Name: 설치류의 등쪽 뿌리 신경절의 척수 및 절연의 유압 압출 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-22T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 10 s
Description: 학습하세요 설치류의 척수 및 등쪽 뿌리 신경절(DRG)을 유압 압출법으로 신속하게 분리하는 방법을. 이 기술은 조직 손상을 최소화하며 신경생물학 연구에 필수적인 정확한 DRG 식별을 가능하게 합니다.

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촬영과 편집을 해주신 오르후스 대학교의 David Kiel에게 감사드립니다. VirtualDub 소프트웨어는 현미경 비디오 시퀀스 처리에 사용되었습니다. 장비를 제공해 주신 덴마크 중개 신경과학 연구소(Dandrite), Nordic EMBL Partnership, 오르후스 대학 연구 재단(Aarhus University Research Foundation), EU 7FP 프로젝트 PAINCAGE, Det Frie Forskningsrad(DFF) 및 룬드벡 재단(Lundbeck Foundation)에 자금을 지원해 주신 데 감사드립니다.

모든 동물은 덴마크어와 유럽 규정을 준수에서 처리되었다. 허가 번호 : 2012-15-2934. 척수 유압 압출 용 주사기 1. 준비 <ol><li> 성인 쥐를 들어, 10 ML의 주사기를 사용합니다. 성인 마우스를 들어, 5 ML의 주사기를 사용합니다. 새끼를 들어, 2.5 ML의 주사기를 사용합니다. </li><li> 이 주사기에 단단히 맞을 때까지 피펫 팁의 넓은 끝을 트리밍하여 2-200 μL 피펫을위한 보편적으로 적합한 비 필터 피펫 팁을 조정합니다. 주사기에 조정 피펫 팁을 배치합니다. 새끼를 들어, 조정 피펫 팁 대신 23 G 또는 유사한 바늘을 사용합니다. </li><li> 대기음 얼음처럼 차가운 멸균 PBS 추가로 사용할 때까지 얼음에 주사기를 둡니다. </li></ol> 2. 안락사 <ol><li> 이것이 불가능 압출 렌더링 척추 척추을 방해하므로, 자궁 경부 전위를 수행하지 마십시오. </li><li> 성인 쥐 / 마우스를 들면, CO 2 isoflu으로 가스를 사용 안락사RANE. 이러한 물질은 유해하다. 흄 후드에서 안락사를 수행하고 기관의 지침에 따라 물질을 처리합니다. (주의 : CO 2 : H280, P410, P403, 이소 플루 란 : H361d, P260, P281, P280) <ol><li> 설치류가 죽은 것을 보장하기 위해, 핀셋과 발을 곤란하게하여 반사의 부재를 확인합니다. 큰 가위를 사용하여 쥐 목을 벨. 새끼를 들어, 잘린에 의해 안락사. </li></ol></li></ol> 척추 3. 분리 <ol><li> 머리를 제어하기 위해 모피에 물을 뿌린다. </li><li> 가위를 사용하여, 원위 방향으로 척주를 따라 절개 모피 골반 뼈 과거 척주를 따라 양측에 절단하여 척추를 분리. 가위와 골반 뼈 말단 척수를 잘라. 참고 : 주동이의 - 꼬리 축이 프로토콜을 통해 근위 - 원위부 축으로 표시된다. <ol><li> proximal-을 피하기 위해 가위를 사용하여 척주 트림이들과 같은 대부분 말초 - 대부분의 지역이 너무 성공적으로 척수 압출 S 자형 척추를 렌더링 할 수 있습니다. 척수는 양쪽 끝에서 볼 수 있는지 확인하십시오. 척수가 보이지 않으면 척수가 표시 될 때까지, 가위 척추 트림. </li></ol></li></ol> 척수 4. 유압 압출 <ol><li> 얼음에 멸균 PBS로 가득 페트리 접시 (직경 100mm) 놓습니다. </li><li> 따라서 가능한 한 많은 척추를 교정, 척추의 절곡 부 (근위 가장 끝)에 검지 손가락을 적용하여 척추를 똑 바르게. <ol><li> 척추가 불가능 척수 압출 렌더링 중단 될 것 같은 새끼를 들어, 척추가 구부러지지 않도록. </li></ol></li><li> 피펫 팁 척추의 말단 가장 마지막에 (새끼 23 G 바늘, 성인 마우스에 대한 대안으로 18 G 바늘)를 삽입합니다. 올바르게 삽입하면 팁은 척수 공동으로 안정화된다. </li><li> 척추는 가능한 한 곧게되어 있는지 확인합니다. 꾸준한 압력을 적용하고 얼음에 페트리 접시에 척수을 돌출. 척수가 더 처리 될 때까지 PBS에서 유지하여 얼음에 습기가 유지되어 있는지 확인합니다. </li></ol><img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/55226/55226fig1.jpg" /> 그림 1 : 대표 척수. 