Name: 공 초점 현미경을 사용하여 트랜 인간 배아 신장 세포의 라이브 셀 이미징 및 3D 분석 안지오텐신 수용체의 유형 (1A)의 인신 매매 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-03-27T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 51 s
Description: 배우세요 공 초점 현미경을 이용한 라이브 셀 이미징으로 안지오텐신 수용체 1A의 내재화 및 리소좀 공동국소화를 실시간 정량 분석하는 방법입니다. 이 기술은 고정 세포의 인공물을 제거하여 수용체 역학을 정확히 관찰합니다.

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이 논문에 제시된 연구 작업은 캐서린 샌드버그에 부여 R01 HL121456-01A1에 의해 지원되었다. 이 작품은 부분적으로 미국의 국립 보건원 (National Institutes of Health)에서 P30-CA051008에 의해 자금 지원 조지 타운 대학 의료 센터에서 현미경 및 이미지 공유 자원 (MISR)에 라이카 SP8 AOBS의 가용성에 의해 추가로 지원되었다. 우리는 기꺼이 라이카 SP8 영상 피터 존슨 안내, 칼 자이스 현미경 LLC의 알마 아놀드가 제공하는 영상 지원과 조지 타운 대학의 토마스 Coate, 생물학과의 실험실에서 자이스 혈구 LSM880의 사용을 인정합니다. 이 원고의 내용은 전적으로 저자의 책임이며 반드시 국립 보건원의 공식 견해를 대변하지 않습니다.

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<li>Costantini, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+palette+of+fluorescent+proteins+optimized+for+diverse+cellular+environments%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">A palette of fluorescent proteins optimized for diverse cellular environments.</a> Nat Commun. 6, 7670(2015).</li>
<li>Freundt, E. C., Czapiga, M., Lenardo, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoconversion+of+Lysotracker+Red+to+a+green+fluorescent+molecule%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Photoconversion of Lysotracker Red to a green fluorescent molecule.</a> Cell Res. 17 (11), 956-958 (2007).</li>
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</ol>

저자는 더 경쟁 재정적 이해 관계가 없음을 선언합니다.

여기에 제시된 예비 실험은 24 분의 비교적 짧은 시간 과정 동안, 리소좀에 AT의 1A R-GFP의 전달에는 상당한 변화가 발생하지 않았 음을 보여줍니다. 일반적으로 리소좀에 내면화 수용체의 전달은 빠르면 15 ~ 20 분으로 발생할 수 있습니다. 이 실험은 1A의 R AT 내면화의 대부분이 큰, 핵 주변 엔도 좀을 대상으로 가설과 일치한다. R은 리소좀에 도착 1A AT 적어도 일부는 리 등에 의해 입증되었다 증거. , 중앙 II 처리 후 5 분 및 30 분에서 세포를 비교하여 30 AT 1A는 R과 램프 1 상당한 colocalization을 발견하지만 5 분 6 사람들. 이 논문은 세포 준비, 이미징 및 분석 단계에 대한 자세한 설명을 제공하고이 고급 이미징 기술에 많은 고유의 함정에 대해 설명합니다. 이 방법은 아래...

