Name: 심장 기능의 연구에 대한 해부와 벌 꿀 지느러미 선박의 관측 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 52 s
Description: 배우세요 꿀벌 심장 기능 관찰을 위한 해부법과 심장 조절제 적용 기술을 이용한 곤충 생리학 연구 방법입니다. 이 기술은 수광충 건강 연구에 활용됩니다.

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저자는 Jeffrey Bloomquist 박사와 Daniel Swale 박사의 기술적 의견과 제안에 감사드립니다. 이 프로젝트는 버지니아 공대의 곤충학과와 농업 및 생명 과학 대학에서 부분적으로 자금을 지원했습니다.

1. 수집 및 시험 과목의 준비 <ol><li> 식민지에서 꿀벌의 해당 번호를 수집합니다. 주 : 필요한 수의 크기와 실험의 범위뿐만 아니라, 조사원의 기술뿐만 의존한다. 두 치료 그룹은 그룹 당 10 벌의 원하는 샘플 크기가있는 경우 예를 들어, 합리적으로 숙련 된 연구자가 실패 해부을 설명하고 득점 20 유용한 동영상을 끝내고 적어도 30 벌을 수집 할 수 있습니다. </li><li> 수집 및 절개 사이를 통과하는 시간을 최소화한다. 주 : 꿀벌이 일전 박리에 대해 실험에 수납 할 수 있지만, 해부의 성공률 (해부 등쪽 용기 안정적인 심박수를 유지할 가능성이 IE) 시간에 대하여 감소하는 것으로 관찰되었음을 꿀벌은 멀리 식민지에서 수용된다. <ol><li> 실험실에 보관하면서 물과 음식의 소스와 꿀벌을 제공합니다. 엑사에 대한mple 최소한 (이보다 6 시간의 기간에 충분하다) 물 수크로오스 용액 (V / w) 50 %에 대한 액세스를 제공한다. 오랜 기간 동안, 꿀벌은 꿀에 대한 액세스를 제공합니다. </li><li> 약 32 ° C 60-80 %의 상대 습도의 온도에서 랩 하룻밤 하우스 꿀벌은 스트레스를 감소시키고 탈수를 방지 할 수 있습니다. </li></ol></li><li> 이전 해부에, 처리에 도움을 간략하게 벌을 마취. 주 :이 해부의 성공률을 감소시키고 처리량을 감소시킬 수있다. <ol><li> 얼음에 그들을 배치하거나 그냥 충분히 처리에 도움이하기 위해 이동을 감소하기위한 냉장고에 하나 꿀벌을 진정. </li><li> 또는 간단히 처리에 도움이하기 위해 CO 2에 꿀벌을 노출. 참고 : 감기에 확장 노출 해부의 성공률을 감소시킬 수있다. 특별 또는도 해부의 성공 확률을 줄일 수 CO 2 노출을 반복했다. </li></ol></li></ol> 2. 해부지느러미 복부 벽의 참고 : 꿀벌 해부의 시간에 살아 있어야한다. <ol><li> 집게 및 / 또는 미세 절제 위, 제거 다리와 날개를 사용하여 복부의 절개를 용이하게한다. 작은 비커 또는 해부 사이에 악기를 세척하기위한 목적으로 인근 증류수로 채워진 유사한 용기를 보관하십시오. </li><li> 집게로 꿀벌을 억제하면서, 제 1 및 제 2 tergites의 등쪽 복벽을 따라 횡 방향으로 절단하기 위해 미세 절제 가위를 이용 (도 1 참조). </li></ol><img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/55029/55029fig1.jpg" /> 그림 1 : 꿀벌의 복부 지느러미 볼 수 있습니다. 빨간 선으로 표시된 바와 같이 초기 절개, 제 1 및 제 2 tergites 사이에해야한다. 스케일 바 = 1mm. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55029/55029fig1large.jpg" target="_blank">그녀를 클릭하세요</a>전자는이 그림의 더 큰 버전을 볼 수 있습니다. <ol start="3"><li> 가볍게 집게 제 tergite의 후방 모서리를 파지하는 동안 바늘의 초기 절개에서 벌의 각각의 측면을 따라 길이 방향으로 절단 (도 2 참조). 위장관 천공 방지하기 위해 절단시주의하십시오. </li></ol><img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/55029/55029fig2.jpg" /> 그림 2 : 꿀벌의 복부의 측면보기. 적색 선으로 나타낸 바와 같이 두번째와 세번째 절개는 복부 쪽 함께 이루어져야한다. 스케일 바 = 1mm. