Name: 소포체와 미토콘드리아의 상호 작용의 연구에 의해 현장에서 근접 내고 분석 고정 세포의 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 34 s
Description: 학습하세요 고정 세포에서 소포체와 미토콘드리아 상호작용을 근접 리가제이 분석법으로 시각화하고 정량화하는 방법을. 이 기술은 세포 대사 및 신호전달 연구에 활용됩니다.

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우리는 최적화 및 프로토콜을 검증하기 위해 기여 우리의 실험실에있는 모든 사람들에게 감사합니다. 이 작품은 INSERM과 국가 연구 기관 (ANR-09-JCJC-0116 및 ANR-11 BSV1-033-02)에 의해 지원되었다. ET는 고등 교육과 연구의 프랑스 내각에서 연구 교제 그녀의 박사 과정에 지원되었다.

솔루션 1. 준비 <ol><li> PBS 14.5 ml의 37 % 포름 알데히드 5.5 mL로 희석하여 PBS (저염)에서 10 %의 포름 알데히드를 준비한다. PBS 50 ㎖ 중의 글리신 3.8 g을 용해시켜 1 M 글리신, pH가 8.0을 준비한다; 1X PBS 100 mM의 글리신을 얻기 위해 상기 용액을 희석. </li><li> 1X PBS에서 0.1 % 트리톤 - X100을 준비합니다. 3.0 M 염화 나트륨, 25 ℃에서의 pH 7.0 탈 이온수 버퍼 제조 0.30 M 시트르산 삼 나트륨을 이용하여 20 배 염 구연산 나트륨 (SSC)를 준비한다. 1x에서이 버퍼를 희석 탈 이온수를 사용하여 0.01x. </li></ol> 세포의 2. 고정 참고 : 본 연구에서 HuH7 간암 세포주를 사용하지만,이 방법은 다른 접착 세포 배양에 적용 가능하다. <ol><li> 코팅 35 mm의 유리 바닥 접시 당 150,000 세포에서 (10 % 소 태아 혈청 0.01 % 페니실린 - 스트렙토 마이신 재고 보충 DMEM 1g / L의 포도당에서 배양) 플레이트 HuH7 세포. 일차 전지에 작업 할 때문화, 콜라겐 코팅 요리를 사용합니다. </li><li> 다음 날, 배지를 제거합니다. PBS와 대기음 1 ml의 세포를 씻으십시오. 포름 알데하이드 10 % 1 ㎖를 첨가하여 세포를 고정하고, 교반하에 실온 (RT)에서 10 분 동안 배양한다. </li><li> 1 M 글리신 1 ㎖로 반응을 중지하고 회전에 의해 섞는다. 반응 정지 액을 제거하고 1X PBS 1 ㎖를 첨가하여 세포를 세척; 회전 및 흡인에 의해 선동. 세포에 100 mM의 글리신의 1 ML을 추가하고 15 교반하면서 실온에서 분 후 흡인 그들을 품어. 주 : 여기에서의 프로토콜은 중지 될 수 있고, 다음 단계는 또 다른 일 연기 될 수있다. 이 경우, 100 mM의 글리신 1 ㎖를 추가하고, 필요한 경우, 4 ℃에서 보관. </li></ol> 세포의 3 Permeabilization <ol><li> 15 교반하면서 실온에서 분 후 흡인 부화, 1X PBS에서 0.1 % 트리톤 - X100의 1 ML을 추가합니다. 일차 전지의 cultur 작업시 20 분 -이 배양 시간은 15까지 증가 될 수있다ES (예를 들어, 기본 쥐 간세포). 1X PBS 1 ㎖를 첨가하여 세포를 씻어; 대기음. </li></ol> 4. 차단 <ol><li> (키트에서 제공) 각 샘플에 차단 솔루션의 40 μl를 추가; 이 부피는 샘플을 커버하기 위해 증가 될 수있다. 