전반적인 목표는 수용체 작용제 치료 후 시간과 특정 세포 내 소기관과 수용체의 colocalization을의 공간에서 정량적 증거를 획득하는 것입니다. 따라서, 여기에 즉시 목표 경과 촛점 리소좀의 이미지와 인간 배아 신장 세포에서 수용체 (HEK) 정량적으로 수용체의 전달을 측정하기 위하여 3 차원의 화상 데이터를 형질 다음이어서 조립 분석 걸친 트랜스를 캡처하는 리소좀. 횡단 수용체가 생리 학적 및 병태 생리 학적 조건에 의해 규제되는 방법을 결정하는 데 도움이 수용체 리간드에 의해 활성화되면 세포 내 이입 동안 리소좀 또는 다른 세포 소기관이있는 횡단 수용체의 동시 인신 매매를 조사. 1A AT R 주로 HEK293 촬영 한 대부분 있지만, 모델 전지 시스템의 중앙 II로 처리 다음 리소좀 저하 될 것으로 추정된다리간드, 앙 II의 대량 리소좀 2, 3, 4, 5의 열화 상태 eptors 주로 세포막 나중에 재활용 multivesicular 재활용 엔도 좀에 편재되어있다. 최근 리튬 등. 포스터 공명 에너지 전이 (FRET) 및 형광 수명 이미징 현미경 (FLIM) 기술을 이용하여 증명하는 AT 1A는 R의 colocalizes LAMP1으로 (~ 10 nm의 척도), 리셉터의 적어도 일부에 타겟팅 및 열화되는 것을 제안 리소좀 막 단백질 리소좀 (6)에 의해. 이 저자는 리소좀 억제제 클로로퀸은 클로로퀸의 효과가 리소좀 늦은 엔도 좀 또는 autophagosomes의 융합을 차단하는 것을 제안 이전 보고서와 일치 1A R-램프 1 협회에서 차단 지적했다. 기타 간접 접근 (1A)의 R 리터 AT 결정리소좀에서 ocalization는 리소좀 3, 4, 5, 6, 7, 8 (1A)의 R의 앞에서 추론 리소좀 억제제 bafilomycin 이용했다. 라이브 셀 이미징은 세포 부피 및 GFP-키메라 수용체의 손실 / 디밍 / 재배포에 고정의 잠재적 영향을 방지 할 수 있습니다. 이전 연구 colocalization을하거나 또는 리포좀 등의 수용체 - 결합 대용 표지 생균 사용에 수용체의 동시 발생을 결정 고정 세포 의존 한 β-아레스 1, 2, 3, 4, 5, 6. 회전 디스크 공 촛점 또는 레이저 포인트 스캐닝의 conf를 사용하여 다른 된 GPCR의 라이브 셀 이미징하나로 이루어질 수 또는 HYD 탐지기가 장착 OCAL 현미경은 30 초 간격으로 9, 10 Z-스택에 몇 군데 개별 세포 수용체의 내면화와 인신 매매를 관찰하는 연구자 수있었습니다. 라이브 세포 Z - 스택이 빠르게 수집 그러나 경우에도, 분석은 2D (10)에 즉 각 스택 내에서 단일 평면 선택 후 발생할 수 있습니다. 이 문제의 내재화 GPCR 또는 티로신 키나제 수용체 공부 충분할 수도 있지만, AT 1A는 루피는 시간의 크기와 위치를 변화함으로써 본질적으로 적절하게 각 시점에서 대표적인 단일 슬라이스를 이용하여 시료에 더 어렵 소체에 축적한다. 철저히 셀 통해 크기 및 위치에 다른 소포 각 모집단을 검출하는 1A의 R AT 분류의 경로를 결정하기 위해, 3 차원 영상 및 3 차원 분석을위한 방법은 이러한 변화를 추적하고되도록 고안<html> 이러한 리소좀 등 다양한 세포 내 구획의 표시와 함께 사용. 수사관들은 직접 셀과 중앙 II 자극 다음 세포 내 구획에 그 이전에 AT 1A는 R의 움직임을 시각화하는 라이브 세포 이미징에 대해이 프로토콜을 사용할 수 있습니다. 세포 내 구획 형광 단백질 키메라 또는 다른 형광 마커 태그. 이 프로토콜은 또한 야생형 수용체 대 비교하는 돌연변이 또는 약물 치료를 다음과 같이 변경을 검출하기 위해 200 nm의 최소 해상도 세포 내 소기관의 수용체를 지역화하는 첫 번째 방법으로 사용될 수있다. 이 라이브 셀 이미징 구비하는 공 초점 현미경에 대해 수행 될 수 있기 때문에이 기술은 액세스. 이 방법의 상대적인 용이성이 증가 전문성과 상호 작용 분자 (6)을 검출 FRET / FLIM / BRET 기술을 수행하는 데 필요한 장비와 대조&quot;외부 참조&quot;&gt; 11. 이러한 측정은 높은 해상도 (~ 10 ㎚)과 세포 내 소기관 내 위치 파악이 유추됩니다에서 단백질 - 단백질 상호 작용을 정의합니다. 이러한 고급 기술은 후속 또한 분자 관심 작용보다는 세포 내 구획을 통해 수용체 통로를 정의하는 데 사용되며, 이들은 직접 셀 (11) 내에서 특정 시간과 장소에서 단백질 - 단백질 상호 작용을 보여준다. 화상 취득이 느리기 때문에 FLIM, 억 셉터 농도에 독립적 인 FRET 기술은 주로 고정 된 샘플들에 수행된다. 대조적으로, 비 FRET 빠른 영상과 상호 작용하는 단백질의 고해상도 colocalization을을 제공한다. 비 FRET의 단점은 이미징 위드 에피 형광 이미징 속도를 얻기 위해 감소 해상도 및 세포 기관 (12)의 대조 결과 전체 셀을 포함를 활용한다. 생물 발광 공명 에너지 전달 (BRET)는 다른 인시간 (11)를 통해 분자 근접의 인수를 측정하기 된 GPCR에 적용된 고급 기술. 이 기술에서, 단백질 형광 분자는 분할되고, 각 반 당해 두 단백질 중 하나에 연결. 되면 관심 바인드 두 단백질 서로 키메라 태그의 부분은 형광 시간 동안 정량 증가 형광 취득 조립 재. 여기서 우리는 중앙 II 자극과 중앙 II 자극을 다음과 리소좀에 1A의 R AT 내면화 전달의 전위 변화에 따라 셀에 AT 1A는 R의 인신 매매를 연구하는 이미지 정량화와 결합 라이브 세포 이미징을위한 간단한 방법을 제시한다. 이 기술의 궁극적 인 사용은 야생형과 돌연변이 수용체를 비교 막 인신 매매의 차이를 특성화하는 것입니다. 이러한 차이는 AT 1A는 R leadi는을의 생리 활성 메커니즘 (들)에 영향을 파악하는 데 도움이 될 것입니다혈압 조절 ng 내지.