유압 척수를 압출. 성인 쥐, 성인 마우스, 마우스 강아지 : 왼쪽에서 오른쪽으로. 요추 확대 한 상자로 표시. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55226/55226fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 등쪽 뿌리 신경절 5. 확인 (DRGs) <ol><li> 가위를 사용하여 두 개의 동일한 길이 부분의 척추를 분할하고 현미경으로 분할 척추를 배치합니다. </li><li> 하여 T13 척추 세그먼트를 식별<html> 척추 신경을 쓰는에 말초 가장 costae의 부착 위치를 찾는 것은 인근 늑간 신경과 costae을 혼동하지. 원위 가장 costae는 근위 T13 척추 세그먼트 부분과 T13 DRG이 L1을 위해 척추 말단 척추 T13 및 근위 위치에 부착된다. </li><li> 말단 방향으로 수반 DRGs를 확인합니다. 성인 쥐의 경우, 수반되는 DRGs 명확하게 볼 수 지느러미와 복부 뿌리 흰색 나타납니다. 성인 마우스의 경우, 수반되는 DRGs 명확하게 볼 수 지느러미와 복부 뿌리 흰색 나타납니다. 강아지의 경우, 수반되는 DRGs는 명확 분야 나타납니다. </li></ol><img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/55226/55226fig2.jpg" /> 그림 2 : 척수의 압출 후 척추에 DRGs의 식별. 척주는 화살표로 표시된 바와 같이 DRGs 시각화 있도록 분할되어있다. 성인 쥐와 마우스 강아지 예시.<html> 심판 = &quot;http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55226/55226fig2large.jpg&quot;대상 = &quot;_ 빈&quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. DRGs 6. 분리 <ol><li> 특정 DRGs에 따라 번호 페트리 접시 (직경 30 mm)를 예를 들어, L3, L4, L5, 격리합니다. 얼음처럼 차가운 멸균 PBS와 페트리 접시를 입력하고 얼음에 배치합니다. </li><li> DRGs의 손상을 피하면서 가능한 한 DRGs에 가까운 마이크로 가위, 절단 지느러미와 복부 뿌리를 사용하여 그것들을 분리합니다. </li><li> 폐쇄 핀셋의 끝으로 부드럽게 DRGs을 특종과 해당 번호 배양 접시로 전송. </li></ol><img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/55226/55226fig3.jpg" /> 그림 3 : 대표 DRGs를 격리합니다. 성인 쥐, 성인 마우스, 마우스 강아지 : 왼쪽에서 오른쪽으로.&quot;_blank&quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. 또한 분석을위한 조직 7. 처리 <ol><li> 웨스턴 블로 팅 <ol><li> 척수의 요부 확대 예컨대, 관심 조직 영역을 격리. 필요한 경우, 동측 및 반대측면에 추가 지느러미와 복부 뿔에 척수를 분리합니다. </li><li> 이러한 얼음에 적절한 효소 억제제를 포함하는 (더블 증류수 H 2 O에서 10 mM 트리스 - 염기, 150 mM의 염화나트륨, 1 mM의 EDTA, 1 % NP40) TNE 용해 버퍼로 용해 버퍼에서 조직을 놓습니다. </li><li> 기계 연삭 유 봉을 사용하여 얼음에 약 30 초 동안 조직을 균질화. </li><li> 4 ° C에서 16,000 XG에 15 분 동안 원심 분리기 및 표준 프로토콜 5, 6에 따라 추가 처리를 위해 상층 액을 사용하거나 더 사용할 때까지 -20 ° C에서 뜨는을 유지한다. </li></ol></li><li> RNA 분석 <ol><li> 관심있는 조직을 분리합니다. </li><li> 즉시 저장을 위해 RNA를 안정화 RNA 안정화 용액 조직을 놓는다. </li><li> 표준 프로토콜 7에 따라 RNA를 분리합니다. </li><li> 의 cDNA에 RNA를 변환 한 표준 프로토콜 7에 따라 qPCR에를 수행합니다. </li></ol></li><li> 면역 조직 화학 <ol><li> (척수에 적용) 신선한 냉동 조직의 경우 : <ol><li> 분말의 두 큰술에 해당하는 양 드라이 아이스 큐브를 분쇄하여 드라이 아이스 분말을 준비합니다. 천에 드라이 아이스 큐브를 덮고 망치를 사용하여 큐브를 분쇄. 