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55029/55029fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <ol start="4"><li> 미세 집게의 두 번째 세트 가위를 교환하고주의 깊게 나머지 오에서 지느러미 복부 벽을 분리하도록 활용복부 바. 조심스럽게 바늘과 지느러미 복부 벽에 부착 된 상태로 유지 위장관의 일부를 제거합니다. 내용이 지느러미 용기의 시각화를 방해 코트 복벽을하고 같이 장을 파열하지 마십시오. </li></ol><img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/55029/55029fig3.jpg" /> 그림 3 : 지느러미 용기의보기. 창자와 바늘이 제거되고 나면, 지느러미 용기는 해부 등의 복부 벽의 중간 선을 따라 볼 수 있습니다. 스케일 바 = 1mm. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55029/55029fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <ol start="5"><li> 지느러미 용기 볼 수 있도록 카메라 밑의 원하는 방향으로 지느러미 복벽을 배열 (도 3 참조). 초과 AB를 멀리 트림하는 미세 절제 가위 활용지느러미 용기의 시각화를 방해 dominal 벽. 제대로 자리 잡고 때 지느러미 복부 벽의 형태는 얕은 컵이나 그릇과 유사합니다. <ol><li> 지느러미 선박이 꿀벌의 후퇴 한계 복부 세그먼트로 확장되지 않기 때문에, 지느러미 용기의 시각화를 개선하기 위해 최종 tergite를 제거합니다. </li></ol></li><li> 조정 볼륨 마이크로 피펫을 활용, 생리적 조건을 유지하고 지속적으로 심장 박동을 촉진하기위한 등장 성 용액 10 μL와 지느러미 선박을 커버합니다. 주 : 권장 해결책이 분기 강도 링거 용액 (0.120 g / 리터, 칼슘 클로라이드, 0.105 g / L 염화칼륨, 0.050 g / L 중탄산 나트륨, 및 2.250 g / L 염화나트륨) 안정을 촉진하는 것으로 밝혀졌다, 연속 하트 비트. </li></ol> 3. 관측 및 심박수의 변조 <ol><li> 안정적이고 지속적인 심장 박동이 달성 될 때까지 등의 용기는 그대로 앉아 허용(일반적으로 300 초 이내). 참고 : 하트 비트는 등의 용기의 리듬 수축으로 가시화된다. 처음에는 꿀벌이 마취 된 특히, 하트 비트 수없는 것으로 나타날 수 있지만, 마음은 보통 몇 분 동안 등장 성 용액에 휴식 후 박동을 다시 시작하고 시간 동안 구타를 계속할 수 있습니다,이 용액에 목욕을 유지 제공. </li><li> 분 (BPM) 당 비트 수의 측면에서 심장 박동수를 측정한다. <ol><li> 60 초의 시간 동안 관찰 수축의 수를 기록한다. 이 과정을 촉진하기 위해 손 집계 카운터 및 타이머를 사용합니다. </li></ol></li><li> 전과 cardiomodulatory 화합물로 처리 한 후에 관찰 BPM을 기록하여 심박수의 변화를 측정한다. 주 : 시간은 시험되는 화합물에 따라 달라질 수 심장 박동수에 영향을 관찰하기 위해 필요하지만, 심박수의 변화는 일반적으로 분 이내에 관찰 할 수있다. <ol><li> 직전 기준 심박수를 결정어떠한 시험 화합물의 첨가. 주 : 치료 후 심박수는 일반적으로 90 내지 120 초 후에 결정될 수있다. </li><li> 지느러미 용기를 목욕하는 데 사용되는 같은 등장 성 용액에 화합물을 용해하여 잠재적 cardiomodulators (예를 들면, 옥토 파민)을 준비합니다. </li><li> micropipetter를 이용하여 지느러미 용기 주변의 용액에 시험 화합물을 추가한다. </li></ol></li><li> 높은 정확도 및 높은 처리량의 경우, 각 시험 대상의 비디오 녹화를 만든 다음 나중에 심장 박동의 점수에 동영상을 사용합니다. 참고 :이 동영상의 거의 연속 생산을 촉진하기 위해 해부를 비틀 수있는 단일 조사를 할 수 있습니다. 비디오를 녹화 할 경우, 최소 권장 길이는 시험 화합물과 약 240 초 60 초 마크에서 추가되는 것입니다. 이 조사는베이스 라인 심박수 다음 후 처리 심박수 120 초를 기록하는 또 다른 60 초 창을 처치 60 초 창이 있는지 확인합니다치료 후. </li></ol>

