Name: 포르말린 - 고정, 파라핀 - 임베디드 인간 구강 성 편평 세포 암종 샘플에서의 T 세포 아군의 4 색 형광 면역 조직 화학 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: 학습하세요 구강 편평 세포 암종에서 T 세포 아군을 다색 형광 면역조직화학으로 시각화하고 계수하는 방법을. 포르말린 고정 파라핀 임베디드 샘플을 사용하여 면역세포 분포와 환자 예후의 관계를 분석할 수 있습니다.

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Simone Punt는 Dutch Cancer Society의 허가 UL2010-4801에 의해 지원되었습니다. Emilie A. Dronkers, Marij JP Welters, Renske Goedemans, Senada Koljenović, Elisabeth Bloemena, Peter JF Snijders, Arko Gorter 및 Sjoerd van이 JoVE 프로토콜을 기반으로 한 원저자의 모든 공동 저자들에게 감사드립니다. der Burg.

환자 샘플은 네덜란드 생명 과학 사회 연합 (www.federa.org)의 인체 조직의 적절한 부차적 사용을위한 행동 강령에 설명 된 의료 윤리 지침에 따라 처리되었습니다. 1. 슬라이드 준비 <ol><li> 절제 된 물질을 사용할 수있는 의료 윤리위원회의 허가를 얻은 후 병리과에서 절제 된 조직 물질 (모든 종류의 조직)을 얻습니다. 참고 : 현재 실험을 위해, 전처리 종양 샘플 (N = 162) (13) 전 기술로 선정, 라이덴 대학 의료 센터, 라이덴, 1970 년과 2011 년 사이에 네덜란드에서 진단 차 인두 종양에서 얻었다. 조직의 크기는 종양 내부에 4 개의 현미경 이미지를 안정적으로 취할 수있는 충분한 양의 종양 조직에 대한 요구 사항에 의해서만 제한되었습니다. </li><li> 최소 12 시간 동안 4 % 완충 포르말린에 조직을 고정. ag에서 조직 탈수에탄올의 습격 시리즈. 자일 렌으로 씻고 자동 티슈 프로세서를 사용하여 파라핀 왁스에 묻습니다. </li><li> 마이크로톰을 사용하여 유리 슬라이드에 4 μm 두께의 포르말린 고정, 파라핀 내장 (FFPE) 조직 절편을 자릅니다. 표준 절차를 사용하여 조직 블록을 마이크로 톤 조직 홀더에 놓습니다. <ol><li> 조직의 리본을 잘라내어 45ºC의 탈 이온수가 담긴 수조의 표면에 놓습니다. immunohistochemical 염색법에 적합한 슬라이드를 사용하여 섹션 바로 아래에있는 물에 슬라이드를 놓아서 섹션을 낚시질하십시오. 조심스럽게 슬라이드를 비스듬히 위로 움직여 단면에서 물을 꺼내 슬라이드에 붙입니다. </li></ol></li><li> 슬라이드를 37 ° C에서 밤새 말리십시오. </li><li> FFPE 슬라이드를 신선한 100 % 크실렌에 완전히 담그어 5 분 동안 세 번씩 FFPE 슬라이드를 탈 파라핀시킵니다. 신선한 100 % 에탄올, 70 % 에탄올 및 50 % 에탄올에서 각각 5 분 동안 두 번 침몰시켜 슬라이드를 보충하십시오.. </li></ol> 2. 항원 검색 수행 <ol><li> 5 분 동안 탈 이온수에서 슬라이드를 씻으십시오. </li><li> 전자 레인지를 사용하여 트리스 ​​- 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 (EDTA) 버퍼 (10 MM 트리스 플러스 1 MM EDTA, pH 9.0)를 끓는 온도로 예열하십시오. 미리 가열 EDTA 버퍼에 슬라이드를 잠수함과 전자 레인지에서 10 분 동안이 온도에서 버퍼를 유지하여 항원 검색을 수행합니다. 참고 : 900W의 전력을 사용하는 모든 전자 레인지를 사용할 수 있습니다. </li><li> 슬라이드를 2 시간 동안 버퍼에서 식히십시오. </li></ol> 3. 얼룩 조직 슬라이드 <ol><li> 인산염 완충 식염수 (PBS)로 두 번 슬라이드를 각각 5 분씩 씻으십시오. </li><li> 슬라이드 주변에서 희석 된 항체가 흘러 나오지 않도록 소수성 펜으로 조직 주위에 원형을 그립니다. PBS로 한번 더 씻으십시오. 이것은 선택 사항입니다. </li><li> 1 % w / v 소 혈청 a에 희석 된 1 차 항체 (항 -CD3 1:50, 항 -FoxP3 1 : 200 및 항 -IL-17 1:50)로 조직을 인큐베이션한다PBS 중 lbumin (BSA)을 실온에서 밤새 처리 하였다. 참고 : 슬라이드 당 볼륨은 조직의 크기에 따라 다르지만 일반적으로 50 - 150 μL입니다. CD3, CD8 및 FoxP3 항체 ( 예 : 토끼 Ig 이소 형 제어 항체, 마우스 IgG1 이소 형 제어 항체 및 염소)와 동일한 희석에서 부정적인 제어 슬라이드에 대한 알 수없는 특이성과 동일한 아이소 타입 클래스의 항체로 기본 항체를 바꿉니다 IgG 이소 타입 컨트롤 항체). </li><li> 슬라이드를 5 분 동안 PBS로 세 번 씻으십시오. </li><li> 1 차 항체 종 및 / 또는 isotypes ( 즉, 1 : 200 당나귀 안티 - 염소 IgG 알렉사 488, 당나귀 안티 - 토끼 IgG A546, 그리고 당나귀 안티 마우스 A647)를 희석 한 형광 標識 이차 항체의 조합으로 조직을 부화 PBS 중 1 % BSA를 실온에서 1 시간 동안 처리 하였다. 참고 : 슬라이드 당 볼륨은 조직의 크기에 따라 다르지만 일반적으로 50 - 150 μL입니다. <ol><li> 후2 차 항체를 추가하고 어두운 상자에 보관하거나 상자를 알루미늄 호일로 포장하여 가능한 한 많은 빛으로부터 슬라이드를 보호하십시오. </li></ol></li></ol> 4. 