Name: 식별 및 태그-소설 RIP;으로 유전자 이동에 의해 전이성 요인의 특성 RIP-tva Murine 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-16T12:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 3 s
Description: 배우세요 RIP-Tag; RIP-tva 마우스 모델을 이용한 유전자 이동으로 전이성 요인을 식별하고 특성화하는 방법을. 췌장 베타세포 전암성 병변에 조류 레트로바이러스를 심장내 투여하여 암 전이 메커니즘과 치료 표적을 연구합니다.

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우리는 해 롤 드 Varmus, 브라이언 C. 루이스, 더글러스 Hanahan, 대 니 황, 샤론 Pang, 메 간 웡, 그리고 Manasi M. Godbole 감사합니다. Y.C.N.D.는 국방부 그랜트 W81XWH-16-1-0619와 NIH 그랜트 1R01CA204916에 의해 지원 됩니다.

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<li>Huse, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+PTEN-regulating+microRNA+miR-26a+is+amplified+in+high-grade+glioma+and+facilitates+gliomagenesis+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">The PTEN-regulating microRNA miR-26a is amplified in high-grade glioma and facilitates gliomagenesis in vivo.</a> Genes Dev. 23 (11), 1327-1337 (2009).</li>
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저자는 공개 없다.

이 연구에서 설명 하는 강력한 마우스 모델, RIP-태그; RIP-tva, 식별 및 전이성 요인의 특성에 대 한 조류 레트로 바이러스를 통해 체세포 유전자 납품을 달성 하기 위해. 비록 RIP-태그; RIP-tva 마우스 췌 장 신경 내 분 비 종양, 전이성 요인이 마우스 모델에서 확인 된 또한 다른 암 종류의 전이 홍보 수 있습니다.
우리의 접근 시간 제어 방식으로, 따라서 더 충실 하 게 흉내 낸 산발적 인 인간 종양 개발에 특히 췌 장 β 세포의 premalignant 병 변으로 체세포 유전자 변화 소개의 이점이 있다. 이 방법은 기존의 유전자 변형 모델 개발 중 관심사의 유전자의 소성 식 때문에 종종 관찰 되는 정상적인 조직 형성의 어떤 잠재적인 섭 동을 방지 합니다. 또한, 그것은 관심을 생성 하는 유전자 변형 쥐 보다 유전자를 운반 하는 조류 retroviral 벡터를 생성 하는 훨씬 더 빨리입니다. RCASBP 파생 조류 retrovi...

