Name: 약물 저항 유전자를 확인하기위한 QTL 매핑 및 CRISPR / Cas9 편집 Toxoplasma gondii (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-06-22T12:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 37 s
Description: 배우세요 Toxoplasma gondii의 사이네푼진 내성 유전자를 QTL 매핑과 CRISPR/Cas9 유전자 편집으로 확인하는 방법입니다. 이 기술은 기생충학 연구에서 약물 내성 메커니즘을 규명하는 데 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

우리는이 프로토콜이 기초를 이루고있는 원 발행에 기여한 L. David Sibley와 Asis Khan에게 감사 드린다. 이 연구는 National Institutes of Health의 보조금 AI108721에 의해 지원되었습니다.

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

이 프로토콜은 결합되었을 때 T. gondii 에서 약제 내성 유전자를 확인하는 몇 가지 방법을 제시합니다. 두 가지는 특히 프로젝트에 필수적이었고, 상대적으로 노련한 QTL 매핑 방법과 최근에 개발 된 CRISPR / Cas9 유전자 편집 방법이었다. Lander와 Botstein은 1989 년에 영향력있는 논문을 발간하여 유전형 유전자좌와 표현형을 연관시키는 QTL 매핑을 시연했다. 최근에 Dounda와 Charpentier는 Streptococcus pyogenes 22 의 CRISPR / Cas9 편집 시스템을 T. gondii 13 , 17을 비롯한 여러 모델에서 신속하게 유전 도구로 채택했다고 설명했습니다. 두 방법 모두 유용했는데 QTL 매핑은 WGS 기반 SNP 검출을 사용하여 궁극적으로 확인 된 약물 내성 변이를 포함하는 유전자좌를 정의하고 CRISPR / Cas9 편집은<html> SNR1 이 sinefungin 약물 내성 유전자임을 확인합니다. ME49-FUDR r X VAND-SNF r cross 8 은 독성 표현형 19 을 조사하기 위해 원래 개발되었지만, 부모의 계통도 VAND 부모에서 sinefungin 내성 인 인과 관계 유전자가 알려지지 않은 부가적인 표현형의 차이를 가져왔다. 이것은 부모의 추가적인 표현형 차이가 관찰 될 때 재사용 될 수 있다는 점에서 십자가의 한 가지 이점을 강조합니다. 이것은 다른 Toxoplasma 십자가 유형 2 x 3 형의 경우였으며, 독성에 관여하는 여러 유전자가 여러 표현형 37 , 38 , 39 , 40 을 매핑하여 발견되었습니다. 지금까지 4 가지 T. gondii 십자가가 기술되어 표현형에 관여하는 유전자를지도 화했다ss = &quot;xref&quot;&gt; 8 , 37 , 41 , 42 모두 유전 적 기초가 알려지지 않은 새로운 표현형을 매핑 할 재사용 가능성이있다. 이 줄을 따라 알려진 세계적인 유전 적 다양성을 나타내는 62 개의 T. gondii 균주에 대한 게놈이 서열화되었다. 흥미로운 표현형이 다른 균주를위한 새로운 풀을이 풀에서 만들 수 있습니다. QTL 매핑의 장점을 강조한 결과, 십자가를 생성하는 것이 사소한 일이 아니라고 말할 필요가 있습니다. 인과 관계 유전자를 확인하는 데 사용할 수있는 다른 방법이 있습니다. 하나의 강력한 기술은 화학적 돌연변이 유발을 사용하여 표현형을 선별 할 수있는 돌연변이를 만듭니다. 원인 유전자를 찾기 위해, 돌연변이 체는 cosmid 라이브러리 44 로 보완 될 수 있거나 유전체 resequencing 방법은 원인 돌연변이 45 를 찾는 데 사용될 수 있습니다. 미주리이것에 관해서는, Coleman et al. 및 Walwyn et al. 이러한 접근 방식의 개요 46 , 47 . 원인이되는 SNF 돌연변이 (Protocol 2와 3)의 확인을 유도하는 많은 단계는 학문적 목적으로 자유롭게 사용할 수있는 소프트웨어로 수행되는 계산 방법에 의존합니다. 각 단계에 대한 자세한 명령이 제공되며 적절한 파일과 함께 실행하면 사용자가 원인 SNF r SNP를 찾는 데 필요한 데이터 세트를 다시 만들 수 있습니다. 명령의 일부 구문은 사용자 기본 설정으로 수정할 수있는 파일 이름 또는 디렉토리 구조 ($ PATH)를 참조합니다. 여기에 제시된 명령이 QTL 분석 및 WGS 기반 SNP 식별을 통해 교차 분석을 할 수있는 방법을 확실히 피할 수는 없지만이 기사에서 설명한 실험을 반복 할 수있을만큼 포괄적이며 사용자가 m<html> 이러한 접근 방식이 단계적으로 활용되는 방식을 잘 알고 있습니다. QTL 매핑 및 WGS 서열 기반 SNP 검출이 후보 SNF r 유전자를 식별하기에 충분했지만, 약물 저항성에서 그 역할을 확인하기 위해서는 추가적인 실험이 필요하다. 