하기 위해주의해야한다. 불필요한 돌연변이가 시간이 지남에 축적 경우를받은 후 균주의 분취 량을 동결하는 것이 좋습니다. </li><li> 임신하는 젊은 성인을 선택 웜으로 (약 12 시간 후 L4) 동물 (11)을 선택합니다. 참고 : 오래된 동물이 낮은 무리의 크기를 가질 수있는 동안 젊은 동물, 이하 돌연변이 유발 효과 4을 보여줍니다. </li><li> 필터 페이지를 잘라조리개는 25mm X 25mm 사각형 구멍이있는 60mm 판에 맞게 및 시드 화 판 (그림 1E)에 배치합니다. 주 : 사각형 펀치를 사용할 수 있지만, 펀치의 크기가 정확하지 않습니다. </li><li> 접시에 사각형 구멍에서 벌레를 제한 균등 필터 종이에 100 밀리미터의 CuCl 2의 100 μL를 삭제합니다. </li><li> 임신하는 젊은 성인 자웅 동체의 원하는 번호를 (예를 들어 3 단계 참조) 선택과의 CuCl 2 판의 중심에 전송할 수 있습니다. </li><li> 레이저 보호 안경을 착용 할 것. </li><li> LED와 함수 발생기 ON 전환합니다. </li><li> 에 LED 컨트롤러의 레버 스위치 &#39;내선을.&#39; 함수 발생기 (도 1D)가 그것을 제어한다. </li><li> 최대 전력의 65 %에서 컨트롤러와 사인파, 4 Hz에서 (그림 1C)와 같은 함수 발생기를 설정합니다. </li><li> LED가 (그림 1A &lt;아래 단계에 뚜껑없이 단계 2.5에서의 CuCl 2 판을 배치/ STRONG&gt;). </li><li> 30 분 동안 푸른 빛으로 동물을 조명. </li><li> P 0으로 시드 판에 건강한 찾고 웜을 전송합니다. 참고 : P 0의 원하는 번호가 화면의 종류에 따라 다릅니다. 예를 들어 3 단계를 참조하십시오. 는 P 0 벌레는 빛 치료 후 즉시 조정되지 않은 것으로 나타날 수 있으며, 시간이 지남에 따라 회복됩니다. </li><li> 인큐베이터이나 어둠 속에서 호일을 사용하여 적용 벌레를 유지; 그들의 자손 2,10 중 원하는 표현형을 심사 시작하는 표준 절차를 따르십시오. </li></ol> 순방향 유전 화면 3. 예 참고 :. 이것은 LED 및 변형이 작동하는지 확인하기 위해 120 반수체 게놈을 가진 클론 화면의 예입니다 그림 2는 절차의 개략도를 보여줍니다. <ol><li> [첫째날] 푸른 빛을 처리 한 후, P 0으로 OP50와 NGM 판에 다섯 건강한 찾고 벌레를 선택 20 ° C 배양기에서 그들을 유지하고 그들에게 1 알을 낳기하자D ( &#39;첫째날&#39;판). </li><li> [둘째 날] 새 시드 판에 전송 P 0 ( &#39;둘째 날&#39;판). </li><li> [Day3] 선택하고 레코딩하여 &#39;둘째 날&#39;접시에 P 공을 죽일. </li><li> [Day4]를 &#39;첫째날&#39;판에서 30 임신하는 젊은 성인 F 1을 선택하고 개별 플레이트 ( &#39;첫째날&#39;30 F 1 판)에 전송할. </li><li> &#39;둘째 날&#39;플레이트 [Day5] 단계를 반복 3.4 ( &#39;둘째 날&#39;30 F 1 판). </li><li> 그들이 성인이 될 때 Day7-9] 표준 실체 현미경 하에서 비정상적인 형태 학적 및 / 또는 WT 변형 (그림 3A)에 비해 F 2 웜의 동작을 확인합니다. 참고 : 높은 침투와 열성이다 F 2 중 같은 표현형과 벌레의 내무반에 관한 유전 변이가 표시됩니다. 