2017년 4월 3일
여기서, 우리는 인간 탯줄 (UC)와 코드에 태아 태반 샘플 분리 용 (CL), 왓슨의 젤리 (WJ), 코드 - 태반 접합부 (CPJ) 태아 태반 (FP) 라이닝 박리를위한 프로토콜을 제시 상기 이식편 배양 기술을 이용하여 중간 엽 간질 세포 (MSC들)의 특성화.
이 프로토콜의 전반적인 목표는 4개의 뚜렷한 주산기 조직 공급원, 탯줄 내벽, 와튼 젤리, 탯줄-태반 접합부 및 태아 태반에서 중간엽 기질 세포를 분리하는 것입니다. 이 방법은 비침습적으로 특별한 품질의 중간엽 줄기세포를 획득함으로써 줄기세포 생물학, 대체 의학 분야를 발전시키는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 뚜렷한 주산기 조직 공급원에서 많은 수의 고품질 균질한 세포 집단을 생산적으로 산출한다는 것입니다.
이 기술에서 유래한 다강력 탯줄 중간엽 기질 세포는 성체 조직에서 분리된 중간엽 줄기세포보다 원시적이기 때문에 다양한 질병 및 장애를 치료하는 데 사용할 수 있습니다. 이 방법은 탯줄과 태반의 다양한 분절과 특정 틈새에서 중간엽 기질 세포의 특성에 대한 통찰력을 제공할 수 있습니다. 먼저 바이오 안전 캐비닛의 얼음 위에 150mm 페트리 접시에 샘플을 넣고 바늘과 주사기를 사용하여 얼음처럼 차가운 PBS로 조직을 여러 번 헹굽니다.
모든 혈전이 제거되면 샘플을 주의 깊게 검사하여 다른 해부학적 영역을 식별합니다. 그런 다음 집게를 사용하여 탯줄의 태아 끝을 잡고 가위를 사용하여 탯줄-태반 접합부 상단을 조심스럽게 절개합니다. 탯줄-태반 접합부와 태반을 분리하기 위해 접합부 아래를 두 번째로 절개합니다.
그리고 분리된 조직을 개별 페트리 접시로 나눕니다. 다음으로, 탯줄을 세로로 잘라 상피를 방해하지 않고 혈관과 주변 와튼 젤리를 완전히 노출시킵니다. 메스를 사용하여 와튼 젤리를 양막하의 혈관과 상피에서 긁어냅니다.
그런 다음 혈관을 제거하고 혈관 아래 및 주변에 남아 있는 혈관 주위 젤리를 Wharton's 젤리 접시로 옮기고 남은 탯줄 내벽 조직을 자체 접시에 넣습니다. 모든 조직을 해부한 후 각 접시의 PBS를 3-5밀리리터의 트립신으로 교체하고 가위를 사용하여 각 조직 샘플을 1-2밀리미터 조각으로 잘라 섭씨 37도에서 5%의 이산화탄소에서 30분 동안 배양합니다. 위상차 현미경을 사용하여 조직에서 세포의 방출을 시각화하여 부분 소화를 관찰합니다.
부분 분해 기간이 끝나면 동일한 부피의 배양 배지로 트립신을 중화하고 샘플을 개별 50ml 원뿔형 튜브로 옮깁니다. 조직 조각이 3분 동안 가라앉도록 합니다. 그런 다음 상층액을 조심스럽게 흡인하고 샘플당 부분적으로 소화된 조직 조각 15-20개를 개별 75제곱센티미터 조직 배양 플라스크에 플레이트합니다.
다음으로, 섭씨 37도에서 2-3일 동안 배양하기 위해 9ml의 배양 배지를 추가합니다. 3일 후 배양 배지를 변경하고 세포 성장에 대한 위상차 현미경으로 xplants를 검사합니다. 세포 성장이 70% 농도에 도달하면 플라스크당 1-2밀리리터의 트립신 용액으로 세포를 해리하고 플라스크를 회전시켜 효소 용액으로 균일하게 코팅한 다음 섭씨 37도에서 3분 동안 배양
물을 배양합니다.그런 다음 1-2 밀리리터의 배양 배지로 반응을 중화하십시오. 원심 분리에 의하여 세포를 모으고, subculture를 위한 배양 매체에 있는 펠릿을 1 곱하기 10 센티미터 제곱한 파종 조밀도 당 4번째 세포에 재현탁시키. 탯줄 내벽과 Wharton's jelly culture의 세포는 각각 59 및 80 콜로니의 콜로니 형성 효율 값을 나타냅니다.