마운트 및 Counterstain 조직 슬라이드 <ol><li> 슬라이드를 5 분 동안 PBS로 3 번 씻으십시오. </li><li> 핵 counterstain ( 예 : DAPI)을 포함하는 수용액 방지 퇴색 마운트 매체를 사용하여 슬라이드를 마운트합니다. 가능한 한 빨리 형광 현미경을 사용하여 슬라이드를 분석하십시오 (2 주 이내에). 분석까지 슬라이드를 4 ° C에서 어둠에 보관하십시오. </li></ol> 5. 스테인드 조직 슬라이드 분석 <ol><li> 20 - 25X 목적을 갖춘 형광 현미경을 사용하여 각 슬라이드의 네 이미지를 얻습니다. 슬라이드에 포함 된 전체 종양 영역의 무작위 위치에서 이미지를 촬영하여 종양의 대표적인 부분을 캡처합니다. 참고 : 표준 배율 250X를 사용해야합니다. 모든 형광등레이저 스캐닝 현미경은 사용 된 형광색을 시각화하는 데 필요한 필터와 레이저가 있으면 사용할 수 있습니다. <ol><li> Alexa 488의 시각화를 위해 여기 최대 값 490, 최대 방사 값 525를 사용하십시오. Alexa 546의 시각화를 위해 여기 최대 값을 556, 최대 방사 값을 573으로 사용하십시오. Alexa 647의 시각화를 위해 최대 여기 650 및 최대 방사 665를 사용하십시오. DAPI의 시각화를 위해서는 여기 최대치를 358, 최대 방출량을 461로 사용하십시오. </li><li> 이미지를 사용자가 사용할 수있는 소프트웨어의 이미지 파일 ( 예 : jpeg 및 tiff)로 저장하십시오. </li></ol></li><li> 병리학자를상의 한 후 종양 상피 세포와 간질 세포의 핵 및 세포 형태에 따라 종양 상피와 종양 간질 영역을 구별합니다. <ol><li> 총 기질 표면적을 결정하기 위해, 간질 세포 (종양 세포가 아닌)가 차지하는 모든 영역 주위에 선을 그어주고d 현미경 제조업체가 제공 한 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 표면적. <ol><li> 이미지 아래의 &quot;Overlay&quot;탭을 클릭하십시오. &quot;Closed Poly-line&quot;모양을 선택하고 클릭하십시오. 종양 상피 세포와 간질 세포 사이의 경계를 경계 짓기 위해 다시 마우스를 클릭하십시오. 이 영역에 대한 측정 값을 제공합니다. 참고 : 모양을 닫으면 선택한 이미지의 서페이스 영역을 둘러싸는 모양 옆에 숫자가 나타납니다 (A = x μm 2 ). </li></ol></li><li> 이 표면 영역을 전체 이미지 표면 영역 (이미지 속성에서 제공)에서 뺀 후 상피 표면적을 계산합니다. 제공된 영역의 크기를 기록하고 상피 표면 영역에서 그 부분을 빼내서 혈관, 괴사 및자가 형광 영역을 제거하십시오. </li><li> 모든 표면적 수치를 스프레드 시트 파일에 저장하여 평균 표면적을 계산하고슬라이드 당 셀 번호. </li><li> 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 네 가지 채널 모두의 형광을 확인하여 세포가 단일, 이중 또는 삼중 양성인지 확인합니다. <ol><li> ImageJ를 사용하여 각 이미지의 단일, 이중 및 삼중 양성 세포를 센다. <ol><li> ImageJ를 다운로드하십시오. &quot;파일&quot;및 &quot;열기&quot;를 클릭하고 분석 할 이미지를 선택하여 이미지를 엽니 다. &quot;Point Tool&quot;(4 줄 중간의 빨간색 사각형)을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 &quot;Multi-Point Tool&quot;을 선택하십시오. &quot;Multi-Point Tool&quot;을 두 번 클릭하고 각 셀 유형에 다른 카운터 번호를 선택하여 이미지에서 다른 셀 유형의 수를 계산하십시오. 참고 : 하나, 둘 또는 세 가지 형광색의 존재 여부에 따라 식별되는 각기 다른 세포 유형의 모든 세포를 세십시오. 이 핵 역전사는 모든 세포에 존재하며 면역 세포와 종양 세포를 구별하는 데 사용되므로 DAPI는 제외합니다. 각 셀 유형이 계산됩니다.다른 카운터 번호를 사용합니다. 매번 다른 카운터 번호를 선택하여 종양 상피 및 간질 영역에서 각 세포 유형의 세포 수를 개별적으로 계산하십시오. 혈관과 주로자가 형광 영역의 세포를 세지 마십시오. </li><li> 스프레드 시트 파일에서 각 이미지의 각 카운터 저장소에서 분석 된 셀 수를 기록하십시오. </li><li> 분석 된 종양 상피와 종양 간질의 총 표면적에 대해 각 세포 유형의 총 세포 수를 나눕니다. </li></ol></li></ol></li></ol></li></ol> 6. 통계 분석 참고 : 모든 통계 분석은 데이터의 품질을 보장하기 위해 통계 전문가와 논의해야합니다. 일반적으로 통계를 들어, 어떤 의료 통계 가이드 (14)를 사용합니다. <ol><li> 스피어 만 (Spearman)의 순위 상관 관계 ρ 테스트를 사용하여 세포 주파수 간의 상관 관계를 테스트합니다. </li><li> 양성 세포 수의 통계적 차이 테스트Wilcoxon Mann-Whitney test를 사용하여 환자군간에 비교 하였다. </li><li> Kaplan-Meier 곡선 생성 및 로그를 사용하여 세포 수를 기준으로 그룹별로 환자를 나누어 셀 번호와 무병 생존 기간 ( 즉, 진단에서 사망 또는 질병의 재발까지의 시간) 간의 상관 관계를 테스트합니다 순위 분석 15 . </li><li> Cox 비례 위험 회귀 분석을 사용하여 다 변수 분석을 수행하십시오. </li></ol>