드라이 아이스 큐브의 층에 실버 호일 (약 5cm X 5cm)를 놓고 드라이 아이스 분말 실버 호일 커버. </li><li> 핀셋을 사용하여 드라이 아이스 분말을 추가 분석을 위해 선택된 척수 영역을 놓고,이 스냅인 냉동 및 냉동 튜브 척수 전송하자. 항상 드라이 아이스에 그것을 유지하거나 우리를 더욱 때까지 -80 ° C에서 보관이자형. </li><li> 그라 이오 스탯에 척수로 이동 (-20 ° C). 필요한 경우, 내부 저온 유지 척수 트림. 시험편 디스크에 부착하기 위하여 저온 유지 장치 내부 물질을 매립에서 척수를 배치했다. </li><li> 예를 들어, 5 μm의 원하는 두께 척수 절단하고, 유리판 상에 수집한다. 더 부착 조직 수집 직전 손가락으로 유리판을 가열한다. 더 사용할 때까지 -80 ℃에서 냉동 튜브에 남은 조직을 유지합니다. </li><li> 후 고정을위한 준비가 될 때까지 저온 유지 장치 내부에 유리 접시에 섹션을 둡니다. </li><li> 실온에서 10 분 동안 4 % PFA로 침지하여 섹션 포스트 픽스. </li><li> 표준 프로토콜 8 항에 염색 수행합니다. </li></ol></li><li> (척수 및 DRGs에 적용) 크라이 절편에 대한 고정 조직 <ol><li> 4 % PFA (척수를위한 2 시간, 마우스 DRGs 1.5 시간과 쥐 DRGs 4 시간)에서의 척수 및 DRGs 수정4 ° C (수평 위치에 자리 척수는 구부러진 위치에 고정되는 것을 방지하기 위해). </li><li> 4 ℃에서 하룻밤 / V 자당 승 25 %에 조직을 전송합니다. 티슈는 더 사용할 때까지 4 ℃에서의 미생물 오염을 방지하기 위해 10 %의 아 지드 화 나트륨 몇 방울 첨가 / V 자당 승의 25 %에 저장 될 수있다. 필요한 경우에만 실리콘 기판 또는 유사한에서 요추 확대를 만들기 위해 척수 트림. </li><li> 종이 타월의 팁을 사용하여 조직으로부터 과량의 수크로오스 용액 대기음. </li><li> 재료를 포함와 냉동 금형을 반쯤 채우십시오. 이러한 폐쇄 핀셋 같은 도구와 크라이 금형의 측면에 대한 거품을 밀어 넣습니다. </li><li> 핀셋을 사용하여 매립 재료의 조직을 놓고 원하는 조직의 방향을 확인합니다. </li><li> 자료를 포함하여 완전히 냉동 금형을 작성하고 멀리 (폐쇄 핀셋을 사용하여 예) 가능한 한 조직에서 어떤 거품을 밀어 넣습니다. </li><li> (100mm를 페트리 접시를 채우2- 메틸 부탄 직경)이다. 이 물질은 유해하다. 흄 후드에서이 단계를 수행하고 기관의 지침에 따라 물질을 처리 (주의 : H224, H304, H336, H411, P210, P280, P273, P301, P331, P304 / P340, P309 / P310). </li><li> 드라이 아이스의 층에 페트리 접시를 놓고 페트리 접시에 두 드라이 아이스 큐브를 추가합니다. 페트리 접시에 크라이 금형을 놓고 삽입 물질이 완전히 정지 할 수 있습니다. </li><li> 항상 드라이 아이스에 포함 된 조직을 유지하거나 추가 처리 할 때까지 파라 필름에 싸여 -80 ° C에서. </li><li> 그라 이오 스탯 (-20 ° C)에서 원하는 두께의 조직, 예를 들어 5 μm의 컷. </li><li> 표준 프로토콜 8 항에 염색 수행합니다. </li></ol></li><li> (척수 및 DRGs에 적용) 파라핀 삽입에 대한 고정 조직 <ol><li> 4 ° C (장소 척수에서 4 % PFA (척수를위한 2 시간, 마우스 DRGs 1.5 시간과 쥐 DRGs 4 시간)에 척수 및 DRGs 수정수평으로) 절곡 위치에서 고정되는 것을 방지한다. </li><li> 4 ℃에서 하룻밤 / V 자당 승 25 %에 조직을 전송합니다. 티슈는 더 사용할 때까지 4 ℃에서의 미생물 오염을 방지하기 위해 10 %의 아 지드 화 나트륨 몇 방울 첨가 / V 자당 승의 25 %에 저장 될 수있다. </li><li> 척수의 요부 확대 예컨대, 관심 조직 영역을 격리. </li><li> 파라핀과 함께 포함 금형을 반쯤 채우십시오. </li><li> 약간 파라핀 경화 매립 장치의 냉각 영역에 배치하여 매립 금형 간단히 냉각. 이것은 더 나은 조직 포지셔닝 수 있습니다. </li><li> 매입 형에서 원하는 방향으로 조직을 놓습니다. 파라핀으로 포함 금형을 입력하고 즉시 냉각. </li><li> 완전히 경화 및 포함 금형의 조직을 포함하는 파라핀 블록을 제거 할 수 있도록 4 ° C에서 밤새 파라핀 함유 포함 금형을 배치합니다. </li><li> 컷 섹션 오원하는 두께 NA 마이크로톰 예는 5㎛. </li><li> 표준 프로토콜 8 항에 염색 수행합니다. </li></ol></li></ol></li></ol>

