Name: 감염 마우스 모델에서 인플루엔자 A 바이러스 연구 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 44 s
Description: 학습하세요 마우스 감염 모델을 이용한 인플루엔자 A 바이러스 병원성 및 백신 효능 평가 방법을. C57B6 마우스를 활용한 체액성 면역 반응 분석 기술을 익혀 바이러스학 연구에 활용하세요.

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LM-S 실험실에서 인플루엔자 바이러스에 대 한 연구는 부분적으로 뉴욕 인플루엔자의 우수 센터 (NYICE), 인플루엔자 연구 및 감시 (CEIRS)의 NIAID 센터의 회원에 의해 자금. 원고 수정에 그녀의 지원에 감사 웬디 베이츠 하 고.

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저자는 공개 없다.

IAV의 마우스 모델 IAV pathogenesis, immunogenicity 및 보호 효능의 학문 vivo에서 널리 사용 됩니다. 쥐의 작은 크기 쉽게 그들을 조작 하 고 흰 족제비 또는 기니 돼지 등 다른 동물 모델에 비해 저장. 또한, 동물 비용 측면에서 용이성, 주택 및 재생 그들의 사용에에서 허용 전 임상 예방 접종 시험 동물의 다 수 필요 하다. 특히, 마우스에서 사용 된 이후 여러 연구 분야, 몇몇 분자 되며 면역학 murine 시 약 사용할 수 IAV 연구에 대 한 그들의 사용을 촉진 하기 위하여. 최소 호스트 변화와 진화론 비슷한 면역 시스템의 존재에 존재 하는 또한, 인 간에 게 그들 IAV 연구에 대 한 강력한 작은 동물 모델. 마지막으로, 호스트 바이러스 성 단백질 상호 작용의 연구 및 바이러스 성 병 인에 그들의 기여는 현재 코 쥐에 접근에 의해 가능. 그러나, IAV 연구에 대 한 마우스를 사용 하 여 여러 가지 이점을 옆에 그들은 유용 하지 않습니다 IAV 전송 연구. 그러므로, 흰 ...

IAVs 엔벌로프된 바이러스 Orthomyxoviridae 가족3으로 분류 되는. 그들은 부정적인 극성3와 8 개의 단일 가닥 RNA 분자를 포함. 인간에서는, IAVs 소설은 바이러스가 인간의 인구4에 소개 될 때 계절 전염병과 중요 한 결과의 가끔 전염병 발생할. 또한, 계절 IAVs 매우 고 빠르게 전송 됩니다 모든 년2,5는 높은 경제 손실 전세계 생산 인간 사이. IAV 증상은 기침, 코 막힘, 발열, 불쾌, 두통, 거식 증과 근육 통, 하지만 바이러스 또한 immunocompromised 환자6에서 더 심각한 질병을 일으킬 수 있다. 사실, 세계 보건 기구 (WHO)는 계절 독감 바이러스 원인 300000-500, 000 명 전세계 모든 년1계산 합니다. 현재 인플루엔자 예방 및 인 간에 있는 치료에 대 한 식품의 약 청 (FDA)에 의해 승인 된 약물의 두 종류가 있다: 응집 (나) 저 해제 (예를 들어, oseltamivir) 및 차단제 (예, M2 이온 채널의 소나); 그러나, 약물 내성 바이러스 변종의 출현은 증가 한 관심사 이다. 예방 접종, 따라서 IAVs 감염 으로부터 인간을 보호 하기 위해 최상의 의료 옵션을 남아 있다. 날짜 하려면, 세 가지 유형의 독감 백신 인간의 사용을 위한 FDA에 의해 허가 사용할 수 있습니다: 재조합 형 바이러스 성 조류 (HA) 단백질 백신을 inactivated 인플루엔자 백신 (IIV), 그리고 라이브-감쇠 인플루엔자 백신 (LAIV)5, 7. 3 백신 바이러스 HA 단백질, IAVs에 대하여 항 체를 중화의 주요 대상에 대 한 적합 한 면역 반응을 유도 하도록 설계 되었습니다.
IAV 감염에서 vivo에서 공부 하는 검증 된 마우스 모델
동물 모델 공부 하 고, 다른 사람, 사이 IAV pathogenesis8,,910,11, 바이러스 성 요인 질병12 또는 바이러스 성 전송13에 기여 하는 데 사용 되었습니다. ,14,9,,1015마약 새로운 백신 또는 항 바이러스 효능을 테스트 하 고. 마우스 (생쥐)는 여러 가지 이유로 IAV 연구를 위한 가장 광범위 하 게 사용 된 동물 모델: 1) 면역 체계가 비슷합니다 진화론 인간;에 존재 하는 2) 저렴 한 비용, 등 동물 구입, 주택 및 재생산; 쉽게 조작 하 고 저장; 3) 작은 크기 균질 응답 및 결과; 4) 최소한의 호스트 가변성 5) 마우스 생물학, 게놈 시퀀스;를 포함 하 여 큰 지식 6) 많은 사용 가능한 분자 생물학 및 면역학 시 약; 7) 사용할 수 노크 바이러스 성 감염;에 주어진된 호스트 단백질의 기여 공부 하 (KO) 마우스 그리고, 8) 감염의 유전 기초를 평가 하기 위해 악용 될 수 있는 여러 마우스 긴장.
여러 마우스 긴장 IAV에서 vivo에서현재 사용할 수 있습니다. 나이, 면역 상태, 섹스, 유전 배경 및 마우스 긴장으로 감염, 복용량 및 바이러스 성 긴장의 쥐에서 IAV 감염의 결과 영향. IAV 연구에 사용 되는 가장 일반적인 마우스 긴장은 BALB/C 그리고, 최근에, DBA.2 마우스 C57BL/6, 그들은 두 전 긴장16,,1718, 보다 IAV 질병에 더 취약 19 , 20. 중요 한 것은, 면역 반응 또한 다를 수 있습니다 마우스 스트레인18,,1920에 따라. 따라서, 매우 IAV 스트레인 실시 하는 실험에 대 한 최상의 옵션을 선택 하 고 마우스에 대 한 사용 가능한 모든 정보를 복구 하는 것이 중요 하다.
마우스 IAV vivo에서 공부에 대 한 감염의 좋은 동물 모델 이지만, 그들은 실험적인 디자인에서 고려해 야 할 몇 가지 제한이 있다. 예를 들어, vivo에서 학문에 대 한 마우스를 사용 하 여의 주요 한계는 IAVs 쥐 중 전송 하지 않습니다. 따라서, 전송에 대 한 연구, 더 허용 동물 모델 (예를 들면, 흰 족제비 또는 기니 피그)는 사용된16,,1721. 또한, 쥐에서 IAV의 발현과 인간 간의 몇 가지 차이점이 있다. 인간과 달리 쥐 IAV 감염; 시 발열 개발 하지 않습니다. 반대로 그들은 저체온증16,17제시. 쥐, IAV 복제 위 항공 보다 더 낮은 호흡 기관 (폐)에 집중. 따라서, 생쥐에서 IAV의 독성은 인간에서 본을 항상 상관 하지. 전부, 장점 보다는 제한 된 단점 큽니다, 때문에 마우스 인플루엔자 바이러스 성 병 인, immunogenicity 백신과 항 바이러스 연구에 보호 효능을 평가 하는 데 사용 하는 첫 번째 동물 모델을 나타냅니다. 또한, 그것은 윤리적으로 IAV IAV 감염의 작은 동물 모델에서 이전 증거 없이 큰 동물 모델을 사용 하 여 함께 연구를 수행 허용 되지 않을 것 이다. 이 원고에서 intranasally 생쥐를 감염 하는 방법 설명 (i.n.) IAV, 심각도 및 바이러스 성 감염의 진행 상황을 모니터링 하는 방법 및 체액 성 면역 반응 및 보호 효능을 평가 하는 데 필요한 실험을 수행 하는 방법.