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저자는 상업적 또는 재정적 이해 관계가 없음을 선언합니다.

설명 된 프로토콜에 대해 가장 중요한 단계 중 하나는 사용 된 1 차 항체의 정확한 희석을 결정하는 것입니다. 이러한 특정 알레시 - 라벨 항체의 제조 업체가 권장하는 바와 같이, 표지 2 차 항체의 희석은 1 : 200이었다. 일차 항체의 희석은 바람직하게는 의도 된 조직 유형 (이 경우, OPSCC)의 2 개의 상이한 샘플을 사용하여 연속 희석에 의해 결정되어야한다. 최적의 작업 희석은 배경 잡음이없고 동일한 농도의 음성 대조군에 대한 신호가없는 명확한 신호가 얻어지는 희석입니다. 이용 가능한 현미경 유형 및 연구자의 선호도에 따라, 2 차 항체 및 장착 매질의 유형에 관한 수정이 이루어질 수있다. 의도 한 결과가 달성되지 않으면 배경 신호에 문제를 일으키는 것으로 알려진 유리 슬라이드 유형을 조사하는 것이 좋습니다<html> 특별한 종류의 염색 용액 ( 예, Perma Blue). 둘째, 일부 항원은 열 유도 항원 결정 인자 검색을 사용하여 혼란을 일으킬 수 있습니다. 이 경우, 연구원은 버퍼의 가열 단계...