습도 챔버에서 37 ° C에서 30 분 동안 요리를 부화. </li><li> 요리의 전원 차단 솔루션을 누릅니다. 이 재현성에 영향을 미칠 것 같이, 각 슬라이드에 대해 동일한 잔류 볼륨을 얻기 위해 시도합니다. 샘플이 건조하게하지 마십시오! </li></ol> 5. 차 항체 <ol><li> 1X PBS의 기본 항체를 희석과 요리 (VDAC1 마우스 항체 : 1/100, IP3R1 토끼 항체 : 1/500)의 솔루션을 추가 할 수 있습니다. 또한, GRP75 또는 CypD 항체 (1/500에서 사용 모두 마우스 항체) 대신 VDAC1 사용할 수 있습니다. </li><li> 4 ℃에서 습도 챔버에서 밤새 품어. 0.01 % 트윈 (TBS-T)와 슬라이드를 트리스 완충 식염수를 사용하여 두 번 씻으십시오. </li></ol><p클래스 = &quot;jove_title&quot;&gt; 6. 근접 내고 분석 프로브 <ol><li> 근접 결찰 검정 프로브는 키트가 제공된다. 일차 항체의 종류에 따라 프로브를 선택합니다. </li><li> 항체 희석액에 5 : 두 개의 근접 내고 분석 프로브 1을 준비합니다. 혼합물을 실온에서 20 분 동안 앉아 할 수 있습니다. 희석 근접 내고 분석 프로브 솔루션을 추가합니다. 37 ° C에서 1 시간 동안 예열 된 습도 챔버 내에서 요리를 부화. TBS-T로 요리 두 번 씻으십시오. </li></ol> 7. 내고 <ol><li> 현장 검출 시약 텍사스 빨간색 키트에 사용합니다. </li><li> 고순도의 물에 5 잘 섞는다 : (키트에서 제공)을 5 배 결찰 1 개를 희석. 1시 40분 및 와류 (키트로 제공)를 1X 라이 게이션 용액으로 희석 리가. 즉시 샘플뿐만 아니라 이전까지 리가 아제를 추가 할 때까지 기다립니다. </li><li> 미리 가열 습도 참에 슬라이드를 각각의 샘플이 용액 (35 mm 유리 바닥 요리 40 μl를) 추가 및 배양BER 37 ℃에서 30 분. TBS-T로 슬라이드 두 번 씻으십시오. </li></ol> 8. 증폭 참고 :주의, 빛에 민감한 시약한다. <ol><li> 고순도의 물에 5 : (키트에서 제공)을 5 배 증폭 1 개를 희석. 냉동 블록을 사용하여 냉동실에서 중합 효소를 분리합니다 (-20 ° C). (키트에서 제공) 중합 효소 1 배 증폭 솔루션과 소용돌이에서 1:80 희석. 혼합물을 사용하기 전에 즉시 중합 효소를 추가합니다. </li><li> 각각의 샘플이 용액 (35 mm 유리 바닥 요리 40 μL)를 추가합니다. 37 ℃에서 100 분 동안 예열 된 습도 챔버에 슬라이드를 부화. 슬라이드의 오프 증폭 - 중합 효소 솔루션을 누릅니다. </li></ol> 9. 최종 세척 <ol><li> 2 분 동안 1 배 SSC 세척 버퍼에 슬라이드를 씻으십시오. 2 분 동안 0.01x SSC 세척 버퍼에 슬라이드를 씻으십시오. 요리는 어둠 속에서 실온에서 건조 시키십시오. </li></ol> 이미징 10. 준비 <ol&gt; <li> 공기 방울이 커버 슬립 아래에서 발견되지 얻을 보장 (수성 및 응고되지 않음) DAPI를 포함하는 설치 매체의 최소한의 볼륨을 사용하여 슬라이드를 탑재합니다. 매니큐어 가장자리를 밀봉하기 위해 사용될 수있다. (: 594 nm의, 방출 : 624 nm의 배율 : 63X 여기) 형광 또는 공 초점 현미경을 사용하여 분석하기 전에 약 15 분 동안 기다립니다. </li><li> 촬상 후, 어둠 속에서 -20 ° C에서 슬라이드를 저장한다. </li></ol>