대부분의 암은 체세포 돌연변이 1에서 발생 한다. 기존의 유전자 조작된 마우스 모델 (GEMM)는 특정 유전 변경 tumorigenesis 2에 기여에 대 한 중요 한 통찰력을 제공 합니다. 그러나, 그들은 몇 가지 제한이 있다. 이러한 모델의 주요 단점은 인간, 조직 내의 일부 셀만 유전 변경을 획득에 종양 형성의 산발적 인 특성을 복제 하지 않습니다. 유전자 변형 및 녹아웃 쥐에 있는 돌연변이 생식 개발에 영향을 미칠 가능성이 있습니다. 또한, 이러한 마우스 모델 생성 이며 비싼 시간이 걸리는.
전이 암 분야에서 중요 한 문제입니다. 전이 모델링은 GEMM에서 어렵게 되었습니다. 자연 스러운 전이 마우스에서 희소 하다. Penetrance 변수 이며 대기 시간 전이 3의 GEMM에 오래입니다. 그래서 전이성 캐스케이드의 초기 단계는 제거 실험 전이 모델 마우스의 순환으로 세포의 직접 주사를 사용 합니다.
마우스 모델에서 전이성 요인 공부에 상기 제한 중 일부를 해결 하려면 bitransgenic 마우스 모델, RIP-태그; 개발 했습니다. RIP-tva4. 전략은 하위 그룹 A 조류 leukosis 바이러스, tva 6,7에 대 한 높은 동기화 종양 진행 마우스 모델, RIP 태그 5, 그리고 수용 체의 사용을 결합에 기반. 이 RIP-태그; RIP-tva마우스 모델 유전자 somatically 단일 bitransgenic 마우스 스트레인에 소개 될 수 있습니다. Rb, p53 종양 진압 기능 억제 SV40 T 항 원을 가진 쥐 증식, 혈관 신생, adenoma, 침략 암 등 단계와 비슷한 방식으로 인간의 tumorigenesis, 췌 장 신경 내 분 비 종양을 개발 합니다. RIP-태그 모델이 암, 췌 장 신경 내 분 비 종양에 국한 되지 않음의의 우리의 이해를 위해 매우 유익 했습니다. 그것은 또한 전 임상 실험 8에서 사용 되었습니다.
선물이 RIP-태그;에 조류 레트로 바이러스 intracardiacally의 주입을 통해 체세포 유전자 전송 위한 프로토콜 RIP-tva 쥐. RCASBP 파생 조류 레트로 바이러스와 성공적인 감염 대상 셀을 적극적으로 확산이 필요합니다. 따라서, 우리 선택 RIP-태그; RIP-tva 증식 췌 장 독도의 약 50%에서 발전 하는 때 나이의 7 주에 마우스. 왼쪽된 심 실 intracardiac 주입 높은 titer 바이러스의 감염 10-20 4의 효율성을 달성 하기 위해 필요 합니다. 이 전달 방법 바이러스 췌 장 독도 도달 하기 전에 순환 내에서 바이러스 입자의 중요 한 희석을 감소 시킨다.
이 방법을 사용 하 여, 우리는 이전 Bcl xL 안티 apoptotic 함수 4,9의 독립적인 암 전이 촉진 증명 하고있다. Bcl-xL RIP-태그; tumorigenic 가깝다고 걸쳐 모든 췌 장 β 세포에서 transgene를 통해 표현 했다이 안티 apoptotic 독립적인 전이성 기능 관찰 하지 RIP-Bcl-xL 모델 10마우스. 따라서, 우리의 마우스 모델 식별 tumorigenesis의 나중 단계에서 표현 하는 때 유전자의 기능을 특성화 하는 독특한 기회를 제공 합니다. 독도의 2-4% RIP-태그; 종양으로 발전 하기 때문에 RIP-tva bitransgenic 쥐 바이러스 성 감염 및 모든 premalignant 병 변 없이 RCASBP에서 파생 된 조류 레트로 바이러스 감염만 tumorigenesis의 자연적인 과정을 통해 선택적 우위를 부여 하는 요소를 확인할 수 있습니다. 특히, 전이성 요인 가장 쉽게 인식 됩니다이 방법으로 췌 장의 림프절 이나 다른 장기에 전이 RIP-태그;에서 일반적으로 발생 하지 않습니다 때문에 RIP-tva 쥐.

<table><tbody><tr><td>RCASBP-Y DV 플라스미드</td><td>Addgene</td><td>11478</td><td></td></tr><tr><td>RCAS-RNAi 플라스미드</td><td>Addgene</td><td>15182</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Corning</td><td>10-013-CV</td><td></td></tr><tr><td>소 태아 혈청</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>25-005-CI</td><td></td></tr><tr><td>L-글루타민, 100x</td><td>Corning</td><td>25-005-CI</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신 용액, 100x</td><td>Corning</td><td>30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td>PBS-/-, 1x</td><td>Corning</td><td>21-040-CV</td><td></td></tr><tr><td>Superfect</td><td>Qiagen</td><td>301305</td><td></td></tr><tr><td>폴리알로머 원심분리기 튜브</td><td>Beckman Coulter</td><td>326823</td><td></td></tr><tr><td>0.45 mm Nalgene 주사기 필터(PES 멤브레인 포함</td>) <td>Thermo Scientific</td><td>194-2545</td><td></td></tr><tr><td>인슐린 주사기</td><td>BD</td><td></td><td></td>329461</tr><tr><td>synaptophysin</td><td>Vector Laboratories</td><td>VP-S284</td><td></td></tr><tr><td>VECTASTAIN Elite ABC HRP Kit (Peroxidase, Rabbit IgG)</td><td>Vector Laboratories</td><td>PK-6101</td><td></td></tr><tr><td>AmpliTaq DNA Polymerase with Buffer II</td><td>Life Technologies</td><td></td> N8080153 <td></td></tr><tr><td>MyTaq DNA Polymerase</td><td>Bioline BIO-21106</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

식별 및 태그-소설 rip;으로 유전자 이동에 의해 전이성 요인의 특성 rip-tva murine 모델

Identification and Characterization of Metastatic Factors by Gene Transfer into the Novel RIP-Tag; RIP-tva Murine Model