Oropharyngeal 편평 세포 암 (OPSCCs)은 구강 인두에서 기인 한 편평 세포 암의 이질적인 그룹입니다. OPSCC의 위험 요소에는 HPV (human papillomavirus) 감염과 알코올 및 담배 사용이 포함됩니다 1 , 2 . 면역 반응의 역할과이를 임상 환경에서 사용하는 방법이 이제 막 연구되기 시작했습니다. 종양 미세 환경은 암세포에 끌리는 면역 세포에 의해 침투됩니다. 높은 CD8 + 세포 독성 T 세포 주파수 OPSCC 환자 3 향상된 생존율과 상관 하였지만, Tregs와 Th17 세포를 포함하는 다른 T 세포 서브 세트의 역할은 아직 불분명 4. 받은 Th1과 Th17 세포가 면역 반응 대상으로 종양 세포에 도움을 해야하는 반면, Tregs는 다른 T 세포 (5)의 활동을 억제하는 자신의 능력에 대한 알려져있다. 그러나, T의 존재regs는 서로 다른 종양 유형에서 호의적 인 반응과 바람직하지 않은 반응과 상관 관계가있는 것으로 밝혀졌습니다 6 . 혈액에 존재하는 모든 면역 세포가 종양에 같은 정도로 침투하는 것은 아니기 때문에 국소 종양 미세 환경을 연구하면 종양에 대한 면역 반응을 가장 확실하게 측정 할 수 있습니다. 이 연구의 목적은 면역 세포의 수와 유형 및 임상 결과 간의 상관 관계를 결정하는 것이다. 우리는 인간 OPSCC에서 다양한 T 세포 subpopulation의 수와 위치를 분석하기 위해 4 색 형광 IHC 이미징을 사용했습니다. 우리는 총 T 림프구 (CD3 + ), Th17 세포 및 면역 억제 성 FoxP3 + Tregs에 중점을 두었습니다.이 분화 경로는 Th17 세포와 밀접한 관련이 있습니다. Th17 세포는 CD3과 IL-17의 조합으로 특징 지어집니다. 사이토 카인 IL-17은 또한 비 - T 세포 (7)에 의해 제조 할 수있다. 우리는 intra-epitidine의 분포를 결정했다헬리 얼 및 간질 T 세포, Tregs, Th17 및 IL-17 + 비 T 세포를 대상으로 OPSCC 발현을 조사하고 환자 생존과의 상관 관계를 분석 하였다. 다색 형광 IHC는 CD3, Foxp3 및 IL-17의 발현을 DAPI 대조 염색제와 함께 확인하는데 사용되었다. 이 분석은 종양 세포 (DAPI 핵 염색법 사용)와 침윤 T 세포 집단 (다른 마커의 조합 사용) 모두를 쉽고 명확하게 식별 할 수있게 해줍니다. 샘플 준비 및 염색법에 따라 형광 현미경과 이미징 소프트웨어를 사용하여 서로 다른 형광 색상을 구분하고 종양 상피와 종양 관련 간질 모두에 존재하는 세포의 수와 유형을 결정했습니다. 면역 세포 집단을 정량화하고 표현하기위한 또 다른 분석법은 유동 세포 계측법 분석 또는 종양 또는 주변 샘플 ( 즉, 혈액 또는 복수)의 비행 시간 (CyTOF) 분석에 의한 세포 계측법입니다. 이것을 사용하여기술을 사용하면 다른 세포 유형의 지방화 및 상대적 분포에 대한 모든 정보가 손실됩니다. 말초 샘플의 사용 및 분석은 어떤 세포가 종양 미세 환경에 침투 할 수 있는지에 대한 정보도 제공하지 않습니다. 혈액과 복수 면역 세포 분석은 종양 조직의 면역 세포 침윤의 표현형과 빈도를 반영하지 않는 것으로 나타났습니다 8 , 9 . 또 다른 대안은 명 시야 현미경을 사용하는 것입니다. 형광 이미징에 비해이 기법의 장점은 조직 autofluorescence의 부재입니다. 일부 샘플에는자가 형광, 특히 적혈구뿐만 아니라 호중구 과립구를 포함한 다른 세포 유형이 포함되어 있어도 거의 모든 샘플의 분석에서 쉽게 제거 할 수 있습니다. Immunofluorescence는 형광 표적을 사용하여 하나의 샘플에서 여러 마커를 분석 할 수있는 이점을 제공합니다nt 파장. 이것은 특정 항원에 대한 충분한 수의 표지 및 상업적으로 이용 가능한 항체 이소 타입이 없기 때문에 명 시야 현미경 검사에서 현재 동일한 정도로 불가능합니다. 여기에 설명 된 다색 형광 IHC 기술은 다양한 면역 세포 집단, 인간 백혈구 항원 (HLA) 및 PD-L1 10 , 11 과 같은 종양 세포 발현 분자를 연구하기 위해 다양한 암 유형 및 항체 조합에서 사용되었습니다 . 12 . 이 프로토콜은 많은 다른 유형의 시료와 항체를 사용하여 입증되고 검증되었습니다.

