Name: 쥐 왼쪽 앞쪽에 내림차순 (LAD) 관상 동맥 결찰 : 심근 경색에 대한 개선 및 단순화 된 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-04-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 39 s
Description: 배우세요 쥐 심근 경색 모델에서 왼쪽 앞쪽에 내림차순 관상 동맥 결찰 기법을 이용한 최소 침습적 수술 방법. 이 기술은 심장 회복 메커니즘과 유전자 효과 연구에 활용됩니다.

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이 모델은 NIGMS(National Institute of General Medical Sciences)/NIH(National Institute of Health) 보조금 1P20GM103652(프로젝트# 3)(MRA에) 및 AHA(American Heart Association) 보조금 14GRNT20460291(MRA), 브라질 정부 보조금 CAPES(KR 및 FR), Brown University LINK 상(IM에)의 지원으로 개발되었습니다. 우리는 또한 수의사와 동물 시설 직원의 뛰어난 기술 지원을 인정합니다.

이 동물 프로토콜을 검토하고로드 아일랜드 병원의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인되었습니다. 1. 마취 및 삽관 <ol><li> 수술 후 진통제의 복용량을 계산하기 위해 마우스의 무게를. </li><li> 유도 챔버에 마우스를 넣고 9 4 % 이소 플루 란을 전달 - 걸쳐 동물 모니터링 10 분. 상기 장치는 약 250 ℃로 예열 할 수 있도록 핫 비드 살균기 켜기. 20 분 - 예열은 15 일이 소요됩니다. </li><li> 마우스 약 32 호흡 / 분의 호흡 속도 마취 깊이 평면에 도달하면, 스티로폼 보드에 마우스 앙와위 배치 오픈 입을 보유하는 상부 앞니에 따라 고정하는 탄성 밴드를 사용한다. 발가락 핀치를 수행하여 진정 작용을 확인합니다. 구강 인두가 가시화 될 수 있도록 마우스보다 높은 강도 조명을 배치합니다. </li><li> 턱과 다른 쌍을 열 곡선 집게를 사용하여집게의 길 밖으로 혀를 들어 올립니다. 또는 약간 마우스의 몸 눈높이 아래에 위치하면서 삽관해야합니다. 수술 돋보기를 사용하는 것이 좋습니다. </li><li> 성대의 개폐를 시각화합니다. 개방되면, 삽입 20 게이지, 1-에 무딘 팁 니들 도입기와 정맥 카테터. 기관 개방 도관을 안내하지만, 기관에 바늘을 삽입 방지하기 위해 바늘을 사용한다. 정확한 위치의 확인은 플라스틱 전송 피펫을 사용하여 수행 할 수 있습니다. </li><li> 가열 장치를 구비 한 조작면에 삽관 마우스 이동. 150 μL / 스트로크의 행정 용적 / 분 130 스트로크의 스트로크 속도 설정 작은 설치류 호흡기 마우스를 연결한다. </li><li> 2.5 %의 이소 플루 란을 제공합니다. 양자 가슴 상승에 대한 확인하여 삽관을 확인합니다. 발가락 핀치를 수행하여 마취를 확인합니다. 완전히 마취되기 위해 인공 호흡기에 10 분 - 마우스는 5 필요할 수 있습니다. </li></ol><ol><li> 인공 호흡기와 IV 카테터 사이의 연결 부위에서 삽관 튜브 아래 테이프. 사지 아래 테이프. 눈에 멸균 윤활 방울을 놓습니다. </li><li> 전기 면도기와 흉부의 복부 왼쪽 트림. 건조 와이프와 면도 모피를 먼지와 멸균 면봉을 사용하여 제모 크림의 작은 레이어를 적용합니다. 45 초 - 크림은 약 30 모낭과 접촉을 유지해야한다. </li><li> 크림 프로세스 동안 담가 Betadine 가득 세 1.5mL 용량 튜브에 세 멸균 면봉을 놓는다. 증류수에 적신 헝겊을 사용하여 부드럽게 크림 및 모피을 닦아. </li><li> 주변에 중심에서 이동하는 원 운동의 청소, Betadine 멸균 70 % 이소프로판올 준비 패드 교번 수술 부위 세번 세척. 마우스의 수술 필드 위에 분기 크기의 구멍이있는 멸균 드레이프를 놓습니다. </li><li> MOUS 주변 지역을 청소70 % 에탄올로 전자. 한 번 더 발가락 핀치와 마취를 확인합니다. </li></ol> 3. LAD 내고 <ol><li> 대략 20 초 동안 250 ℃로 예열 된 핫 비드 멸균기에서 멸균 수술 도구를 놓는다. 멸균 멸균 된 수술 용 드레이프에 살균 장비를 놓습니다. 돈 수술 장갑. </li><li> 부드럽게 저명한 칼 모양의 연골의 왼쪽 지점에서 약 5 mm의 피부를 들어 올려 좋은 팁 집게를 사용합니다. 