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</ol>

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

종합적으로, 우리의 연구는 in situ 근접 결찰 분석이 소기관 특이적 형광단이나 형광 단백질을 사용할 필요 없이 고정 세포에서 내인성 ER-미토콘드리아 상호 작용을 추적하고 정량화하는 진정한 관련 전략임을 나타냅니다. VDAC1/IP3R1 항체의 특정 사용은 HuH7 세포에서 ER-미토콘드리아 상호 작용을 연구하는 데 적용되었습니다. 그러나 세포 유형에 따라 VDAC 및 IP3R의 대체 이소형을 사용할 수 있습니다. 이 경우, 특이성을 보장하고 올바른 작동 희석액을 찾기 위해 근접 결찰 분석 실험 전에 면역형광으로 항체를 검증해야 합니다. 또한 새로운 근접 결찰 분석 키트 또는 새로운 항체 배치를 사용할 때 항체의 희석을 체계적으로 조정해야 한다는 점에 주목합니다. 우리는 in situ 검출 Texas 적색 시약을 사용하기로 선택했지만 다른 파장의 시약을 사용하거나 명시야 검출을 위해 HRP/Novared 키트를 사용하는 것도 가능합니다. 우리는 이 옵션을 사용하여 파라핀 포매 간 샘플<sup...

미토콘드리아 소포체 (ER)은 세포 소기관 독립적 아니지만 미토콘드리아 관련 소포체 막 (MAM)로 정의 접촉 부위에서 구조적 및 기능적으로 상호 작용한다. 사실, MAMS은 양쪽에서 단백질 간의 상호 작용을 가능하게하여 ER의 세포막과 미토콘드리아가 밀접하게 나란히 놓이는되는 지역에 해당합니다. 그럼에도 불구하고,이 세포 소기관의 멤브레인은이 지역 내에서 융합하지 않는, 그래서 그들은 자신의 별도의 기관을 유지한다. MAMS은 에너지 대사 및 세포 생존 1-3에 영향을 미치는, 미토콘드리아에 ER에서 칼슘의 중요한 역할 (칼슘)과 인지질 전송을한다. 응급실과 미토콘드리아 사이의 관계는 제 1 전자 현미경으로 1970 년대에 가시화되었다. 그 이후, 투과 전자 현미경 4,5-, 6,7- 전자 단층 또는 ER 및 미토콘드리아 특정 형광의 면역 지역화S / 형광 단백질 (8)는 고전 ER-미토콘드리아의 상호 작용을 연구하는 데 사용되었다. MAM의 분석을위한 다른 유용한 도구는 세포 이하 분획의 사용에 기초한다. 이것은 퍼콜 구배 (9)에 결합 된 차동 초 원심 MAM 분획을 분리 할 수있다. 그러나, 최종 제품은 풍부한 MAM 분획이 아닌 순수한 분획을 포함한다. 전부,이 전략은 특히 민감한 및 / 또는 정량적하지 않습니다, 그들은 큰 심사에 쉽게 의무가 없습니다. 다르게는, 약물 - 유도 성 형광 간 소기관 링커를 사용하여 유전 학적 접근이 등장 있지만 단백질 10의 내인성 발현 수준 소기관 상호 작용의 분석을 허용하지 않는다. MAM 11의 IP3R / GRP75 / VDAC 복잡 Szabadkai의 발견에 기초하여, 우리는 ER-미토콘드리아의 상호 작용을 분석하는 정량적 방법을 개발 하였다. 우리는 현장 근접 ligati에 사용분석에 감지하고 VDAC1 및 IP3R1 사이의 상호 작용을 정량화하고, 고정 셀 (12)의 MAM 인터페이스에서 칼슘 2 + -channeling 복잡한에 관여하는 두 소기관 표면 단백질. 간단히 말해서, 우리는 ER 막에서 외부 미토콘드리아 막 (마우스 항 - VDAC1 차 항체) 및 IP3R1 (토끼 항 IP3R1 차 항체) (그림 1, 패널)에서 VDAC1을 프로빙. 그리고, 상기 분석에있어서, 우리는 항 - 마우스와 상보적인 올리고 뉴클레오티드로 확장되어 접합 항 - 토끼 IgG를 (마우스 및 토끼 근접 결찰 분석법 프로브) 모두를 추가했다. 두 개의 표적 단백질이 40 내지 이하의 거리에있는 경우, 올리고 뉴클레오티드는 원형의 DNA를 주형 (도 1, 패널 B)의 형성을 허용하도록 연속적으로 첨가 커넥터 올리고와 혼성화 할 수있다. 이 원형 DNA 분자에 공유 변위 센서 중 하나에 장착 된 단일 가닥 DNA 생성물 생성 결찰 증폭된다 (도 1, 패널 c) </stro&gt; NG. MAM 계면에서 ER 및 미토콘드리아 간의 거리 내지 6 근접 결찰 증폭 인해 텍사스 레드 표지 된 올리고 뉴클레오티드 프로브 (도 1, 패널 (D)의 혼성화에이어서 검출 선도 할 수있는 (25)는 10 nm 내지 때문에 ). 각 형광 점 따라서 개별 셀의 현장에서 ER-미토콘드리아 상호 작용의 정량화를 허용 VDAC1 / IP3R1 사이의 상호 작용을 나타냅니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54899/54899fig1.jpg" /> 그림 1 : 제자리 근접 내고 분석에 의해 소포체 - 미토콘드리아 상호 작용의 검출의 개략도. a) VDAC1 및 MAM의 계면 근방에서 그 에피토프에 결합 할 수 IP3R1 향한 토끼 차 항체에 대해 유도 마우스 일차 항체 b) 인접 결찰 프로브 쌍의 또마우스와 토끼 IgG에 대해 지시했다. 이 프로브는 커넥터 올리고의 결찰에 대한 템플릿을 형성 할 수있는 DNA 가닥을 첨부했습니다. c) 결찰 후 형성된 원형의 DNA 가닥이 텍사스 레드 표지 된 올리고 뉴클레오티드를 이용하여 형광 현미경으로 도트 시각화) D 증폭 될 수있다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54899/54899fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 시츄 근접 결찰 분석 실험에서 유사한 항체 GRP75 / IP3R1 쌍뿐만 아니라 시클로 필린의 D (CypD) 수행 될 수있다 / IP3R1 항체 CypD는 MAM 계면에서 IP3R / GRP75 / VDAC 복합체와 상호 작용하는 것으로 나타났다 것을 고려 12-14.