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척주는 경부 탈구에 의해 예, 방해되는 경우, 척수 압출 동안 분할된다. 척수가 압출 될 수없는 경우, 척주의 양 끝은 약간 줄어들 수 있으며 압출 시도가 반복 될 수있다. 경우 전체 척수 즉 경부 확대뿐만 아니라 요추 확대 구성된 추가 분석을 위해 필요한, 척추는 약간 정돈한다. 단 요추 확대는 추가 분석을 위해 필요하다면, 척수 본 프로토콜에 따라 트리밍한다. 척추는 압출을 용이하게하기 위해 손가락을 사용하여 곧게해야합니다. 이 프로토콜은 모든 연령의 설치류에 적용 가능하고 여기 성체 마우스 (8 주), 마우스 새끼 (5 일) 및 성인 쥐 (10 주)을들 수있다. 동물의 종류 및 변형에 따라 흉추 및 요추 부분의 수는 달라질 수 9 </sup&gt; 10, 11. 단백질에 따라서는 성인 설치류 전에 안락사에 효소 억제 솔루션을 관류 할 수있다, 분석 할 수 있습니다. 한면 신경 손상과 관련된 실험을 행하는 경우, 척수 압출 직후 초 미세 핀셋을 이용하여 동측과 반대측면으로 분할 할 수있다. 또한, 각면은 지느러미와 복부 양쪽으로 분할 할 수 있습니다. 티슈는 상기 분석, 웨스턴 블롯 등을 위해 처리 될 수있다. 이 척수가 아닌 유연한 렌더링 및 척수 유압 압출 방지로 척수 압출 전에 PFA와 Transcardial 관류 - 고정은 피해야한다. 유압 척수 압출 지느러미 뿌리를 떼어 것입니다. 부착 등의 뿌리가 필요한 실험을 위해, 추궁 절제술을 권장합니다. 또한, 척수 수막 표준 추궁 절제술 방지 할 수 있습니다 유압 압출에 의해 손실 척수 및 DRG 분리의 유압 압출 대신 얼음처럼 차가운 PBS의 산소 인공 뇌척수 (ACSF)를 사용하여 수행 할 수 있습니다. ACSF의 사용은 후속 전기 생리 학적 기록 (12, 13)의 경우에 특히 중요하다 더 생리적 환경에서 분리 된 조직을 보존 할 수있다. ACSF에 대한 대안은 PBS가 1g / 차 DRG 문화 (14)의 생성을위한 L 포도당을 포함 수 있습니다. 척수의 유압 압출 절제술에 의한 척수 절연 전통적인 방법, 조직 처리 시간을 감소시키고, 따라서 단백질 손상의 위험을 감소보다 훨씬 더 빠른 방법이다. 고정액으로 관류 전에 박리 과정 및 최종 제거시에 조직 손상의 위험을 감소시킬 수있다 절제술에 의한 척수를 분리로척추에서 척수. 그러나 조직의 고정은 웨스턴 블로 팅 등의 분석에의 적용 가능성을 배제. 유압 압출 수율 분석의 넓은 범위에 적합한 구조적 손상되지 않은 조직 3. DRGs의 일관된 식별이 어려울 수 있습니다. 그러나, 이것은 예를 들면 좌골 신경 손상에 따라, 조직 분석을 위해 필수적이다. costae에 자신의 현지화 상대에 따라 DRGs 번호 매기기으로 DRGs는 지속적으로 식별 할 수 있습니다. DRGs 현재뿐만 척수 조직 염색 프로토콜 단계 7에 설명 된 예시 조직 치료의 변형을 수행하여 최적화 될 수있다.