그러나 일부 돌연변이 천천히 성장 및 / 또는 부분적인 침투를 표시 할 수 있습니다. 따라서, 돌연변이 미만 분기가 발견 될 수있다플레이트. </li><li> 개별적으로 볼 수 표현형과 벌레를 선택하고 다음 세대의 표현형의 유전을 확인합니다. </li></ol> 염색체 외 형질 전환 유전자 통합 4. 예 <ol><li> A의 CZ20310 juSi164에 관심있는 DNA를 주입 [Pmex-5-HIS-72 : miniSOG - 3&#39;UTR (TBB-2) + CB-UNC-119 (+)] UNC-119 (ED3) 및 준비 유전자 변형 벌레 표준 주입 프로토콜 12,13 다음 저 전송률 (10~30%). 참고 : 또는 설립 염색체 외 배열이 juSi164 균주에 교차 할 수 있습니다. juSi164에 대한 유전자형을 방지하기 위해, juSi164의 이형 효율이 감소 될 수 있지만 P 0으로 사용될 수있다. juSi164 대한 유전자형 방법은 섹션 5에서 설명한다. </li><li> 2 단계에 설명 된대로 [첫째날] ~ 푸른 빛 P 0로 (20) 형질 전환 동물을 취급합니다. 참고 : 더 P 0 웜은 그럴 필요에 따라 필요<html> ansmission 속도. 표현형은 유전자 또는 공사 출 마커 (12, 13)에 의해 식별 될 수있다. </li><li> 개인 접시에 10 건강한 찾고 P 0 선택 20 ° C 배양기에서 그들을 유지하고 며칠 (P 0 판)에 대한 알을 낳는하자 </li><li> [Day4] 싱글 아웃 (20) 형질 전환 F 1 개별 플레이트 상에 각각 P 0 판에서 벌레와 그들이 알을 낳기 수 있습니다. (20 F 1 × P 0 판 = 총 200 F 1 판). </li><li> [Day7] F에게&gt; 75 % F 2 가지는 유전자 1 판을 찾습니다. </li><li> F에게&gt; 75 % 전송 속도에서 1 판 (F 2 판) 오 형질 전환 동물을 선택합니다. </li><li> [Day10] F 잠재적 인 통합 선으로 100 %의 전송 속도 2 판을 보관하십시오. </li><li> 멘델의 분리를 확인하고 잠재적 인 배경 돌연변이를 제거하기 위해 표준 절차를 사용하여 (10) 전위 집적 라인 교배. </li></ol>제작 &quot;&gt; 5. 유전자형 <ol><li> 를 Lyse (20)는 표준 프로토콜 (14)을 사용하여 용해 완충액 F 2 웜 outcrossed. </li><li> 표준 프로토콜 14 다음 58 ℃의 어닐링 온도 MosSCI 삽입 9 juSi164 (표 1)에 대한 프라이머를 사용하여 PCR을 수행한다. 주 : UNC-119 (ED3)가 다음 단계 5.4 및 5.5에서 구하고 트랜스 (juSi164)을 제거한 후 배위 동작에 의해 검출 될 수 있기 때문에이 UNC-119 (ED3)를 유전자형 불필요하다. </li><li> 아가로 오스 겔 전기 영동 (15)을 실행하고 juSi164에 대한 WT를 찾기 위해 밴드 크기 (표 1)를 검사합니다. </li><li> 은 F 2 자손으로 인해 UNC-119 (ED3)의 존재에 벌레를 마비 경우 검사합니다. </li><li> 조정되지 않은 웜 단계 5.4에서 발견하는 경우, 하나의 여러 nonuncoordinated 웜은 다음 세대의 모든 nonuncoordinated 웜을 얻었다. </li></ol>