흉골의 수준으로, 위쪽이 시점에서 피부에 수직 절개를 만들기 위해 10 번 블레이드와 수술 메스를 사용합니다. </li><li> 부드럽게 피부와 근육 층을 분리 곡선 집게를 사용합니다. 피부 절개 다음, 근육 층을 엽니 다. 근육 층, 절개의 양쪽에 하나를 통해이 5-0 폴리 프로필렌 봉합사를 삽입하고 근육 층이 열려 개최 클램프 일시적으로 봉합을 고정합니다. </li><li> 다음, 확인하고 세 번째 늑간 공간에서 절개를 만드는흉곽의 자연 각도. 마우스의 왼쪽 사지에서 테이프를 제거하고 테이프로 오른쪽 뒷발에 자사의 뒷면 왼쪽 발을 고정합니다. 테이프의 긴 조각을 잘라 약간 상승 된 위치에 운영 표면의 왼쪽 앞발을 고정합니다. 70 % 에탄올로 장갑을 청소합니다. </li><li> 부드럽게 3 번째와 4 번째 갈비뼈를 벌리 견인기를 사용합니다. 약 1 × ½에있어서, 멸균 거즈의 작은 부분을 절단하고, 0.9 % 멸균 식염수에 담근다. 여분의 염분을 꽉 잡고 조심스럽게 절차를 수행하는 동안 실수로 폐 손상을 방지하기 위해 왼쪽 폐에 거즈를 삽입하는 집게를 사용합니다. </li><li> 부드럽게 집게로 얇은 심낭을 제거합니다. </li><li> 멸균 면봉 떨어져면 소량의 눈물과 작은 공로를 굴립니다. 멸균 0.9 % 식염수에이 목화 공을 찍어 부드럽게 동맥을 감사하는 마음의 표면에 면봉. 부드럽게 위쪽 왼쪽 귓바퀴를 밀어에서 관상 동맥를 찾습니다일 Neath. </li><li> LAD를 식별하고 LAD 하에서 8-0 나일론 봉합사를 전달; 이 완전한은 결찰을 확보하기 위해 발생합니다. 결찰에 성공하면 합자 의지 희게에서 좌심실의 원위부. </li><li> 집게를 사용하여 이전에 삽입 된 거즈를 제거하고 부드럽게 견인기를 제거합니다. 개흉술을 통해 개구 흉강으로 25 게이지 바늘에 부착 된 6에서 25 게이지 플렉시블 튜브를 삽입한다. 왼쪽 폐 위의 공간에 튜브의 2 - 약 1 사전. 부정사 위치에 마우스를 반환하고 70 % 에탄올로 장갑을 청소합니다. </li><li> 장소에 가슴 튜브를 유지, 흉곽을 닫습니다 간단한 중단 패턴에서 5-0 폴리 프로필렌 봉합사를 사용합니다. 열린 근육 층을 고정하는 두 개의 봉합사를 제거합니다. 다시 자리에 가슴 튜브를 유지, 근육 층을 닫습니다 간단한 연속 패턴에서 5-0 폴리 프로필렌 봉합사를 사용합니다. </li><li> 흉관의 25 게이지 바늘로 1 ml 주사기를 첨부. 부드럽게 런지에 위쪽으로 당겨R 동시에 서서히 집게 흉강에서 흉관 추출있다. 이 단계에서 달리 기흉 흉강 및 결과에 포획 될 것이다 과잉 공기와 혈액을 제거로 천천히 튜브를 추출한다. </li><li> 주사기가 가득 차면, 바늘에서 주사기를 분리하고 폐기물 비커 또는 싱크에 폐기물 폐기하십시오. 가슴 튜브가 완전히 추출 될 때까지이 과정을 계속합니다. 가슴이 밀봉되어 있는지 확인합니다. </li><li> 1.5 %로 이소 플루 란을 줄이십시오. 간단한 중단 패턴에서 4-0 폴리 프로필렌 봉합사로 피부를 닫습니다. 오프 이소 플루 란 기화기를 돌립니다. </li><li> 복강 내 (IP) 주입을 통해 0.9 % 식염수 중 0.1 ㎎ / ㎖의 부 프레 노르 핀을 투여. 국소 절개 0.9 % 식염수에 2 ㎎ / ㎖ 부피 바카 2 ㎎ / ㎖ 리도카인을 적용한다. 마우스의 체중을 식염수 양을 스케일링, 피하 주사를 통하여 0.9 % 식염수 500 μL - 200 사이를 관리. </li><li> 된 관 후 5 분을 기다립니다통증 약물을 stering은 삽관 튜브에서 마우스를 제거합니다. 이 인공 호흡기 오프 전환에 도움이됩니다. <ol><li> 마우스가 인공 호흡기 떨어져 한 번 양자 가슴 상승이없는 경우, 바늘 압축 해제를 수행합니다. 이 저항의 급격한 감소에 의해 표시 흉강을 입력 할 때까지이를 위해, 25 게이지 바늘 및 멸균 3 번째 및 4 번째의 리브 사이를 1ml 주사기를 소개한다. 과잉 공기를 제거하기 위해 플런저를 부드럽게 잡아 당깁니다. </li></ol></li><li> 마우스가 적절한 양자 간 호흡 속도와 깊이를 보여주고 발가락 핀치에 응답 할 때, 가열 램프 아래에 깨끗한 복구 케이지에서 마우스를 놓습니다. 20 분 - 15 층류 후드에서 모니터링, 습기 음식과 물 병 마우스를 제공합니다. 과장된 호흡 노력, 과도한 출혈, 또는 기타 잠재적으로 생명을 위협하는 합병증에 대한 모니터링합니다. </li><li> 앞으로 3 일 들어, IP를 통해에서 0.1 ㎎ / ㎖ 프레 노르 핀 진통제를 투여하루에 두 번 배제 력. 매일 마우스를 모니터합니다. </li></ol>