<ol><li>Klowden, M. J. Circulatory Systems. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKlowden%2C+MJ+%22Physiological+Systems+in+Insects%2C+3rd+Edition%22">Physiological Systems in Insects, 3rd Edition</a>. , 3rd, 365-413 (2013).</li>
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</ol>

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여기에 제시된 프로토콜은 꿀벌 심박수에 미치는 영향에 대해 약리학적 화합물을 테스트하는 간단하고 효과적인 접근 방식을 제공합니다. 살아있는 곤충의 복부 신경줄을 절개하거나5 등쪽 혈관을 노출시킬 때 복부 신경줄을 해부하는 이전 실험에서 관찰된 바와같이7, 중추 신경계 조절의 상실은 안정적인 저주파 심장 박동을 초래합니다. 박동 빈도가 낮기 때문에 조사자는 섬세하거나 값비싼 기기에 의존하지 않고도 심박수를 육안으로 평가할 수 있습니다. 입증된 바와 같이, 용매 DMSO는 등쪽 혈관을 목욕시키는 데 사용되는 등장성 용액을 통해 전달하기 위해 약리학적 제제를 용해하기 위해 저농도로 사용될 수 있습니다. 또한, 이전에 꿀벌에서 심장 촉진제로 작용하는 것으로 나타난 무척추동물 신경조절제 옥토파민을 사용하여 이 방법으로 심박수를 가속화할 수 있습니다7. 이 프로토콜은 심박수의 변화를 측정하기 위해 설계되었지만 수축 패턴의 변화와 같은 심장 박동의 다른 보다 질적인 특성을 관찰하는 ...

