Name: 낮은 밀도 차 해마 신경 세포 문화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-18T12:30:00.000+00:00
Duration: 17 min 46 s
Description: 배우세요 저밀도 해마 신경 세포 배양 방법을 통해 고해상도 영상 분석과 기능 검정이 가능한 성숙 뉴런을 얻는 기술입니다. 이 프로토콜은 신경과학 연구에 필수적인 순수한 뉴런 배양을 제공합니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

이 작품은 CIHR의 MOP-142209 TJS에 의해 지원되었다.

모든 실험 및 실험 동물을 사용하여 프로토콜 대학 매니토바의 동물 윤리위원회의 승인 및 동물 관리에있는 캐나다 협의회의 지침을 준수 있었다. 악기, 완충제 및 솔루션 1. 제조 <ol><li> 모든 절제 장비, 유리 파스퇴르 피펫, 피펫 팁, 필터 장치, 및 탈 이온수를 오토 클레이브에 의해 멸균한다. </li><li> 탈 이온수 및 필터 소독에 스톡 포도당 용액,을 20 % (1.1 M / V w) 준비한다. 4 ℃에서 보관하십시오. </li><li> 탈 이온수 및 필터 소독에서 100 mM의 피루브산 나트륨 용액을 준비한다. 4 ℃에서 보관하십시오. </li><li> 준비 10 % HBSS (10 배), 10 mM의 HEPES 및 100 U / ㎖ 페니실린 - 스트렙토 마이신 탈 이온수의 용액을 만들어 칼슘 및 마그네슘이없는 행크의 균형 잡힌 염 용액 (CMF-HBSS). 이하 1 ~ 2 개월 동안 4 ° C에서 보관하십시오. </li><li> 10 ㎎ / ㎖의 데 옥시 리보 뉴 클레아 제 I을 준비 CMF-HBSS에서 (DNase의)다음 필터링 소독하고 -20 ℃에서 보관. </li><li> (멸균 용액)에서 30 mM의 포도당 용액함으로써 신경교 최소 필수 배지 매체 (MEM)에, 95 U / ㎖ 페니실린 - 스트렙토 마이신, 10-15 % 소 혈청 성장 (BGS)을 준비한다. 주 : 프로토콜에 나타낸 세포 증식을 늦추기 위해 필요한 경우 5 % BGS의 용액을 사용할 수있다. 말 혈청 대신 BGS의 사용하지만, 각 배치로 인해 간 배치 변화에 사용하기 전에 테스트해야합니다 할 수있다. 이하 1 ~ 2 개월 동안 4 ° C에서 준비된 솔루션을 저장합니다. 많은 실험실 FBS를 사용하지만, 우리는 지속적으로 BGS의 폐해 성장 FBS에서와 같은 강력한 것을 관찰했다. BGS는 화학적 성분이 보충되는 소 태아 혈청으로부터 유도된다. 또한, BGS는 FBS보다 훨씬 더 경제적이다. </li><li> 용액함으로써 신경 세포의 성장 및 유지 매체 (로 Neurobasal-B27, NBG)를 준비 1X B27 보충제 및 500 ㎖로 Neurobasal 메디 0.5mm의 L- 글루타민음. 이하 1 ~ 2 개월 동안 4 ° C에서 보관하십시오. L- 글루타민은 성장 배지에서 더 안정한 것으로 제안되었다 루타로 치환 될 수있다. </li><li> MEM의 (살균 용액)에서 30 mM의 포도당 용액함으로써 매체 도금 뉴런 (멸균 용액으로부터), 1 mM 피루브산 나트륨, 10 % BGS를 준비한다. 이하 1 ~ 2 개월 동안 4 ° C에서 보관하십시오. </li><li> 1㎜의 시타 라빈 (아라-C)의 용액을 필터 및 소독을 준비한다. -20 ℃에서 1 mL의 부분으로 나누어 저장. </li><li> 100 mN의 필터 - 멸균 NaOH를 100mm의 APV의 용액을 준비한다. -20 ° C에서 보관하십시오. </li><li> 1 mg의 보레이트 완충액 / ml의 폴리 -L- 라이신, pH가 8.5 (50 mM의 붕산 및 붕사 12 밀리미터) 및 필터 소독 녹인다. -20 ° C에서 나누어지는 및 저장. 대신, 폴리 -L- 라이신, 하나는 세포 독성이 덜 수있다 폴리 -L- 오르니 틴을 사용할 수도있다. </li></ol> 2. 글 리아 문화 준비 <ol><li> 대뇌 피질의 아스트로 글 리아 세포 배양을 준비 <ol><li&gt; 출생 24 시간 이내에 쥐 새끼를 얻습니다. 를 마취시키다 얼음에 새끼를 놓습니다. </li><li> 70 % 에탄올로 새끼를 스프레이하고 목을 벨. </li><li> 15ml의 CMF-HBSS를 함유하는 얼음에 100mm의 접시 머리를 놓는다. </li><li> 두피 절단 두개골을 열고, 뇌간을 절단 한 후 3 ㎖ CMF-HBSS를 함유하는 얼음에 60mm 페트리 접시에 뇌를 전송함으로써 각각의 뇌를 해부. </li><li> 해마에서 대뇌를 분리하고 이들을 둘러싼 수막을 벗겨. 수막 섬유 아 세포에서 최소한의 오염을 확인하기 위해 적절한 예방 조치를 운동. 문화의 수막 섬유 아세포 성장을위한 아교와 경쟁하고 신경 세포의 건강에 유해 할 수 있습니다. 5 ㎖ CMF-HBSS를 함유하는 얼음에 60mm 페트리 접시에서 모두 대뇌 수집. </li><li> CMF-HBSS를 제거하고 해부 스프링 마이크로 가위를 사용하여 미분 가능한 한 수집 피질 조직을 말하다. </li><li> 들어온다 충분한 CMF-HBSS 추가PED 조직. 유리 파스퇴르 피펫을 사용하여 15 ㎖의 튜브에 조직 조각을 전송. CMF-HBSS를 첨가하여 12 mL의에 전량을 가지고. </li><li> 1.5 mL의 2.5 % 트립신 및 10 ㎎ / ㎖ DNase의 용액을 각각 추가한다. 12 분 동안 수욕에서 37 ℃에서 생성 된 혼합물을 인큐베이션. </li><li> 티슈를 유리 파스퇴르 피펫을 사용하여 10 ~ 15 회 연화 처리하고, 추가로 3 분 동안 37 ° C의 수조에서 부화. </li><li> 렌즈 용지 나 BGS 5 ㎖를 함유하는 50 ㎖ 튜브에 메쉬 필터를 통해 상청액을 필터. 이것은 해리되지 않은 조직의 덩어리를 제거하기위한 것입니다. 또한, 상업적으로 이용 가능한 세포 여과기를 사용합니다. </li><li> 나머지 조직 조각을 함유하는 튜브에 CMF-HBSS 2.5 % 트립신, 1.5 mL를 135 mL를 추가하고 상기 추가의 10 분 동안 수욕에서 37 ℃로 배양한다. </li><li> 한번 더 잔여 조직을 연화 처리하고, 초기 여과 액을 함유하는 50 ㎖ 튜브에 다시 현탁 필터. 다음, 린스 르BGS의 3 ㎖와 NS 종이. 최종 부피는 약 38 mL로해야한다. </li><li> 원심 분리기 (130)의 X g에서 6 분 동안 해리 아교 세포를 포함하는 현탁액. 조심스럽게 유리 파스퇴르 피펫을 이용하여 상층 액을 버린다. 하단의 펠렛 세포가 방해되지 않도록해야합니다. 펠렛의 바닥은 혈액 성분을 포함하는 약간 붉은 빛을 띤 나타납니다. </li><li> 펠렛의 적색 부분을 방해하지 않도록주의하면서, 새로운 튜브에 폐해 배지 1 ㎖에 아교 세포 이동. </li><li> 신경교 세포 해리 조합 재 부유 강아지 당 신경교 배지 2ml를까지 추가한다. 예를 들어, 10 새끼 사용한 후 부유 총 부피 20 ㎖ 것이다. </li><li> 새끼 당 75cm 2 세포 배양 플라스크를 준비한다. 각각의 플라스크에 18 mL의 예열 폐해 매체를 추가한다. </li><li> 전송 2 각 플라스크에 세포 현탁액 mL의 37 ° C, 5 % CO 2 인큐베이터에서 배양한다. </li><li> 하루가 지난 후에도, 20 ㎖의 폐해를 m으로 대체edium. 이 단계에서, 문화는 아교 및 기타 원치 않는 세포 유형의 혼합이다. </li><li> 나흘 세포를 파종 한 후, 적극적으로 비 성상 세포의 세포를 꺼 내려 플라스크를 흔들. 이 작업을 수행하려면, CMF-HBSS 한 번 플라스크를 헹군 다음 각 플라스크에 10 mL의 신선한 CMF-HBSS를 추가합니다. 적극적으로 5-10 번 플라스크를 흔들어 다음 CMF-HBSS를 대기음. CMF-HBSS 회 헹군 다음 20 ㎖를 추가 폐해 매체. 참고 :이 단계는 비 표적 세포 유형의 제거를 확인하는 것이 중요하며, 원하는 성상 세포의 손실이 발생하지 않아야합니다. </li><li> 세포가 합류 (그림 1) 때까지 일주일에 두 번 신선한 아교 매체로 교체하십시오. </li></ol></li><li> 냉동 아교 세포 <ol><li> 배양 물이 컨 플루 언트되면, 배지를 흡인하고 10 ㎖ CMF-HBSS로 세포 단층을 세척한다. </li><li> 각 플라스크에 0.25 % 트립신 / EDTA 10 ㎖를 첨가하고 3 분 동안 37 ℃에서 배양한다. </li><li> 탭 플라스크는 부드럽게 셀을 제거합니다. 1 mL의 BGS의 t 추가O 각 플라스크에 15 개 ㎖의 튜브에 세포 현탁액을 전송. </li><li> 6 분 동안 130 XG에서 튜브를 원심 분리기. 얻어진 상층 액을 제거한다. </li><li> 2ml의 폐해 배지에서 세포 펠렛을 재현 탁. </li><li> 아교 동결 배지 (1 부, 디메틸 설폭 사이드, 4 BGS 부품)을 준비한다. 플라스크 당 4 개 극저온 튜브 각각이 용액 0.5 mL를 넣고. </li><li> 각 바이알에 세포 현탁액 0.5 mL를 전송하고 밤새 -80 ° C에 냉동 절연 용기에 튜브를 삽입하여 서서히 세포를 동결. 