전이성 암은 단단한 종양을 가진 환자에 있는 죽음의 90%를 차지 한다. 암 전이의 드라이버를 더 잘 이해 하 고 소설 치료 목표를 식별 하는 긴급 한 필요가 있다. 조사를 진행 주 암에서 전이를 분자 이벤트, 우리 bitransgenic 마우스 모델, RIP-태그; 개발 RIP-tva. 이 마우스 모델 쥐 인슐린 발기인 (RIP) 췌 장 β 세포에 SV40 T 항 원 (태그)와 하위 조류 leukosis 바이러스 (tva)에 대 한 수용 체의 식 드라이브. 쥐 증식, 혈관 신생, adenoma, 침략 암 등 단계와 비슷한 인간의 tumorigenesis는 잘 정의 된 단계를 통해 100 %penetrance 췌 장 신경 내 분 비 종양을 개발 합니다. 때문에 RIP-태그; RIP-tva 마우스 전이성 질병을 개발 하지 않습니다, 전이 촉진 유전자 변경 쉽게 확인 될 수 있다. 체세포 유전자 tva 표현으로 전송, 췌 장 β 확산 premalignant 병 변 원하는 유전 변경 은닉 조류 레트로 바이러스의 intracardiac 주사를 통해 달성 된다. titer &#62; ml 당 1 x 108 감염 단위 vivo에서 감염에 대 한 적절 한 것으로 간주 됩니다. 또한, 조류 레트로 바이러스 RIP-태그; 종양에서 파생 된 셀 라인을 감염 시킬 수 있습니다. RIP-tva 고효율 쥐. 셀 라인 또한 전이성 요인 특성을 사용할 수 있습니다. 여기이 마우스 모델을 이용 하 여 세포 선 종양 전이에 후보 유전자의 기능을 평가 하는 방법을 보여 줍니다.

Vivo에서 그리고 생체 외에서 감염 속도 RIP-태그; RIP-tva RCASBP 기반 바이러스에 의해 종양 세포는 20~ 20%와 ~ 80% 각각. RIP 태그; RIP-tva 마우스 모델, 각 마우스에 400 췌 장 독도의 약 4% 종양 20;에 개발 자연스럽 게 따라서 바이러스에 의해 전달 되는 유전자의 잠재적인 효과의 조직학 및 phenotypic 분석에 대 한 각 마우스에서 종양 세포의 충분 한 금액이입니다. 이 시스템을 사용 하 여, 전이에서 Bcl xL의 새로운 핵 기능 확인 된 9이었다. RIP-태그; RIP-tva RCASBP-Bcl xL 감염 쥐 전시 높은 발생률 침략 carcinomas의 제어 바이러스에 감염 된 생쥐 보다 RC...

선물이 RIP-태그;를 활용 하 여 소설 체세포 유전자 전달 시스템을 설명 하는 프로토콜 RIP-tva 마우스 모델 전이에서 유전자의 기능 연구. 조류 레트로 바이러스 intracardiacally 성인 쥐에서 췌 장 β 세포의 사전 악성, 비 침 투 적인 병 변으로 유전자 전송을 보장 하기 위해 전달 됩니다.

식별 및 태그-소설 RIP;으로 유전자 이동에 의해 전이성 요인의 특성 RIP-tva Murine 모델

Metastatic cancer accounts for 90% of deaths in patients with solid tumors. There is an urgent need to better understand the drivers of cancer metastasis ...

