2017년 8월 16일
우리는 유전자 세트 농축 분석 transcriptomic 데이터를 변환 연구를 위한 이상적인 마우스 모델의 사용에 대 한 표준화 된 프로토콜을 제공 합니다.
이 프로토콜 DNA microarray 및 RNA 시퀀싱 데이터와 함께 사용할 수 있습니다 그리고 더 확장 될 수 있습니다 다른 omics 데이터에 데이터를 사용할 수 있는 경우.
이 절차의 전반적인 목표는 중개 연구 질문에 적합한 동물 모델을 식별하는 것입니다. 이 방법은 중개 연구의 한 가지 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있으며, 즉, 조사하고자 하는 특정 인간 질병에 적합한 동물 모델을 어떻게 선택할 수 있습니까? 이 기술의 주요 장점은 동물 모델과 인간 질병 연구 간에 전체 게놈 데이터를 비교한다는 것입니다.
따라서 이 접근법은 단일 유전자 비교와 관련된 편향된 해석을 피할 수 있습니다. 이 방법은 염증성 질환에 대한 마우스 모델의 적합성에 대한 통찰력을 제공하지만 다른 질병 모델에도 적용할 수 있습니다. GSEA는 유전자 발현 연구에 대한 정책 규정을 조사하는 데 도움을 줍니다.
모든 동물 모델 및 질병 연구의 결과는 추가 비교를 위한 기초가 됩니다. 소프트웨어 및 데이터 다운로드로 이 절차를 시작한 다음 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 데이터 처리 및 포맷을 수행합니다. 그런 다음 GSEA 소프트웨어 도구를 엽니다.
메인 창의 왼쪽에 있는 데이터 로드 버튼을 클릭합니다. 필요한 데이터 파일을 가져오기 위한 새 탭이 열립니다. 새 탭에서 유전자 발현 데이터 파일과 표현형 파일을 찾습니다.
GSEA가 인터넷에 연결할 수 없는 경우 다운로드한 분자 서명 데이터베이스 파일과 DNA 칩 주석 파일도 로드합니다. 성공적으로 가져온 데이터가 데이터 로드 섹션에 나타납니다. 메인 창의 왼쪽에 있는 Run GSEA 버튼을 클릭합니다.
분석에 대한 매개변수를 설정하기 위해 새 탭이 열립니다. 탭은 필수 필드, 기본 필드 및 고급 필드의 세 부분으로 세분화됩니다. 필수 필드에서 먼저 표현식 데이터 세트를 선택합니다.
그런 다음 연결된 웹 사이트 또는 수동으로 가져온 유전자 세트 파일에서 유전자 세트 데이터베이스를 선택합니다. 표현형 레이블을 편집하여 서로 비교해야 하는 샘플 그룹을 선택합니다. 예를 들어, 질병 그룹 대 건강한 대조군이 있습니다.
다음으로, 발현 데이터 세트의 프로브 식별자를 유전자 세트 데이터베이스에서 사용되는 공식 Hugo 유전자 기호로 변환하기 위해 데이터 세트를 유전자 기호와 동일하게 축소를 선택합니다. 발현 데이터 세트에 이미 Hugo 유전자 기호가 포함되어 있는 경우 false를 선택합니다. 순열 수를 기본 설정인 1, 000으로 설정합니다.
phenotype permutation은 모든 표현형에 7개 이상의 샘플이 있는 경우에만 권장되므로 permutation type을 gene set으로 변경합니다. 마지막으로, 연결된 웹 사이트 또는 수동으로 가져온 DNA 칩 주석 파일에서 유전자 발현 데이터를 생성하는 데 사용되는 칩 플랫폼을 선택합니다. 기본 필드에서 분석 이름과 이 폴더 섹션의 저장 결과를 편집합니다.
또한 추가 통계 매개변수를 변경할 수 있습니다. 매개 변수 및 고급 필드 섹션에 대한 자세한 내용은 GSEA 사용자 가이드를 참조하세요. 유전자 발현 데이터에 대해 외부에서 계산된 그룹 메트릭이 적용되는 경우 GSEA 사전 순위 도구를 사용합니다.
이 분석은 유전자 순위를 매기는 데 사용되는 미리 계산된 그룹 메트릭에 미리 할당된 간단한 유전자 목록을 기반으로 수행됩니다. 대체 유전자 발현 파일을로드 한 후 기본 탐색 모음으로 이동하여 Tools, GseaPreranked를 클릭하십시오. 마찬가지로, 해석에 대한 매개변수를 설정할 수 있는 새 탭이 열립니다.
그런 다음 창 오른쪽 하단에 있는 실행 버튼을 클릭합니다. GSEA 보고서 섹션에서 성공한 분석을 클릭하여 분석 결과를 엽니다. 그런 다음 Excel 형식의 자세한 보강 결과를 클릭하여 분석 결과를 스프레드시트로 내보냅니다.