하루가 지난 후에도 장기간 저장을 위해 액체 질소로 냉동 바이알 옮긴다. </li></ol></li><li> 도금 아교 세포를 부활 <ol><li> 플레이트 아교 세포 뉴런 문화 전날 1~2주. </li><li> 가하여 가온 신경교 매체 (10)와 한 50㎖ 튜브를 준비한다. </li><li> 2-3 분 동안 37 ℃의 수욕 신경교 1 냉동 바이알을 해동. </li><li> 10 ㎖ 폐해 배지를 함유하는 50 ㎖ 튜브에 바이알의 내용물을 이동. </li><li> 원심 분리기상청액 오프 5 분에서 130 XG 및 기음에 대한 E 튜브. </li><li> 20 ㎖ 폐해 매체 펠렛을 재현 탁. </li><li> 배양 접시 (60mm)의 각각에 3 mL의 신선한 배지 폐해를 추가 한 후 각 접시에 세포 현탁액 1 ㎖를 옮긴다. 37 ° C, 5 % CO 2 인큐베이터에서 배양 물을 인큐베이션. </li><li> 일주일에 두 번 세포를 공급. 세포 밀도가 50 % 합류도 전 신경 배양 일 도달하면, 아교 성장 속도를 늦추기 위해 5 % BGS 함유 폐해 매체로 전환. 70 % - 신경 세포 배양 용 아교 단층의 목적은 50 % 합류점이다. </li><li> 1-2 일 신경 세포 배양 전에 NBG 배지 아교 매체 (6 ㎖ / 접시) 대체. </li></ol></li></ol> 3. 커버 슬립 제조 <ol><li> 청소 및 파라핀 비즈의 준비 <ol><li> 실온에서 30 분 동안 초음파 처리들을 : (부식성주의 70 % 중량 / 중량), 농축 질산 커버 슬립을 담근다. 다른 실험실 f를했습니다운드, 그것은 유익 대신 상온에서 12-24 시간 동안 세라믹 랙에 70 % 질산의 커버 슬립을 배양. </li><li> 조심 기관 가이드 라인에 따라 지정 화학 퓸 후드에서 질산을 버린다. 커버 슬립을 탈 이온수로 3-5 회 헹군다. </li><li> (대안 적 방법에 따라 이동하는 경우), 탈 이온수의 커버 슬립을 담그고, 30 분 동안 다시 초음파 처리. </li><li> 탈 이온수를 제거하고 커버 슬립 또 다른 세 번 씻어. </li><li> 50 ㎖의 탈 이온수에 담그고 커버 슬립을 오토 클레이브에 의해 멸균들을. 대안으로, 6 시간 동안 오븐에서 225 ° C에서 커버 슬립 살균. 이 대체 방법을 사용하는 경우, 3.1.9 단계로 건너 뜁니다. </li><li> 멸균 후, 다음 단계를 위해 멸균 층류 후드로 커버 슬립을 전송. </li><li> 탈 이온수를 제거하고 100 % 에탄올을 20-30 mL로 헹군다. </li><li> 100 % 에탄올 20 ~ 30 mL의를 추가하고 커버 슬립을 전송하고100mm의 배양 접시에 에탄올. </li><li> 60mm 페트리 접시, 접시 당 4-5 커버 슬립에 커버 슬립을 전송 한 다음 접시의 가장자리에 커버 슬립을 기대어에 의해 공기 건조에 할 수 있도록 무딘 핀셋을 사용합니다. 에탄올이 증발되면, 표면에 커버 슬립 평면 누워. </li><li> 적합한 내열성 유리 병에 10g 파라핀 전송. 파라핀을 녹이고, 적어도 1 시간 동안 핫 플레이트상에서 약 150-200 ℃에서 그것을 유지한다. 파라핀은 가열되어야하는 최적 온도는 약간의 조정을 취할 수있다. 비 이상적인 온도는 파라핀 구슬의 정확한 크기를 생산 어려움을 초래할 수 있습니다. 용해 후 대기 기간은 액체에 걸쳐 일관된 온도를 확인하는 데 도움이됩니다. </li><li> (각 지점은 약 120 ° 떨어져있는) 각 커버 슬립의 가장자리 근처에 세 개의 지점을 만지지 빠르게 후 파라핀에 파스퇴르 피펫을 찍어합니다. 방울은 약 0.3 mm 높은 구슬과 DIAM에서 1.0 ~ 2.0 mm로 확고히 할 것이다eter는 커버 슬립의 뉴런 및 신경교 아래 단층 (도 2) 사이의 공간을 제공하는 기능을하며. </li><li> 30 분 동안 UV 광 아래에서의 요리를 소독 한 다음, 실온에서 알루미늄 박 및 저장소로 커버. 준비 커버 슬립 저장 1 개월까지 사용할 수 있습니다. 파라핀 비즈를 사용하기 전에 적어도 한 주 동안 커버 슬립을 준수 할 수 있어야합니다. 이 프로토콜의 나머지 단계에서 분리에서 파라핀을 방지 할 수 있습니다. </li></ol></li><li> 폴리 - L - 라이신과 코팅 Coverslips는 <ol><li> 파라핀 구슬 이전에 준비 커버 슬립을 포함하는 페트리 접시를 가져옵니다. </li><li> 각 커버 슬립의 표면을 붕산염 완충액 폴리 L 리신 200 μL를 첨가하고 용액을 실온에서 덮여 밤새 커버 슬립에 앉게. 코트 파라핀 비즈가 위치되는 것과 같은 표면. 제대로 청소되면, 폴리 -L- 라이신 쉽게 전파해야합니다커버 슬립의 표면을 커버한다. </li><li> 후 하루 2 시간 동안 각각 멸균 증류수에 담가들을 커버 슬립 번 씻는다. 최종 세척 후, 접시 당 신경 도금 배지 4 ㎖의 물을 대체. 없는 커버 슬립의 표면을 폴리 -L- 리신으로 코팅 된 후 건조되도록하는 것이 중요합니다. </li><li> 37 ° C, 5 % CO 2 인큐베이터에서 커버 슬립 함유 음식을 놓는다. 코팅 된 커버 슬립은 신경 세포 배양하기 전에 적어도 24 시간 동안 배양한다. 이는 신경 세포 배양을위한 주요 매체로 이루어집니다. </li></ol></li></ol> 해마와 도금 뉴런 4. 해부 <ol><li> (질 플러그 발견 한 날로부터 측정 된 배아 일 18-19) 임신 한 쥐를 얻 및 이소 플루 란 - 마취 잘린 또는 기타 승인 된 방법으로 안락사. </li><li> 70 % 에탄올로 쥐의 하부 스프레이하고 음부 죽로부터 절개복강 끝에 우. 오염을 방지하기 위해, 단지이 단계에서 피부를 통해 잘라주의해야합니다. </li><li> 70 % 에탄올로 다시 해부 악기를 씻어하고 자궁을 노출 복부 벽을 통해 잘라. 두 자궁 뿔을 제거하고 살균 100mm 배양 접시에 배치합니다. </li><li> 층류 후드의 나머지 단계를 수행합니다. 태아를 둘러싸고있는 자궁 막을 제거합니다. 이를 20 mL의 참살 CMF-HBSS를 함유하는 100mm 배양 접시에서 머리를 놓는다. </li><li> 뇌를 절개 즉시 얼음에 2ml의 CMF-HBSS를 함유하는 60mm 페트리 접시에 배치. 다음 단계에 대한 충분한 공간을 확보하기 위해 접시 당 2 ~ 3 뇌를 수집합니다. </li><li> 해부 현미경 대뇌 반구의 중심선에서 수막을 벗겨하고 해마를 해부하고 4.5 mL의 CMF-HBSS를 함유하는 60mm 페트리 접시에 배치. 해마는 초승달 모양의 struc로 구분 될 수 있습니다대뇌 반구의 내측 표면에, 한시간하고는 심실로 횡 접경로 제거하기 쉽다. </li><li> 15 ㎖의 튜브에 수집 된 해마 조직 및 CMF-HBSS를 옮긴다. 2.5 % 트립신 0.5ml를 추가 한 후 10 분 동안 37 ℃에서 배양한다. 이 완만하고 수율을 증가시킬 수 있기 때문에 파파인 대신 트립신을 사용할 수있다. </li><li> 조심스럽게 튜브의 하단에 방해받지 해마 조직을 떠나는 파스퇴르 피펫으로 트립신 용액을 제거한다. </li><li> 5 분 동안 37 ℃에서 인큐베이션하면서 천천히 5 ㎖ CMF-HBSS 회 조직을 세척 하였다. 두번째 세척 한 후, 조직을 CMF-HBSS의 충분한 부피를 첨가하여 적어도 5 ㎖를 전량을 가져온다. 최대 8 이상 10 새끼에서 해마가있을 경우 용액 CMF-HBSS를 첨가 할 수있다. </li><li> 조직 분리를위한 화재 광택 피펫의 두 가지 변종을 준비합니다. 하나의 변형의 끝은 피펫하지만 화재 - 연마 부드러워 가장자리 정상적인 직경이다. 다른 VARI개미 반감 선단 직경이다. 간단히 화염 소스 대각선 유리 파스퇴르 피펫의 선단을 노출 한 후 피펫 팁을 조사한다. <ol><li> 선단 에지가 평활화되었다거나 직경이 감소 될 때까지이 과정을 반복한다. 조직이 이러한 세포를 손상시키지 않고 단일 세포를 산출하기 위해 해리 될 수 있도록 최적의 직경을 찾아 실천하는 것이 중요하다. </li></ol></li><li> 매끄러운 가장자리 통상 유리 파스퇴르 피펫을 통해 제 10 패스하여 해마 조직을 연화 처리하고, 직경 감소와 피펫이어서 추가 5 내지 10 통과한다. 목표는 아니오 세포 또는 거의 조직 덩어리의 균일 한 용액을 제조하는 것입니다. </li><li> 혈구 또는 자동 세포 계수기를 사용하여 세포 농도를 결정한다. 두 반구에서 해마가 결합 될 때 통상, 강아지 당 80 만 내지 1.0 세포가 얻어진다. </li><li> 접시에 세포 현탁액의 충분한 양을 전송60mm 접시 당 300,000 세포의 도금 밀도를 얻을 수 평판 배지 4 mL의 폴리 -L- 리신 - 코팅 된 커버 슬립을 함유. 세포의 밀도는 의도 된 실험에 따라 10 만에서 50 만까지 다양 할 수 있습니다. </li><li> 3-4 시간 후, NBG 매체에 아교 세포를 포함하는 접시에 부착 된 커버 슬립 뉴런으로 옮긴다. 이는 신경 세포 도말 된면이 아래 아교 세포 층쪽으로 향하도록 할 것이다. 아교 접시 당 4-5 커버 슬립의 총을 추가합니다. </li><li> 2 ~ 3 일 도금 후, 아교 세포 성장을 체포 접시 당 5 μM의 최종 농도 아라-C 솔루션을 추가 할 수 있습니다. </li><li> 각 먹이에 새로운 배지 2.5 mL로 된 매체의 2 mL로 교체하여 일주일에 한 번 세포를 공급. 추가 여분 매체는 ​​시간이 지남에 증발을 보상하기 위해, 그리고 중간 부분 만이 아교 세포 배지의 일관된 조절을 위해 변경된다. 이러한 문화는 (적어도 한 달 동안 일반적으로 건강그림 3). 신경 생존은 100 μM의 최종 농도로 배양 배지에 APV를 첨가함으로써 개선 될 수있다. APV는 NMDA 수용체 길항제이며, 글루탐산 흥분 독성을 줄여 생존을 촉진합니다. </li></ol>