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여기서는 optogenetic 돌연변이의 상세한 절차는 그의-mSOG는 배아에서 발현 이용하여 소규모 순방향 유전 화면의 일례를 설명 제공. 표준 화학적 돌연변이 유발에 비해,이 optogenetic 돌연변이 유발 방법은 여러 가지 장점을 갖는다. 첫째, 이에 거리와 같은 EMS, ENU 같은 독성 화학 돌연변이에서 실험실 인력을 유지하고 자외선 (TMP / UV)와 trimethylpsoralen, 무독성이다. 둘째, 돌연변이 유발 실험 절차는 P 0 동물 소수 사용할 수 있으며 1 시간 이내에 완료 될 수있다. 셋째, optogenetic 돌연변이는 염기 치환 및 염색체 삭제를 포함하여 돌연변이의 광범위한 스펙트럼을 생산하고 있습니다. 마지막 optogenetic 돌연변이는 염색체 외 유전자의 통합을 위해 사용될 수있다. 이 돌연변이 유발 프로토콜의 중요한 단계는 LED 설치가 전에서 그의-mSOG 포함하는 균주에 작동하는지 확인하는 것입니다예견했던 효...

앞으로 유전 화면이 널리 예쁜 꼬마 선충 (C. elegans의) 1과 모델 생물의 다양한 생물학적 과정을 방해 유전 적 돌연변이를 생성하는 데 사용되었다. 이러한 돌연변이의 분석은 기능적으로 중요한 유전자의 발견을 유도 및 시그널링 1,2 경로. 전통적으로, C.에서 돌연변이 유발 엘레은 돌연변이 유발 화학 물질, 방사선, 또는 트랜스포존 2를 사용하여 달성된다. 에틸 메탄 (EMS) 및 N - 에틸 N의 -nitrosourea (ENU) 인간에게 독성이 같은 화학; 감마선 또는 자외선 (UV) 방사선 돌연변이 특별한 장비를 필요로; 및 뮤 테이터 균주 3 등 트랜스포존 활성 균주, 유지 보수시 불필요한 돌연변이를 일으킬 수 있습니다. 우리는 유 전적으로 인코딩 된 감광제 (4)를 이용하여 유전 변이를 유도하는 간단한 방법을 개발했습니다. 반응성 산소 종 (ROS)의 DNA 5가 손상 될 수 있습니다.미니 중항 산소 발생기 (miniSOG)는 LOV (빛, 산소 및 전압)에서 설계 한 106 아미노산 애기 phototropin 2/6 도메인의 녹색 형광 단백질이다. 청색광 (~ 450 ㎚), miniSOG에 노출시 ROS는 모든 세포에 존재하는 보조 인자 6-8로 FL AVIN 모노 뉴클레오티드와 일 중항 산소를 포함한 생성한다. 우리는 히스톤-(72), C의 C 말단에 miniSOG에 태그를 지정하여 그의-mSOG 융합 단백질을 구성 히스톤 (3)의 엘레 변형 우리는 C.의 생식 세포에 그의-mSOG을 표현하는 단일 복사 유전자 (9)을 생성 엘레. 어둠 속에서 정상 배양 조건은 그의-mSOG 유전자 변형 웜은 정상 무리의 크기와 수명 4 있습니다. 블루 LED 빛에 노출되면, 그의-mSOG 웜은 자신의 자손 4 사이의 유전 변이를 생산하고 있습니다. T에 C : A와 G : C에 C : G, 작은 chromoso에 의한 돌연변이의 스펙트럼은 G와 같은 염기 변화를 포함날 4 삭제. 이 돌연변이 유발 절차를 수행하는 간단하고, 최소한의 실험 안전 설정을 요구한다. 여기, 우리는 optogenetic 돌연변이 유발을위한 LED 조명 설정 및 절차에 대해 설명합니다.