<table><tbody><tr><td>포름 알데히드</td><td>Sigma</td><td>F-8775</td><td></td></tr><tr><td>글리신</td><td>Sigma</td><td>G-8898</td><td></td></tr><tr><td>Triton</td><td>Sigma</td><td>T8532</td><td></td></tr><tr><td>35mm 유리 바닥 배양 접시</td><td>MatTeK corporation</td><td>P35G-0-14-C</td><td></td></tr><tr><td>차단 솔루션</td><td>Duolink</td><td>PLA 프로브에 제공되는 Sigma</td><td>DUO-92004 또는 DUO-92002</td>, Sigma</tr><tr><td>VDAC1 항체</td><td>Abcam</td><td>ab14734</td><td></td></tr><tr><td>IP3R1-H80 항체</td><td>Santa Cruz</td><td>sc28614</td><td></td></tr><tr><td>CypD 항체</td><td>Abcam</td><td>ab110324</td><td></td></tr><tr><td>Grp75 항체</td><td>Santa Cruz</td><td>sc13967</td><td></td></tr><tr><td>TBS 10x</td><td>euromedex</td><td>ET220</td><td>1x</td></tr><tr><td>Tween 100x</td><td>euromedex</td><td>2001-B</td>를 얻기 위해 <td>희석 TBS에서 0,01%</td></tr> <tr>얻기 위해 희석<td>PLA 프로브 마우스 MINUS</td><td>시그마</td><td>DUO-92004</td><td>Duolink, 시그마</td></tr><tr><td>PLA 프로브 Rabbit PLUS</td><td>시그마</td><td>DUO-92002</td><td>Duolink, 시그마</td></tr><tr><td>Duolink 검출 시약 레드</td><td>시그마</td><td>DUO-92008</td><td>듀오 링크, 시그마</td></tr><tr><td>결찰 솔루션</td><td>시그마</td><td>DUO-92008</td><td>Duolink 검출 시약의 일부 빨간색, 시그마</td></tr><tr><td>리가제</td><td>시그마</td><td>DUO-92008</td><td>Duolink 검출 시약의 일부 빨간색, Sigma</td></tr><tr><td>증폭 솔루션</td><td>Sigma</td><td>DUO-92008</td><td>Duolink 감지 시약의 일부 빨간색, Sigma</td></tr><tr><td>Polymerase</td><td>Sigma</td><td>DUO-92008</td><td>Duolink 감지 시약의 일부 빨간색, Sigma</td></tr><tr><td>Duolink 장착 매체</td><td>Sigma</td><td>DUO80102</td><td>Duolink, Sigma</td></tr><tr><td colspan="4">Softwares</td></tr><tr><td>블롭 파인더 소프트웨어</td><td></td><td></td>인 <td>블롭파인더(BlobFinder)는 형광 현미경 이미지에서 세포에 대한 계산을 수행할 수 있는 무료로 배포되는 소프트웨어입니다. 이 소프트웨어는 소프트웨어를 개발한 웁살라 대학의 이미지 분석 센터에서 무료로 다운로드할 수 있으며 작업은 EU FP6 프로젝트 ENLIGHT 및 Olink Bioscience의 지원을 받았습니다. </td></tr><tr><td>http://www.cb.uu.se/~amin/BlobFinder/index_files/Page430.htm ImageJ 소프트웨어</td><td></td><td></td><td>다음에서 무료로 다운로드 할 수 있습니다 : http://rsb.info.nih.gov/ij/download.html</td></tr></tbody></table>