<ol><li>Banker, G. A., Cowan, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+hippocampal+neurons+in+dispersed+cell+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Rat hippocampal neurons in dispersed cell culture.</a> Brain Res. 126, 397-425 (1977).</li>
<li>Kaech, S., Banker, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culturing+hippocampal+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Culturing hippocampal neurons.</a> Nat Protoc. 1, 2406-2415 (2006).</li>
<li>Adamantidis, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optogenetics%3A+10+years+after+ChR2+in+neurons--views+from+the+community%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Optogenetics: 10 years after ChR2 in neurons--views from the community.</a> Nat Neurosci. 18, 1202-1212 (2015).</li>
<li>Ho, V. M., Lee, J. A., Martin, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+cell+biology+of+synaptic+plasticity%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The cell biology of synaptic plasticity.</a> Science. 334, 623-628 (2011).</li>
<li>Huganir, R. L., Nicoll, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AMPARs+and+synaptic+plasticity%3A+the+last+25+years%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">AMPARs and synaptic plasticity: the last 25 years.</a> Neuron. 80, 704-717 (2013).</li>
<li>Luscher, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+AMPA+receptor+cycling+in+synaptic+transmission+and+plasticity%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Role of AMPA receptor cycling in synaptic transmission and plasticity.</a> Neuron. 24, 649-658 (1999).</li>
<li>Varoqueaux, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroligins+determine+synapse+maturation+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Neuroligins determine synapse maturation and function.</a> Neuron. 51, 741-754 (2006).</li>
<li>Huettner, J. E., Baughman, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+culture+of+identified+neurons+from+the+visual+cortex+of+postnatal+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Primary culture of identified neurons from the visual cortex of postnatal rats.</a> J Neurosci. 6, 3044-3060 (1986).</li>
<li>Lester, R. A., Quarum, M. L., Parker, J. D., Weber, E., Jahr, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+6-cyano-7-nitroquinoxaline-2%2C3-dione+with+the+N-methyl-D-aspartate+receptor-associated+glycine+binding+site%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Interaction of 6-cyano-7-nitroquinoxaline-2,3-dione with the N-methyl-D-aspartate receptor-associated glycine binding site.</a> Mol Pharmacol. 35, 565-570 (1989).</li>
<li>Brewer, G. J., Torricelli, J. R., Evege, E. K., Price, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimized+survival+of+hippocampal+neurons+in+B27-supplemented+Neurobasal%2C+a+new+serum-free+medium+combination%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Res%22%5BJournal%5D)">Optimized survival of hippocampal neurons in B27-supplemented Neurobasal, a new serum-free medium combination.</a> J Neurosci Res. 35, 567-576 (1993).</li>
<li>Banker, G., Goslin, K. Rat hippocampal neurons in low-density culture. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGoslin%2C+K+%22Culturing+nerve+cells%22">Culturing nerve cells</a>. 2, 339-370 (1998).</li>
<li>Hanisch, U. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microglia+as+a+source+and+target+of+cytokines%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">Microglia as a source and target of cytokines.</a> Glia. 40, 140-155 (2002).</li>
</ol>