두 표현형에 대한 결과를 개별적으로 내보냅니다. Excel에서 결과 데이터를 하나의 스프레드시트 파일에 조인합니다. 여러 연구의 유전자 발현 데이터를 나중에 비교하려면 최소한 유전자 세트의 이름, 정규화된 농축 점수 및 FDR 값을 유지하십시오.
두 번째 연구와 서로 비교하기 위한 모든 추가 연구에 대해 유전자 세트 농축 분석을 반복합니다. 중개 연구 질문에 대한 최적의 마우스 모델을 식별하기 위해 가능한 한 많은 인간 임상 연구와 다양한 마우스 모델을 포함합니다. 인간의 상황을 모방하기 위한 최적의 동물 모델을 식별하려면 모든 연구의 GSEA 결과를 서로 비교합니다.
농축 점수와 FDR 값을 사용하여 경로를 활성화, 억제 또는 둘 다 아님으로 분류합니다. 많은 연구를 비교하려면 R 스크립트를 사용하는 것이 좋습니다. 두 연구의 각 비교에 대해, 3 x 3 분할표에 표시된 대로 경로 조절의 9가지 가능한 조합의 실현 횟수를 세십시오.
긍정적 예측치(positive predictive value)와 부정적 예측값(negative predictive value)을 계산하여 두 연구 간의 상관관계를 평가합니다. 또한 ppv 확률 및 npv 확률로 표시되는 우연에 의해 상관 관계가 있을 것으로 예상되는 경로 부분을 추정합니다. 그런 다음 정보의 이득을 계산합니다.
모든 계산은 스프레드시트 프로그램을 사용하여 수행할 수 있지만 R 함수를 사용하는 것이 좋습니다. 예를 들어 R 함수, 카이 제곱 검정 또는 스프레드시트 프로그램을 사용하여 카이 제곱 검정으로 P 값을 계산하려면 한 쌍의 스터디에 대한 분할표를 사용합니다. 분할표의 데이터를 행렬 X에 저장합니다.다음으로, 분석을 위해 선택한 모든 스터디 조합에 대한 GSEA 결과를 비교합니다.
정보의 이득을 기준으로 모든 조합을 정렬합니다. 많은 데이터 세트를 비교하려면 행렬을 사용하고 색상이 지정된 히트 맵을 사용하여 결과를 시각화합니다. 정보 이득이 가장 높은 동물 모델을 선택합니다.
정보 획득의 중요성을 평가하려면 카이 제곱 테스트도 고려하십시오. 인간과 생쥐 연구 간의 경로 비교에 대한 상관 관계 매트릭스가 여기에 설명되어 있습니다. 경로 조절의 중복은 한 연구에서 다른 연구의 효과를 예측하기 위해 얻을 수 있는 정보의 이득으로 표시됩니다.
파란색은 낮은 상관 관계를 의미하고 빨간색은 데이터 간의 높은 상관 관계를 의미합니다. 인간과 쥐 데이터 세트를 비교한 결과, 인간 연구와 상관관계가 높은 쥐 모델의 하위 그룹이 나타났습니다. 따라서 이러한 마우스 모델은 인간의 상황을 모방하는 데 가장 적합합니다.
반면, 7, 8, 9번째 연구는 인간 질병 연구와 상관관계가 없는 것으로 나타났다. 일단 숙달되면 이 기술을 제대로 수행하면 며칠 안에 완료할 수 있습니다. 데이터의 양과 데이터 가용성에 따라 다릅니다.
이 절차를 시도하는 동안 결과의 유효성은 선택한 데이터의 품질과 관련성에 따라 달라진다는 점을 기억하는 것이 중요합니다. 이 비디오를 시청한 후에는 전사체 데이터를 기반으로 특정 인간 질병에 적합한 동물 모델을 선택하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.
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이 기사는 변환 연구를 위한 적합한 마우스 모델을 식별하기 위해 전사체 데이터의 유전자 세트 강화 분석(GSEA)에 대한 표준화된 프로토콜을 제시합니다. 이 방법은 동물 모델과 인간 질병 연구 간의 전체 게놈 데이터를 비교하여 다양한 질병에 대한 모델 선택에 대한 통찰력을 제공합니다.
Selecting appropriate animal models remains a critical challenge in translational research, where model misalignment contributes to late-stage attrition. This protocol enables systematic evaluation of murine models using transcriptomic concordance with human disease data, reducing reliance on subjective gene filtering. By providing a standardized GSEA-based framework, it supports predictive confidence in model selection and informs go/no-go decisions early in discovery.
The method fits within the discovery continuum from target validation to preclinical model selection, enabling transcriptomic data to guide animal model choice before significant investment in screening or efficacy studies.