이 방법의 전반적인 목표는 연구자 빠르고 쉽게 관찰 및 약리 에이전트가 꿀벌의 심박수에 미치는 영향을 정량화 할 수 있도록하는 것입니다. 꿀벌은 다른 곤충처럼 hemocoel로 알려진 체강, 전반에 걸쳐, 체액, 혈액의 곤충 해당하는 발신 개방 순환 시스템을 가지고있다. 체액의 순환 영양분 면역 인자 폐기물뿐만 아니라 신경 호르몬 및 다른 시그널링 분자 (1)의 전송을 위해 필수적이다. 순환은 곤충의 지느러미 중간 선뿐만 아니라 액세서리 타악기 기관을 따라 연장 등의 용기에 의해 촉진된다. 지느러미 용기,이 기능적으로 별개의 섹션으로 나누어 복부에 심장 및 흉부와 머리에 대동맥 지정됩니다. 흉부와 머리를 향해 심장 펌프 체액에 전파 수축, 액세서리 박동 기관 사지에 체액의 흐름을 보장하면서. <p클래스 = &quot;jove_content는&quot;&gt; 곤충 심장 기능은 곤충의 크기 생리학 또는 생명 단계에 따라, 다양한 방법을 이용하여 관찰 될 수있다. 유충 이하 곤충의 심장 박동을 관찰하기위한 일반적인 방법은 생체 내에 촬상이 사용된다. 그것은 명확히 복벽을 통해 척수 용기를 확인하기 어려울 수 그러나,이 방법은 성인 꿀벌 덜 유용하다. 곤충 포함 꿀벌 다양한 심박수를 기록하는 방법은 확립 심장 맥동 3,4 검출하는 곤충의 외부에인가 서미스터를 이용한 온도 측정 접점의 사용이다. 성인 꿀벌 심박수 또한 온 저항 신호 4,5-를 측정하는 전기 생리 학적 기술을 사용하여 기록되었다. 이 방법은 심장 다음 동물에 전극의 삽입 및 하트 비트 (4)를 기록하는 임피던스 변환기의 사용을 필요로한다. 마찬가지로, 심전도은 detec하는데 사용되어왔다심장에 의해 생성과 심장 활동 (6)의 변화를 관찰하기 위해 꿀벌의 비디오 녹화와 결합 된 전기 신호에서 t. 이러한 접근 방식에 대한 뚜렷한 장점은 심장 박동이 아니라 주제에 생리적 반응의 전체 범위의 가용성을 보장하는 데 도움이 해부 표본,보다, 손상되지 않은, 살아있는 꿀벌에서 평가된다는 점이다. 이러한 방식의 문제점은 피사체 심박수를 변경할뿐만 아니라 약학 제제를 테스트 할 때, 적절한 전송 방법을 결정하는 수 밖에 변수 및 자극을 제한 할 필요가 고정화 또는 마취 회계를 포함한다. 꿀벌 심장 활동을 연구에 사용 된 또 다른 접근은 부분적으로 강제 변위 센서 (7)를 사용 등쪽 혈관 수축이어서, 심장을 노출 측정하기 위해 곤충 해부한다. 이 프로토콜에서, 마음은 계속 실행 생리 식염수 및 테스트 공동으로 목욕mpounds 피사체 7 응용 프로그램이 용액에 용해 될 수있다. 이 방법은 이들 전술 사이에 상당한 차이가 복부 신경 코드는 중추 신경계는 심장 박동 조절 5에서 재생되었음을 나타내는 역할을 제거하는 제거된다는 것이다. 그 결과, 일반적으로 매우 불안정하다 기준선 하트 비트가 훨씬 낮은 주파수에서 안정 및 진폭보다 전형적으로 살아있는 곤충 5,7-에서 관찰된다는 것이다. 어떻게 이들 모든 방법은 공통점을 실시하기 위하여, 전문이 일정 수준에 더하여, 고도의 전문 종종 고가의 장비를 필요로한다는 것이다. 아마도 가장 큰 단점은 이들 접근법 중 어느 것도 특히 이러한 잠재적 cardiomodulatory 화합물의 라이브러리를 스크리닝 피험자 다수시키는 테스트 실험에 적합하지된다는 것이다. 여기에 설명 된 접근 방법의 가장 큰 장점단순이다. 프로토콜은 작은 설치 공간을 필요로 마스터 비교적 용이하고, 단지 최소한의 금융 입력이 필요하다. 상기 방법은 몇몇 꿀벌 몇몇 수술 도구, 등장액보다 조금 더 필요로하고, 디지털 현미경, 디지털 카메라 전통적인 현미경 하나. 꿀벌 지느러미 용기를 시각화하는 해부하고, 디지털 비디오는 이전과 약리 에이전트와 치료 후 심장 박동을 기록하는 데 사용됩니다. 비디오 기록은 심박수의 변화를 관찰하기 위해 실제로 필요한 것은 아니지만 크게 처리량을 증가 (즉, 주어진 시간에 처리 할 수있는 환자 수). 조사관은 한 번에 동영상의 큰 숫자를 기록하고 나중에 더 편리한 시간에이 동영상을 득점하여 효율성을 극대화 할 수 있습니다. 이 방법의 또 다른 장점은 비디오 연구자가 득점 프로세스가 중단되어야한다, 시작 및 V에 대한보다 쉽게 ​​할 수 있다는 것입니다iewer은 바이어스를 감소시키기 위해 처리를 멀게한다.