<table><tbody><tr><td>안지오텐신 II (Ang II)</td><td>시그마-알드리치</td><td>A9525&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco의 변형 독수리 매체 (DMEM 1x)</td><td>Gibco -ThermoFisher Scientific</td><td>11960-044</td><td>37 &deg에서 따뜻한; 사용 전 C 수조&nbsp;</td></tr><tr><td>소 태아 혈청 (FBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F2442</td><td>웜 인 37 &deg; C 사용 전 수조</td></tr><tr><td>페니실린 스트렙토마이신 (Pen Strep)</td><td>Gibco -ThermoFisher Scientific</td><td>15140-122</td><td>37°C에서 따뜻하게; 사용 전 C 수조</td></tr><tr><td>L-글루타민 200 mM (100x)</td><td>Gibco (life technologies)</td><td>25030-081</td><td>37°C에서 따뜻하게; C 사용 전 수조</td></tr><tr><td>인간 배아 신장(HEK)-293 세포</td><td>미국형 배양 컬렉션(ATCC)&nbsp;</td><td>CRL-1573</td><td>통로 번호 5 - 12</td></tr><tr><td>Nunc Lab-Tek II 챔버 1.5 독일 커버 글라스 시스템</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>155409</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000 트랜스펙션 시약</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>11668019</td><td>Store at 4 &deg; 씨&nbsp;</td></tr><tr><td>Opti-MEM, 감소 세럼 중간</td><td>Gibco- ThermoFisher Scientific</td><td>31985-070</td><td>웜 37 &deg; 사용 전 C 수조</td></tr><tr><td>PBS 10배&nbsp;</td><td>Fisher BioReagents</td><td>BP3994</td><td>웜 37 &deg; 사용 전 C 수조</td></tr><tr><td>Dulbecco의 Modified Eagle 매체(DMEM 1x)&nbsp;</td><td>Gibco -ThermoFisher Scientific</td><td>31053-028</td><td>37°C에서 웜; 사용 전 C 수조</td></tr><tr><td>LysoTracker Red DND-99</td><td>분자 프로브 -ThermoFisher Scientific</td><td>L7528</td><td>-20 °C에서 어두운 곳에 부분 따옴표를 보관하십시오. 씨 .&nbsp;</td></tr><tr><td>Volocity Ver. 6.3 이미지 분석 소프트웨어</td><td>PerkinElmer</td><td>시각화 및 정량 분석 모듈</td><td>이미지 스택의 3D 이미지 분석용</td></tr><tr><td>Leica SP8 AOBS</td><td>Leica Microsystems</td><td>레이저 스캐닝 컨포칼 현미경</td><td>이미지 수집용</td></tr><tr><td>Zeiss LSM 880</td><td>Carl Zeiss</td><td>레이저 스캐닝 컨포칼 현미경</td><td>이미지 수집용</td></tr></tbody></table>