본 절차의 전반적인 목표는 Novel RIP-Tag;RIP-tva 마우스 모델로의 유전자 전달을 통해 전이 인자를 식별하고 특성화하는 것입니다. 이 방법은 전이 유발 인자와 새로운 치료 표적을 식별하는 것과 같이 암 전이 분야의 핵심 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 암 마우스 모델의 주요 장점은 췌장 베타 세포 전구체 병변으로의 체세포 유전자 전달을 통해 전이 인자를 식별할 수 있다는 점입니다.감염시킬 생쥐 한 마리당 바이러스 생성 DF1 세포가 담긴 15 centimeter 디쉬 하나를 수확하는 것으로 시작합니다. 먼저, 합류(confluent)된 15 centimeter 디쉬에서 배지를 수집합니다. 그런 다음, 미리 냉각된 원심분리기에서 4 °C, 1650 ×g로 10분 동안 저속 원심분리를 하여 세포 잔해를 제거합니다.다음으로, 바이러스 상청액을 polyallomer 초원심분리 튜브로 옮깁니다. 초원심분리기를 사용하여 9540 ×g, 4°C에서 1.5시간 동안 원심분리합니다. 초원심분리 튜브에서 상청액을 가능한 한 많이 제거합니다.그다음 15 cm 디쉬당 최종 100 µL의 바이러스 현탁액이 되도록 초원심분리 튜브에 PBS를 추가합니다. 튜브를 실험용 필름으로 덮고, 중간 속도로 2분간 볼텍싱하여 보이지 않는 바이러스 펠릿을 재현탁합니다. 이후 초원심분리 튜브를 4 °C에서 1시간 또는 하룻밤 동안 쉐이킹(rocking)합니다.배양 후, 바이러스 현탁액을 마이크로원심분리 튜브로 옮기고 바이러스 역가 측정을 진행합니다. 12-웰 조직 배양 플레이트에 분주된 DF1 세포가 30% 밀도(confluency)에 도달했는지 확인하여 역가 측정 절차를 시작합니다. 바이러스 역가 측정 1회당 하나의 12-웰 플레이트가 필요합니다.먼저 5 µL의 바이러스 상층액을 마이크로원심분리 튜브에 담긴 495 µL의 성장 배지와 혼합하여 10⁻² 희석액을 만들어 바이러스 상층액의 10배 연속 희석을 시작합니다. 몇 초 동안 짧게 볼텍싱합니다. 그런 다음 10⁻² 희석액 40 µL를 마이크로원심분리 튜브에 담긴 360 µL의 성장 배지로 옮겨 10⁻³ 희석액을 만듭니다.수 초 동안 짧게 볼텍싱합니다. 이 과정을 반복하여 10⁴ 및 10⁵까지 희석합니다. 다음으로 6 mL 폴리스티렌 튜브 5개에 각각 2.25 mL의 배양 배지를 분주합니다.각각 10⁶, 10⁷, 10⁸, 10⁹, 10¹⁰로 라벨을 붙입니다. 10⁶ 희석액을 만들기 위해 6 mL 폴리스티렌 튜브에 10⁵ 희석액 0.25 mL와 성장 배지 2.25 mL를 혼합합니다. 몇 초 동안 짧게 볼텍싱합니다.10⁷, 10⁸, 10⁹, 10¹⁰ 희석 배율에 대해 동일한 절차를 반복하십시오. 그다음, 12-웰 플레이트의 DF1 세포에서 기존 배양액을 제거합니다. 그리고 희석된 바이러스 1 mL를 각 웰에 중복으로 첨가하십시오.세포를 37 °C 및 5% CO2 조건에서 최소 7일 동안 배양합니다. 7주령의 RIP-Tag RIP-tva 마우스를 먼저 마취시켜 감염 절차를 시작합니다. 각막 건조를 방지하기 위해 양쪽 눈에 안구 윤활제를 도포합니다.RIP-Tag RIP-tva 마우스의 흉강 부위 털을 제모하고, snuggle safe 워머 위에 흡수성 실험대 종이를 깐 후 마우스가 등을 대고 흉부가 위를 향하도록 배치합니다. 발가락 꼬집기(toe pinch)를 통해 동물의 반응 여부를 확인하여 완전한 마취 효과가 나타났는지 검증합니다. 앞다리를 펴서 테이프로 고정합니다.마우스의 가슴 부위에 주사 위치를 표시합니다. 흉골 절흔(sternal notch)과 검상돌기(xiphoid process) 상단 사이의 중간 지점이자, 해부학적으로 흉골의 약간 왼쪽에 해당하는 위치를 표시하십시오. 그 후, 포비돈 요오드 스크럽 또는 클로르헥시딘 스크럽으로 앞가슴벽을 닦아내고, 이어서 70% isopropyl alcohol 또는 70% ethanol에 적신 거즈 스펀지로 닦아줍니다.멸균된 28.5 gauge 인슐린 주사기로 공기 50 µL를 흡입하여 500 µL 주사기의 플런저와 액면 사이에 공간을 만듭니다. 바이러스 100 µL를 흡입합니다. 벽면에 액체가 없는 공기층이 있어야 심장 박동을 관찰하는 데 매우 중요합니다.바늘을 수직으로 세운 상태에서 한 손으로 마우스의 피부를 팽팽하게 당기고, 표시된 위치에 바늘을 삽입합니다. 주사기에 밝은 빨간색 혈액 맥동이 나타나면 바늘 전진을 멈추고 한 손으로 마우스 내 바늘의 깊이를 고정합니다. 다른 한 손을 사용하여 플런저를 조심스럽고 천천히 밀어 약 60초 동안 바이러스 현탁액을 투여합니다.주사기에 밝은 붉은색의 혈액 맥동이 나타날 때마다 10-20 µL를 주입하십시오. 투명한 바늘 허브로 산소화된 붉은 혈액이 지속적으로 유입되는 것은 바늘이 좌심실에 제대로 위치했음을 나타냅니다. 바이러스 현탁액을 주입하기 위해 플런저를 마지막으로 밀어 넣은 후, 다음 혈액 맥동이 보이기 전에 신속하게 바늘을 흉강 밖으로 제거하십시오.출혈을 줄이기 위해 주사 부위를 최소 1분 동안 가볍게 압박합니다. 그 후 마우스가 완전히 의식을 되찾을 때까지 가열 패드 위나 가열 램프 아래로 조심스럽게 옮깁니다. RIP-Tag RIP-tva 마우스는 7주령에 명시된 RCASBP-Bcl-xL 레트로바이러스를 감염시켰으며 16주령에 안락사시켰습니다.이 사진은 췌장 림프절 내 전이성 췌장 신경내분비종양의 대표적인 synaptophysin 염색 양상을 보여줍니다. 여기서 RIP-Tag RIP-tva 마우스에 표시된 RCASBP-RHAM B를 감염시켰습니다. 이 사진은 췌장 림프절 내 전이성 췌장 신경내분비종양의 대표적인 synaptophysin 염색 양상을 보여줍니다. 여기서는 RCASBP-RHAMM B 바이러스를 주입한 후 간에서 나타난 synaptophysin 염색 양상을 확인할 수 있습니다.RIP-Tag RIP-tva 마우스에서 증식하는 TVA 세포의 체내(in vivo) 감염을 위해서는 밀리리터당 10⁸ 이상의 감염 단위가 필요하며, RCASBP 레트로바이러스 벡터는 최대 2.5 kb의 cDNA를 전달할 수 있다는 점을 기억하는 것이 중요합니다. 이 마우스 모델의 개발은 BCL-xL이 실제로는 항세포사멸 기능과는 독립적으로 암 전이를 촉진한다는 패러다임 전환적인 발견의 토대가 되었습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Cancer Research