<ol><li>Hausenloy, D. J., Yellon, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+directions+for+protecting+the+heart+against+ischaemia-reperfusion+injury%3A+targeting+the+Reperfusion+Injury+Salvage+Kinase+%28RISK%29-pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Res%22%5BJournal%5D)">New directions for protecting the heart against ischaemia-reperfusion injury: targeting the Reperfusion Injury Salvage Kinase (RISK)-pathway.</a> Cardiovasc Res. 61 (3), 448-460 (2004).</li>
<li>Roffi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2015+ESC+Guidelines+for+the+management+of+acute+coronary+syndromes+in+patients+presenting+without+persistent+ST-segment+elevation%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Heart+J%22%5BJournal%5D)">2015 ESC Guidelines for the management of acute coronary syndromes in patients presenting without persistent ST-segment elevation.</a> Eur Heart J. 37 (3), 267-315 (2015).</li>
<li>Kumar, A., Cannon, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+Coronary+Syndromes%3A+Diagnosis+and+Management%2C+Part+I%5BTitle%5D)+AND+%22Mayo+Clin+Proc%22%5BJournal%5D)">Acute Coronary Syndromes: Diagnosis and Management, Part I.</a> Mayo Clin Proc. 84 (10), 917-938 (2009).</li>
<li>Eitan, A., Nikolsky, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antithrombotic+therapy+in+patients+with+acute+coronary+syndromes%3A+how+to+make+the+right+choice%5BTitle%5D)+AND+%22Minerva+Med%22%5BJournal%5D)">Antithrombotic therapy in patients with acute coronary syndromes: how to make the right choice.</a> Minerva Med. 104 (4), 357-381 (2013).</li>
<li>Abbate, A., Bussani, R., Amin, M. S., Vetrovec, G. W., Baldi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+myocardial+infarction+and+heart+failure%3A+role+of+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biochem+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Acute myocardial infarction and heart failure: role of apoptosis.</a> Int J Biochem Cell Biol. 38 (11), 1834-1840 (2006).</li>
<li>Zheng, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nebivolol+protects+against+myocardial+infarction+injury+via+stimulation+of+beta+3-adrenergic+receptors+and+nitric+oxide+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+ONE%22%5BJournal%5D)">Nebivolol protects against myocardial infarction injury via stimulation of beta 3-adrenergic receptors and nitric oxide signaling.</a> PLOS ONE. 9 (5), 98179(2014).</li>
<li>Tarnavski, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+cardiac+surgery%3A+comprehensive+techniques+for+the+generation+of+mouse+models+of+human+diseases+and+their+application+for+genomic+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Genomics%22%5BJournal%5D)">Mouse cardiac surgery: comprehensive techniques for the generation of mouse models of human diseases and their application for genomic studies.</a> Physiol Genomics. 16 (3), 349-360 (2004).</li>
<li>Buitrago, S., Martin, T. E., Tetens-Woodring, J., Belicha-Villanueva, A., Wilding, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safety+and+Efficacy+of+Various+Combinations+of+Injectable+Anesthetics+in+BALB%2Fc+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Assoc+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Safety and Efficacy of Various Combinations of Injectable Anesthetics in BALB/c Mice.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 47 (1), 11-17 (2008).</li>
<li>Kolk, M. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((LAD-Ligation%3A+A+Murine+Model+of+Myocardial+Infarction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">LAD-Ligation: A Murine Model of Myocardial Infarction.</a> J Vis Exp. (32), e1438(2009).</li>
<li>Wu, Y., Yin, X., Wijaya, C., Huang, M. H., McConnell, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+myocardial+infarction+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+visualized+experiments+%3A+J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Acute myocardial infarction in rats.</a> Journal of visualized experiments : J Vis Exp. (48), (2011).</li>
<li>Ferrera, R., Benhabbouche, S., Bopassa, J. C., Li, B., Ovize, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One+hour+reperfusion+is+enough+to+assess+function+and+infarct+size+with+TTC+staining+in+Langendorff+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovasc+Drugs+Ther%22%5BJournal%5D)">One hour reperfusion is enough to assess function and infarct size with TTC staining in Langendorff rat model.</a> Cardiovasc Drugs Ther. 23 (4), 327-331 (2009).</li>
<li>Zeng, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+5-ethynyl-2%27-deoxyuridine+staining+as+a+sensitive+and+reliable+method+for+studying+cell+proliferation+in+the+adult+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Evaluation of 5-ethynyl-2'-deoxyuridine staining as a sensitive and reliable method for studying cell proliferation in the adult nervous system.</a> Brain Res. 1319, 21-32 (2010).</li>
</ol>