<table><tbody><tr><td>Pathos Delta Ultra Rapid Tissue Processor</td><td>Milestone 및 Histostar</td><td></td><td>자동화 조직 프로세서</td></tr><tr><td>Histostar</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td>조직 블록 임베딩 기계</td></tr><tr><td>포름알데히드</td><td>베이커</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Xylol</td><td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>에탄올</td><td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>milliQ water</td><td>Elaga Purelab Chorus</td><td></td><td></td></tr><tr><td>파라핀 왁스/Paraclean</td><td>Klinipath</td><td>5079A</td><td></td></tr><tr><td>마이크로톰 티슈 홀더</td><td>Leica</td><td>RM225</td><td></td></tr><tr><td>Flex IHC 사이드</td><td>Dako</td><td></td><td>티슈 슬라이드</td></tr><tr><td>Tris</td><td>Merk-Milipore</td><td>1,083,821,000</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Baker</td><td>1073</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Bio-Rad</td><td>BUF036A</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>시그마</td><td>A9647</td><td></td></tr><tr><td>토끼 항 CD3</td><td>Abcam</td><td>ab828</td><td>적정 필요 항체 희석</td></tr><tr><td>마우스 IgG1 항 FoxP3</td><td>Abcam</td><td>ab20034</td><td>적정 필요 항체 희석</td></tr><tr><td>염소 IgG 항 IL-17</td><td>R & D Systems</td><td>AF-317-NA</td><td>적정 필요 항체 희석</td></tr><tr><td>Rabbit Ig isotype control 항체</td><td>Abcam</td><td>ab27472</td> anti-CD3 <td></td></tr><tr><td>Mouse IgG1 isotype control 항체</td>와 동일한 최종 농도에서 <td>사용 Abcam ab91353</td><td></td><td>anti-FoxP3</td></tr><tr><td>Goat IgG isotype control 항체</td>와 동일한 최종 농도에서 사용 <td>ThermoFisher Scientific</td><td>02-6202</td><td>다음과 동일한 최종 농도에서 사용 anti-IL-17</td></tr><tr><td>당나귀 anti-rabbit IgG A546</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>A10040</td><td>1% BSA/PBS</td></tr><tr><td>당나귀 anti-mouse-A647</td>에 1:200 희석 <td>ThermoFisher Scientific</td><td>A31571</td><td>1% BSA/PBS</td></tr><tr><td>당나귀 anti-goat IgG A488</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>A11055</td> DAPI Vector Laboratories H-1200<td>을 함유한 1% BSA/PBS VectaShield에 1:200 희석</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>LSM700 컨포칼 레이저 스캐닝 현미경&nbsp;</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LCI Plan-Neofluar 25x/0.8 Imm Korr DIC M27 objective</td><td>Zeiss</td><td>420852-9972-720</td><td></td></tr><tr><td>LSM Zen Software</td><td>Zeiss</td><td>버전 2009</td><td></td></tr><tr><td>LSM Image Browser</td><td>Zeiss</td><td>버전 4.2.0.121</td><td>www.zeiss.com/microscopy/int/website/downloads/lsm-image-browser.html 에서 다운로드 할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>SPSS</td><td>IBM 주식 회사</td><td>버전 20.0</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td></td><td>버전 1.50i</td><td>http://rsb.info.nih.gov/ij 에서 다운로드할 수 있습니다.</td></tr></tbody></table>

포르말린 - 고정, 파라핀 - 임베디드 인간 구강 성 편평 세포 암종 샘플에서의 t 세포 아군의 4 색 형광 면역 조직 화학

Four-color Fluorescence Immunohistochemistry of T-cell Subpopulations in Archival Formalin-fixed, Paraffin-embedded Human Oropharyngeal Squamous Cell Carcinoma Samples