이것은 CRISPR / Cas9 유전자 편집을 사용하여 달성 할 수있는 유전자 파괴 또는 녹아웃 기술을 통해 설득력있게 나타낼 수 있습니다. CRISPR / Cas9를 사용하여 indel 돌연변이를 생성하거나 T. gondii 의 표적 유전자에 형질 전환 작 제물을 삽입하는 상세한 방법이 제시되어있다. CRISPR / Cas9가 제공하는 표적 특이성은 전통적인 방법에 비해 유전자 편집의 효율성을 증가시킨다. 또한 이것은 효율적으로 증가하여 이전에 수정하기 어려운 유전 연구를 위해 비 실험실 변형 균주를 사용할 수있게되었습니다. 초기 단계에 있지만, CRISPR / Cas9는 이미 유전자 손상을 일으키는 데 사용되어왔다유용한 유전자가 될 것으로 기대되는 T. gondii의 유전자 녹아웃 16 , 19 , 50 , 51 , 52 , 53 , 54 를 만든다 . 미래의 많은 다른 연구들에 대해서. SNR1 불 활성화가 sinefungin 내성을 일으킨다는 발견은 SNR1 유전자좌가 유전자 도입 또는 유전 적 보완을위한 유망한 장소가되게한다. SNR1 유전자좌로 도입 유전자의 통합을 유도하기 위해 CRISPR / Cas9 매개 유전자 타겟팅을 사용하는 성공을 극대화하기 위해서는 다음 측면을 고려해야한다빨간색 실험 디자인 중. 첫째, 변형 마커의 효율을 높이기 위해 형질 전환 구조체에 선택 마커를 포함시키는 것이 좋습니다. 선별 마커가 포함되면 양성 및 음성 선발을 모두 사용할 수있어 이중 선별 된 기생충의 거의 100 %가 SNR1 유전자좌에 통합 된 GOI로 형질 전환됩니다. 대조적으로, 형질 전환 구조물이 추가적인 선택 가능한 형질을 포함하지 않고 SNR1 유전자좌에서 음성 선택에 의존하는 경우 성공적인 형질 전환의 효율은 크게 CRISPR 플라스미드 및 형질 전환 구조물의 동시 형질 전환 효율에 달려있다. 둘째, CRISPR / Cas9 매개 된 부위가 아닌 상 동성 DNA 단편의 특이 적 통합이 보체 및 형질 전환에 자주 사용 되더라도 삽입 방향은 양 방향이 가능할 경우 보장 할 수 없다는 점에 유의해야한다. 이것은 프로포즈를 일으킬 수있다.몇 가지 응용 프로그램에 ms. 예를 들어, 유전자 대립 유전자가 다른 돌연변이를 보완하기 위해서는 모든 대립 유전자가 같은 방향으로 삽입되도록하는 것이 어렵고, 방향의 불일치로 인해 표현의 차이가 생길 수 있습니다. 이러한 유형의 적용을 위해서는 SNR1 유전자좌와 상 동성이있는 서열을 가진 DNA 구조체가 권장되며 이는 적절한 통합 방향을 유도 할 것이다 ( 그림 6 ). 셋째, 형질 감염 중에 CRISPR 플라스미드와 형질 전환 DNA 분자 사이의 비율은 성공적 형질 전환 균주 건설에 중요합니다. 이 비율은 선택 전략에 따라 조정해야합니다. 다음 지침을 권장합니다 : 1) 유전자 변형 구조체에 약물 내성 마커가 포함되어 있고 해당 약물이 유전자 변형 기생충 생성에 사용 된 유일한 선택 인 경우, 즉 sinefungin을 사용하지 않는 경우, 유전자 변형 구조물과 CRISPR plasm 사이의 권장 몰비id는 1 : 5입니다. 이 경우 더 많은 CRISPR 플라스미드를 사용하면 트랜스 제닉 구조물을받는 기생충도 CRISPR 플라스미드를 받게 될 가능성이 높아 지므로 약물 내성 기생충은 CRISPR 표적화 사이트에 마커를 삽입 할 가능성이 더 높습니다. 그 비율이 역전된다면 형질 전환 체를받는 대부분의 기생충은 CRISPR 플라스미드를 얻지 못할 것이다. 결과적으로, 대다수의 약물 내성 기생충은 CRISPR / CAS9 매개 부위 - 특이 적 삽입과 관련이없는 무작위 적 통합을 통해 트랜스 제닉 구조물을 얻는다. 2) 유전자 변형 구조체가 약물 내성 마커를 포함하고 해당 약물이 유전자 변형 기생충을 선택하기 위해 sinefungin과 함께 사용되는 경우, 유전자 변형 구조체와 CRISPR 플라스미드 사이의 제안 된 몰비는 1 : 1이다. 이 전략은 형질 전환 균주 건설의 최고 효율을 제공합니다. 3) 형질 전환 체가 선택 가능한 생산자를 포함하지 않고, 음성 선택에 의지 할 경우트랜스 제닉 기생충을 얻기 위해 sinefungin 단독으로, 트랜스 제닉 구조물과 CRISPR 플라스미드 사이에 제안 된 몰비는 5 : 1이다. 이 디자인의 이론적 근거는 위의 첫 번째 지침과 동일합니다. Protocol 5에서 pyrimethamine과 sinefungin이 모두 선택 되었기 때문에 DHFR * mini 유전자와 CRISPR plasmid를 표적으로하는 SNR1 사이의 비율은 1 : 1로 설정되었습니다. 종합 해 보면, 여기에 설명 된 방법은 SNR1 2 를 식별 한 원래의 출판물에서 전달할 수 없었던 수준의 세부 사항을 가지고 있습니다. 이러한 프로토콜; 특히, 명령 줄 구문, 활용되는 프로그램의 순차적 레이아웃 및 CRISPR / Cas9의 사용은 표현형을 담당하는 새로운 유전자를 식별하기위한 미래의 노력을 지원해야합니다.