저자는 경쟁하는 금전적 이해관계가 없음을 선언합니다.

실험실에서 MI 모델의 사용이 증가, 설명 된 절차는 수술 후 통증과 불편을 최소화하면서 마우스의 효율성과 생존율을 높이기 위해 노력한다. 이 프로토콜은 LAD의 결찰 과정의 다양한 측면에 많은 개선함으로써 사망률을 최소화하기 위해 노력하고 있습니다. 몇 가지 차이점이 있습니다. 때문에 마취의 그 이상 기간의 이익을 위해, 유도 이소 플루 란과 함께 케타민과 자일 라진을 활용 일부 쥐의 삽관 연구는 사망률이 8 증가 보여 주었다. 우리의 방법은 크게 약물 관련 합병증의 가능성을 감소 유도에만 이소 플루 란을 사용합니다. 또 다른 유사한 LAD 결찰 프로토콜은 확장 된 복구 시간 및 정확한 교육을 9 증가의 필요성을 생산하는 기관 절개술을 포함한다. 우리가 여기에서 설명하는 절차는 모르겠지만 결과적으로 기관 내 삽관의 비 침습적 방법을 이용WER 사망률 및 결과의 높은 재현성. 또한, 오히려 단지 전기 면도기를 사...

관상 동맥 질환, 또는 ACS, 가장 널리 심혈관 이벤트 2020 년 1 이환율과 전세계 사망의 주요 원인으로 간주됩니다. ACS의 원인으로 인해 심장 조직이 혈액 흐름을 감소 블록 또는 관상 동맥 경화성 플라크의 파열에 심근 혈전증의 존재이다. 따라서, 예컨대 심근 경색 (MI) 3, 4, 급성 심근 허혈의 존재와 일치하는 임상 적 징후가있다. MI는 심실 기능 부전과 심부전 5, 6으로 이어질 수있는 심근의 질량 손실과 병적 인 심실 리모델링에 진행에 연결됩니다. IHD을 연구하는 가장 효과적인 방법 중 하나는 동물 모델에서 인간의 심근 경색을 모방하는 것이 었습니다. 이것은 LAD의 결찰에 의해 달성된다마우스. 이 모델을 사용하여, 우리는 마음이 허혈성 심질환으로 인한 손상으로부터 보호 할 수있는 방법을 연구한다. 지난 10 년간, 연구자들은 쥐에 쥐의 변화를 포함하여, 작은 동물에 더 큰 동물 모델을 사용하는 이동했다. 작은 마우스 모델은 작은 크기를 포함하여 많은 이유, 대형 쓰레기의 크기, 유지하기 위해 저렴한 비용, 짧은 임신 기간뿐만 아니라 형질 전환 유전자 녹아웃 모델 (7)의 넓은 가용성에 대한 선호되기 시작한다. 마우스는 작은 규모이지만, 특별히 그들을 위해 디자인 된 새로운 수술 도구이 개발에 도움을했다. 우리의 방법은 새로운 수술 도구를 사용합니다. 여러 가지 방법이 침입 기관 절개술을 구현하는 동안, 우리는 기관 내 삽관의 덜 침습적 인 방법을 사용합니다. 구강 인두의 오버 헤드 조명을 사용하여, 우리는 t을위한 안전하고 덜 충격적인 경험을 제공, 어떤 절개를 만들지 않고 삽관그는 동물. 마우스는 인공 호흡기에 배치하고, 전체 과정 동안 이소 플루 란에 보관됩니다. 이 중단되면 동물이 마취에서 회복하기 때문에 약물에 의해 생산 마취의 짧은 기간에, 그것은 단지 몇 분 정도 걸립니다. 우리의 외과 모델은 또한 최소 침습 천자가 포함되어 있습니다. 인장 기흉 : 일본어 개흉술을 통해 천자를 사용 흉강 혈액 및 과잉 공기의 제거는 조심 LAD 결찰하는 일반적인 수술 후 합병증을 해결했다. 다른 방법 - 하나 천자-했다 굴복 적은 수술 합병증을위한 기관 절개술에 대한 다른에 사용되는 두 개의 추가 절개에 대한 필요성을 제거하고 크게 사망률을 감소시켰다이 방법.