4 색 형광 immunohistochemistry (IHC) 기술은 조직의 상대 분포와 위치를 고려하면서 관심있는 세포 집단을 정량화하는 방법입니다. 이 기술은 다양한 종양 유형에서 면역 침윤을 연구하기 위해 광범위하게 적용되었습니다. 종양 미세 환경은 종양 부위에 끌리는 면역 세포에 의해 침투된다. 다른 면역 세포 집단은 종양의 미세 환경에서 다른 역할을하고 질병의 결과에 다른 영향을주는 것으로 밝혀졌습니다. 이 원고는 oropharyngeal 편평 세포 암 (OPSCC)에 대한 다중 매개 변수 형광 IHC의 사용을 예로 설명합니다. 이 기술은 관심있는 다른 조직 샘플 및 세포 유형으로 확장 될 수 있습니다. 제시된 연구에서, 우리는 큰 OPSCC 코호트 (n = 162)의 상피 및 간질 구획을 분석했다. 우리는 총 T 림프구 (CD3 + ), 면역 억제 조절간질에서 종양 상피를 구별하기 위해 핵 역지사를 사용하여 T 세포 (Tregs, 즉 FoxP3 + ) 및 T 헬퍼 17 (Th17) 세포 ( 즉, IL-17 + CD3 + 종양 내 IL-17 + 비 T 세포의 수가 적은 환자에서 높은 수의 T 세포가 무병 생존율의 개선과 상관 관계가있는 것으로 나타났다. 이는 IL-17 + non-T 세포가 OPSCC의 면역 반응이 좋지 않음을 암시하며 이는 IL-17과 암 환자의 생존율이 낮은 경우의 상관 관계와 일치한다. 현재, 새로운 다중 매개 변수 형광 IHC 기술은 최대 7 개의 형광 색소를 사용하여 개발되고 있으며, 종양 미세 환경에서 면역 세포의보다 정확한 특성 분석 및 국소화를 가능하게 할 것입니다.

상기 프로토콜을 사용하여 염색 하였다 (N = 162)을 이전에 기재된 13 바와 같이 라이덴 의료원 라이덴 1970 년과 2011 년 사이 네덜란드 진단 차 인두 종양에서 얻은 FFPE 예비 처리 종양 샘플의 일련의 선택. 각 슬라이드의 1 ~ 4 개의 임의 이미지가 분석되었습니다 ( 그림 1 ). 일부자가 형광 세포가 표시되며 이는 완전한 노란색 외관으로 명확하게 구분할 수 있습니다. 진정으로 이중 또는 삼중 양성 세포는 예상되는 국소화에서 특정 항체에 대해 양성이며 세포막 또는 핵에 존재한다. 음성 대조군 슬라이드는 백그라운드 조직자가 형광보다 높은 특이적인 염색을 보이지 않았으며 ( 그림 2 및 그림 4 ), 모든 신호가 1 차적으로 인식 된 표적에 특이하다는 ...

Multiparameter fluorescence immunohistochemistry는 종양의 미세 환경에서 면역 세포 집단의 수, 상대 분포 및 위치를 평가하는 데 사용할 수 있습니다. 이 원고는 구강 인두 암에서 T 세포 subpopulation을 분석하는이 기술의 사용을 설명합니다.

포르말린 - 고정, 파라핀 - 임베디드 인간 구강 성 편평 세포 암종 샘플에서의 T 세포 아군의 4 색 형광 면역 조직 화학

The four-color fluorescence immunohistochemistry (IHC) technique is a method to quantify cell populations of interest while taking into account their ...