<table><tbody><tr><td>Dino-Lite Edge 디지털 USB 현미경</td><td>Dino-Lite</td><td>AM4815ZT</td><td>모든 디지털 현미경 또는 이와 유사한 설정으로 충분합니다</td></tr><tr><td>현미경 스탠드</td><td>Dino-Lite</td><td>RK-10</td><td>디지털 현미경에 적합한 모든 스탠드</td></tr><tr><td>디지털 현미경에 필요한</td><td>노트북 또는 PC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>미세 해부 가위(Vannas, 8cm, 직선, 5mm 블레이드)</td><td>세계 정밀 기기</td><td>14003</td><td>마이크로디스해부에 적합한 유사한 가위는</td></tr><tr><td>마이크로디스해부 펜치, 10.2 cm, 각도 (2 쌍)</td><td>월드 정밀 기기</td><td>504482</td><td>마이크로디스해부에 적합한 유사한 펜치로 충분할 것입니다</td></tr>. <tr><td>링거스 솔루션 1/4 강도 정제&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>96724-100TAB</td><td></td></tr><tr><td>해부 트레이</td><td></td><td></td><td>미세해부에 적합한 모든 표면</td></tr><tr><td>단일 채널 10 &마이크로; l 피펫</td><td></td><td></td><td>10 &micro를 정확하게 전달할 수 있는 모든 장치; l 부피</td></tr><tr><td>피펫 팁</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>작은 비커 또는 물</td><td></td><td></td>통 <td>피험자 사이에 기구를 헹구는 데 사용</td></tr><tr><td>핸드 집계 카운터</td><td>Office Depot</td><td>295033</td><td>유사한 제품으로 충분합니다</td></tr><tr><td>타이머</td><td>Office Depot</td><td>644219</td><td>유사한 제품으로 충분합니다</td></tr><tr><td>탈이온수로</td><td></td><td></td> <td>충분합니다.Ringers 용액 및 헹굼 기구의 준비</td></tr></tbody></table>

심장 기능의 연구에 대한 해부와 벌 꿀 지느러미 선박의 관측

Dissection and Observation of Honey Bee Dorsal Vessel for Studies of Cardiac Function

유럽 꿀벌인 Apis mellifera L.은 꿀을 생산하고 작물 수분 서비스를 제공하는 것으로 유명한 귀중한 농업 및 상업 자원일 뿐만 아니라 기억과 학습, 노화 등을 연구하는 데 사용되는 중요한 모델 사회적 곤충입니다. 여기에서는 곤충에서 심장 역할을 하는 꿀벌의 등쪽 혈관을 시각화하기 위해 꿀벌의 등쪽 복벽을 해부하기 위한 자세한 프로토콜에 대해 설명합니다. 성공적으로 해부하면 적절한 조건에서 장기간 동안 일정한 심장 박동을 유지할 수 있는 기능적인 심장이 드러날 것입니다. 이를 통해 조사자는 등쪽 혈관에 심장 조절 화합물을 적용하여 심박수를 조작할 수 있습니다. 디지털 현미경 또는 디지털 카메라가 장착된 현미경을 사용하여 조사자는 테스트 화합물로 치료하기 전과 후에 등쪽 혈관을 비디오로 녹화할 수 있습니다. 그런 다음 치료 후 심박수의 변화와 심장 박동 패턴의 변화를 결정하기 위해 사용자에게 편리한 시간에 비디오의 점수를 매길 수 있습니다. 이 프로토콜의 장점은 설치 비용이 상대적으로 저렴하고, 배우기 쉬우며, 공간이나 장비가 거의 필요하지 않고, 수행하는 데 시간이 거의 걸리지 않는다는 것입니다.