<table><tbody><tr><td>High-Intensity Light Source</td><td>Harvard Apparatus</td><td>72-0215</td><td></td></tr><tr><td>SurgiSuite 운영 플랫폼</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SurgiSuite</td><td>는 배터리로 작동되는 충전식 원적외선 보온 패드를 사용합니다. 수술 전 밤새 충전하십시오.</td></tr><tr><td>SurgiSuite LED 조명 키트</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>SURGI-5003</td><td></td></tr><tr><td>핫 비드 살균기</td><td>Fine Science Tools</td><td>18000-45</td><td>예열은 15 - 20분이 소요됩니다. 기기는 살균하는 데 20초가 걸립니다.</td></tr><tr><td>소형 설치류 마취 시스템</td><td>VetEquip Inc.</td><td>901810</td><td></td></tr><tr><td>이소플루오란</td><td>피라말 엔터프라이즈</td><td>66794-017-10</td><td></td></tr><tr><td>부프레노르핀</td><td>로드 아일랜드 병원 약국</td><td>NDC 12496-0757-1, 12496-0757-5</td><td></td></tr><tr><td>수술용 루페</td><td>Roboz</td><td>RS-6687</td><td></td></tr><tr><td>소형 설치류 인공호흡기</td><td>하버드 장치</td><td>73-0043</td><td></td></tr><tr><td>윤활 방울</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>19-898-350</td><td></td></tr><tr><td>전기 면도기</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>CL 9990-1201</td><td></td></tr><tr><td>제모 크림</td><td>Nair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>의료 테이프</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>18-999-380</td><td></td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>19-027136</td><td></td></tr><tr><td>70% 이소프로판올 물티슈</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>22-363-750</td><td></td></tr><tr><td>수술용 드레이프</td><td>Braintree</td><td>SP-TS</td><td></td></tr><tr><td>수술용 장갑</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>18999102D</td><td></td></tr><tr><td>5-0 폴리프로필렌 봉합사&nbsp;</td><td>Ethicon</td><td>8630G</td><td></td></tr><tr><td>8-0 나일론 봉합</td>사 <td>파인 사이언스 도구</td><td>12051-08</td><td></td></tr><tr><td>플래티넘 경화 튜빙</td><td>하버드 장치</td><td>72-1042&nbsp;</td><td>내경 0.3mm×외경 0.6mm</td></tr><tr><td>0.9% 식염수</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>19-310-207</td><td></td></tr><tr><td>4-0 폴리프로필렌 봉합</td>사 <td>Ethicon</td><td>8631G</td><td></td></tr><tr><td>1 CC 주사기와 25게이지 바늘&nbsp;</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14-826-100</td><td></td></tr><tr><td>가위</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INSS600225</td><td></td></tr><tr><td>펜치</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS700100</td><td></td></tr><tr><td>면봉</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>23-400-118</td><td></td></tr><tr><td>IV 