<table><tbody><tr><td>초고출력 LED 광원</td><td>Prizmatix</td><td>UHP-mic-LED-460</td><td>460 &plusmn; 5 nm</td></tr><tr><td>LED 컨트롤러</td><td>Prizmatix</td><td>UHPLCC-01</td><td></td></tr><tr><td>디지털 함수 발생기/증폭기</td><td>PASCO</td><td>PI-9587C</td><td>PI-9587C는 더 이상 사용할 수 없습니다. 대체품은 PI-8127입니다.</td></tr><tr><td>BNC 케이블, 남성/남성</td>, <td>THORLABS,</td><td>CA3136</td><td></td></tr>, <tr><td>USB-TTL 인터페이스</td><td>, Prizmatix</td><td></td><td>, 옵션</td></tr>, <tr><td>광도계</td><td>, THORLABS,</td><td>PM50 및 모델, D10MM</td><td></td></tr>, <tr><td>여과지</td><td>, Whatman</td><td>1001-110</td><td></td></tr>, <tr><td>실체현미경</td>, <td>Leica</td>, <td>MZ95</td><td></td></tr>, <tr><td>NGM 플레이트</td><td></td><td></td><td>5 g NaCl, 2.5 g 펩톤, 20 g 한천, 10 &마이크로를 용해하십시오. 1L H2O의 g/mL 콜레스테롤 오토클레이빙 후 1mM CaCl2, 1mM MgSO4, 25mM KH2PO4(pH 6.0)를 추가합니다.</td></tr><tr><td>용해 용액</td><td></td><td></td><td>10 mM Tris(pH 8.8), 50 mM KCl, 0.1% Triton X-100, 2.5 mM MgCl2, 100 &micro; g/mL 프로테나제 K</td></tr></tbody></table>

히스톤 - minisog에서 사용 optogenetic 무작위 돌연변이 유발<em&gt; c. 엘레</em

Optogenetic Random Mutagenesis Using Histone-miniSOG in C. elegans

모델 유기체에서 전방 유전자 스크리닝은 많은 생물학적 과정에서 기능적으로 중요한 유전자와 경로를 발견하는 데 사용됩니다. 대부분의 돌연변이 유발 기반 스크리닝에서 연구자들은 독성 화학 물질, 발암 물질 또는 방사선 조사의 사용에 의존해 왔으며, 이를 위해서는 지정된 장비, 안전 설정 및/또는 위험 물질 폐기가 필요합니다. 우리는 활성 산소 종의 광 유도 가능한 강력한 생성기인 생식세포 발현 히스톤-miniSOG를 사용하여 예쁜꼬마선충에서 유전 가능한 돌연변이를 유도하는 간단한 접근 방식을 개발했습니다. 이 돌연변이 유발 방법은 독성 화학 물질이 없으며 최소한의 실험실 안전 및 폐기물 관리가 필요합니다. 유도된 DNA 변형에는 단일 뉴클레오티드 변화와 작은 결실이 포함되며, 이는 고전적인 화학적 돌연변이 유발로 인한 것을 보완합니다. 이 방법론은 염색체 외 전이유전자의 통합을 유도하는 데에도 사용할 수 있습니다. 여기에서는 표준 돌연변이 유발 및 이식유전자 통합을 위한 LED 설정 및 프로토콜에 대한 세부 정보를 제공합니다.

우리는 120 돌연변이 반수체 게놈에 해당하는 60 F 1 판 중 섹션 2와 3에 설명 된 표준 프로토콜 다음 30 분 빛 노출을 사용 CZ20310 juSi164 UNC-119 (ED3)와 앞으로 유전자 화면을 수행, 우리는 8 F 1 판을 발견 F 등의 신체 사이즈 결함 (그림 3B), 조정되지 않은 운동 (그림 3C), 성인 치사 (그림 3D)으로 볼 수 표현형을 표시이 웜. 우리는 &#39;첫째날&#39;과 &#39;둘째 날&#39;판 사이 돌연변이의 수의 차이를 통보하지 않았다. 찍어 작은 F 2 웜 및 조정되지 않은 F 2 웜의 모든 자손은 유전 돌연변이 것을 제안, 해당 표현형을 보여 주었다. 전체 관찰은 표 2에 요약 하였...