이 프로토콜을 이용하여 테스트 될 수있는 약리학 적 활성 성분의 대부분은 물에 용해되지 않기 때문에, 이는 시험 화합물이 등쪽 용기 목욕 사용 등장액을 통해 전달 될 수 있도록 신뢰성있는 용매를 가질 필요가있다. 디메틸 설폭 사이드 (DMSO)는 일반적으로 동물 8 실험 약물 및 다른 화합물을 전달하기위한 수단으로 사용되는 용매이며, 꿀벌 심장 활동 9 농약의 효과를 조사 연구에서 이러한 목적을 위해 성공적으로 사용되어왔다. 따라서, DMSO는 처음 cardiomodulatory 활동을 테스트 할 것을 요구하는 등의 용기에 시험 화합물을 전달하기위한 잠재적 인 차량으로 선정되었다. 이 프로토콜에서, 해부 등의 용기는 처음 분기 강도 링거 용액 10 μL에서 목욕을 한 후 심장 박동이 시험 화합물을 추가하기 전에 결정된다. 시험 화합물은 아칸소전자는 분기 강도 링거 용액에 용해 DMSO 10 μL에 알려진 농도로 전달하고 지느러미 ...

꿀벌과 다른 곤충의 복부 등쪽 혈관은 포유류의 심장과 기능적으로 동등한 역할을 하며 영양분 운반, 노폐물 제거, 면역 기능 등에 중요한 역할을 합니다. 여기에서는 꿀벌 심박수의 시각화 및 약리학적 조작을 위한 프로토콜에 대해 설명합니다.

The European honey bee, Apis mellifera L., is a valuable agricultural and commercial resource noted for producing honey and providing crop pollination ...