카테터, 20-게이지</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>&nbsp; </td><td></td>NC9892181</tr><tr><td>견인</td>기 <td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS 750369</td><td></td></tr><tr><td>집게</td><td>Fine Science Tools</td><td>11003-12</td><td></td></tr><tr><td>해부 겸자, 직선</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS 700101</td><td></td></tr><tr><td>해부 겸자, 곡선</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS 700103</td><td></td></tr><tr><td>지혈 겸자, 직선</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS 750451</td><td></td></tr><tr><td>지혈 집게, 곡선</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS 750452</td><td></td></tr><tr><td>조직 집게 Kent</td><td>Scientific Corporation</td><td>INS 700131</td><td></td></tr><tr><td>바늘 홀더</td><td>Kent Scientific Corporation</td><td>INS 600109</td><td></td></tr><tr><td>가위&nbsp;</td><td>켄트 사이언티픽 코퍼레이션</td><td>INS 600225</td><td></td></tr></tbody></table>

쥐 왼쪽 앞쪽에 내림차순 (lad) 관상 동맥 결찰 : 심근 경색에 대한 개선 및 단순화 된 모델

Murine Left Anterior Descending (LAD) Coronary Artery Ligation: An Improved and Simplified Model for Myocardial Infarction

허혈성 심장 질환 (IHD), 급성 관상 동맥 증후군 (ACS)는 미국에서 사망의 주요 원인 중 하나입니다. IHD는 산소의 감소 및 심장 근육의 괴사 계속되는 결과 심장에 혈액 공급이 감소 특징으로한다. MI 모델은 단기 허혈 - 재관류 모델과 장기 영구 결찰 모델로의 사용에 대한 인기를 얻고있다. 아래, 우리는 LAD의 영구 결찰을위한 신뢰할 수있는 방법을 설명합니다. 마우스 유전 공학 기술이 더 진보되고, 품질 쥐의 수술 도구의 증가 가용성으로, 마우스는 MI 수술에 대한 인기 모델이되고있다. 우리의 외과 모델 마우스의 빠른 복구를 위해 쉽게 되돌릴 수 마취제의 사용을 포함; 기관 절개술을 포함하지 않고 최소 침습 기관 내 삽관; 상기 가슴 절개 부가 만들지 않고 원래 개흉술 사이트를 통해 천자는 그대로효과적으로 흉강의 과도한 혈액과 공기를 제거하고, 일부 다른 방법으로 수행. 이 방법은 비교적 급격히 외과 수술 합병증 및 사망률 감소 및 재현성을 개선하는 다른 방법에 비해 덜 침습적이다.

생쥐 이십팔일 수술 후 안락사되고, 마음은 수확을 조사하고 있습니다. 75 ㎎ / ㎏의 케타민 및 5 - - 10 밀리그램 / kg 자일 라진 마우스에게 50 마취. 동물이 충분한 마취되면, 흉강을 개방하고, 23 게이지 바늘을 사용하고, 차가운 염화칼륨 (KCL, 30 mM)을 심장의 후부 기저 영역으로 주입된다. 심장은 이완기에서 체포된다. 결찰의 추가 검증을 위해, 마음은 동물에서 제거되고 4 % 파라 포름 알데히드를 주입 ​​한 후 1 % 에반의 블루 염료된다. 그림 1은 허혈성 좌심실에서 에반의 블루의 부족을 보여줍니다. 그림 2는 적절한 기관 내 삽관 설정을 보여줍니다. 봉합 근육층 3 디스플레이 초기 절개 부위에서 천자 용 흉관의 위치도는 C에서 공기를 추출하기 전에 상기 튜브 주위에 폐쇄hest 공동. 트리 크롬 염색 경색 영역 안의 ...