이 방법의 전체 목표는 척수를 분리뿐만 아니라, 2 DRGs 하나를 식별하고 분리한다. 척수의 유압 압출 한번에 척추 추체를 끊어서 즉 절제술에 의한 척수 분리의 전통적인 방법보다 훨씬 더 빠른 방법이며,이 방법은 박리 공정 3, 4에 의한 조직 손상의 위험을 줄여 . DRGs는 식별하기 어려울 수 있습니다. 올바른 식별은 예를 들어, 좌골 신경 손상에 따라 조직 분석을 위해 매우 중요하다. costae에 자신의 현지화 상대에 따라 DRGs 번호 매기기으로 DRGs는 지속적으로 식별 할 수 있습니다. 여기에 입증 된 기술에 의해 격리 조직, 웨스턴 블로 팅 (5)를 포함하여 분석의 넓은 범위에 적용 할 수 있습니다6, qPCR에 7, 면역 조직 화학 염색 (8). DRGs를 식별 할 때, 척수 세그먼트의 수는 동물의 종류 및 균주도 9,도 10,도 11에 따라 변화하는 것으로 알려져 고려하는 것이 중요하다. 쥐에이 방법을 수행하는 장점은 가능한 유전자 변형 변형과 상대적으로 낮은 주택 비용의 높은 수 있습니다. 래트를 사용의 이점은 상대적으로 높은 수율 조직이며 신경 손상을 포함하는 경우, 절차는 크기가 완화 될 것이다.