유전자 인코딩 히스톤 - miniSOG는 푸른 빛 의존적으로 게놈 전체의 유전 변이를 유도한다. 이 돌연변이 유발 방법은 빠르고 간단 독성 화학 물질의 자유, 앞으로 유전자 검사 및 유전자 통합에 적합합니다.

히스톤 - miniSOG에서 사용 Optogenetic 무작위 돌연변이 유발<em&gt; C. 엘레</em

Forward genetic screening in model organisms is the workhorse to discover functionally important genes and pathways in many biological processes. In most ...

이 돌연변이 유발 프로토콜의 전반적인 목표는 단순한 LED 장치를 사용하여 청색광 의존성 활성 산소 생성 단백질을 발현하는 C.elegans의 게놈 DNA에 돌연변이를 유발하는 것입니다. 이 기술의 두 가지 주요 장점은 첫째, 돌연변이 유발 프로토콜이 매우 간단하며 독성 화학 물질이 필요하지 않다는 점이며, 둘째, 장기적인 돌연변이 유발 후에도 돌연변이 생성기가 그 효능을 입증한다는 점입니다.먼저 본 방법의 아이디어를 구상하였으며, ROS 생성 단백질이 유전 가능한 돌연변이를 유도하는 데 사용된 적이 없음을 인지하였습니다. 본 실험을 위해 LED 조사 장치의 컨트롤러를 BNC 케이블을 사용하여 디지털 함수 발생기에 연결합니다. 커스텀 홀더를 사용하여 LED 조명을 스테이지 상단 10 cm 높이에 고정합니다.이제 청색광이 주변으로 노출되는 것을 제한하기 위해 장치의 일부를 덮어주되, 스테이지에 열이 축적되지 않을 정도로만 덮습니다. 여기서는 상단과 하단이 개방된 맞춤 제작 하드 플라스틱 커버를 사용합니다. LED 작동 중에는 빛이 매우 밝으므로 항상 레이저 보호 안경이나 선글라스를 착용하십시오.이제 LED 컨트롤러의 레버를 internal로 전환하고, 최대 출력의 65%로 설정하십시오. 광도계를 사용하여 스테이지 상에서 연속 조사 시 광량이 2.0 mW/mm²가 되도록 필요에 따라 빛의 출력을 조정하십시오. 본 프로토콜에서는 빛에 민감한 균주를 표준 조건 하의 암소에서 유지하십시오.불필요한 빛 노출은 피해야 하지만, 계대 배양을 위해 할로겐 램프를 일상적으로 사용하는 것은 돌연변이를 일으키지 않습니다. 우발적인 돌연변이가 우려되므로, 균주를 처음 확보했을 때 분주하여 냉동 보관하십시오. 돌연변이 유발을 위해, 중앙에 약 25 millimeter 크기의 정사각형 구멍이 뚫려 있고 60 millimeter 플레이트에 맞는 필터 페이퍼를 준비하여 균을 접종하지 않은 플레이트 위에 올리십시오.그런 다음, 벌레들이 사각형 구멍 밖으로 나가지 못하도록 100 mM 염화구리를 100 µL 취해 필터 페이퍼 위에 고르게 분배합니다. 이제 L4 단계 이후 약 12시간이 지난 벌레 플레이트에서 임신한 젊은 성체 자웅동체들을 골라 플레이트의 중앙 사각형 안에 넣습니다. 다음으로, LED와 함수 발생기를 켭니다.그런 다음, LED 컨트롤러를 외부(external) 모드로 전환하여 함수 발생기로 제어하고 전력을 적절하게 설정합니다. 함

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Research

연구

JoVE Journal

Genetics

유전학

phenotypic 결함과 돌연변이에 대한 심사는 특정 생물 학적 과정에서 기능 유전자를 확인하는 간단한 방법입니다. 이 문서에서 우리는 어떻게 문화 무료 생활 웜 (예에 대한...