우리는 마우스 모델에서 좌측 전방 하행 동맥(LAD) 결찰에 대한 신뢰할 수 있는 방법을 제공합니다. 이 방법은 기관 내 삽관, 좌측 개흉술 접근법 및 흉강천자를 포함하는 다른 방법보다 상대적으로 덜 침습적입니다. 이 방법은 급성 및 만성 심근 경색(MI)에 대한 모델로 사용할 수 있습니다.

쥐 왼쪽 앞쪽에 내림차순 (LAD) 관상 동맥 결찰 : 심근 경색에 대한 개선 및 단순화 된 모델

Ischemic heart disease (IHD), or acute coronary syndrome (ACS), is one of the leading causes of death in the United States. IHD is characterized by ...

이 절차의 전반적인 목표는 좌전하행관상동맥을 결찰하여 마우스에서 심근경색을 유도하는 것입니다. 이 방법은 특정 유전자의 과발현 또는 녹아웃이 심근경색 후 심장의 회복에 영향을 미칠 수 있는지와 같은 심혈관 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 다양한 다른 심근경색 모사 모델보다 침습성이 낮으며, 합병증이 적고 회복 시간이 빠르다는 점입니다.일반적으로 이 방법이 처음인 사람은 기관 내 삽관과 LAD 동맥 식별에 숙련된 지도자의 지도가 필요하므로 어려움을 겪을 수 있습니다. 이 방법의 시각적 시연은 LAD를 식별하고 평가하는 데 매우 중요하며, 경험이나 교육 없이는 습득하기 어렵습니다. 동물에게 진정제를 투여하기 전, 비드 멸균기를 250 °C로 가열하기 시작하십시오. 가열에는 최대 20분이 소요될 수 있습니다.마우스가 충분히 진정되었는지 확인하십시오. 호흡수는 분당 약 32회입니다. 그런 다음 진정된 마우스를 스티로폼 보드 위에 등으로 대고 눕힙니다.구인두를 더 쉽게 관찰할 수 있도록 마우스를 눈높이에 맞춥니다. 진행하기 전, 발가락 꼬집기(toe pinch)를 통해 진정 상태를 확인합니다. 그런 다음, 고무줄을 사용하여 상악 절치를 벌린 상태로 고정함으로써 입을 벌린 채로 유지합니다.다음으로, 구인두가 투조될 수 있도록 고강도 조명기를 마우스 위에 배치합니다. 구인두의 미세 구조를 관찰하기 위해 수술용 루페를 착용하십시오. 이제 곡선 핀셋을 사용하여 턱을 엽니다.다른 핀셋 한 쌍으로 혀를 옆으로 밀어낸 다음 성대의 개폐 상태를 관찰하십시오. 성대가 열렸을 때, 둔탁한 팁의 바늘 도입기가 포함된 20 gauge 1인치 정맥 카테터를 삽입하십시오. 바늘을 사용하여 카테터를 기관 개구부로 안내하되, 바늘이 기관벽에 삽입되지 않도록 주의하십시오.그 다음 기관 삽관된 마우스를 가열 장치가 설치된 수술대로 옮기고, 소형 설치류용 인공호흡기를 연결합니다. 절차를 진행하기 전, 발가락 꼬집기(toe pinch)를 통해 마우스의 마취 수준을 확인합니다. 그런 다음 인공호흡기와 IV 카테터 사이의 연결 부위에서 기관 삽관 튜브를 테이프로 고정합니다.이어서 모든 사지를 테이프로 고정하고 눈에 윤활제를 도포합니다. 이제 흉부의 왼쪽 복측에서 털을 깎아냅니다. 그런 다음 노출된 피부에 제모 크림을 얇게 바르고 30~45초 동안 스며들게 둡니다.그동안 멸균 면봉을 betadine이 채워진 1.5

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

이 동영상은 심근 국소 빈혈의 pathobiological 및 pathophysiological 프로세스를 연구하기위한 빠르고 안정적​​인 모델을 사용하는 방법을 보여줍니다.