저자가 공개하는 게 없다.

배양 신경 세포의 &quot;샌드위치&quot;방법은 다른 곳에서 잘 설명 하였지만 2, 11, 그것을 채택하고자하는 연구자에 대한 불만으로 이어질 수 있습니다 만 텍스트를 설명하는 것은 매우 어려운 프로토콜에 걸쳐 여러 단계가있다. 아교 문화, 커버 슬립 준비 및 신경 세포의 문화 및 유지 보수 :이 방법은 세 가지 흐름으로 나눌 수 있습니다. 세 가지 준비 각각 염두에 보관해야합니다 높은 품질의 신경 세포 문화와 몇 가지 중요한 고려 사항에 대한 중요합니다. 신경 세포를 도금하기 전에, 아교 피더 층은 이상적으로 성상 세포의 균일 한 인구해야 50 내지 70 %의 합류 사이. 이는 아교 세포층에서 충분한 영양 지원을 보장합니다. astroglial 배양 ATTAC 느슨하게 다른 세포 형태, 특히 미세 아교 세포의 최소한의 오염을 갖는 것이 중요을 Hed 둥근 세포. 신...

뇌는 신경 세포의 복잡한 네트워크로 구성되어있다. 네트워크 동작 및 뇌 기능 개별 뉴런의 기여는 자신의 분자 조성 및 생리 학적 특성의 동요를 선택적으로 변경하여 조사 할 수있다. 개별 뉴런의 유전 및 화학 조작은 후자의 세포 이질성과 복잡성에 의해 방해 그대로 뇌 조직에 비해 배양 신경 세포에서 틀림없이 더 쉽다. 배양 뉴런은 잘 정의 축삭 및 수상 아버 개발 서로 광범위한 시냅스 연결을 형성한다. 성인 동물 또는 신경계의 기타 영역에서 신경 세포 배양이 가능하지만, 배아 해마 배양 자주 정의 피라미드 세포 집단 및 상대적으로 낮은 밀도 신경교 (1, 2)로 인해 바람직하다. 배양에 저밀도로 성장 해마 뉴런이다 특히 AME세포 내 현지화, 단백질 인신 매매, 신경 극성 시냅스 개발 연구에 네이블. 배양 신경 세포는 광범위 시냅스 3, 4, 5, 6 분 방법을 연구에 사용되었다. 출생 후 생존하지 않는 글로벌 유전자 삭제와 마우스의 신경 세포 배양 준비는 특정 유전자 (7)의 세포와 시냅스 역할을 공부에 특히 유용되고있다. 뇌에서와 같이 배양 된 해마 신경 아교 세포의 영양 지원에 따라 달라집니다. 이것은 그들의 문화를 복잡하게하고,이 지원이 공급하는 여러 가지 방법의 개발을 주도하고있다. 하나의 일반적으로 사용되는 방법은 교세포 8, 취득한 HIPP로부터 오염물 교세포를 허용하는 단일 층에 직접 신경 도금 포함ocampal 조직 증식 및 신경 세포 (9) 아래에 단일 층을 형성한다. 이 방법은 약간의 성공을 발견 하였지만, 결과 신경 세포 배양의 불순물 촬상 실험 불리하다. 신경 세포 배양의 일반적으로 사용되는 또 다른 방법은 전체 층 폐해 급지 아웃두고 대신 정의 된 성장 배지 (10)의 형태의 영양 지원을 제공하는 것이다. 여기, 우리는 &quot;샌드위치&quot;또는 신경 문화 2, 11의 &quot;은행&quot;방법을 설명합니다. 이 방법은 파라핀 왁스 비드로 분리 아교 세포 단층 위에 부유 커버 글라스에 해마 뉴런 도금 포함한다. 이 기본 아교 단일 층에서 영양 지원을 허용하면서 아교 세포를 오염없이 뉴런의 동질적인 인구의 장기 문화를 용이하게합니다. 신경 세포가 충분한 연령, 성숙도의 경우,신경 세포의 커버 슬립은-뒤집어 밖으로 아교 요리 및 이미징 또는 기능 분석에 사용할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>Dissection Instruments</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micro Dissecting Scissors</td><td>Roboz</td><td>RS-5910</td><td></td></tr><tr><td>Micro Dissecting Spring Scissors</td><td>Roboz</td><td>RS-5650</td><td></td></tr><tr><td>Micro Dissecting Spring Scissors</td><td>Roboz</td><td>RS-5605</td><td></td></tr><tr><td>Dumont Forceps</td> <td>Roboz</td><td>RS-5045</td><td></td></tr><tr><td>Dumont 겸자 (#PP)</td><td>Roboz</td><td>RS-4950</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Tissue Preparation</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Trypsin (2.5%)</td><td>Gibco</td><td>15-090-046</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA (0.25%)</td><td>Gibco</td><td>25-200-072</td><td></td></tr><tr><td>Swinnex 필터 홀더, 25&nbsp; mm</td><td>EMD Millipore</td><td>SX0002500</td><td>세포 여과기로 사용됩니다. 먼저 필터 및 오토클레이브</td></tr><tr><td>Isoflorane</td><td>Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td>로 조립하십시오.<td></td><td></td>CP0406V2</tr><tr><td>혈구계</td><td>Hausser Scientific</td><td>1492</td><td></td></tr><tr><td>등급 105 렌즈 청소 조직</td><td>GE Healthcare</td><td>2105-841</td><td>세포 여과기로 사용됩니다. 먼저 필터 홀더와 오토클레이브</td></tr><tr><td>유리 파스퇴르 피펫에 면 필터를 조립</td>합니다 <td>VWR</td><td>14672-412</td><td></td></tr><tr><td>HEPES (1 M)</td><td>Gibco</td><td>15-630-080</td><td></td></tr><tr><td>칼슘, 마그네슘, 페놀 레드가 없는 Hank's Balanced Salt Solution (HBSS, 10x)</td><td>Gibco</td><td>14-185-052</td><td></td></tr><tr><td>유리 파스퇴르 피펫</td><td>VWR</td><td>14672-380</td><td></td></tr><tr><td>소 췌장에서 추출한 Deoxyribonuclease I (Dnase)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>DN25-100mg</td><td></td></tr><tr><td>부탄 분젠 버너</td><td>Wall-Lenk Mfg. Co.</td><td>모델 65</td><td></td></tr><tr><td>원심분리기</td><td>Eppendorf</td><td>5810R</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</strong</td><td>>Comments</td></tr><tr><td>Tissue Culture</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL)</td><td>Gibco</td><td>15-140-122</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시(100mm)</td><td>Fisher</td><td>FB0875712</td><td></td></tr><tr><td>페트리 접시(60mm)</td><td>Fisher</td><td>FB0875713A</td><td></td></tr><tr><td>Horse Serum</td><td>Gibco</td><td>16050-122</td><td>BGS 대신 사용할 수 있지만 로트 간 변동으로 인해 각 로트를 테스트해야 합니다. 혈청의 열 비활성화를 권장합니다.</td></tr><tr><td>수산화나트륨</td><td>Fisher Scientific</td><td>S318-1</td><td></td></tr><tr><td>피루브산나트륨</td><td>시그마-알드리치</td><td>P2256</td><td></td></tr><tr><td>최소 필수 배지(MEM)</td><td>Gibco</td><td>11-095-080</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal 배지</td><td>Gibco</td><td>21-103-049</td><td></td></tr><tr><td>L-글루타민(200mM)</td><td>Gibco</td><td>25-030-081</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX 보충제</td><td>Gibco</td><td>35050061</td> NBG 배지 배양 접시(60mm)<td>에서 L-글루타민 대신 사용할 수 있음</td></tr><tr><td>Corning</td><td>, Inc</td><td>353002</td><td></td></tr><tr><td>배양 플라스크(75cm^2)</td><td>Greiner Bio-One</td><td>658170</td><td></td></tr><tr><td>시타라빈(Ara-C)</td><td>시그마-알드리치</td><td>C3350000</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-글루코스</td><td>시그마-알드리치</td><td>G8270</td><td></td></tr><tr><td>소 성장 혈청(BGS)</td><td>HyClone</td><td>SH3054103</td><td>사용하기 전에 열 비활성화를 권장합니다.</td></tr><tr><td>B27 보충제 (50x)</td> <td>Gibco</td><td>17-504-044</td><td></td></tr><tr><td>디메틸 설폭 사이드 (DMSO)</td> <td>시그마 - 알드리치</td><td>D8418-100ml</td><td></td></tr><tr><td>극저온 바이알</td><td>VWR</td><td>89094-806</td><td></td></tr><tr><td>DL-2- 아미노 -5- 포스 폰 펜 타노산 (APV)</td> <td>시그마 - 알드리치</td><td>A5282</td><td></td></tr> <tr><td>< 강한> 이름 < / 강한></td> <td>< 강> 회사 < / 강></td><td><>카탈로그 번호</td><td>코멘트</td></tr><tr><td>Coverslip 준비</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sodium tetraborate decahydrate (borax)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B9876-1KG</td><td></td></tr><tr><td>Poly-L-Lysine Hydrobromide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P2636</td><td></td></tr><tr><td>Histoplast 파라핀 왁</td>스 <td>피셔</td><td>22-900-700</td><td></td></tr><tr><td>중력 대류 오븐</td><td>VWR</td><td>89511-404</td><td>프로토콜에서 논의된 대체 커버슬립 세척 방법에 사용</td></tr><tr><td>초음파 수조(초음파 발생기)</td><td>Fisher Scientific</td><td>15337400</td><td></td></tr><tr><td>Nitric Acid</td><td>Anachemia</td><td>62786-460</td><td></td></tr><tr><td>세라믹 염색 랙</td><td>Thomas Scientific</td><td>8542E40</td><td>프로토콜에서 논의된 대체 커버슬립 세척 방법에 사용</td></tr><tr><td>커버슬립</td><td>Glaswarenfabrik Karl Hecht&nbsp; GmbH</td><td>1001/18</td><td>제조업체는 매우 중요합니다, 뉴런이 저품질 유리에 잘 부착되지 않기 때문에&nbsp;</td></tr><tr><td>붕산</td><td>시그마-알드리치</td><td>B0252</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Miscellaneous</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterile Syringe Filters</td><td>VWR</td><td>28145-477</td><td>BD 주사기와 함께 사용 필터 살균</td></tr><tr><td>주사기&nbsp;</td><td>BD</td><td>302832</td><td>Fliter 멸균 용 VWR 멸균 주사기 필터와 함께 사용</td></tr><tr><td>수조</td><td>Fisher Scientific</td><td>15-460-16Q</td><td></td></tr><tr><td>도립 현미경</td><td>Olympus</td><td>CKX41</td><td></td></tr><tr><td>15 mL 원추형 멸균 원심 분리기 튜브</td><td>ThermoScientific</td><td>339650</td><td></td></tr><tr><td>50 mL 원추형 멸균 원심 분리기 튜브</td><td>ThermoScientific</td><td>339652</td><td></td></tr></tbody></table>

낮은 밀도 차 해마 신경 세포 문화

Low-Density Primary Hippocampal Neuron Culture

배양 개별 신경 세포의 구조와 생리을 프로빙하는 능력은 신경 생물학 연구에 매우 중요하고 개별적인 세포 또는 정의 된 네트워크의 유전 화학적 조작 유연성을 허용한다. 그대로 뇌 조직에 비해 조작의 이러한 편의성은 감소 된 문화 시스템에 간단하다. 이 차 신경 세포의 분리 및 성장을위한 많은 방법이 존재하지만, 각각 자신의 한계가있다. 이 프로토콜은 아교 세포의 단층 위에 부유 커버 글라스에 저밀도 및 고순도 쥐 배아 해마 신경 세포를 배양하는 방법을 설명한다. 이 &#39;샌드위치 문화는&#39;기본 아교 단일 층에서 영양 지원을 허용하면서 뉴런의 인구의 독점적 인 장기 성장을 할 수 있습니다. 신경 세포가 충분한 연령, 성숙도의 경우, 신경 세포의 커버 슬립은 아교 요리의 아웃을 뒤집어 및 이미징 또는 기능 분석에 사용할 수 있습니다. 뉴런 g이 방법으로 rown은 일반적으로 몇 주 동안 생존하고 광범위한 아버, 시냅스 연결 및 네트워크 속성을 개발한다.