숙주 범위는 기생충의 유행 정도를 결정합니다. 일부 기생충은 발견 된 영역을 제한하는 매우 구체적인 호스트 요구 사항을 가지고 있으며 일부는 일반 주의자입니다. 그 중 한 명은 Toxoplasma gondii ( T. gondii) 입니다. 이 기생충은 모든 포유 동물과 많은 새들을 감염시킬 수 있기 때문에 전 세계적으로 발견됩니다. 인간도 감염되기 쉽고 전세계 인구의 약 1/3이 감염된 것으로 추정됩니다. 다행히 강력한 면역 반응은 일반적으로 기생충의 성장을 조절하지만 면역계가 손상된 상황에서 기생충은 확인되지 않고 성장하여 질병을 일으킬 수 있습니다 (종종 뇌염). 또한이 기생충은 이전에 감염되지 않은 여성이 면역 기억이 부족하여 기생충의 확산을 제한하기 때문에 임신 중에 감염된 경우 선천적 인 질병을 일으킬 수 있습니다. 또한 시력 손실을 초래할 수있는 안구 독소증의 부담이 있습니다 1 . 이 reaso 들어ns T. gondii 는 연구의 초점이되었고, Apicomplexan 기생충에 대한 모델로 연구를 위해 개발 된 많은 분자 방법으로 인해 연구 대상이되었습니다. 여기에 설명 할 두 가지 방법은 QTL (Quantitative Trait Locus) 매핑 및 CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats) / Cas9 유전자 편집입니다. QTL 매핑과 CRISPR / Cas9 편집은 이전 연구에서 T. gondii 병독성 유전자를 확인 및 / 또는 특성화하기 위해 사용 된 전진 및 역 유전 접근법입니다. 여기에서 이들 방법을 결합하여 sinefungin 내성 (SNF r ) 유전자, TgME49_290860 및 이의 ortholog ( SNR1로 표시 ) 2 의 기능을 확인하고 확인합니다. T. gondii 는 다양한 중간 숙주를 감염시킬 수 있지만, 생명주기를 완료하기 위해서는 felid의 장 상피 세포를 통과시켜 감염시켜야합니다. 고양이는 기생충의 결정적인 숙주입니다.exial stage가 생성되고 감수 분열을 통한 유전 재조합이 일어난다. QTL 연구를 수행하려면 유전 적 십자가를 만들어야하며, Toxoplasma 의 경우 이것은 표현형 형질이 다른 두 가지 기생충 균주, 즉 모계 얼룩을 고양이를 통해 재조합 자손 3 을 생산하는 것입니다. 고양이에게 먹이기 전에 부모의 계통은 별도의 약물에 내성을 갖게되어 자손 4 의 이중 약물 선택으로 재조합 체를보다 효율적으로 확인할 수 있습니다. 이 목적을 위해 T. gondii 에는 세 가지 약물이 사용되었습니다. 저항성 유전자 5 가 우라실 포스 포리보실 트랜스퍼 라제 ( FUR ), 저항성 유전자 6 이 아데노신 키나아제 ( AK ), 저항성 유전자가 알려지지 않은 시네 파인 신 (SNF)이 7 인 아데노신 아라 비노 시드 (ARA). 몇 가지 유전 적 십자가가T. gondii에 대해 생성되었지만 전체 게놈 시퀀싱 (WGS)을 사용하여 ME49-FUDR r X VAND-SNF r cross의 24 자손 만 genotyped 하였다. 이것은 VAND 부모가 약물에 민감한 VAND (VAND-SNF s ) 균주 의 화학적 돌연변이 유발에 저항하여 sinefungin 내성을 갖도록이 십자가를 사용하여 SNF 내성 유전자를 매핑하고 식별 할 수있는 가능성을 열었고, VAND 참조 게놈은 VAND- 따라서 SNF s 균주는 자손 Wine과 VAND-SNF 의 참조 게놈 사이의 모든 다형성을 식별 할 수있게 해줍니다. 그 유전 적 부모 VAND-SNF r 돌연변이는 자손의 sinefungin 내성을 일부 변이 시켰습니다. SNF r 자손에서 원인 단일 뉴클레오타이드 다형성 (SNP)을 확인하기 위해 여러 컴퓨터 기반 오픈 소스 리소스를 사용하여 데이터를 분석 할 수 있습니다. ME49-부모와 자손의 WGS 정렬을 사용하여 유전자 크로스 오버의 게놈 위치를 정확하게 검출하는 REDHORSE 소프트웨어 세트 9 가 개발되었습니다. 이 맵핑 정보는 R 통계 프로그래밍 소프트웨어에서 &#39;qtl&#39;패키지 10 과 호환되는 데이터 세트를 포맷하기 위해 표현형 데이터 (자손의 SNF r) 와 결합 될 수있다. QTL 스캔은 QTL 스캔이 실행되어 표현형. QTL 유전자좌 내에 위치한 인과적인 SNP를 확인하기 위해 VarScan mpileup2snp 변형 호출 프로그램 12를 사용하여 SNP를 호출 할 수있는 Bowtie 2 정렬 프로그램 11 을 사용하여 자손의 WGS 읽기를 개별적으로 sinefungin에 민감한 VAND 게놈에 맞출 수 있습니다. 이러한 SNP를 사용하여, QTL 유전자좌는 SNF r에 존재하는 다형성을 검색 할 수 있지만SNF 의 자손에서 유전자의 코딩 영역에서 확인 된 인과적인 SNP로, 후보 SNF r 유전자의 유전 적 변형이 SNF s 변형에서 수행되어 약물 내성 기능을 검증 할 수있다. CRISPR / Cas9 게놈 편집 시스템은 최근 Toxoplasma 13 에 설립되었으며,이 기생충의 복잡한 생물학 탐구, 특히 비 실험실 변형 계통의 유전 연구에 중요한 도구가 추가되었습니다. WT Toxoplasma 세포에서 매우 활성 인 Non-Homologous End Joining (NHEJ) 활성으로 인해, 외인성으로 도입 된 DNA가 매우 높은 빈도로 게놈에 무작위로 통합되기 때문에 표적 게놈 변형을 달성하기가 어렵습니다. 궤적 특이 적 변형의 성공률을 증가시키기 위해, 상이한 접근법이 동종 재조합의 효율을 증가시키고 / 시키거나e NHEJ 활동 15 , 16 . 이러한 접근법 중 하나는 CRISPR / Cas9 시스템입니다. 다른 방법과 비교하여 CRISPR / Cas9 시스템은 사이트 별 수정 사항을 효율적으로 적용 할 수 있으며 13 , 17 , 18을 쉽게 디자인 할 수 있습니다. 또한 기생충 13 , 19 의 추가 변형없이 Toxoplasma 균주에서 사용할 수 있습니다. CRISPR / Cas9 시스템은 Streptococcus pyogenes 의 적응 면역 체계에서 유래되었으며,이를 파지 20 , 21 , 22 와 같은 이동 유전 요소의 침입을 방어하는 데 사용합니다. 이 시스템은 RNA 유도 DNA 엔도 뉴 클레아 제 효소 Cas9를 이용하여 이중 가닥 DNA 브레이크 (DSB)를 표적에 도입하고,짧은 indel 돌연변이를 통해 표적 유전자를 불 활성화시키는 오류가 발생하기 쉬운 NHEJ에 의해, 또는 설계된대로 정확하게 표적 유전자를 변경시키기위한 상 동성 직접 재조합에 의해 야기된다. 표적 특이성은 표적 DNA와 100 % 상 동성을 갖는 개별적으로 설계된 20nt 서열을 포함하는 단일 가이드 RNA (gRNA)라는 작은 RNA 분자에 의해 결정됩니다 22 . gRNA 분자는 또한 특정 Protospacer Adjacent Motif (PAM, 서열은 &#39;NGG&#39;)를 포함하는 표적 사이트로 핵산 분해를 유도하는 Cas9에 의해 인식 된 시그니처를 포함한다 25 , 26 . 따라서, gRNA 분자와 PAM 서열은 함께 작용하여 게놈에서 Cas9 절단 부위를 결정한다. 하나는 쉽게 절단을위한 다른 사이트를 대상으로 gRNA 시퀀스를 변경할 수 있습니다. CRISPR / Cas9 시스템이 Toxop에서 처음 개발되었을 때Lasas에서, Cas9 핵산 분해 효소를 발현하는 단일 플라스미드와 gRNA 분자를 사용하여 표적 부위 13 , 17에 DSB를 도입 하였다. CRISPR / Cas9 시스템은 동종 재조합에 의해서뿐만 아니라 외인성 DNA의 비 상동 적 통합을 통해서 현장 특이적인 게놈 변형의 효율을 크게 증가시키는 것으로 나타났다. 그것은 NHEJ 활동을 포함하는 야생형 계통에서 이것을합니다. 따라서이 시스템은 효율적인 게놈 편집을 위해 본질적으로 모든 Toxoplasma 균주에서 사용할 수 있습니다. 전형적인 실험에서, 표적 특이 적 CRISPR 플라스미드 및 표적을 변형 시키는데 사용 된 DNA 단편은 기생충 내로 동시에 형질 감염된다. 표적을 변형시키는 데 사용 된 DNA 단편이 표적 궤적에 상 동성 서열을 포함하면 상 동성 재조합을 이용하여 CRISPR / Cas9에 의해 도입 된 DSB를 수복하여 표적을 정확하게 변형시킬 수있다. 다른 한편, int생성 된 DNA 단편은 상 동성 서열을 포함하지 않으며, 여전히 CRISPR / Cas9 표적화 사이트에 통합 될 수있다. 후자는 흔히 선별 마커를 삽입하거나 네거티브 선발을 허용하는 유전자좌를 보완하기 위해 유전자를 파괴하는 데 사용됩니다 13 . 여기 SNR1 유전자좌는 CRISPR / Cas9가 어떻게 유전자 파괴 및 형질 전환 기생충의 생성에 사용될 수 있는지를 보여주기위한 예입니다.