공 초점 현미경을 사용하여 트랜 인간 배아 신장 세포의 라이브 셀 이미징 및 3d 분석 안지오텐신 수용체의 유형 (1a)의 인신 매매

Live Cell Imaging and 3D Analysis of Angiotensin Receptor Type 1a Trafficking in Transfected Human Embryonic Kidney Cells Using Confocal Microscopy

라이브 셀 이미징 동시에 안지오텐신 II (중앙 II) 자극 다음 형질 전환 된 인간 배아 신장 293 (HEK) 세포에서 안지오텐신 1a 형의 (1A의 R AT) 수용체 및 세포 내 구획의 시간 경과 이미지를 캡처하는 데 사용됩니다. HEK 세포를 일시적으로 플라스미드 DNA 향상된 녹색 형광 단백질 (EGFP) 태그 (1A)의 R AT 함유 형질. 리소좀은 빨간색 형광 염료로 식별됩니다. 라이브 셀 이미지는 중앙 II 자극 후 레이저 스캐닝 공 초점 현미경에 포착 시간이 지남에 따라 세 가지 차원 (3D, 복셀)에서 소프트웨어로 분석된다. 라이브 세포 이미징 수용체 피킹으로 조사 할 수 있으며 정착과 관련된 교란을 방지하고, 특히, EGFP 태그가 막 수용체의 손실 또는 artefactual 변위. 각 셀은 시간을 추적 같이 따라서, 수용체의 세포 내 지역화 묘화하고 측정 할 수있다. 이미지는 sufficientl을 취득해야합니다Y는 빠른 속도로 빠른 소포의 움직임을 촬영합니다. 그러나, 빠른 속도로 영상을 수집 된 광자의 수는 감소된다. 절충안은 이미징 속도를 얻기 위해 같은 복셀 사이즈 촬상 파라미터의 선택에서 이루어져야한다. 라이브 세포 이미징의 중요한 응용 프로그램 이름하지만 몇 가지로 단백질 인신 매매, 이동, 증식, 세포주기, 세포 사멸, 자식 작용 및 단백질 - 단백질 상호 작용과 역학을 공부한다.

이 실험의 대표 세트에, HEK 세포를 N2 및 pEGFP-13 플라스미드로 클로닝 (1A R-GFP AT) 안지오텐신 계 1A 수용체 구성 (E1,2,3-AT 1A는 R)로 형질 감염시켰다. HEK의 시간 경과 이미지 획득 및 동영상 (라이브 셀 이미징 1 라이브 셀 이미징이 동영상 참조)로 연주 하였다. 영화와 스틸 리간드 자극 후 1A AT R-EGFPs는 세포막에 주로 국부 것을 보여 주지만, 중앙 II 첨가 밝은 소체를 형성하는 2.5 분 내에 내부화 될 이들 수용체와 나중에 시간이 크다 소체에 클러스터링 핵 주변 영역 (도 4B, 5, 6A, 라이브 셀 이미징 2). <p class="jove_content" fo:keep-toge...

여기에서 우리는 안지오텐신 II 치료에 의해 시작 엔도 시토 시스 동안 녹색 형광 단백질 태그 안지오텐신 형 1A 수용체를 발현하는 이미지 세포에 대한 프로토콜을 제시한다. 이 기술은 시간이 지남에 따라 입체적 수용체 리소좀의 공동 현지화를 분석하는 소프트웨어를 이용하여 다음 라벨링 제 형광 마커 리소좀 등을 포함한다.

공 초점 현미경을 사용하여 트랜 인간 배아 신장 세포의 라이브 셀 이미징 및 3D 분석 안지오텐신 수용체의 유형 (1A)의 인신 매매

Live-cell imaging is used to simultaneously capture time-lapse images of angiotensin type 1a receptors (AT1aR) and intracellular compartments in ...