<table><tbody><tr><td>본 가위, 극세, 직선, 8.5cm</td><td>F.S.C. (Fine Science Tools)</td><td># 14084-08</td><td>DRG(성체 쥐, 성체 쥐)를 분리하기 전에 척수를 절단합니다. 다른 제조업체가 사용될 수 있습니다</td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>Eppendorf</td><td># 5427 R</td><td>균질화된 조직의 원심분리용</td></tr><tr><td>Cryostat microtome</td><td>Leica Biosystems</td><td># CM 3050 S</td><td>염색 전에 내장된 조직을 절단하기 위해; 다른 모델 및 제조업체를 사용할 수 있습니다</td></tr><tr><td>Forceps, Dumont, # 3</td><td>F.S.C. (Fine Science Tools)</td> <td># 11231-30</td><td>압출 후 척수 취급용; 다른 제조업체 / 유형을 사용할 수 있습니다</td></tr><tr><td>Forceps, Dumont, # 5</td><td>F.S.C. (Fine Science Tools)</td> <td># 11252-20</td><td>DRG (성인 마우스, 성인 쥐, 강아지)의 격리를 위해; 다른 제조업체는</td></tr><tr><td>Isoflurane (furane) IsoFlo Vet 100 %</td> <td>Abbott</td> <td># 002185</td><td>안락사를 위해 사용될 수 있습니다. 다른 제조업체를 사용할 수 있습니다. 주의 : 독성</td></tr><tr><td>Iso-pentane GPR rectapur</td><td>VWR 화학 물질</td> <td># 24872.298</td><td>조직의 급속 동결 용; 다른 제조업체를 사용할 수 있습니다. 주의: 독성</td></tr><tr><td>Microtome</td><td>Leica Biosystems</td><td># RM 2155</td><td>파라핀 포매 조직 절편용; 다른 모델 및 제조업체는</td></tr><tr><td>파라핀 왁스 펠릿</td><td>Sigma-Aldrich</td><td># 76243</td><td>파라핀 삽입용을 사용할 수 있습니다. 다른 제조업체가 사용될 수 있습니다</td></tr><tr><td>파라핀 조직 임베딩 스테이션</td><td>Leica Biosystems</td> <td># EG1160</td><td>나중에 절편을위한 조직의 파라핀 임베딩; 다른 모델 및 제조업체는</td></tr><tr><td>펠렛 페스텔, 모터 무선</td><td>Sigma-Aldrich</td><td># Z359971-1EA</td><td>를 사용하여 웨스턴 블로팅 이전에 격리된 조직의 기계적 균질화를 수행할 수 있습니다. 다른 제조업체는</td></tr><tr><td>페트리 접시, 35mm</td><td>Thermo Fischer Scientific</td> <td># 121V</td>를 사용할 수 <td>있습니다. 다른 제조업체 및 크기는</td></tr><tr><td>페트리 접시, 100mm</td><td>Sigma-Aldrich</td><td># P7741</td><td>척수 압출용을 사용할 수 있습니다. 다른 제조업체 및 크기는</td></tr><tr>필요한 경우 TNE-용해 완충액에 추가하기 위해<td>인산가수분해효소 억제제, 포스스톱</td><td>시그마-알드리치</td><td># 04906845001</td><td>인산가수분해효소 억제제 칵테일을 사용할 수 있습니다. 다른 제조사는</td></tr><tr><td>피펫 팁, 1-200 &mu; L, 필터 없음</td><td>Sarstedt</td><td># 70.1189.105</td><td>유압 압출용; 다른 제조업체는</td></tr><tr><td>프로테아제 억제제, 완전한</td><td>시그마-알드리치</td><td># 05892791001</td><td>프로테아제 억제제 칵테일을 사용하여 필요한 경우 TNE-용해 완충액에 추가할 수 있습니다. 다른 제조업체는</td></tr><tr><td>RNAlater 용액</td><td>Sigma-Aldrich</td><td># R0901</td><td>을 사용하여 저장을 위한 RNA 안정화를 수행할 수 있습니다. 다른 제조업체가 사용될 수 있습니다</td></tr><tr><td>Rneasy Protect Mini KiT</td><td>Qiagen</td><td># 74124</td><td>RNA 분리용; 다른 제조업체는 메스를 사용할 수 있습니다</td></tr><tr><td>. Swann-Morton 수술용 칼날 번호 11</td><td>Swann-Morton</td><td># REF0203</td><td>척수 요추 부위 격리용; 다른 제조업체/유형을 사용할 수 있습니다</td></tr><tr><td>가위, 스트레이트, 유형 3, 25mm 절삭날</td><td>Bochem</td><td># 4070</td><td>척추 격리용; 다른 제조업체 / 유형을 사용할 수 있습니다</td></tr><tr><td>가위, 130mm 절삭 날</td><td>Hounisen</td> <td># 1902.0130</td><td>척수 분리 (성인 쥐)</td></tr><tr><td>스프링 가위, 직선, 8mm 절삭 날</td><td>F.S.C. (Fine Science Tools)</td> <td># 15009-08</td><td>DRG (강아지)의 격리 전에 척추를 열고 DRG (성인 마우스, 성인 쥐, 강아지)의 격리를 위해; 다른 제조업체는 표준</td></tr><tr><td>주사기, 2.5 mL, 5 mL, 10 mL</td><td>Terumo</td><td># SS02SE1; # SS05SE1; # SS10SE1</td><td>유압 압출용; 다른 제조업체는</td></tr><tr><td>대물렌즈 1X 및 접안 렌즈 10X Leica# 10446370와 함께 실체 현미경 MZ12.5</td>를 <td></td><td></td><td>사용할 수 있습니다 다른 제조업체 / 유형은</td></tr><tr><td>멸균 PBS</td><td>GIBCO</td><td># 10010-015</td><td>유압 압출용; 표준 프로토콜 주</td></tr><tr><td>사기 바늘 23 G x 1", 0.6 x 25 mm</td><td>Terumo Neolus</td><td># NN-2325R</td>에 따라 만들 수도 <td>있습니다. 강아지의 유압 압출용; 다른 제조업체/유형을 사용할 수 있습니다</td></tr>. <tr><td>주사기 바늘 18 G x 1 1/2, 1.2 x 40 mm</td><td>Terumo Neolus</td><td># NN-1838S</td><td>성인 마우스의 유압 압출을 위한 피펫 팁 대안; 다른 제조업체에서는</td></tr><tr><td>Tissue-Tek</td><td>Sakura</td><td># 4583</td><td>Tssue 임베딩 재료를 사용하여 나중에 동결 절편을 만들</td></tr> 수 있습니다. <tr><td>TNE-lysis buffer</td><td>VWR chemicals</td><td># 10128-582</td><td>For tissue lysis before western blotting; 다른 제조업체를 사용할 수 있습니다. 표준 프로토콜에 따라 만들 수도 있습니다</td></tr></tbody></table>.