<table><tbody><tr><td>T25 플라스크</td><td>Corning</td><td>430639</td><td></td></tr><tr><td>Human Foreskin Fibroblasts (HFF)</td><td>ATCC</td><td>SCRC-1041</td><td></td></tr><tr><td>T. gondii ME49 strain</td><td>ATCC</td><td>50840</td><td></td></tr><tr><td>T. gondiiVAND strain</td><td>ATCC</td><td>PRA-344</td><td></td></tr><tr><td>DMEM (No Sodium Bicarbonate)</td><td>생명 과학</td><td>12800017</td><td></td></tr><tr><td>소듐 바이카보네이</td>트 <td>시그마 알드리치</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>헤페스</td><td>시그마 알드리치</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>태아 소 세럼 (FBS) 프리미엄 등급</td><td>VWR International</td><td>97068-085</td><td></td></tr><tr><td>L-글루타민&nbsp; 200 mM</td><td>시그마 알드리치</td><td>G7513</td><td></td></tr><tr><td>겐타마이신 (10 mg/mL)</td><td>생명 기술&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>플라스크용 15710064 세포 스크래퍼</td><td>VWR International</td><td>10062-904</td><td></td></tr><tr><td>주사기 10 mL</td><td>BD</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>블런트 니들 22 G x 1"</td><td>BRICO 제품</td><td>BN2210</td><td></td></tr><tr><td>핵포어 필터 3.0 &마이크로; m, 25 mm</td><td>GE 헬스케어</td><td>110612</td><td></td></tr><tr><td>Swin-Lok 필터 홀더 25 mm</td><td>GE 헬스케어</td><td>420200</td><td></td></tr><tr><td>헤마사이토미터</td><td>프로페셔널 MFG</td><td>90001</td><td></td></tr><tr><td>Sinefungin</td><td>Enzo Life Sciences</td><td>380-070-M001</td><td></td></tr><tr><td>R&nbsp;</td><td>R 재단</td><td>https://www.r-project.org/</td><td></td></tr> <tr><td>J/qtl</td><td>처칠 그룹</td><td>http://churchill.jax.org/software/jqtl.shtml</td><td></td></tr><tr><td>Bowtie2</td><td>존 홉킨스 대학교</td><td>http://bowtie-bio.sourceforge.net/bowtie2/index.shtml</td><td></td></tr><tr><td>NCBI SRA 툴킷</td><td>NCBI</td><td>http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Traces/sra/?view=toolkit_doc</td><td></td></tr><tr><td>SAMtools</td><td>웰컴 트러스트 생어 연구소</td><td>http://www.htslib.org/</td><td></td></tr> <tr><td>VarScan</td><td>Washington University, St Louis</td><td>http://varscan.sourceforge.net/</td><td></td></tr> <tr><td>MUMmer</td><td>JCVI & Univ Hamburg</td><td>http://mummer.sourceforge.net/</td><td></td></tr> <tr><td>pSAG1::CAS9-U6::sgUPRT</td><td>Addgene</td><td>Plasmid #54467</td><td>T. gondii UPRT 유전자를 절단하기 위한 CRISPR 플라스미드</td></tr><tr><td>pSAG1::CAS9-U6::sg290860-6</td><td>Addgene</td><td>Plasmid #59855</td><td>T. gondii CRISPR plasmid to cut the TG*_290860 SNR1 gene</td></tr><tr><td>pUPRT::D HFR-D</td><td>Addgene</td><td>Plasmid #58528</td><td>DHFR* 미니 유전자</td></tr><tr><td>Q5 부위 지시 돌연변이 유발 키트용 템플릿&nbsp;</td><td>New England Biolabs</td><td>E0552S</td><td></td></tr><tr><td>QIAprep 스핀 미니프렙 키트</td><td>QIAGEN</td><td>27106</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop 2000</td><td>Thermo Scientific</td><td>ND-2000</td><td></td></tr><tr><td>LB 육수</td><td>Fisher Scientific</td><td>DF0446-07-5</td><td></td></tr><tr><td>염화칼륨</td><td>시그마 알드리치</td><td>P9541</td><td></td></tr><tr><td>염화칼슘</td><td>시그마 알드리치</td><td>746495</td><td></td></tr><tr><td>인산칼륨 일염기</td>성 <td>시그마 알드리치</td><td>P9791</td><td></td></tr><tr><td>인산칼륨 이염기성</td><td>시그마 알드리치</td><td>P5504</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>시그마 알드리치</td><td>E5134</td><td></td></tr><tr><td>염화마그네슘</td><td>시그마 알드리치</td><td>M1028</td><td></td></tr><tr><td>아데노신 트리포시페이트(ATP)</td><td>시그마 알드리치</td><td>A6419</td><td></td></tr><tr><td>L-글루타티온(GSH)</td><td>시그마 Aldrich</td><td>G4251</td><td></td></tr><tr><td>ECM 830 전기천공법 시스템</td><td>BTX</td><td>45-0002</td><td></td></tr><tr><td>전기천공법 큐벳&nbsp; 4mm</td><td>하버드 장치</td><td>45-0126</td><td></td></tr><tr><td>Crytal Violet</td><td>Alfa Aesar</td><td>B21932-14</td><td></td></tr><tr><td>6-웰 TC 플레이트</td><td>Corning</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>24-well TC 플레이트</td><td>Corning</td><td>353935</td><td></td></tr><tr><td>커버 유리 12mm 라운드</td><td>VWR International</td><td>89015-724</td><td></td></tr><tr><td>96-well TC 플레이트</td><td>Corning</td><td>353075</td><td></td></tr><tr><td>Gibson Assembly 클로닝 키트 (다중 단편)</td><td>New England Biolabs</td><td>E5510S</td><td></td></tr><tr><td>Q5 고화질 중합효소&nbsp;</td><td>New England Biolabs</td><td>M0491S</td><td></td></tr><tr><td>피리메타민</td><td>TCI AMERICA</td><td>P2037-1G</td><td>피리메타민 내성 기생충 사용 시 큐레이션 사용 - 프로토콜 참조</td></tr></tbody></table>