웜 실험실 소개 : Culturing 웜에서 돌연변이 유발하는

이 동영상은 형질전환 예쁜꼬마선충 균주를 만드는 일반적인 방법인 미세주입에 대해 설명합니다. 이 예에서는 CRISPR 염기 유전자 편집을 위한 리보핵단백질(RNP) 복합체를 도입하는 데 사용되는 미세주입을 볼 수 있습니다.

생식선 미세주입: 예쁜꼬마선충의 생식세포에 직접 화합물을 전달하는 방법

작은 투명 몸, 잘 문서화 neuroanatomy 및 의무 유전자 기술과 시약의...

C.의 생체 Neuronal 칼슘 이미징에서 elegans

Saccharomyces cerevisiae의 내인성 위치에서 히스톤 유전자의 돌연변이를 생성하는 전략이 제시됩니다.

대상<em&gt; 현장에서</em신진 효모에서&gt; 돌연변이 유발 히스톤의 유전자

여기에 제시 된 방법의 목표는 단백질 집계 모델 유기 체 C. 선 충에서 정상적인 노화 과정을 탐구. 프로토콜 나이 형성 하는 매우 불용 성 큰 집계를 공부 하 고 proteostasis에 변화 단백질 집계에 미치는 영향을 결정 하는 강력한 도구를 나타냅니다.

꼬마 선 충 나이 연구 변화 내재 단백질 집계에 방법

이 프로토콜에는 꼬마 선 충에서 vivo에서 세포 운명 변환 중 세포질 과정을 공부 하는 방법을 설명 합니다. 유전자 변형 동물, 신경 운명을 유도 하는 전사 인자 체 1의 열 충격 발기인 구동 overexpression와 염색 질 조절 요소 린-53 세균 세포의 신경 프로그래밍을 고갈 RNAi 중재를 사용 하 여 관찰 될 수 있다 vivo에서.<br...

C. 선 충 에서 신경 세포를 세균 세포를 재 설 정할 RNAi 및 열 충격 유도 하는 전사 인자 식의 적용

이 문서에는 분열 효 모에 대상 유전자의 무작위 mutagenesis에 대 한 자세한 방법을 설명합니다. 예를 들어, 우리가 대상 rpt4 +, 19S 프로테아좀 섬으로 불안정 돌연변이 대 한 스크린의 소 단위를 인코딩하는.

분열 효 모 섬으로 불안정 프로테아좀 돌연변이 선택할 임의의 Mutagenesis 유전자 타겟팅

여기, 우리는 CRISPR-Cas9 ribonucleoproteins 및 homology 종속 복구 서식 파일을 사용 하 여 C. 선 충 의 게놈을 엔지니어링 하는 방법 제시.

빠른 고 손쉬운 파이프라인 C. 선 충 을 사용 하 여 CRISPR/Cas9 Ribonucleoproteins에서 게놈 포인트 돌연변이 생성에 대 한

이 프로토콜은 예쁜꼬마선충(C. elegans)에서 RNAi 유도 침묵 및 관련 염색질 변형의 후성유전학적 유전을 연구하기 위한 RNA 간섭 및 ChIP 분석을 설명합니다.

형광 리포터 및 ChIP(Chromatin Immunoprecipitation)를 사용한 예쁜꼬마선충(C. elegans )의 세대 간 후성유전학적 유전 분석

Caenorhabditis elegans 생식계통에서 동형접합 노크인 라인을 얻기 위한 CRISPR/Cas9 미세 주입 워크플로우.

카에노르랍디티스 엘레간스에서 생식계 특이 유전자의 CRISPR/Cas9 매개 내인성 형광 태깅

배우세요 C. elegans에서 히스톤-miniSOG를 이용한 광유전학 돌연변이 유발 방법을. 이 기술은 독성 화학물질 없이 유전체 전체의 유전적 돌연변이를 유도하여 전진 유전학 스크리닝과 형질도입에 활용됩니다.

히스톤 - miniSOG에서 사용 Optogenetic 무작위 돌연변이 유발

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