주 신경 세포 배양액의 &quot;샌드위치&quot;방법에있어서, 해마 신경 세포 (도 3) 파라핀 비드 (도 2)에 의해 분리 된 아교 세포 (도 1)의 침대에 성장한다. 이 신경 세포가 선택적으로 최소한의 아교 세포 오염 커버 글라스에 성장하지만, 조직 배양 접시에 성장 교세포에서 적절한 영양 지원을받을 것을 보장한다. 일반적으로, 뉴런&gt; 3주위한 배양 유지 및 그들의 일반적인 데포 스포 타우 및 MAP2 면역 각각 (도 4)에 의해 식별 잘 발달 축삭 및 수상 돌기로 광범위한 arborisation 개발 될 수있다. 성숙한 신경이 구획 시냅스 마커 Drebrin1 선택적 제이션에 의해 식별 시냅스 등뼈를 개발한다. 이 시냅스 쪽이 밀접하게 시냅스 소포 마커 Synapsin1 면역 염색에 의해 식별되는 시냅스 전문에 나란히 놓이는된다. 그만...

이 문서에서는 아교 세포 단층을 통해 반전 커버 글라스에 성장 저밀도 차 해마 신경 세포를 배양 프로토콜을 설명합니다. 신경 세포 및 아교 층 파라핀 왁스 비드에 의해 분리된다. 이 방법에 의해 성장 된 뉴런 고해상도 광학 이미징 및 기능 분석에 적합하다.

The ability to probe the structure and physiology of individual nerve cells in culture is crucial to the study of neurobiology, and allows for flexibility ...