약물 저항 유전자를 확인하기위한 qtl 매핑 및 crispr / cas9 편집<em&gt; toxoplasma gondii</em

QTL Mapping and CRISPR/Cas9 Editing to Identify a Drug Resistance Gene in Toxoplasma gondii

과학적 지식은 본질적으로 사용 가능한 기술과 방법에 연결됩니다. 이 기사에서는 Apicomplexan 기생충 Toxoplasma gondii 에서 약물 내성 유전자를 확인하고 검증 할 수있는 두 가지 방법, 즉 Whole Genome Sequence (WGS) 기반 유전지도를 사용한 Quantitative Trace Locus (QTL) 매핑 방법과 그 방법 (CRISPR) / Cas9 기반 유전자 편집. QTL 매핑의 접근법은 게놈 영역 (들)과 표현형 사이에 상관 관계가 있는지를 테스트 할 수있게합니다. 재조합 십자가의 자손을 기반으로 한 유전지도 인 QTL 스캔을 수행하기 위해서는 두 가지 데이터 세트가 필요하며 그 십자가의 자손 각각에서 평가 가능한 정량화 가능한 표현형이 필요합니다. 이러한 데이터 세트는 표현형과 관련된 중요한 유전자좌를 확인하기 위해 QTL 스캔을 생성하는 R / qtl 소프트웨어와 호환되도록 포맷됩니다. 검색을 크게 줄일 수 있지만가능성있는 후보자의 후보자 인 QTL은 인과 관계 유전자를 식별 할 필요가있는 다수의 유전자를 포함하는 영역에 걸쳐있다. 자손의 WGS를 갖는 것은 유전자 수준에서 원인 약 저항성 돌연변이를 확인하는 데 중요했습니다. 일단 확인되면, 후보 돌연변이는 약물에 민감한 기생충의 유전자 조작에 의해 확인 될 수 있습니다. T. gondii 를 유 전적으로 수정하는 가장 쉽고 효율적인 방법은 CRISPR / Cas9 시스템입니다. 이 시스템은 단일 플라스미드로 암호화 된 단지 2 가지 구성 요소, 게놈 타겟에 상보적인 20bp 서열을 포함하는 단일 가이드 RNA (gRNA) 및 표적에서 이중 가닥 DNA 브레이크 (DSB)를 생성하는 Cas9 엔도 뉴 클레아 제로 구성되며, 수리는 브레이크 사이트 주변의 서열의 삽입 또는 결실을 허용한다. 이 기사는 sinefungin 저항성을 담당하는 유전자를 확인하고 형질 전환 기생충을 구축하기 위해 CRISPR / Cas9 기반 게놈 편집 도구를 사용하는 상세한 프로토콜을 제공합니다.

이 기사에서는 약물 내성을 일으키는 유전자를 확인하기 위해 연속적으로 사용할 수있는 몇 가지 방법에 대해 자세히 설명합니다 ( 그림 1 ). ME49-FUDR r X VAND-SNF r 십자가의 24 자손은 의정서 1에 기술 된대로 sinefungin에 대한 저항성에 대한 평가를 받았다. 유전지도와 자손의 SNF r 표현형을 이용하여 QTL 스캔을 R / qtl - 프로토콜 2 ( 그림 2 ). 이것은 대략 1 Mbp에 걸친 염색체 IX에 하나의 중요한 피크를 초래했습니다. 인과 돌연변이가있는 것은이 지역에있다. 원인 돌연변이를 확인하기 위해 Bowtie2 - Protocol 3.1을 사용하여 자손에서 WGS 읽기를 VAND-SNF 의 참조 게놈에 정렬하고, VarScan mpileup2snp - Protocol 3.2를 사용하여 SNP를 호출했으며 VAND 게놈의 QTL 위치를 MUMmer- Protoc3.3. QTL 유전자좌 내의 자손 SNP를 추출하여 SNF r 자손이 SNP를 가지고 SNF가없는 패턴을 찾았는데, 이것은 자손 SNP가 VAND-SNF 레퍼런스 게놈과 비교하여 얻어 졌기 때문에 가능하다 ( 그림 3 ) . 하나의 SNP만이 SNR1 이라는 추정 아미노산 수송 체 유전자에서 조기 종료 코돈을 초래하는이 패턴과 일치했다. SNR1 이 SNF r 내성 유전자임을 확인하는 것은 CRISPR / Cas9 시스템을 사용하여 수행 하였다. T. gondii 유전자 편집을 위해 조작 된 새로운 CRISPR / Cas9 플라스미드는 프로토콜 4 ( 그림 4A )에서 확인 된 SNF r 돌연변이 근처의 SNR1 유전자를 표적으로하는 gRNA를 포함하도록 만들어졌다. SNR1 표적화 CRISPR / Cas9 플라스미드를 SNFs WT 기생충 균주 내로 전기 천공시키고, 저항성 돌연변이 체를 컬트0.3 μM sinefungin에서 측정 하였다. CRISPR / Cas9 플라스미드를 표적으로하는 UPRT로 전기 천공 시켰을 때 어떠한 SNF r 기생충도 수득되지 않았다. 몇몇 SNF r CRISPR 돌연변이 체를 클로닝하고 SNR 1 gRNA 표적 주위의 영역을 서열 분석 하였다. 각각의 돌연변이는 SNR1 유전자의 암호화 서열을 파괴하는 indel을 가지고있다 ( 그림 4B ). 이 방법은 NHEJ ( 그림 5) 또는 HR ( 그림 6 ) - 보충 파일 2 를 통해 SNR1 유전자좌에 표적 생성물 을 삽입하는 데에도 사용할 수 있습니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/55185/55185fig1.jpg" /> 그림 1 : 프로토콜에 설명 된 실험을위한 도식 워크 플로. ME49-FUDR r X VAND-SNF r 십자 표시를 사용하여 SNF r 유전자를 확인하고 확인하는 주요 단계는 t에 요약 된 적절한 프로토콜그의 기사. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/55185fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/55185/55185fig2.jpg" /> 그림 2 : SN / R 표현형에서 QTL 스캔을 실행하기위한 R / qtl 명령. 프로토콜 2에서 설명 된 명령은 qtl 패키지를 사용하여 R로 실행됩니다. 대표적인 명령과 플롯이 표시됩니다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/55185fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/55185/55185fig3.jpg" /> 그림 3 : 인과 SNP의 위치. 자손 WGS 읽기는 Bowtie 2를 사용하여 VAND-SNF 의 참조 게놈에 맞추어졌고, VarScan과 함께 SNP가 호출되었으며,<html> MUMmer로 식별되는 VAND QTL 유전자좌. QTL 유전자좌 내에 위치한 SNP를 스프레드 시트로 가져와 인과 관계의 SNP를 확인했다. SNF r 자손 (황색), SNF s 자손 (녹색), SNF r SNP (적색) ( 데이터 파일 3 참조). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/55185fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/55185/55185fig4.jpg" /> 그림 4 : SNR1 을 SNF r 유전자로 확인 CRISPR / Cas9를 사용. ( A ) CRISPR / Cas9는 SNR1 유전자좌에서 indel 돌연변이 (녹색)를 유도했다. ( B ) 두 개의 다른 SNR1 특이 CRISPR 플라스미드 (각각 C5 및 C6)에 의해 야기 된 SNR1의 대표 돌연변이. RH는 WT strain이고 C5와 C6은 SNF r 돌연변이이다. (B는 참고 문헌s = &quot;xref&quot;&gt; 2). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/55185fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/55185/55185fig5.jpg" /> 그림 5. CRISPR / Cas9를 이용한 삽입 돌연변이 유발. ( A ) CRISPR / Cas9 매개 사이트 - 특정 통합에 의해 SNR1 유전자좌에 보완 또는 형질 전환 유전자 삽입. 삽입 된 DHFR * 미니 유전자의 2 가지 가능한 배향 및 동정을 위해 사용 된 프라이머, F1 / 2 및 R1 / 2는 진단용 PCR에서 사용되는 올리고의 프라이밍 위치를 나타낸다. ( B ) 한 snr1 :: DHFR * 클론, RH의 진단 PCR은 WT 컨트롤로 사용됩니다. GRA1p의 PCR은 게놈 DNA의 품질을 주형으로하는 대조군으로 포함됩니다. 별표는 비특이적 인 띠가있는 레인을 나타낸다 (그림 5B는 참조 번호ce 2 ). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/55185fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="도 6" src="/files/ftp_upload/55185/55185fig6.jpg" /> 도표 6 : CRISPR / Cas9를 사용하여 유전자 녹아웃. T. gondii의 CRISPR / Cas9 매개 동종 유전자 대체를위한 고전적인 디자인. 삽입 된 도입 유전자의 방향은이 경우 고정됩니다. F1 / R1, F2 / R2 및 F3 / R3은 진단용 PCR에 사용되는 올리고의 프라이밍 부위를 나타낸다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/55185fig6large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 데이터 파일 1 : ME49-FUDR r X VAND-SNF r 크로스 파일 f또는 R / qtl, &quot;csv&quot;형식으로 사용하십시오. format = &quot;csv&quot;옵션으로 R / qtl에로드 할 수있는 하나의 .csv 파일. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/Data_File_1.csv" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a> 데이터 파일 2 : (chrid txt, genotype txt, markerpos.txt, mname.txt, phenonames.txt 및 phenos.txt). ME49-FUDR r X VAND-SNF r R / qtl에서 사용하기위한 크로스 파일, &quot;gary&quot;형식. 6 개의 .txt 파일은 R / qtl에서 &quot;gary&quot;형식으로로드 할 수 있습니다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/Data_File_2.zip" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a> 데이터 파일 3. SNF 전체에 Progeny SNP가있는 스프레드 시트 <strong&gt; QTL 로커스. 자손 SNP가있는 워크 시트 1 개와 부모의 표현형 데이터와 십자가의 자손이있는 두 번째 워크 시트가 들어 있습니다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/Data_File_3.xlsx" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a> 보충 파일 1 : 추가 프로토콜 세부 사항. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/Supplementary_File_1_-_101916.docx" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a> 보충 파일 2 : 프로토콜 5 - 유전 적 보완 또는 형질 전환 균주 건설을위한 SNR1 유전자 좌 에서 음성 선택의 이용 . <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55185/Supplementary_File_2_-_101916.docx" target="_blank">이 파일을 다운로드하려면 여기를 클릭하십시오.</a></a>