이 실험의 전반적인 목표는 안지오텐신 2 처리 후 안지오텐신 1형 수용체 리소좀 공동 국소화에 대한 정량적, 공간적, 시간적 증거를 얻는 것입니다. 이 방법은 Y형 수용체와 돌연변이 수용체의 세포 내 처리의 차이를 감지하기 위해 고안되었으며, 내부화 과정에서와 같이 리간드 시뮬레이션에 대한 응답으로 발화합니다. 이 기술의 장점은 살아있는 세포 이미징, 고정 및 세제 투과성 세포에서 아티팩트를 제거하고 수용체 국소화의 동적 변화를 실시간으로 평가할 수 있다는 것입니다.먼저 적절한 1.4 개구수 대물렌즈를 선택하고 대물렌즈를 현미경 스테이지의 중앙에 놓습니다. 고점도, 낮은 자동 형광 이멀젼 오일을 대물렌즈에 한 방울 떨어뜨리고 형질전환된 세포가 있는 챔버를 현미경 스테이지로 옮깁니다. 오일이 첫 번째 슬라이드의 바닥에 닿을 때까지 대물렌즈를 부드럽게 올리고 어두운 셀을 찾습니다.건강한 관심 세포가 있는 상태에서 시야 중앙에 컨포칼 모드로 전환하고 세포가 잘 퍼져 있고 복부 쪽이 커버 슬립과 밀접하게 병치되어 있는지 확인합니다. Z 스택 대화 상자를 열고 Live를 클릭한 다음 셀 맨 위에 포커스를 놓고 시작을 클릭합니다. 그런 다음 셀의 맨 아래에 초점을 맞추고 Z 단계 크기 1.00 마이크로미터를 입력한 다음 끝을 클릭합니다.그런 다음 상단의 획득 설정에서 XYZT 모드를 선택합니다. 마지막으로, 리소좀에 대한 GFP 표지 Angiotensin Type 1A 수용체의 표적을 관찰하기 위해 스캔 시간 간격과 스캔 시간을 설정합니다. 그런 다음 리간드 자극을 시작하려면 이미징 중인 웰에 3마이크로리터의 100X 리간드 스톡 용액을 추가하고 시작을 클릭하여 원하는 기간 및 빈도에 대한 반응을 3D로 이미지화합니다.라이브 셀 이미지를 분석하려면 적절한 3D 이미지 정량화 소프트웨어를 엽니다. 이 프로토콜에서는 Velocity입니다. 이미지 필드 내부를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 속성을 선택합니다.리간드 처리에 대한 반응으로 GFP 태그가 지정된 수용체, 소포 및 홀 세포 강도를 분석하기 위한 측정 시퀀스를 생성하기 위한 적절한 XY 및 Z 이미지 픽셀 속성을 입력합니다. 2D 메뉴에서 확장 초점 모드를 선택하여 셀을 관찰합니다. 그런 다음 자유형 영역 도구를 사용하여 셀 주위에 관심 영역을 그리고 이미지를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하여 선택 영역으로 자르기를 선택합니다.새 이미지 항목이 생성됩니다. 이미지 이름

live-cell-imaging-3d-analysis-angiotensin-receptor-type-1a

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연구

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Biology

생물학

성인 심장 myocytes 동물 마음으로부터 격리하고 며칠 동안 교양 수있는 기본 세포입니다. 이 문화가 기간 내에 adenoviral 유전자 전송은 유전자 인코딩 bi​​osensors (GEBs) 또는 형광 융합 단백질을 표현하는 데 사용할 수 있습니다. 두 접근 방법 공촛점 현미경에 의해 세포 조사를 허용합니다.

공촛점 이미징에 대한 분리 및 성인 심장 Myocytes의 유전자 조작

이 프로토콜은 걱정 기반의 근접 분석을 사용하는 방법에 이미지 단백질 단백질 상호 작용을 설명합니다.

이미징 단백질 - 단백질 상호 작용 생체내에</em

본 논문은 특정 리간드에 leukocytes의 chemotactic 응답을 확인하고 라이브 셀 이미징 기술을 사용하여 세포 표면 수용체와 cytosolic 단백질 사이의 상호 작용을 식별하는 방법을 설명합니다.