본 프로토콜은 Gary Bunker 박사와 동료들에 의해 처음 발표되었으며, 신경세포를 글리아 필터 층 위에 부유시켜 배양함으로써 배아 해마 신경세포의 저밀도 및 고순도 배양을 가능하게 합니다. 이러한 결과는 오염된 글리아 세포가 거의 없는 상태에서 신경세포를 저밀도로 성장시킬 수 있기 때문에, 다른 해마 관련 연구 결과들과 차별화됩니다. 따라서 이 방법은 배양된 성숙한 신경세포의 고해상도 이미징 및 기능적 분석에 이상적입니다.본 프로토콜의 사후 숙성 과정은 새로운 생명체의 적응을 촉진할 것입니다. 절차 중에 설명하기 어려운 몇 가지 핵심 상태들이 존재하므로, 단계별로 안내해 드립니다. 이 프로토콜은 고품질의 일차 뉴런 배양에 필요한 세 가지 독립적인 개체군으로 구성됩니다. 이러한 과정에는 글리아 세포 배양, 커버스립 제작 및 코팅, 그리고 해마 신경 세포의 준비가 포함됩니다.우선, 서면 프로토콜에 설명된 대로 생후 초기 쥐의 피질 조직을 확보해야 합니다. 여기에서 직접적으로 보여주지는 않지만, 본 프로토콜의 후반부에 나오는 박리 단계는 피질 박리에 사용되는 단계와 거의 동일하다는 점에 유의하십시오. 이러한 이유로, 이후 비디오에서 보여줄 해마 박리 과정 중에 관련 단계들을 강조하여 설명하겠습니다.서면 프로토콜의 단계 6부터 시작하여, 수집된 피질 조직에서 HBSS를 제거한 다음 가위를 사용하여 조직을 가능한 한 잘게 다집니다. 다진 조직을 50 milliliter 원심 분리 튜브로 옮길 수 있을 만큼의 HBSS를 추가하고, HBSS를 더해 전체 부피를 12 milliliters로 맞춥니다. 2.5% trypsin과 10 milligram per milliliter DNA 용액을 각각 1.5 milliliters씩 추가하고, 튜브를 뒤집어 섞은 후, 결과 혼합물을 37 degree Celsius 항온수조에서 12분 동안 배양합니다.유리 파스퇴르 피펫을 사용하여 조직을 10~15회 분쇄한 다음, 항온수조에서 3분 더 배양합니다. 모든 조직 조각이 튜브 바닥에 가라앉았는지 확인한 후, 상층액을 5 mL의 BGS가 담긴 50 mL 원심분리 튜브에 여과하여 옮깁니다. 소화되지 않은 조직 조각이 남아 있는 튜브에 13.5 mL의 HBSS와 1.5 mL의 2.5% trypsin을 넣고, 뒤집어 섞은 다음 항온수조에서 10분 더 배양합니다.배양 후, 남은 조직을 10~15회 삼출하고, 이를 처음의 여과액이 들어 있는 튜브에 여과합니다. 다음으로, 3 mL의 BGS를 추가로 통과시켜 필터를 헹굽니다. 이 단계에서 여과액을 여러 개의 튜브로 나누어 펠렛 세포의 균형 맞추기와 재현탁 과정을 간소화할 수 있습니다.현탁액을 130 G에서 6분 동안 원심분리합니다. 원심분리 후, 혈액 성분의 존재로 인해 펠릿의 바닥 부분이 약간 붉게 보임을 확인하십시오. 상층액을 제거한 다음, 펠릿이 흐트러지지 않도록 주의하며 각 튜브에 glial medium 1 milliliter를 첨가합니다. 붉은색을 띠지 않는 각 펠릿 부분을 새로운 50 milliliter 원추형 튜브로 옮깁니다.결합된 조직을 재현탁하기 위해 새끼 한 마리당 최대 2 milliliters의 글리아 배지를 추가하고, 현탁액 2 milliliters를 75 centimeter squared 배양 플라스크에 담긴 37 degrees Celsius로 예열된 글리아 배지 18 milliliters로 옮깁니다. 플라스크를 37 degrees Celsius, 5%CO2 인큐베이터에서 배양합니다. 세포 파종 다음 날, 각 플라스크의 배지를 신선한 글리아 배지로 교체합니다.현재 단계에서 배양물은 성상교세포와 다른 비표적 세포 유형이 혼합된 상태임에 유의하십시오. 성상교세포가 아닌 세포 유형을 제거하려면, 세포를 파종한 후 약 4일 뒤에 플라스크를 강하게 흔들어주어야 합니다. 이를 위해 플라스크를 HBSS로 헹군 다음, 각 플라스크에 신선한 HBSS 10 milliliters를 넣고 각각 5~10회 세게 흔드십시오.HBSS를 흡입하여 제거하고, HBSS로 두 번 더 헹굽니다. 그런 다음 glial medium 20 milliliters를 첨가하고, 이전과 같이 플라스크를 인큐베이터에 넣습니다. 이 과정이 격렬하게 이루어지지만, 배양하려는 성상교세포는 플라스크 표면에 강하게 부착된 상태로 유지된다는 점에 유의하십시오.성상교세포 배양을 유지하려면 세포가 완전히 밀집될 때까지 일주일에 두 번 신선한 glial medium으로 배지를 교체하십시오. 세포가 완전히 밀집되면 서면 프로토콜에 기술된 대로 향후 사용을 위해 세포를 동결 보관할 수 있습니다. 글리아 세포는 서면 프로토콜에 기술된 대로 뉴런 배양 시작 최소 14일 전에 디쉬에 접종해야 합니다.커버슬립을 진한 질산에 담그고 실온에서 30분 동안 초음파 처리합니다. 진한 질산은 부식성이 매우 강하므로 주의하십시오. 일부 실험실에서는 세라믹 염색 랙을 사용하여 커버슬립을 질산에 하룻밤 동안 담가두는 방법을 선호하기도 합니다.기관 지침에 따라 화학 흄 후드에서 질산을 조심스럽게 폐기한 다음, 커버슬립을 탈이온수로 3회 헹굽니다. 커버슬립을 물에 담그고 30분 동안 다시 초음파 세척합니다. 그다음, 물을 제거하고 커버슬립을 다시 3회 헹굽니다.커버슬립을 50밀리리터의 물에 담근 후 오토클레이브로 멸균한다. 무균 층류 후드 내에서 물을 제거하고, 세척을 위해 에탄올 20~30밀리리터를 첨가한다. 에탄올 20~30밀리리터를 추가로 넣은 다음, 커버슬립과 에탄올을 100밀리리터 페트리 접시에 옮긴다.뭉뚝한 핀셋을 사용하여 염색된 커버글라스를 60 mL 페트리 접시에 접시당 4~5장씩 옮긴 후, 커버글라스를 접시 가장자리에 기대어 공기 중에서 건조시킵니다. 에탄올이 증발하면 커버글라스를 다시 수평 상태로 눕힙니다. 내열 유리병에 파라핀 10 g을 넣고 녹인 후, 약 150~200 °C로 유지합니다.최적의 온도를 맞추기 위해 약간의 조정이 필요할 수 있으며, 온도가 부적절하면 적절한 크기의 파라핀 발(paraffin feet)을 만드는 데 어려움이 있을 수 있습니다. 파스퇴르 피펫을 파라핀에 담근 후, 각 커버슬립의 가장자리 근처 세 곳에 빠르게 접촉시킵니다. 파라핀 방울은 높이 약 3~5 mm, 직경 1~2 mm의 구슬 형태로 응고되며, 이는 커버슬립 위의 뉴런과 그 아래의 글리아 단일층(glial-mono layer) 사이에 공간을 제공하는 역할을 합니다.