소포체와 미토콘드리아의 상호 작용의 연구에 의해<em&gt; 현장에서</em&gt; 근접 내고 분석 고정 세포의

Study of Endoplasmic Reticulum and Mitochondria Interactions by In Situ Proximity Ligation Assay in Fixed Cells

미토콘드리아 관련 막(MAM)으로 알려진 영역에서 소포막(ER)과 미토콘드리아 막 사이의 구조적 상호 작용은 세포 신호 전달 및 세포 운명을 위한 중요한 허브입니다. 특히, 이러한 소기관 간 접촉 부위는 전압 의존성 음이온 채널(VDAC)/포도당 조절 단백질 75(GRP75)/이노시톨 1,4,5-트리포스페이트 수용체(IP3R) 칼슘 채널링 복합체를 통해 ER에서 미토콘드리아로 칼슘을 전달할 수 있도록 합니다. 이 세포 내 구획은 생리학적 및 병리학적 조건 모두에서 집중적인 조사가 진행되고 있지만, 세포 내 ER-미토콘드리아 접촉의 내인성을 정량화할 수 있는 간단하고 민감한 방법은 없습니다. 마찬가지로, MAM은 매우 동적인 구조이며, 단백질 과발현 없이 ER-미토콘드리아 상호작용의 변형을 따를 수 있는 적절한 접근법은 없습니다. 여기에서는 MAM 계면에서 외부 미토콘드리아 막(VDAC1)과 ER 막(IP3R1)의 단백질 간의 근접성을 사용하여 고정 세포에서 내인성 ER-미토콘드리아 상호 작용을 시각화하고 정량화하기 위한 현장 근접 결찰 분석의 사용을 기반으로 하는 최적화된 프로토콜을 보고합니다. GRP75/IP3R1 및 cyclophilin D/IP3R1 항체 쌍을 사용하여 유사한 in situ 근접 결찰 실험을 수행할 수도 있습니다. 이 분석은 매우 특이적이고 민감하며 다중 조건 테스트에 적합하기 때문에 다른 이미징 절차에 비해 몇 가지 이점을 제공합니다. 따라서 이 현장 근접 결찰 분석의 사용은 ER-미토콘드리아 상호 작용의 생리학적 규정과 병리학적 맥락에서 그 역할을 더 잘 이해하는 데 도움이 될 것입니다.

이 프로토콜을 사용하여 우리의 경험을 바탕으로, 우리는 안전하게 고정 된 세포에서 ER-미토콘드리아 상호 작용의 시각화 및 정량이 방법을 추천 할 수 있습니다. 항체의 여러 쌍을 사용 HuH7의 간암 세포주 인 시츄 근접 결찰 분석법 - 가시 ER-미토콘드리아 상호 작용의 대표 화상이 도시되어있다. 형광 현미경에 의해도 2에 도시 된 바와 같이, 각각의 적색 점은 두 대상 단백질 사이의 상호 작용을 나타내며, 핵이 파란색으로 표시. 네거티브 대조군으로서, 하나의 차 항체의 사용 현장 근접 결찰 분석법 신호 생성에 대한 이중 인식 요구를 검증없이 신호 (도 2의 패널)되었다. 고전, 우리는 항체의 VDAC1 / IP3R1 쌍 (그림 2, 패널 B)를 사용하여 ER-미토콘드리아의 상호 작용을 분석 할 수 있습니다. <e...