내사 - 결합 : 심근 경색의 Murine 모델

급성 심근 경색 (AMI)의 쥐 모델은 심장 pathophysiological 및 생리 기능에 MI의 결과를 연구하는 데 유용합니다.

고양이에서 급성 심근 경색

쥐 실험 심근 경색을 유발하는 데 사용되는 외과 수술은 심장과 왼쪽 폐의 앞쪽 표면을 시각화하기 위해 세 번째와 네 번째 갈비뼈 사이의 왼쪽 thoracotomy로 시작합니다. 왼쪽 관상 동맥이 출혈도 잡았되어 가슴이 폐쇄되고 마우스가 저절로 복구 할 수 있습니다.

마우스의 관상 동맥 결합에 대한 수정 기술

우리는 재현성을 높이기 위해 좌전 하행 동맥 (LAD)에 결찰의 위치에서 더 명확 수 있습니다 마우스 모델에서 심근 경색 (MI)을 시뮬레이션하기 위해 실험 허혈 / 재관류 (I / R) 손상을 유발하는 수술 방법을 소개합니다 마우스에있는 MI 실험.

왼쪽 앞쪽에 내림차순 동맥의 결찰을 통해 심근 허혈 - 재관류 손상의 생쥐 모델

심부전은 입원의 주요 원인이자 사망의 주요 원인입니다. 마우스에서 좌측 전방 하행 관상동맥의 영구 결찰 모델을 적용하여 심근경색 후 심실 리모델링 및 심장 기능 장애를 조사합니다. 마우스의 침습적 혈류역학적 측정 기술이 제시됩니다.

마우스의 왼쪽 전방 내림차순 관상 동맥의 영구 결찰 : 심근 경색 리모델링과 심장 마비의 모델

여기서 우리는 마우스에서 좌측 전방 의 관상 동맥의 영구적 인 결찰을 달성하는 방법을 보여주는 외과 적 절차를 설명합니다. 이 모형은 심근 경색의 병리생리학 및 수반되는 생물학 프로세스를 조사하기 위하여 높은 관련성입니다.

왼쪽 전방 내림차순 관상 동맥의 영구 결찰을 사용하는 뮤린 심근 경색 모델

여기서는 미세 조작을 통해 좌측 전방 하행 관상동맥의 정밀 결찰에 의해 마우스에서 심근경색 또는 심근 허혈 재관류 손상을 유도할 수 있는 간단하고 재현 가능한 방법을 설명합니다.

마우스의 심근경색 및 심근 허혈-재관류 손상 유도

여기에서 우리는 급성 심근 허혈 재관류 연구를 위해 쥐의 전통적인 절차를 기술적으로 수정하여 좌전하행 관상동맥 결찰술의 품질 관리에 초점을 맞춘 프로토콜을 제시합니다.

허혈 재관류 연구를 위한 좌전하행 관상동맥 결찰술: 기술적 수정 및 품질 관리를 통한 모델 개선

여기에 제시된 것은 생쥐에서 왼쪽 관상 동맥의 영구 결찰을위한 수술 절차입니다. 이 모델은 심근 경색 후 병태생리학 및 관련 염증 반응을 조사하는 데 사용할 수 있습니다.

좌측 관상동맥 결찰술: 심근경색의 외과적 쥐 모델

수많은 유전자 조작 및 / 또는 유전자, 단백질, 세포 및 / 또는 biomaterials의 intramyocardial 주사는 급성 국소 빈혈 / reperfusion 부상과 생쥐의 만성 리모델링의 연구에 시간의 차원에 따라 겹쳐있다. 이 동영상은 국소 빈혈 / reperfusion에 대한 microsurgical 절차, 영구적인 관상 동맥 내고, 그리고 intramyocardial 사출 공부를 보여줍니다.

경색의 Murine 모델에서 관상 동맥 내고과 Intramyocardial 사출

배우세요 쥐 심근 경색 모델에서 왼쪽 앞쪽에 내림차순 관상 동맥 결찰 기법을 이용한 최소 침습적 수술 방법. 이 기술은 심장 회복 메커니즘과 유전자 효과 연구에 활용됩니다.

쥐 왼쪽 앞쪽에 내림차순 (LAD) 관상 동맥 결찰 : 심근 경색에 대한 개선 및 단순화 된 모델

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