이 실험의 전반적인 목표는 구인두 편평 세포 암종 샘플의 아카이브 포르말린 고정 파라핀 포매 조직 절편에서 다양한 T 림프구 하위 집단의 다색 면역조직화학적 시각화 및 계수를 수행하는 것입니다. 이 방법은 면역 세포에 침투하는 종양 조직, 하위 집단 및 환자 예후 사이에 연관성이 있는지와 같은 면역 종양학 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술을 사용하면 하나의 조직 섹션에서 여러 바이오마커를 시각화할 수 있습니다.이 기술의 의미는 암 치료로 확장되는데, 여러 면역 세포 또는 면역 관련 요인을 동시에 평가하면 특정 면역 요법에 대한 환자 계층화에 도움이 될 수 있기 때문입니다. 먼저 마이크로 혀를 사용하여 4마이크로미터 두께의 포르말린이 고정된 파라핀이 함유된 조직 절편을 얻고, 조직 리본을 섭씨 45도의 탈이온수 수조 표면에 놓는 것으로 시작합니다. 단면을 캡처하려면 조직 샘플 바로 아래에 있는 물에 유리 슬라이드를 놓고 슬라이드를 비스듬히 조심스럽게 위로 움직입니다.이 섹션은 슬라이드가 물 밖으로 들어 올려질 때 유리 표면에 달라붙습니다. 샘플을 섭씨 37도에서 밤새 건조시킨 후 100% 자일롤에 5분 동안 총 3회 담가두어 조직을 파라핀을 제거합니다. 절편이 파라핀 제거가 완료되면 3회 하강하는 에탄올 침지로 조직 샘플을 재수화합니다.그런 다음 탈 이온수로 5 분 동안 씻습니다. 그런 다음 샘플을 끓는 EDTA 버퍼에 전자레인지에 10분 동안 담그고 슬라이드를 버퍼에서 2시간 동안 식힙니다. 관심 항원을 라벨링하려면 5분 PBS 세척 2회로 샘플을 헹굽니다.두 번째 세척 후, PBS의 1% 소 혈청 알부민에 희석된 1차 항체 및 관심으로 조직을 실온에서 밤새 배양합니다. 다음 날 아침, 5분 PBS 세척으로 절편을 헹구고 PBS의 1% 혈청에 희석된 적절한 2차 항체로 샘플을 실온에서 1시간 동안 배양합니다. 배양이 끝나면 방금 시연한 대로 PBS에서 슬라이드를 세 번 세척하고 핵 카운터 염색이 포함된 수성 퇴색 방지 장착 매체를 사용하여 슬라이드를 장착합니다.샘플을 분석하려면 먼저 형광 현미경에서 20-25배 대물렌즈를 선택하고 2차 항체 및 카운터 염색에 적합한 필터를 사용하여 슬라이드당 4개의 이미지를 캡처합니다. 얻은 대로 이미지를 저장합니다. 그런 다음 해당 이미지 분석 소프트웨어에서 관심 있는 첫 번째 이미지를 열고 오버레이 탭을 클릭합니다.닫힌 폴리선 쉐이프를 선택하여 관심 영역의 경계를 디마키합니다. 형상이 닫히면 측정 표면적이 관심 영역 옆에 나타납니다. 스프레드시트 파일에 모든 표면적 데이터를 저장하여 슬라이드당 평균 표면적과 소리 수를 계산합니다.ImageJ에서 열 수 있도록 이미지를 TIFF 또는 JPG 파일로 내보냅니다. 그런 다음 ImageJ에서 관심 있는 첫 번째 이미지를 열고 플러그인 메뉴에서 셀 카운터를 선택합니다. 그런 다음 초기화를 클릭하고 유형 1을 클릭한 다음 유형 1로 지정된 모든 셀을 클릭합니다.각 세포 유형에 대해 다른 유형을 선택하여 형광 발현에 따라 이미지에서 서로 다른 유형의 세포 수를 계산합니다. 마지막으로 스프레드시트 파일의 각 이미지에 대해 각 카운터 bin에서 분석된 셀 수를 기록합니다. 이 대표적인 실험에서는 1970년에서 2011년 사이에 라이덴 대학 의료 센터에서 진단된 원발성 구인두 종양에서 얻은 일련의 포르말린 고정 파라핀 함유 전처리 종양 샘플에서 방금 시연된 대로 준비된 일련의 포르말린 고정 파라핀 함유 전처리 종양 샘플에서 4개의 무작위 이미지를 분석했습니다.이 실험 샘플에서 일부 자가형광 세포가 관찰되었는데, 이는 완전한 노란색 외관으로 구별되는 반면, 음성 대조군 슬라이드는 배경 조직 자가형광 위의 특정 염색을 보여주지 않았습니다. 모든 종양 샘플은 IL-17을 발현하는 작은 T 세포 하위 집합과 함께 다양한 수의 fox p3 양성, CD3 양성 T 세포에 의해 침투하는 것으로 확인되었습니다. 총 침윤 CD3 양성 T 세포 수가 많은 환자의 샘플은 T 세포 구성원이 낮은 환자 샘플에 비해 무병 생존율이 향상되는 경향을 보여줍니다.또한, IL-17 양성 세포의 수가 적은 샘플에서 총 침투 T 세포의 수가 많으면 질병이 없는 생존율이 향상되는 것과 상관관계가 있으며, 이는 구인두 편평 세포 암종에서 T 세포의 효과적인 침투가 존재하는 IL-17 양성 세포의 수가 적은 것과 관련이 있을 수 있음을 시사합니다. 일단 마스터하면 이러한 샘플 준비 단계를 하루 반 만에 완료할 수 있으며 염색 세션당 최대 25개의 슬라이드를 완료할 수 있습니다. 샘플을 파라프팬화하지 않는 것이 매우 중요하며, 그렇지 않으면 많은 배경 지식을 얻을 수 있습니다.개발 후 이 기술은 병리학 및 면역학 분야의 연구자들을 위한 길을 열었습니다. 다양한 면역 세포 하위 집단의 국소화를 위한 미시환경을 탐색합니다. 이 비디오를 시청한 후에는 단일 보관 조직 섹션에서 다양한 단백질과 세포 유형을 시각화하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.사일로로 작업하는 것은 매우 위험하며 항상 흐름 캐비닛에서 작업해야 한다는 것을 잊지 마십시오.

four-color-fluorescence-immunohistochemistry-t-cell-subpopulations

Research

연구

JoVE Journal

Cancer Research

암 연구

여기 수량 immunofluorescence, 이미지 분석, 이질의 통계 측정을 사용하여 종양이 자료 histological 섹션에 분자 이질을 계량하는 방법을 설명합니다. 방법은 임상 biomarker 개발 및 분석에 사용하기위한 것입니다.