그러나 탯줄-태반 접합 세포의 집락 형성 효율 값은 골수 중간엽 줄기 세포에서 관찰된 것과 유사하여 탯줄-태반 접합 유래 세포가 더 높은 증식 및 자가 재생 능력을 가지고 있음을 시사합니다. 이러한 주산기 조직에서 분리된 단일 세포 현탁액의 메트릭 분석은 4가지 조직 공급원 모두에서 특정 중간엽 줄기 세포 마커에 대한 양성 세포의 비율이 표준 골수 유래 중간엽 세포에 의해 발현되는 비율과 유사하다는 것을 나타냅니다. 그러나 형광 강도 비율의 중앙값은 Wharton's jelly and cord-placenta junction derived cells(와튼 젤리와 탯줄-태반 접합 유래 세포)가 태아 태반 유래 세포의 탯줄 내벽(code lining)과 매우 유사하거나 더 높다는 것을 나타냅니다.
흥미롭게도, 다양한 콜로니 형성 효율 값에도 불구하고, 서로 다른 주산기 출처의 모든 세포는 테스트된 모든 다능성 마커에 대해 가장 높은 수준의 발현을 나타내는 코드-태반 접합부 유래 중간엽 기질 세포를 제외하고 정량적 RTPCR 분석에 의해 유사한 수준의 다능성 마커를 발현합니다. 또한, 모든 주산기 공급원에서 분리된 중간엽 기질 세포는 지방형성(adipogenic), 연골형성(chondrogenic) 및 골형성 세포(osteogenic cell type)로 쉽게 분화할 뿐만 아니라 입증된 삼계통 분화(trilineage differentiation)를 제공합니다. 분화 가능성은 중간엽 기질 세포 공급원에 따라 다릅니다.
이 기술을 숙달하면 효율적으로 수행한다면 2-3시간 안에 완료할 수 있습니다. 이 절차를 시도하는 동안 측면 기술을 연습하고 조직 소스 간의 교차 오염을 피하는 것이 중요합니다. 이 기술은 연구자들이 주산기 조직에 있는 줄기세포 틈새의 특성을 탐구할 수 있는 길을 열었습니다.
본 프로토콜은 외식편 배양법(explant culture technique)을 이용하여 중간엽 기질 세포(MSCs)를 분리하기 위한 인간 제대 및 태아 태반의 해부 과정을 설명합니다. 이 방법은 서로 다른 주산기 조직 nguồn에서 유래한 MSCs의 특성 분석을 가능하게 하여, 줄기세포 생물학의 발전에 기여합니다.
본 프로토콜은 다양한 주산기 조직원으로부터 중간엽 기질 세포(MSCs)를 분리하는 방법을 제공하며, 이는 골수 유래 MSCs를 대체할 수 있는 비침습적이고 윤리적으로 유리한 대안이 됩니다. 탯줄-태반 접합부(CPJ), 와튼 젤리(WJ), 탯줄 내피(CL) 및 태아 태반(FP)과 같은 해부학적 영역을 비교함으로써, 본 방법은 재생 의학 파이프라인의 타겟 검증 및 기전적 리스크 감소를 지원합니다. CPJ 유래 MSCs에서 관찰되는 더 높은 콜로니 형성 효율과 다능성 마커 발현은 세포 치료 적용에 대한 예측 신뢰도를 제공하여, 리드 물질 식별 및 포트폴리오 선별에 도움을 줍니다.
이 방법은 초기 발견 단계부터 선도 물질 확인 및 전임상 단계에 이르는 발견 연속체에 통합되어, 해부학적으로 분해된 MSC 분리를 통해 가설 검증, 경로 규명 및 생물학적 리스크 감소를 지원합니다.