암 연구

이 비디오는 증식하는 췌장 β 전악성 병변으로의 유전자 전달을 보장하기 위해 형질전환 마우스에 레트로바이러스를 심장 내 주입하는 프로토콜을 설명합니다. 이 방법은 또한 종양 전이에서 후보 유전자의 기능을 평가하는 데 도움이 될 수 있습니다.

바이러스 벡터의 심장 내 전달: 쥐 모델에서 췌장 전이를 연구하기 위해 바이러스 벡터를 심내로 주입하는 기술

임상 적으로 전이성 유방암에서 유방 유관 시스템 결과에 아데노 바이러스 크레와 잠재 돌연변이의 활성화. YFP 발기인의 설립은 말초 전이성 종양 세포의 추적을 할 수 있습니다. 이 모델은 잠재 전이, 항 종양 면역, 유방암을 치료하는 새로운 면역 요법을 디자인을 공부하는 데 유용합니다.

유방암의 소설 형질 전환 마우스 모델 : 아데노 바이러스 크레와 유관 상피의 대상으로 전이성 유방암의 개시

우리는 쥐에 형광 기자를 활용, 폐 전이에서 종양 세포 기질 상호 작용의 생체 라이브 영상에 대한 비교적 간단한 방법을 설명합니다. 스피닝 디스크 공 촛점 현미경을 사용하여,이 기술은 최소 4 시간 동안 생균의 시각화를 가능하게하고 다른 염증성 폐 상태를 학습하도록 구성 될 수있다.