파라핀 지지대가 부착된 미리 준비된 커버슬립이 들어 있는 디쉬를 준비합니다. 각 커버슬립 표면에 poly-l-lysine과 붕산염 완충액 200 µL를 첨가하고, 실온에서 덮개를 덮은 상태로 하룻밤 동안 그대로 둡니다. 코팅할 표면은 파라핀 비즈가 위치한 표면과 동일해야 합니다.적절하게 세척되었다면, poly-l-lysine이 커버슬립 표면을 덮도록 쉽게 퍼져야 합니다. 다음 날 아침, 커버슬립을 멸균수에 각각 2시간씩 두 번 담가 세척합니다. 마지막 세척 후, 물을 디쉬당 4 milliliters의 플레이팅 배지로 교체합니다.poly-L-lysine으로 코팅한 후 커버슬립의 표면이 마르지 않도록 하는 것이 중요합니다. 커버슬립 디쉬를 37 °C 인큐베이터에 넣으십시오. 코팅된 커버슬립은 뉴런 배양을 시작하기 전 최소 24시간 동안 인큐베이션해야 합니다.임신 18일 또는 19일째의 쥐를 준비하여 승인된 방법으로 안락사시킵니다. 쥐의 복부 아래쪽에 70% ethanol을 분무한 후, 치골 부위부터 복강 끝까지 정중선 절개를 실시합니다. 오염을 방지하기 위해, 이 단계에서는 피부만 절개하도록 주의하십시오.70% ethanol을 사용하여 해부 도구를 멸균한 후, 복벽을 절개하여 자궁을 노출시킵니다. 두 개의 자궁각을 제거하여 멸균 접시에 담습니다. 멸균 라미나 플로우 후드 내에서 태아를 둘러싸고 있는 자궁막을 제거한 다음, 태아의 머리를 절단하여 20 mL의 HBSS가 담긴 100 mm 페트리 접시에 넣습니다.뇌를 적출하여 즉시 얼음 위에 놓인 2 mL의 HBSS가 담긴 60 mm 페트리 접시에 넣습니다. 다음 단계를 위해 충분한 공간을 확보할 수 있도록 접시당 2~3개의 뇌만 수집합니다. 해부 현미경 하에서 대뇌 반구의 정중선으로부터 뇌수막을 제거합니다.다음으로, 해마를 절제합니다. 해마는 대뇌 피질 반구의 내측 표면에서 초승달 모양의 구조물로 구별할 수 있으며, 외측이 뇌실과 맞닿아 있어 쉽게 제거할 수 있습니다. 분리한 해마는 4.5 milliliters의 HBSS가 담긴 60 millimeter 페트리 접시에 넣고 얼음 위에 보관합니다.지금까지 수행한 단계들은 피질 박리 과정에도 동일하게 적용되나, 해마 대신 피질을 보관한다는 점이 다릅니다. 피질 박리의 경우, 다음 단계는 여기에서 보여주는 것처럼 피질을 뇌의 나머지 부분과 분리한 다음, 앞서 보여준 것과 같이 피질과 HBSS를 수집하는 것입니다. 모든 해마 조직을 HBSS에 수집했다면, 이를 15 milliliter 원심분리관으로 옮기십시오.2.5% trypsin 5 milliliters를 첨가한 후, 37°C에서 10분 동안 배양합니다. 튜브 바닥의 해마 조직이 흐트러지지 않도록 주의하며 파스퇴르 피펫으로 trypsin 용액을 조심스럽게 제거합니다. HBSS 5 milliliters를 조심스럽게 첨가하여 37°C에서 5분 동안 배양한 후, 다시 파스퇴르 피펫으로 제거하는 과정을 두 번 반복하여 조직을 세척합니다. 이때 바닥의 조직이 손상되지 않도록 주의하십시오.앞서 설명한 배양 단계가 진행되는 동안, 조직 해리를 위해 화염 연마된 피펫 두 가지 유형을 준비합니다. 이를 위해 유리 파스퇴르 피펫의 끝부분을 화염에 짧게 노출시킨 후, 피펫 끝의 상태를 확인합니다. 첫 번째 유형의 경우, 피펫 끝의 가장자리가 매끄러워질 때까지 이 단계를 반복하되, 직경은 변하지 않도록 합니다.두 번째 세척의 경우, 가장자리가 매끄러워지고 팁의 직경이 약 절반으로 줄어들 때까지 반복합니다. 세포가 손상되지 않으면서도 단일 세포로 해리될 수 있도록 하는 이상적인 직경을 찾기 위해 충분히 연습하는 것이 중요합니다. 두 번째 세척 후, 조직에 적당량의 HBSS를 첨가하여 총 부피를 5 milliliters로 맞춥니다.먼저 매끄러운 가장자리의 일반 피펫으로 해마 조직을 약 10회 통과시켜 분쇄한 다음, 팁 직경이 작은 피펫으로 5~10회 더 통과시킵니다. 이때의 목표는 조직 덩어리가 없거나 매우 적은 균질한 세포 현탁액을 얻는 것입니다. 혈구계수기(hemocytometer)를 사용하여 세포 밀도를 측정합니다.일반적인 수득량은 마리당 약 800,000에서 1,000,000개의 세포입니다. 의도한 실험에 따라 60 millimeter 디쉬당 100,000에서 500,000개의 세포 도말 밀도를 얻을 수 있도록, 4 milliliters의 도말 배지가 들어 있고 poly-l-lysine이 코팅된 커버슬립이 포함된 디쉬에 적절한 부피의 세포 현탁액을 옮깁니다. 디쉬를 37 °C, 5% CO2 인큐베이터에 넣습니다.3~4시간 후, 뉴런이 부착된 커버슬립을 글리아 세포와 NBG 배지가 들어 있는 디쉬로 옮깁니다. 이때 뉴런이 플레이팅된 면이 글리아 세포 층을 향하도록 아래쪽으로 놓아야 합니다. 글리아 디쉬 하나당 총 4~5개의 커버슬립을 넣습니다.플레이팅 2~3일 후, 글리아 세포의 성장을 억제하기 위해 디시당 최종 농도가 5 µM이 되도록 aerocele 용액을 첨가합니다. 매주 한 번씩 기존 배지 2 mL를 신선한 배지 2.5 mL로 교체하여 세포에 영양분을 공급합니다. 추가로 첨가된 배지는 시간이 지남에 따라 발생하는 증발량을 보충하기 위한 것입니다.글리아 세포에 의해 배지가 일관되게 컨디셔닝되도록 배지의 일부만 교체합니다. 이러한 배양물은 일반적으로 최소 한 달 동안 건강한 상태를 유지합니다. 뉴런은 4%paraformaldehyde로 고정시킨 후, 형광 이미징을 위해 1차 항체에서 배양하였습니다.Tau 및 MAP2 면역 염색에서 확인된 바와 같이, 이러한 뉴런들은 잘 발달된 축삭과 수지상 돌기를 통해 광범위한 분지화를 형성합니다. 성숙한 뉴런은 또한 Drebrin One의 선택적 국소화로 확인되는 시냅스 가시를 형성하며, 이는 synapse in one 면역 염색으로 확인된 시냅스 전 특수 구조와 밀접하게 마주 보고 있습니다. 이러한 일차 뉴런은 신호 전달, 뉴런의 극성, 세포 내 수송, 시냅스 발달 및 가소성 연구 등을 포함하여 뉴런과 시냅스의 기능적 및 구조적 연구에 매우 적합합니다.이 영상은 본 프로토콜의 몇 가지 핵심 단계들을 이해하고 정확하게 수행하는 데 도움을 줄 것입니다. 설명된 방법을 적절히 준수하면 광범위한 수지상 돌기 분지와 형태적 및 기능적으로 잘 발달된 시냅스를 가진, 건강하고 밀도가 높은 신경세포 배양 결과를 얻을 수 있습니다.