Toxoplasma gondii 에서 약물 내성 유전자를 확인하는 데 유전지도를 기반으로하는 QTL 매핑을 사용하는 방법과 게놈 타겟을 효율적으로 편집하는 CRISPR / Cas9 시스템으로 어떻게 검증 할 수 있는지에 대한 세부 정보가 제공됩니다. 약물 내성 유전자.

약물 저항 유전자를 확인하기위한 QTL 매핑 및 CRISPR / Cas9 편집<em&gt; Toxoplasma gondii</em

Scientific knowledge is intrinsically linked to available technologies and methods. This article will present two methods that allowed for the ...

본 양적 형질 유전자좌(quantitative trait locus) 매핑 및 CRISPR/Cas9 유전자 편집 방법론의 전반적인 목표는 Toxoplasma의 sinefungin 내성에 관여하는 유전자를 식별하고 이를 검증하는 것입니다. 이러한 방법들은 변이의 유전적 기초, 병원성 및 약물 내성과 같은 기생충학의 핵심 질문들에 답하는 데 도움을 줄 수 있습니다. 이 기술들의 주요 장점은 정밀한 QTL 분석을 위해 전장 유전체 시퀀싱 데이터를 사용하고, Toxoplasma 내의 효율적인 유전적 조작을 위해 CRISPR/Cas9 유전자 편집을 활용한다는 점입니다.해당 절차는 제 실험실의 연구원으로 계신 Robin Powell 박사님께서 시연하시겠습니다. Toxoplasma gondii 기생충은 D10 배지가 담긴 T25 플라스크에 분주된 단층 배양된 인간 포피 섬유아세포 또는 HFF 세포에서 배양합니다. 개별 자손 클론의 sinefungin 내성을 테스트하려면, 대부분의 기생충이 숙주 세포를 용해시키기 시작할 때까지 각 클론을 높은 기생충 밀도로 배양하십시오.텍스트 프로토콜에 설명된 대로 기생충 용액을 준비한 후, 피펫을 사용하여 2.5 × 10⁵마리의 기생충을 0.3 µM의 sinefungin 약물이 포함된 D10 배지가 들어 있는 새로운 T25 HFF 배양 플라스크에 옮깁니다. 기생충을 37 °C, 5% CO2 조건에서 7~10일 동안 배양합니다. 도립 위상차 현미경으로 HFF 세포 단일층을 관찰하고, sinefungin 약물에서의 성장 표현형에 대해 자손을 점수화합니다.예를 들어, 성장이 없는 경우에는 0점으로, 단층의 성장 및 용해가 있는 경우에는 1점으로 점수를 매깁니다. 모든 자손의 점수 산정이 완료되면, 해당 데이터는 양적 형질 locus 또는 QTL 매핑을 위한 이진 표현형으로 사용됩니다. 원인 돌연변이를 식별하기 위해, 자손의 전장 유전체 시퀀싱 리드를 sinefungin 민감성 van strand 참조 유전체에 정렬하고, SNP를 콜링하며, QTL locus를 스캔하여 sinefungin 내성과 관련된 SNP를 찾습니다.SNR1이 sinefungin 저항성 유전자임을 확인하기 위해, CRISPR/Cas9으로 유도된 indel 변이를 사용하여 야생형 sinefungin 민감성 배경에서 SNR1을 불활성화하는 실험을 수행합니다. SNR1 특이적 CRISPR 플라스미드를 구축하기 위해, 특이적으로 설계된 프라이머를 이용한 PCR 기반 부위 특이적 돌연변이 유발법(site directed mutagenesis)의 템플릿으로 UPRT 타겟팅 CRISPR 플라스미드를 사용합니다. 목적 유전자가 포함된 CRISPR 플라스미드 돌연변이 산물을 E.Coli 세포에 형질전환합니다.그 후 개별 클론을 선택하여 LB 배지에서 배양하고, 추출한 플라스미드를 DNA 겔 전기영동으로 분석하여 크기를 확인합니다. 이어서 플라스미드 서열 분석을 통해 표적 특이적 가이드 RNA 서열을 확인합니다. 표적 특이적 CRISPR 플라스미드가 Toxoplasma 세포 내로 도입되면, 가이드 RNA가 Cas9 핵을 표적으로 유도하여 표적 내 특정 유전자좌에 DNA 이중 가닥 절단을 일으킵니다.그 후 DNA 절단 부위는 오류가 발생하기 쉬운 비상동 말단 결합(non-homologous end joining) 활성에 의해 수선되며, 이는 표적 유전자의 인델(indel) 돌연변이를 유발합니다. SNR1 특이적 CRISPR 플라스미드를 기생충에 형질전환시키기 2~3일 전에, 2~3일 이내에 HFF 세포 용해가 70%에서 80%까지 이루어질 수 있도록 HFF 세포 단일층이 형성된 T25 플라스크에 충분한 양의 기생충을 첨가합니다. 도립 위상차 현미경으로 배양 상태를 관찰하여 HFF 단일층의 70%에서 80%가 기생충에 의해 용해되었는지 확인합니다.피펫을 사용하여 배지를 조심스럽게 제거하고, 5 mL의 cytomix 버퍼로 플라스크 표면의 세포를 세척합니다. 기생충 용액을 15 mL 원추형 튜브로 옮깁니다. 22 gauge 둔탁한 바늘이 장착된 10 mL 주사기로 기생충 용액을 2~3회 통과시킵니다.HFF 세포와 세포 파편을 제거하기 위해, 기생충 용액을 공극 크기가 3 µm인 막을 통해 새 원추형 튜브로 여과합니다. 여과된 기생충을 400 ×g에서 10분 동안 원심 분리하여 펠렛화합니다. 