예는 폐 전이 및 그들의 미세 환경의 라이브 영상을 생체 내

여기에서는 암 전이에서 폐포 대식세포의 기능을 연구하기 위한 모델과 접근 방식을 설명합니다. 전이에서 이러한 세포의 역할을 입증하기 위해 클로드로네이트 리포좀을 사용한 폐포 대식세포의 고갈과 함께 유방암의 syngeneic(4T1) 모델을 사용했습니다.

유방암 전이에 폐포 대 식세포의 역할을 공부

유방암 전이를 목표로하는 보조 요법을 평가하는 전임상 모델이 부족합니다. 이를 해결하기 위해, 우리는 de novo 폐 유방 선암 전이의 마우스 모델을 개발했는데, adjuvant setting (원발 종양의 수술 후 절제술)에서 투여 된 치료법은 이전에 파종 된 폐 전이에 영향을 미치는 효능을 평가할 수 있습니다.

전임상 마우스 모델에 대한 수술 절차 및 방법론 드 노보 유방암 전이

우리는 전 임상 생체 내에서 암 전이의 추적에 대 한 프로토콜을 설명합니다. 그것은 비 침략 적 [18F] tetrafluoroborate-애완 동물, 그리고 유선형 비보 전 확인에 대 한 형광 단백질에 의해 감지 나트륨 요오드 화물 symporter 결합 방사성 핵 종 형광 기자를 기반으로 합니다. 방법은 전 임상 vivo에서 세포 종양 생물학 넘어 추적에 적용 합니다.

방사성 핵 종 형광 취재 원 유전자 설치류 종양 모델에서 종양의 진행을 추적 하기 위해 이미징

우리는 임상적으로 관련된 대장암 간 전이(CRLM) 종양 모델과 종양 성장 및 전이에서 간 허혈 재관류(I/R)의 영향을 상세히 기술한다. 이 모델은 간 전이성 성장의 수술 유발 승진의 근본적인 기계장치를 더 잘 이해하는 것을 도울 수 있습니다.

허혈 재관류 손상의 설정에서 전이성 간 종양의 뮤린 모델

기술된 접근법은 실험적인 꼬리 정맥 전이 실험과 생체 내 살아있는 동물 화상 진찰을 결합하여 폐에 있는 전이 수 그리고 크기의 정량화 이외에 유방암 전이 대형 및 성장의 실시간 감시를 허용합니다.

꼬리 정맥 전이 검사의 결합된 사용 및 생체 내 실시간 생체 내 이미징을 결합하여 폐암 전이성 식민지화 및 폐의 부담을 정량화

암세포의 정맥 주사는 전이 연구에서 자주 사용되지만 전이성 종양 부담은 분석하기 어려울 수 있습니다. 본명, 전이의 꼬리 정맥 주사 모델을 시연하고 결과전이성 폐 종양 부담을 분석하는 새로운 접근법을 포함한다.

종양 세포의 측면 꼬리 정맥 주입 다음 폐 전이의 병리학 적 분석

이것은 암 전이의 억제제 또는 드라이버를 위해 검열하는 효과적인 방법입니다. 발현 라이브러리로 변환된 세포는 전이성 콜로니를 형성하기 위해 닭 초리오알란토아막 혈관에 주입됩니다. 감소 또는 증가 된 침략을 갖는 식민지는 절제, 확장, 자신의 표현형을 확인하기 위해 재주입, 마지막으로, 높은 처리량 시퀀싱을 사용하여 분석.

신속하고 정량적인 병아리 Chorioallantoic 멤브레인 모델을 사용하여 전이성 레귤레이터의 발견

이 기사는 흑색종 전이의 새로운 후보 매개체와 그 작용 메커니즘을 테스트하는 데 사용되는 기술의 워크 플로우에 대해 설명합니다.

흑색종 전이의 새로운 중재자 식별을 위한 강력한 발견 플랫폼

배우세요 RIP-Tag; RIP-tva 마우스 모델을 이용한 유전자 이동으로 전이성 요인을 식별하고 특성화하는 방법을. 췌장 베타세포 전암성 병변에 조류 레트로바이러스를 심장내 투여하여 암 전이 메커니즘과 치료 표적을 연구합니다.

식별 및 태그-소설 RIP;으로 유전자 이동에 의해 전이성 요인의 특성 RIP-tva Murine 모델

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