설치류의 등쪽 뿌리 신경절의 척수 및 절연의 유압 압출

Hydraulic Extrusion of the Spinal Cord and Isolation of Dorsal Root Ganglia in Rodents

전통적으로 척수는 후판 절제술, 즉 척추를 한 번에 하나씩 부러뜨려 분리합니다. 이것은 시간이 많이 걸리고 박리 과정으로 인해 척수가 손상될 수 있습니다. 여기에서는 유압을 사용하여 척수를 압출하는 방법을 보여줍니다. 처리 시간이 단 몇 분으로 크게 단축되어 단백질 손상이 감소할 수 있습니다. 척수 조직의 손상 위험이 낮기 때문에 후속 면역조직화학 분석이 향상됩니다. 전통적인 후판 절제술 대신 수압식 척수 압출을 수행함으로써 설치류를 DRG 분리에 추가로 사용할 수 있으므로 동물의 수를 줄이고 동일한 설치류의 조직 간 분석이 가능합니다. 우리는 costae에 대한 상대적인 국소화에 따라 DRG를 식별하고 분리하는 일관된 방법을 보여줍니다. 그러나 흉추와 요추의 척수 분절의 수가 동물의 종류와 변형률에 따라 다를 수 있으므로 이 방법을 사용하는 특정 동물에 맞게 조정하는 것이 중요합니다. 또한, 분리된 조직의 추가 처리 예를 설명한다.

유압 압출 척수는 그림 1과 같이 부드러운 손상되지 않은 표면을 표시합니다. 요부 확대도 용이 한 박스형 척수의 두꺼워 진 영역으로 식별 될 수있다. 척수의 등 및 복부면은 형태에 따른 눈으로 확인할 수있다. 그림 1에서, 복부 측면은 전체 척수을 따라 분명 중간 선에 의해 식별 뷰어를 직면하고있다. 척수를 따라 두 폭 넓은 라인은 등쪽의 식별을 할 수 있습니다. 원위 가장 마지막에 마미 때때로 성인 쥐 성인 쥐에 부착 된 상태로 유지된다. 척주,도 2에있는 동안 개별 DRGs 만 식별 될 수있다. 격리,도 3에 따라, 개별 DRGs는 외관에 의해 식별 될 수 없다. 필요한 경우, 그러므로그들을 유지하는 것이 중요 명확하게 분리시 분리. 단계 7.3에 설명하고도 4에 나타낸 바와 같이 분리 한 후, 척수 DRGs 처리하고 염색 할 수있다. 도 4a는 신경 세포 및 그 주변 위성 신경교 세포가 분명히 표시되어 DRG 섹션의 면역 조직 화학 염색을 보여준다. DRG 올바르게 식별하여이 손상된 뉴런의 소마뿐 아니라 그 주변 위성 신경교 세포의 좌골 신경 손상의 효과를 분석 할 수있다. 도 4b는 부분의 매끄러운 가장자리 반영된 조직 그대로 수압 압출 척수의 Nissl 염색을 보여준다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/55226/55226fig4.jpg" /> 그림 4 : 대표 조직 섹션. 를했다. DRG 섹션의 면역 조직 화학 염색. B. Nissl 스테인드 SECTIO유압 압출 척수 N. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55226/55226fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

여기에서는 척수의 수압압출과 동일한 설치류에서 특정 등뿌리 신경절(DRG)의 식별 및 격리를 위한 프로토콜을 제시합니다. 표준 척수 분리 방법과 비교하여 이 방법은 훨씬 빠르고 조직 손상 위험을 줄입니다.