low-density-primary-hippocampal-neuron-culture

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

해부 및 개별 뇌 영역에서 세포의 성장은 세포와 생리적 매개 변수의 조사를 용이하게합니다. 우리는 혈청이없는 환경에서 신경 세포 - 풍부한 문화를 생산하는 주요 세포 culturing에 대한 방법을 설명합니다.

P0 신생아 쥐에서 Hippocampal 신경의 주요 문화

이 프로토콜은 electroporation과 문화 마우스 hippocampal 및 대뇌 피질의 뉴런을 통해 transfect, 해부하다하는 데 필요한 단계를 설명합니다. 장기 문화가 synaptogenesis 및 돌기 척추 분석 연구에 사용할 수 있지만 단기 문화는 축삭의 파생물과지도의 연구에 사용할 수 있습니다.

Nucleofection 및 배아 마우스 Hippocampal과 두피 뉴런의 주요 문화

우리는 고도로 피더 glial 세포 레이어를 사용하지 않고 태아 쥐 두뇌의 hippocampal 뉴런을 정화의 문화에 대한 프로토콜을 제공합니다.

태아 쥐의 Hippocampal 신경 세포의 분리 및 문화

이 비디오는 쥐 해마에서 뉴런을 배양하는 방법을 보여줍니다. 처음에 해마는 세포외 조직 기질을 분해하기 위해 효소 소화를 거칩니다. 그 후, 소화된 조직은 개별 뉴런을 분리하기 위해 기계적으로 파괴됩니다. 마지막으로, 이러한 뉴런은 신경교세포(glial feeder cell)에서 배양됩니다.

쥐 해마 뉴런을 배양하는 기술

이 비디오는 제어된 해동, neurobasal 배지로 희석, poly-L-lysine 코팅된 플레이트에 파종하는 것을 포함하여 냉동 보존된 배아 뉴런을 배양하는 방법을 보여줍니다. 후속 배양은 신경 세포의 성장과 유지를 지원합니다.

Generating a low-density primary neuroron culture from frozen embryonic neurons (동결된 배아 뉴런에서 저밀도 1차 뉴런 배양 생성)

이 비디오는 고밀도 뉴런 피더 층이 있는 상태에서 초저밀도 뉴런을 배양하는 방법을 보여줍니다. 그것은 다양한 밀도의 뉴런의 공동 배양을 확립하여 긴밀한 물리적 근접성을 보장합니다. 고밀도 뉴런이 분비하는 성장 인자는 뉴런의 생존과 성장을 돕고, 초저밀도 뉴런을 장기간 유지시켜 줍니다.

고밀도 뉴런 피더층(High-Density Neuronal feeder layer)을 이용한 초저밀도 뉴런 배양 생성

일차 분리된 배아 해마 신경 세포 배양은 뉴런 사멸과 관련된 신호 전달 메커니즘을 조사하는 데 유용합니다. 해마의 분리 및 해리 전에 배아를 성별화하면 남성과 여성을 분리하여 배양을 준비할 수 있으며, 이를 통해 연구자는 성별에 따른 세포 신호를 식별하고 조사할 수 있습니다.

허혈성 세포 사멸 경로를 연구하기 위한 성 계층화된 신경 배양

우리는 라벨 및 신생아 쥐의 유전형과 그들로부터 차의 연결을 문화를 생성하는 절차에 대해 설명합니다. 유전자형은 신속하고 효율적이며 신뢰성 및 자동 핵산 추출 할 수 있습니다. 이 neonatally 치명적인 마우스와 유전자형의 이전 완료를 필요로 그들의 문화에 특히 유용합니다.

동물의 신속한 유전자형은 뇌 신경 세포의 차 문화 구축에 이어

1차 해마 뉴런의 저밀도 배양은 일반적으로 신경 영양 인자를 공급하고 수명을 유지하기 위해 신경교 공급층을 필요로 합니다. 여기에서는 고밀도 뉴런 공급층(neuronal feeder layer)이 있는 곳에서 유리 커버슬립에서 초저밀도 뉴런을 배양하는 단순화된 방법을 설명하며, 이는 특정 뉴런 자율 메커니즘의 연구를 용이하게 합니다.

매우 낮은 밀도에 대한 단순화 된 방법, 장기 차 해마 신경 세포 문화

이 프로토콜은 1 차적인 신경 배양에서 단백질 공동 국소화를 공부하기 위하여 초해상도 현미경 검사를 채택하는 방법을 보여줍니다.

1차 뉴런에서 단백질과 시냅스 마커의 공동 국소화를 연구하는 초해상도 이미징

바로 사용할 수있는 냉동 뉴런은 시냅스 기능을 평가하기위한 강력한 도구입니다. 여기에서는 96웰 플레이트를 사용하여 냉동 재고에서 쉽게 추출한 저밀도 1차 배양을 소개합니다.

배아 해마 뉴런의 냉동 재고를 사용한 쉽고 재현 가능한 저밀도 1차 배양

배우세요 저밀도 해마 신경 세포 배양 방법을 통해 고해상도 영상 분석과 기능 검정이 가능한 성숙 뉴런을 얻는 기술입니다. 이 프로토콜은 신경과학 연구에 필수적인 순수한 뉴런 배양을 제공합니다.

낮은 밀도 차 해마 신경 세포 문화

더 많은 동영상 탐색