양적 Immunofluorescence를 사용하여 종양의 단백질 표현의 이질 매핑

자세한 프로토콜 6-마커 멀티플렉스 면역 형광 패널 최적화 수행 위한 더 일관 된 결과를 짧은 절차 시간 자동된 염색기를 사용. 이 방법은 종양 면역 연구에 대 한 모든 실험실에 의해 직접 적응 될 수 있다.

포 르 말린 고정 암 조직 표본에 면역-종양학 연구를 위한 자동화 된 다중 면역 형광 패널

인간 유두종 바이러스(HPV) RNA 염색체는 종양 내의 활성 인간 유두종 바이러스 감염 검출에 대한 금 기준 중 하나로 간주된다. 그것은 그것의 신호의 현지화 그리고 반정적인 평가를 가진 HPV E6-E7 mRNA 발현의 가시화를 허용합니다.

시투 혼성화에서 발색성 HPV 관련 두경부 암 진단을 위한 도구

여기에서는, 우리는 포르말린 고정된 파라핀 내장된 종양 조직 단면도에 있는 면역 세포를 구상하고, 정량화하고, 매핑하기 위한 간단하고 접근가능한 전략을 기술합니다. 이 방법론은 기존의 이미징 및 디지털 분석 기법과 이미징 분석의 다중 분석 기능 및 다중 매개 변수 분석을 확장하는 목적으로 결합합니다.

종양 미세 환경에서 면역 세포 집단의 시각화, 정량화 및 매핑

우리는 냉동 된 조직에 다중 스펙트럼 이미징을 수행하는 빠른 염색 방법을 설명합니다.

냉동 조직 섹션의 다스펙트럼 형광 이미징을위한 신속한 방법

암 면역 요법 시대에, 종양 미세 환경 역학을 밝히는 것에 대한 관심이 눈에 띄게 증가했습니다. 이 프로토콜은 염색 및 이미징 단계와 관련하여 질량 분광법 이미징 기술을 자세히 설명하므로 고도로 다중화 된 공간 분석이 가능합니다.

포르말린 고정 및 파라핀 임베디드 조직 샘플의 질량 분광법 이미징을 사용하여 종양 미세 환경에 대한 이해 확대

본 프로토콜은 인간 골육종 세포에서 lncRNA를 국소화하기 위한 RNA 형광 in situ 교잡의 방법을 기술한다.

인간 골육종 세포에서 긴 비코딩 RNA 국소화를 위한 RNA Fluorescence In Situ Hybridization

이 실험 프로토콜은 주로 단일 채널 항체 배양 조건을 최적화하고 항체 및 채널의 설정을 조정하여 임상 기원 폐암 조직의 자가형광 및 채널 누화 문제를 해결함으로써 다중 면역조직화학(IHC) 염색 방법을 설명하고 최적화합니다.

파라핀 포매된 폐암 조직을 위한 다중 면역조직화학 염색

다중 순환 면역조직화학은 반복적인 항원-항체 배양, 이미지 스캐닝, 이미지 정렬 및 통합을 사용하여 여러 마커를 동시에 현장에서 검출할 수 있습니다. 여기에서는 폐암과 쌍을 이루는 뇌 전이 샘플에서 이 기술로 면역 세포 기질을 식별하기 위한 운영 프로토콜을 제시합니다.

Multiplex Cyclic Fluorescent Immunohistochemistry(다중 순환 형광 면역조직화학)

이 보고서는 자동 슬라이드 염색기에서 다중 면역형광(mIF) 분석을 위한 자동 프로토콜에 대해 설명합니다. 이는 표준 고처리량 조직 자동염색기 및 전체 슬라이드 형광 이미저에서 공간 단백질체학의 높은 재현성을 보여주며, 이는 중개 연구에서 많은 수의 조직 슬라이드에 걸친 맞춤형 mIF 분석에 이상적입니다.

중개 연구를 위한 High-Throughput Automated Multiplex Immunofluorescence Assay

학습하세요 구강 편평 세포 암종에서 T 세포 아군을 다색 형광 면역조직화학으로 시각화하고 계수하는 방법을. 포르말린 고정 파라핀 임베디드 샘플을 사용하여 면역세포 분포와 환자 예후의 관계를 분석할 수 있습니다.

포르말린 - 고정, 파라핀 - 임베디드 인간 구강 성 편평 세포 암종 샘플에서의 T 세포 아군의 4 색 형광 면역 조직 화학

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