여기, 우리는 고정 된 세포에서 소포체와 미토콘드리아의 내생 적 상호 작용을 시각화하고 고감도로 정량화 할 수있는 절차를 설명합니다. 프로토콜은이 미토콘드리아 관련 막 계면에서 이노시톨에게 1,4,5- 트리 포스페이트 수용체 / 혈당 조절 단백질 75 / 전압 가변 음이온 채널 / 시클로 필린의 D 복합체 타겟팅 시츄 근접 결찰 분석법 최적화 기능.

Structural interactions between the endoplasmic reticular (ER) and mitochondrial membranes, in domains known as mitochondria-associated membranes (MAM), ...

본 실험의 전체적인 목표는 고정된 세포에서 in situ 근접 결찰 분석(proximity ligation assay)을 사용하여 소포체와 미토콘드리아의 상호작용을 시각화하고 정량화하는 것입니다. 이 방법은 간단한 면역형광 기법을 통해 고정된 세포 내 ER-미토콘드리아 상호작용을 더 잘 분석함으로써 생의학 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움을 줄 수 있으며, 나아가 새로운 치료 전략을 제시할 수 있을 것으로 기대됩니다. 이 기술의 주요 장점은 고정된 세포에서 ER-미토콘드리아 상호작용을 시각화 및 정량화할 수 있다는 것이며, 환자의 파라핀 매립 조직 생검 표본에도 적용 가능하다는 점입니다. 본 영상에서 보여주는 in situ 근접 결찰 분석을 이용하면, 미토콘드리아 외막의 VDAC1을 표적으로 하는 마우스 1차 항체와 소포체 막의 IP3R1을 표적으로 하는 토끼 1차 항체가 미토콘드리아 연관 막(MAM) 인터페이스의 인접한 에피토프에 결합하게 됩니다. DNA 말단 꼬리가 부착되어 있으며 마우스 및 토끼 IgG를 표적으로 하는 근접 결찰 프로브를 첨가하면, 커넥터 올리고뉴클레오타이드의 결찰을 위한 템플릿을 형성할 수 있으며, 이는 Texas Red Oligonucleotides를 사용하여 증폭 및 시각화할 수 있습니다. 이러한 현상은 두 표적 단백질 사이의 거리가 40 nanometers 미만일 때만 발생하며, 이는 미토콘드리아 연관 막 인터페이스에서 두 소기관 막 사이의 거리와 일치합니다. in situ 근접 결찰 분석을 위해 세포를 고정하고 블로킹하려면, 코팅되지 않은 35 mm 유리 바닥 디쉬에 인간 H7 세포를 150,000 cells/dish 밀도로 분주하십시오. 다음 날, 배양액을 제거하고 1 mL의 PBS를 사용하여 세포를 세척합니다. 그런 다음 버퍼를 흡입하고 10% 포름알데히드 1 mL를 첨가합니다. 세포를 고정하기 위해 실온에서 교반하며 10분 동안 배양합니다. 반응을 중단시키려면 1 M glycine 1 mL를 첨가하고 플레이트를 회전시켜 혼합합니다. glycine 용액을 제거하고 1XPBS 1 mL를 첨가합니다. 그다음 플레이트를 짧게 흔들어준 후 버퍼를 흡입합니다. 다음으로 세포에 100 mM glycine 1 mL를 첨가합니다. 실온에서 교반하며 15분 동안 배양합니다. 용액을 흡입한 후, PBS에 포함된 0.1%triton-X100 1 mL를 첨가하여 세포를 투과화합니다. 그리고 배양

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연구

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Biology

생물학

여기 포유류의 조직 배양 세포에서 endoplasmic 소포체 - 관련 mRNAs을 시각화하는 방법을 설명합니다. 이 기술은 형광등에 이어 세포질 내용을 제거 할 digitonin과 플라즈마 막의 선택적 permeabilization을...

포유류의 세포에서 Endoplasmic 소포체 현지화 mRNAs의 시각화

우리는 우리가 살아있는 세포의 공 촛점 이미징에 의해 소포체 (ER)에 거주 형질 전환 형광 단백질의 분포와 이동을 조사하는 데 사용하는 이미징 방법을 설명합니다. 우리는 또한 ultrastructurally이 세포 내 구획의 구조에 대한 자신의 표현의 효과를 분석 할 수 있습니다.