Leukotriene B의 실시간 영상 4 중재 셀 마이 그 레이션 및 β - arrestin로 BLT1 상호 작용

GFP - 굴지 표현 라이브 내피 세포의 미세 영상은 cytoskeletal 구조에서 동적 변화 특성화 수 있습니다. 고정 표본을 사용하는 기술과는 달리,이 방법은 전에 동일한 세포에있는 굴지의 cytoskeleton의 시간적 변화에 대한 자세한 평가, 동안 다양한 물리적, 약리, 또는 염증성 자극 후를 제공합니다.

GFP - 굴지 표현 라이브 내피 세포 굴지의 Cytoskeleton 연구

실시간 이미징 배아 조직은 오랜 기간 동안 도전합니다. 여기에서 우리는 높은 공간과 시간적 해상도를 가진 오랜 기간 동안 여자가 척수의 세포와 하위 세포 변화를 감시하기위한 분석을 제시. 이 기술은 신경계와 개발 배아의 다른 지역에 맞게 조정 할 수 있습니다.

개발 Neuroepithelium의 세포 문제의 고해상도 라이브 영상

우리는 단일 세포의 세 차원 공 촛점 형광에서 가져 정의되지 않은 형태의 형태학의 변화를 측정하기 Imaris 신경 과학, ImarisXT 및 MATLAB을 사용하는 소프트웨어 플랫폼을 개발했습니다. 이 새로운 접근 방식은 수용체 활성화에 따라 세포 모양의 변화를 수량화하는 데 사용되므로 약물 발견을위한 가능한 추가 도구를 나타냅니다 할 수 있습니다.

3 차원 형광 이미지에서 세포 형태학의 변경 사항 단정 지을 분석 도구

우리는 우리가 살아있는 세포의 공 촛점 이미징에 의해 소포체 (ER)에 거주 형질 전환 형광 단백질의 분포와 이동을 조사하는 데 사용하는 이미징 방법을 설명합니다. 우리는 또한 ultrastructurally이 세포 내 구획의 구조에 대한 자신의 표현의 효과를 분석 할 수 있습니다.

배양 된 세포의 소포체 하위 도메인의 시각화

이 프로토콜은 컨포칼 회전 디스크 현미경을 사용하여 렌티바이러스 및 아데노바이러스 형질도입 후 1차 쥐 신생아 심근세포를 사용하여 살아있는 세포를 이미징하는 방법을 설명합니다. 이를 통해 살아있는 심근세포의 세포 과정을 자세히 관찰할 수 있습니다.

차 쥐 신생아 심근 라이브 셀 이미징은 아데노 바이러스 다음과 렌티 바이러스 형질 도입은 공 초점 현미경 디스크를 회전시키는 사용

세포 이식, 세포골격 라벨링 및 기능 손실/이득 접근법을 결합한 이 프로토콜은 생체 내 세포 이동에서 후보 유전자의 기능을 분석하기 위해 이동하는 제브라피시 전향 prechordal plate를 사용하는 방법을 설명합니다.

분석<em&gt; 생체</em&gt; 셀 마이그레이션 Zebrafish의 배아에서 세포 이식 및 시간 경과 이미징을 사용하여

이 원고 설명 기자 유전자 변형 마우스의 사용 및 다른 관리 경로 angiotensin II 유발 고혈압 면역 세포의 활성화를 평가 하기 위해 혈관의 intravital 비디오 현미경을 사용 하 여 형광 염료의 그들의 롤 및 endothelium에 고착 하는 능력.

백혈구 롤링 Angiotensin II-주입 마우스에서 접착 시각화: 기술 및 함정

이 프로토콜에는 분리 하 고 마우스 기본 신장 관 세포 이후에 하위 신장 생물학 기능 비보 전, 미토 콘 드리 아 생체를 포함 하 여 평가 양식 수 있는 특성화 하는 비용 효율적인 접근 방식을 제공 합니다.

마우스 기본 신장 관 상피 세포의 고립, 특성, 및 높은 처리량 세포 외 유출 분석

배우세요 공 초점 현미경을 이용한 라이브 셀 이미징으로 안지오텐신 수용체 1A의 내재화 및 리소좀 공동국소화를 실시간 정량 분석하는 방법입니다. 이 기술은 고정 세포의 인공물을 제거하여 수용체 역학을 정확히 관찰합니다.

공 초점 현미경을 사용하여 트랜 인간 배아 신장 세포의 라이브 셀 이미징 및 3D 분석 안지오텐신 수용체의 유형 (1A)의 인신 매매

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