이 프로토콜의 전반적인 목표는 등쪽 혈관에 심장 조절제를 직접 적용하여 발생하는 꿀벌 심박수의 변화를 관찰하는 것입니다. 이 방법은 곤충 생리학, 특히 꽃가루 매개자의 건강과 관련된 질문에 대한 주요 질문에 답할 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 단순성으로 비용 효율적이고 수행하기 쉽다는 것입니다.식민지에서 적절한 수의 꿀벌을 수집합니다. 신중한 조치는 실패한 해부를 설명하기 위해 50%의 잉여금을 포함하는 것인데, 이는 숙련된 조사자조차도 계획을 세워야 합니다. 실험실에 있는 동안 꿀벌에게 물과 먹이를 제공하십시오.주거 시간이 6시간 미만인 경우, 최소한 50% 자당 용액에 대한 접근을 제공하십시오. 더 오랜 기간 동안 꿀을 섭취할 수 있도록 하십시오. 약 섭씨 32도, 상대 습도 60-80%에서 하룻밤 동안 꿀벌을 수용합니다.갓 채취한 꿀벌은 해부가 더 쉬우므로 가능한 한 빨리 해부를 진행하십시오. 해부하기 전에 꿀벌을 이산화탄소에 잠시 노출시켜 움직임을 줄일 수 있을 만큼만 꿀벌을 마취합니다. 마취의 깊이는 박리를 더 어렵게 만들 수 있으므로 가능한 한 적은 가스를 사용하십시오.꿀벌은 해부 시점에 살아 있어야 합니다. 시작하려면 집게 또는 미세 해부 가위를 사용하여 다리와 날개를 제거합니다. 각 조작 후에는 도구를 증류수로 헹굽니다.다음으로, 집게로 꿀벌을 제지하고 가위를 사용하여 첫 번째와 두 번째 tergites 사이의 등쪽 복벽을 따라 측면으로 자릅니다. 그런 다음 집게로 두 번째 tergite의 뒤쪽 가장자리를 가볍게 잡고 초기 절개 부위에서 침까지 꿀벌의 양쪽을 따라 세로로 조심스럽게 자릅니다. 소화관에 구멍을 뚫지 마십시오.다음으로, 가는 집게를 사용하여 등쪽 복벽을 복부의 나머지 부분과 조심스럽게 분리합니다. 그런 다음 침을 부드럽게 제거하고 등쪽 복벽에 붙어 있는 소화관 부분을 조심스럽게 제거합니다. 장의 내용물을 방출하면 등쪽 혈관의 시각화를 가릴 수 있으므로 방출하지 마십시오.이제 등쪽 혈관의 시각화를 개선하기 위해 최종 turgite를 제거합니다. 다음 단계는 등쪽 혈관을 볼 수 있도록 단계를 조정하고 시야를 방해하는 과도한 복벽을 제거하는 것입니다. 등쪽 복벽의 모양은 적절하게 배치되었을 때 얕은 컵이나 그릇과 비슷해야 합니다.phosyiological 조건을 유지하기 위해 권장되는 등장성 용액 10마이크로리터로 등쪽 혈관을 덮고 등쪽 혈관의 시각화를 방해하는 남아 있는 막을 제거합니다. 등장성 용액을 추가하면 느슨한 막이 떠서 등쪽 혈관의 시야를 가릴 수 있습니다. 이러한 멤브레인 조각은 미세한 집게로 제거할 수 있지만 등쪽 혈관이 손상되지 않도록 주의하십시오.처음에는 심장 박동이 없는 것처럼 보일 수 있지만 등장 용액에서 몇 분 안에 심장 박동이 일반적으로 다시 시작됩니다. 용액에 몸을 담그면 심장이 여러 시간 동안 계속 박동할 수 있습니다. 안정적이고 지속적인 심장 박동이 이루어질 때까지 등쪽 혈관을 방해받지 않고 그대로 두십시오.이 작업은 일반적으로 5분 이내에 발생합니다. 핸드 탈리 카운터를 사용하여 기준선 심박수를 측정하거나, 정확성을 높이기 위해 실험을 비디오로 녹화하고 나중에 측정합니다. 첫 번째 치료 전에 최소 1분 동안 안정적인 심장 박동을 기록합니다.이제 목욕과 동일한 등장 용액에 이상적으로 용해 된 잠재적 인 심장 조절제를 적용 할 준비를하십시오. 이러한 이유로 권장되는 용액에는 대부분의 화합물을 용해시킬 수 있는 일부 DMSO가 포함되어 있습니다. 테스트 컴파운드를 추가한 후 심박수 변화를 측정하기 전에 최소 1분을 기다리십시오.심박수를 정확하게 측정하려면 최소 1분 분의 데이터가 필요하며 일반적으로 몇 분 분의 데이터가 필요합니다. 다양한 DMSO 농도를 포함하는 다양한 등장 용액을 사용하여 심박수에 미치는 영향을 테스트했습니다. 5%와 10% DMSO는 심박수를 유의하게 감소시킨 반면, 1% DMSO 등장 용액은 그렇지 않았다.그래서 1퍼센트 용액이 실험에 사용되었습니다. 무척추 동물에서 잘 특성화된 복조기 인 옥토파민 (Octopamine)이 차량에 대해 테스트되었습니다. 더 높은 농도의 옥토파민은 심박수를 유의하게 증가시켜 분석의 유용성을 입증했습니다.이 비디오를 시청한 후에는 등쪽 혈관을 시각화하기 위해 절개를 수행하는 방법과 잠재적인 심장 조절제가 꿀벌 심박수에 미치는 영향을 테스트하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 이 기술을 마스터하면 제대로 수행하면 몇 분 안에 해부를 완료할 수 있습니다.