배양 된 세포의 소포체 하위 도메인의 시각화

상호 빛 전자 현미경 검사 법 (클레 멘 타인) 메서드는 이전 가벼운 현미경 검사 법 (LM)에 의해 선택 된 셀에 전자 현미경 (EM)를 통해 바이러스-유도 된 세포내 구조 이미지에 적용 됩니다. LM 및 EM 바이러스-호스트 상호 작용의 통합된 보기를 달성 하기 위해 하이브리드 이미징 접근으로 결합 됩니다.

상호 빛 전자 현미경 검사 법 (클레 멘 타인) 추적 하 고 바이러스 성 단백질을 이미징 관련 Cryo 움직일 셀 구조

우리는 아스코르바테 과산화수역 2 및 고추냉이 과산화증 염색을 포함하는 상관경 및 부피 전자 현미경을 사용하여 유전자 변형 후 전체 세포에서 미토콘드리아 및 호반 망상염식의 분포를 연구하는 프로토콜을 제시하고, 동일한 섹션에 있는 표적 유전자의 유무에 관계없이 세포의 직렬 단면도, 및 전자 현미경 검사법을 통해 직렬 화상 진찰.

미토콘드리아 및 코피포지티컬 라이트 및 부피 전자 현미경에 의한 산후성 망상 이미징

이 프로토콜은 APEX2 태그가 달린 막 단백질이 최적으로 보존된 세포 초음파 구조 내에서 전송 전자 현미경검사법에 의해 국한될 수 있는 cryoAPEX 방법을 설명합니다.

초구조적으로 보존된 세포 내 막 단백질 국소화의 전자 현미경 분석을 위한 CryoAPEX 방법

간세포의 소기관 또는 다른 조직의 세포 사이의 막 접촉 부위의 입체 세부 사항을 획득하는 간단하고 포괄적 인 프로토콜.

직렬 섹션 전자 현미경을 사용하여 간세포에서 소기관 간 접촉 부위의 입체 특성화

막 접촉 부위(MCS)를 연구하기 위한 새로운 접근법의 필요성은 이러한 세포 구조와 그 구성 요소 연구에 대한 관심이 증가함에 따라 증가했습니다. 여기에서는 MCS에 상주하는 세포 소기관 내 및 세포 기관 간 단백질 복합체를 식별하고 정량화하기 위해 이전에 사용 가능한 현미경 기술을 통합하는 프로토콜을 제시합니다.

근접 결찰 분석에 의한 ER-미토콘드리아 접촉 부위에서 내인성 세포 기관 내 단백질 상호 작용의 시각화 및 정량화

여기서는 세포 초미세 구조와 관련된 희귀 단백질의 국소화를 조사하기 위한 도구로서 내인성 형광 표지를 기반으로 하는 최적화된 절편 상관 광전자 현미경을 위한 프로토콜을 제시합니다. 이 접근법의 힘은 바필로마이신 처리 없이 굶주린 세포에서 내인성 LC3의 초구조적 국소화에 의해 입증되었습니다.

On-Section Correlative Light-Electron Microscopy를 통한 내인성 LC3의 초구조적 국소화

당사는 살아있는 세포에서 소포체-미토콘드리아 접촉을 모니터링하기 위해 split-luciferase reassembly assay를 확립했습니다. 이 분석을 사용하여 화학적 처리 조건에서 HEK293T 세포에서 이러한 세포 간 결합의 수준을 정량적으로 측정하는 프로토콜을 설명합니다.

살아있는 세포에서 소포체-미토콘드리아 접촉을 측정하기 위한 Split-Luciferase 재조립 분석

이 프로토콜은 상관광과 전자 현미경을 사용하여 각각 mEosEM 및 APEX2로 표지된 미토콘드리아와 리소좀의 상호 작용을 시각화하는 메커니즘을 설명합니다.

Dual-color Correlative Light and Electron Microscopy for the Visualization of Interaction between Mitochondria and Lysosomes (미토콘드리아와 리소좀) 사이의 상호작용 시각화를 위한 Dual-color Correlative Light and Electron Microscopy

학습하세요 고정 세포에서 소포체와 미토콘드리아 상호작용을 근접 리가제이 분석법으로 시각화하고 정량화하는 방법을. 이 기술은 세포 대사 및 신호전달 연구에 활용됩니다.

소포체와 미토콘드리아의 상호 작용의 연구에 의해

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