상층액을 따라내고 펠렛화된 기생충을 10 mL의 cytomix 버퍼로 재부유시킵니다.헤모사이토미터를 사용하여 기생충 농도를 결정하기 위해 10 µL의 aliquot을 취합니다. 나머지 현탁액을 400 ×g에서 10분 동안 원심분리하여 다시 펠렛화합니다. 상층액을 제거하고 펠렛을 믹스 버퍼에 재현탁하여 4 × 10⁷ parasites/mL의 밀도로 맞춥니다.4 mL 갭 큐벳에 기생충 용액 250~300 µL와 CRISPR 플라스미드 7.5 µg, ATP 6 µL 및 글루타치온 6 µL를 혼합합니다. T. gondii 형질전환을 위한 표준 절차에 따라 기생충을 전기천공합니다. CRISPR 플라스미드가 다른 부위를 표적으로 하는 별도의 전기천공 과정을 음성 대조군으로 포함하십시오.전기천공된 기생충을 HFF 세포가 파종된 T25 플라스크에서 37 °C로 이틀 동안 배양합니다. 유도된 돌연변이를 확인하는 절차를 시작하려면, 먼저 플라스크 내의 배지를 0.3 µM의 sinefungin이 포함된 5 mL의 D10으로 교체합니다. 내성 풀(pool)이 안정될 때까지 기생충과 선택 배지를 최소 3 세대(passage) 동안 유지합니다.음성 대조군에서는 기생충의 성장이 나타나지 않은 반면, 실험군에서는 강력한 기생충 성장이 관찰된 것으로 확인되었습니다. 단일 클론 스트랜드를 얻기 위해 sinefungin 내성 풀을 서브클론합니다. 갓 방출된 기생충을 수집하여 3µm 멤브레인 필터로 정제한 후, 150µL의 D10 배지에서 HFF 세포가 합류(confluent)된 96웰 플레이트에 서브클론합니다.서브클로닝 배양물을 CO2 배양기 내 37 degree celsius에서 7~10일 동안 플레이트를 건드리지 않은 상태로 배양합니다. 7~10일 후, 도립 위상차 현미경으로 96-well 플레이트를 확인합니다. 단 하나의 플라크만 포함된 웰을 찾아 해당 웰을 표시합니다.각 웰의 세포를 HFF 세포가 파종된 24웰 플레이트로 옮깁니다. 37 °C에서 배양합니다. 기생충이 단일층을 용해시키기 시작하면, 균주 유지를 위해 기생충 용액 50 µL를 새 웰로 옮기고, 나머지는 게놈 DNA 분리를 위해 수확합니다.남은 기생충 용액을 1000 ×g에서 10분간 원심분리합니다. 침전된 기생충을 PBS로 세척한 후 다시 원심분리합니다. 상용 키트를 사용하거나 가열하여 침전된 세포에서 게놈 DNA를 분리하고, 기생충을 50에서 100 µL의 PBS에 재현탁합니다.마지막으로, 시퀀싱을 위한 SNR1 유전자 단편을 얻기 위해 텍스트 프로토콜에 기술된 대로 PCR을 수행합니다. 부모 세대인 FUDR 내성 ME49 및 sinefungin 내성 van 균주를 이용한 교배 유도 후손의 sinefungin 약물 내성 여부를 HFF 단층의 성장 및 용해 상태를 통해 확인하였습니다. QTL 스캔 결과, 9번 염색체에서 약 1 MBP에 걸친 하나의 유의미한 피크가 나타났습니다.인과적 돌연변이는 이 영역에 위치합니다. 전장 유전체 시퀀싱을 통해 이 돌연변이를 식별했습니다. QTL 궤적 내의 자손 SNP들을 스프레드시트로 가져와, 노란색으로 표시된 sinefungin 저항성 자손은 SNP를 가지고 있고 녹색으로 표시된 sinefungin 민감성 자손은 그렇지 않은 패턴이 있는지 스캔했습니다.SNR1이라는 추정 아미노산 수송체 유전자에서 조기 종결 코돈을 유발하는 이 패턴과 일치하는 SNP가 단 하나 붉은색으로 표시되었습니다. SNR1을 표적으로 하는 CRISPR Cas9 플라스미드를 sinefungin 민감성 야생형 기생충 균주에 전기천공법으로 도입한 후 sinefungin에서 배양했을 때, 내성 돌연변이체가 얻어졌습니다. 반면, 다른 부위를 표적으로 하는 CRISPR 플라스미드에서는 sinefungin 내성 기생충이 얻어지지 않았습니다.SNR1 가이드 RNA 표적 주변 영역에서 여러 sinefungin 내성 CRISPR 돌연변이체가 클로닝되었으며 해당 서열이 분석되었습니다. RH 야생형 균주와 C5 및 C6 sinefungin 내성 돌연변이체의 대표적인 결과는 각 돌연변이체에서 SNR1 유전자의 코딩 서열을 파괴하는 indel이 발생했음을 보여줍니다. Toxoplasma gondii는 인간에게 감염될 수 있어 취급 시 위험할 수 있다는 점에 유의하십시오.본 절차를 수행하는 동안 기생충과 접촉할 수 있는 날카로운 도구의 적절한 취급과 같은 주의가 필요합니다. 이 절차 이후에는 유전적 상보성 시험이나 형질전환 기생충 제작과 같은 추가적인 질문에 답하기 위해 CRISPR/Cas9 매개 부위 특이적 외래 유전자 삽입과 같은 다른 방법들을 수행할 수 있습니다. 개발 이후, 이 기술은 분자 기생충학 분야의 연구자들이 Toxoplasma gondii의 복잡한 생물학적 특성과 병원성 기전을 탐구할 수 있는 길을 열어주었습니다.이 영상을 시청하신 후에는 게놈 시퀀싱 데이터를 이용한 QTL 분석 수행 방법과 CRISPR/Cas9 유전자 편집을 이용한 Toxoplasma gondii의 유전적 대사 분석 방법에 대해 충분히 이해하시게 될 것입니다.