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기술은 애벌레와 어른의 뛰는 심장을 시각화에...

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격리된 작동 심장 모델을 사용하여 부하 상태, 심박수 및 약물이 심근 성능 및 산소 소비량에 미치는 영향을 측정할 수 있습니다. 다양한 조건에서 수축기 및 이완기 성능과 산소 소비량을 연구할 수 있는 설치류 좌심장 작업 모델을 준비하는 방법을 설명합니다.

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우리는 광 클리어런스 및 초점 현미경이어서 표준 면역 염색 방법을 이용하여, E15.5까지 온 뮤린 배아 하트 관상 혈관의 분석 프로토콜을 제시한다. 이 기술은 직렬 섹션 시간 소모 분석 할 필요없이 전체에 걸쳐 심장 혈관의 시각화를 가능하게한다.

해제 배아 마음에 관상 동맥 혈관의 분석

여기에서는 다양한 발달 단계에서 초파리를 준비하고 맞춤형 광학 간섭 현미경(OCM) 시스템을 사용하여 초파리 심장 박동의 종단 광학 이미징을 수행하기 위한 실험 프로토콜에 대해 설명합니다. 심장의 형태학적 및 역학적 변화는 OCM 이미지에서 심장의 구조적 및 기능적 매개변수를 분석하여 정량적으로 특성화할 수 있습니다.

초파리 준비 및 빛 간섭 현미경을 사용하여 생체 내에서 심장 기능의 세로 이미징 (OCM)

Echocardiographic 시험 쥐에서 자주 사용 됩니다. 비싼 고해상도 초음파 장치가이 목적을 위해 개발 되었습니다. 이 프로토콜에서는 심장 형태를 결정 하는 조직학 형태학 분석 함께 저렴 한 echocardiographic 절차를 설명 합니다.

마우스의 심장 형태학의 echocardiographic 및 조직학 검사

여기에 제시된 것은 혈관 동맥이 수납 및 가압되기 때문에, 모세관 침대 및 백혈구를 포함하는 혈관 나무 구성 요소뿐만 아니라 압력을 유지하는 동맥 관류 압력 및 흐름의 전 생체 모니터링에 의해 살아있는 뮤린 심장 조직에서 관상 동맥 미세 순환을 연구하는 프로토콜이다.

마우스 심장의 모세혈관, 동맥 및 페리사이클의 동적 측정 및 이미징

복잡한 해부학으로 인해 심장 샘플에 대한 일관되게 재현 가능한 해부 및 수확 프로토콜을 구현하기가 어려울 수 있습니다. 이 원고는 일부 표준 심장 해부 프로토콜의 핵심 요소를 제시하여 전체 검사 접근 방식과 조직 병리학 검사에 일반적으로 사용되는 샘플링 부위를 강조합니다.

심혈관 질환에 대한 대형 동물 모델에서 심장의 해부 기술 및 조직 학적 샘플링

초파리 심장 절편 및 형광 이미징 프로토콜은 심장 구조 및 병리학 연구를 단순화합니다. 이 접근 방식에는 간단한 절편, 염색 및 이미징이 포함되며, 기존 박리에 필요한 기술적 전문 지식을 우회합니다. 접근성을 향상시켜 Drosophila를 더 넓은 과학 커뮤니티 내에서 심장 관련 연구에 더 널리 사용할 수 있는 모델로 만듭니다.

Drosophila Heart Fluorescence Staining with Cryosectioning을 위한 새롭고 효율적인 방법

배우세요 꿀벌 심장 기능 관찰을 위한 해부법과 심장 조절제 적용 기술을 이용한 곤충 생리학 연구 방법입니다. 이 기술은 수광충 건강 연구에 활용됩니다.

심장 기능의 연구에 대한 해부와 벌 꿀 지느러미 선박의 관측

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