Traditionally, the spinal cord is isolated by laminectomy, i.e. by breaking open the spinal vertebrae one at a time. This is both time consuming and may ...

본 방법의 전반적인 목표는 수압 압출법을 통해 척수를 분리하고, 마우스와 랫드에서 후근신경절(dorsal root ganglia)을 식별하여 분리하는 것입니다. 이를 위해 먼저 설치류를 안락사시킨 후 머리를 절단합니다. 그 다음 척추를 따라 피부를 절개하여 하부 조직으로부터 분리합니다.다음으로, 척주 양측을 따라 골반뼈 너머 원위 방향으로 절개하여 척주를 주변 조직으로부터 분리합니다. 그런 다음 골반뼈의 원위 측에서 척주를 절단합니다. 피펫 팁을 장착한 주사기를 척수의 가장 원위 끝단에 삽입합니다.얼음 위에 놓인 Petri dish에 차가운 멸균 PBS를 사용하여 일정한 압력을 가함으로써 척수를 밀어내어 추출합니다. 스프링 가위를 사용하여 척주를 세로 방향으로 절개합니다. 다음으로, 가장 원위부 늑골의 부착 부위를 찾습니다.이를 통해 T13으로 표시된 양측의 가장 원위부 흉수 DRG를 식별할 수 있습니다. 이후 나머지 DRG들을 식별할 수 있습니다. 척수 요수 확대부(spinal lumbar enlargement)에 해당하는 DRG들은 더 원위측에 위치합니다.스프링 가위를 사용하여 등쪽 및 배쪽 뿌리를 절단하고, DRG를 공동에서 조심스럽게 걷어내어 얼음 위에 놓인 멸균 PBS가 담긴 라벨이 부착된 페트리 접시에 옮깁니다. 척수를 수압으로 압출하는 방식은 척추뼈를 하나씩 부수는 전통적인 층판절제술보다 상당히 빠른 방법입니다. 이 방법은 해부 과정으로 인한 조직 손상 위험을 줄이며, 광범위한 분석에 적용 가능한 조직을 얻을 수 있게 합니다.배근신경절은 일반적으로 식별하기 어려울 수 있습니다. 하지만 좌골 신경 손상 이후의 조직 분석과 같은 후속 분석을 위해서는 정확한 식별이 매우 중요합니다. 따라서 갈비뼈(costa)에 대한 상대적 위치에 따라 배근신경절에 번호를 매김으로써, 배근신경절을 일관되게 식별할 수 있습니다.필터가 없는 피펫 팁의 넓은 끝부분을 잘라 척수 압출용 주사기를 준비합니다. 적절하게 조정하면 팁이 단단하게 고정됩니다. 얼음처럼 차가운 멸균 PBS를 흡입한 후, 추가 사용 전까지 주사기를 얼음 위에 둡니다.성체 설치류의 경우, CO2 또는 isoflurane과 같은 가스로 안락사시킨 후 참수하십시오. 경추 탈구는 척추뼈를 손상시켜 척수 압출을 불가능하게 하므로 수행하지 마십시오. 새끼 쥐는 직접 참수하여 안락사시킬 수 있습니다.털을 고정하기 위해 털 위에 물을 뿌립니다. 다음으로, 척주를 따라 원위 방향으로 털을 절개합니다. 골반뼈를 지나 척주 양측을 절개하여 척주를 분리하고, 골반 근위부에서 척주를 절단합니다.척수 추출이 원활하지 않을 정도로 척주가 너무 S자 형태로 휘어지는 것을 방지하기 위해, 가장 근위부와 원위부 영역을 피해 척주를 절단하십시오. 양 끝단에서 척수가 보이는지 확인하십시오. 척수가 보이지 않는 경우, 척수가 보일 때까지 척주를 절단하십시오.PBS가 담긴 페트리 접시를 얼음 위에 놓습니다. 척주의 근위단 굽은 부분에 검지 손가락을 대어 척주를 곧게 폅니다. 척수의 원위단에 피펫 팁을 삽입합니다.일정한 압력을 가해 척수를 페트리 접시에 밀어냅니다. 척주를 절개하여 엽니다. 척주의 복측에서 척추뼈 몇 개를 절단한 다음, 배측으로 옮겨 척추뼈 몇 개를 절단합니다.척주 전체를 따라 계속해서 양측을 번갈아 가며 진행합니다. 절개된 척수를 현미경 아래에 놓습니다. 척주에서 가장 원위에 위치한 늑골의 부착 부위를 찾아 T13 척추 분절을 식별합니다.가장 원위에 있는 늑골을 인접한 늑간 신경과 혼동하지 않도록 주의하십시오. 가장 원위에 있는 늑골은 T13 척추 분절의 근위부에 부착되어 있으며, T13 DRG는 T13 척추의 원위쪽이자 L1 척추의 근위쪽에 위치합니다. 원위 방향으로 동반된 DRG를 확인하십시오. 얼음 위에 얼음처럼 차가운 멸균 PBS가 담긴 번호가 매겨진 페트리 접시를 준비하십시오.제거 과정 중 DRG의 손상을 방지하기 위해, 5 핀셋으로 DRG 자체보다는 등쪽 및 배쪽 뿌리를 잡으십시오. 미세 가위를 사용하여 먼저 말초 신경을 자른 다음, 등쪽 및 배쪽 뿌리를 자릅니다. 새끼 쥐의 경우, 이러한 신경들이 성체 설치류만큼 명확하게 보이지 않습니다.DRG에 최대한 가깝게 신경을 절단하기 위해, 절단 전 가위 끝을 DRG를 따라 부드럽게 미끄러뜨려 위치시킵니다. 닫힌 핀셋 끝을 사용하여 DRG를 조심스럽게 떠내어 해당 페트리 접시로 옮깁니다. 성체 쥐와 성체 생쥐의 경우 DRG는 흰색이며 등쪽 및 배쪽 뿌리가 뚜렷하게 보이지만, 새끼의 경우 DRG는 투명한 구체 형태로 보입니다.웨스턴 블로팅을 위해, 분석 대상 조직을 분리하여 용해 버퍼(lysis buffer)에 넣습니다. 그 다음, 조직을 균질화하고 원심분리하여 상층액을 수집한 후, 표준 프로토콜에 따라 웨스턴 블로팅을 수행합니다. RNA 분석의 경우, 분석 대상 조직을 분리하여 즉시 RNA 안정화 용액에 넣습니다.다음으로, 표준 프로토콜에 따라 qPCR을 수행합니다. 급속 냉동 조직의 면역조직화학 염색을 위해, 은박지 위에 드라이아이스 분말을 준비합니다. 조직을 드라이아이스 분말 위에 올려 급속 냉동시킵니다.그런 다음 조직을 크라이오스탯(cryostat)으로 옮겨 절편 제작을 위한 포매 과정을 진행합니다. 실온에서 4% PFA로 10분 동안 후고정하고, 표준 프로토콜에 따라 면역조직화학 염색을 수행합니다. 동결 절편의 면역조직화학 염색을 위해서는 4°C에서 4% PFA로 조직을 고정한 후, 25% w/v sucrose 용액으로 옮겨 4°C에서 하룻밤 동안 보관합니다.조직을 임베딩 재료에 넣고 냉각된 2-methylbutane을 사용하여 조직을 동결시킵니다. 크라이오스탯(cryostat)으로 조직을 절편화하고 표준 프로토콜에 따라 면역조직화학 염색을 수행합니다. 파라핀 절편의 면역조직화학 염색을 위해서는, 조직을 4% PFA에 넣고 4°C에서 고정시킨 후, 조직을 25% w/v sucrose로 옮겨 4°C에서 하룻밤 동안 보관합니다.조직을 파라핀에 매립하고, 마이크로톰으로 절편을 만든 후, 표준 프로토콜에 따라 면역조직화학 염색을 수행합니다. 면역조직화학 염색에 사용되는 항체에 따라 예시된 조직 처리 방법 중 어느 것이든 적용 가능할 수 있습니다. 이 영상을 시청한 후에는 수압 압출법으로 척수를 분리하는 방법과 배측 신경절을 일관된 방식으로 식별 및 분리하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.여기에 제시된 방법은 모든 연령대의 마우스 및 랫트에 적용 가능하며, 분리된 조직은 고정되지 않은 조직의 신속한 분리가 필요한 방법을 포함하여 광범위한 분석에 사용할 수 있습니다.

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말초 신경 세포의 특징을 연구하기 위해 다중 구획 장치에서 등쪽 뿌리 신경절을 수확, 삽입 및 배양합니다.

등근 신경절(DRG)은 1차 감각 신경세포체를 포함하며 주변 감각 신호를 척수로 전달합니다. 이 프로토콜은 구조적으로 온전한 신경절의 표준화된 분리, 해부학적 분절 식별, 초보자를 위한 직관적 안내, 그리고 시술 조직 손상 감소를 지원하는 마우스 DRG 해리 방법을 설명합니다.

쥐 등근 신경절의 해리 및 분리

학습하세요 설치류의 척수 및 등쪽 뿌리 신경절(DRG)을 유압 압출법으로 신속하게 분리하는 방법을. 이 기술은 조직 손상을 최소화하며 신경생물학 연구에 필수적인 정확한 DRG 식별을 가능하게 합니다.

설치류의 등쪽 뿌리 신경절의 척수 및 절연의 유압 압출

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