qtl-mapping-crisprcas9-editing-to-identify-drug-resistance-gene

Research

연구

JoVE Journal

Genetics

유전학

앞으로 유전학이 어떻게 분자 수준을 해명하기위한 강력한...

분리하기위한 유전자 스크린 Toxoplasma gondii 호스트 세포 재현의 돌연변이

여기에서 우리는 유형 I 및 유형 II를 사용하는...

유전 조작<em&gt; Δku80</em의 기능 게놈 분석을위한&gt; 균주<em&gt; 톡소 포자충</em

우리는 화학 돌연변이 및 전체 게놈 시퀀싱에 따라 클라미디아의 유전자 분석을 수행하는 방법을 설명합니다. 또한, 감염된 세포 내에서 DNA 교환을위한 시스템은 유전자 매핑에 사용할 수있는 설명합니다. 이 방법은 변환 시스템 및 분자 유전 학적 도구가 부족한 미생물 시스템에 광범위하게 적용 할 수있다.

앞으로 유전 접근<em&gt; 클라미디아의 trachomatis</em

Forward genetics는 세포 내 병원체에서 세포 자율 면역에 대한 저항에 중요한 유전자를 식별하는 강력한 접근 방식입니다. 현재 접근 방식은 선천성 면역 세포, 특히 대식세포를 사용하여 면역 회피에 중요한 새로운 Toxoplasma gondii 유전자를 식별합니다.

앞으로 유전학 식별하는 대 식세포를 사용하여 화면<em&gt; 톡소 포자충</em&gt; 유전자 중요 저항이하는 IFN-γ 의존 세포 자치 내성

우리 glmS생성 하는 방법에 설명- 변형 체 falciparum 게놈 편집 CRISPR/Cas9를 사용 하 여 조건부 최저의 돌연변이 체를 기반으로.

CRISPR/Cas9 유전자 인간 말라리아 기생충의 조건부 돌연변이 게 P. falciparum 에 편집

여기에서, 우리는 CRISPR/Cas9 시스템을 사용하여, Trypanosoma cruzi의 세포외 amastigote로 유전자 녹아웃을 소개하는 프로토콜을 기술합니다. 성장 표현형은 축세포 배양의 세포 계수 또는 숙주 세포 침입 후 세포 내 아마스티고테의 증식에 의해 추적될 수 있다.

CRISPR/Cas9 시스템을 사용하여 트리파노소마 크루지의 아마스티고테 스테이지에 유전자 녹아웃 직접 도입

여기서 기재된 것은 플로시드 카세트 알레릭 교환 돌연변이, FLAEM을 사용하여 클라미디아 트라코마티스에서 표적화된, 마커리스 유전자 결실을 위한 방법이다.

클라미디아 트라코마티스의 플록세드 카세트 알레릭 교환 돌연변이에 의한 마커리스 유전자 결실

여기서 제시된 프로토콜은 루시퍼라제 기반 성장 분석을 사용하여 톡소플라즈마 곤디의 시험관내 세포내 성장에 대한 화학화합물의 억제 효능을 평가하는 프로토콜이다. 이 기술은 해당 표적 유전자의 유전적 결실에 의한 억제 특이성을 확인하는 데 사용된다. TgCPL 프로테아제에 대한 LHVS의 억제는 예로 평가된다.

루시퍼라제 기반 성장 분석을 사용하여 세포내 톡소플라즈마 곤디성장에 대한 화학적 억제제 효율 결정

이 프로토콜의 목표는 조립된 리보뉴클레오단백질 복합체와 스크리닝을 위한 dpy-10 공동 CRISPR 마커를 사용하여 C. elegans 게놈의 원활한 CRISPR/Cas9 편집을 가능하게 하는 것입니다. 이 프로토콜은 삽입, 삭제, 유전자 대체 및 코돈 대체를 포함하여 C. elegans에 있는 유전 수정의 각종을 만들기 위하여 이용될 수 있습니다.

CRISPR/Cas9 Dpy-10 공동 CRISPR 스크리닝 마커 및 조립된 리보뉴클레오단백질 복합체를 사용하여 C. elegans rbm-3.2 유전자의 편집.

AviTag 특이적 위치 제한 조명 증강 비오티닐화(ALIBi)는 리보솜의 아세포 집단을 표지하고 친화력을 정제하기 위해 개발된 새로운 광유전학 활성화 방법으로, 하위 시퀀싱과 단백질체 분석을 위해 개발되었습니다.

재조합 펩타이드 태그 특이적 위치 제한 조명 증강 비오티닐화를 기반으로 한 세포 내 리보솜 하위 집단의 분리

화학 유전학은 표적 유전자좌에서 다른 곁사슬을 포함하는 아미노산으로 게이트키퍼 잔기를 치환하는 것을 포함합니다. 여기에서 우리는 cdpk1 의 hypomorphic 대립 유전자를 포함하는 돌연변이 기생충을 생성하고 돌연변이 배경에서 기생충이 채택한 보상 경로를 확인했습니다.

식물 유사 키나아제의 저형성 대립유전자를 품고 있는 돌연변이 말라리아 기생충의 보상 경로 개발 이해

배우세요 Toxoplasma gondii의 사이네푼진 내성 유전자를 QTL 매핑과 CRISPR/Cas9 유전자 편집으로 확인하는 방법입니다. 이 기술은 기생충학 연구에서 약물 내성 메커니즘을 규명하는 데 활용됩니다.

약물 저항 유전자를 확인하기위한 QTL 매핑 및 CRISPR / Cas9 편집

더 많은 동영상 탐색