<table><tbody><tr><td>Madin-Darby 송곳니 신장 (MDCK) 상피 세포</td><td>ATCC</td><td>CCL-34</td><td></td></tr><tr><td>6-8 주 된 암컷 C57BL / 6 마우스</td><td>국립 암 연구소 (NCI)</td> <td>01XBE</td><td></td></tr><tr><td>터키 붉은 blod 세포</td><td>Biolink Inc</td><td></td><td>Store at 4 &deg; C</td></tr><tr><td>둘베코' s 변형 된 독수리' s 매체 (DMEM)</td> <td>Corning Cellgro</td><td>15-013-CV</td><td>Store at 4 &deg; C</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td><td>Seradigm</td><td>1500-050</td><td>-20 &deg에 보관; C</td></tr><tr><td>페니실린/스트렙토마이신/L-글루타민 (PSG) 100x</td><td>Corning</td><td>30-009-CI</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>페니실린/스트렙토마이신 (PS) 100x</td><td>Corning</td><td>30-00-CI</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Bovin 알부민 용액 (BA)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>A7409</td><td>4 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Bovin 혈청 알부민 (BSA)</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>A9647</td><td>4 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Tosylsulfonyl phenylalanyl chloromethyl ketone (TPCK) 처리 트립신</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8802</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>중립 완충 포르말린 10%</td><td>EMD</td><td>65346-85</td><td>RT</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>J.T.Baker</td><td>X198-07</td><td>RT</td></tr><tr><td>단클론 항체 항-NP 인플루엔자 A 바이러스 HB-65</td><td>ATTC</td><td>H16-L10-4R5</td><td>-20 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>Polyclonal 토끼 항 마우스 면역 글로불린 / FITC</td><td>Dako</td><td>F0261</td><td>4 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>ECL 안티 마우스 IgG, 양 고추 냉이 과산화 효소 연결 전체 항체</td><td>GE Healthcare</td><td>LNA931V / AG</td><td>Store at 4 &deg; C</td></tr><tr><td>TMB 기판 세트</td><td>BioLegend</td><td>421101</td><td>4 &deg에서 저장; C</td></tr><tr><td>Vmax 운동 플레이트 리더</td><td>분자 장치</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dounce 조직 분쇄</td>기 <td>Thomas Scientific</td><td>7722-7</td><td></td></tr><tr><td>수용체 파괴 효소, RDE (II)</td> <td>Denka Seiken Co.</td><td>370013</td><td>-20 &deg에서 보관하십시오. C</td></tr><tr><td>Crystal Violet</td><td>Fisher Scienctific</td><td>C581-100</td><td>RT</td></tr><tr><td>96-well 세포 배양 플레이트</td>에 보관 <td>Greiner Bio-one</td><td>655-180</td><td></td></tr><tr><td>세포 배양 접시 100mm</td><td>Greiner Bio-one</td><td>664-160</td><td></td></tr><tr><td>Nunc MicroWell 96-Well Microplates</td><td>Thermo Fisher Scienctific</td><td>269620</td><td></td></tr><tr><td>Nunc 96-Well 폴리스티렌 원추형 바닥 MicroWell 플레이트</td><td>Thermo Fisher Scienctific</td><td>249570</td><td></td></tr><tr><td>Puralub Vet 연고</td><td>Dechra</td><td>9N-76855</td><td></td></tr><tr><td>형광 현미경</td><td>Olympus</td><td>Olympus IX81</td><td></td></tr></tbody></table>

감염 마우스 모델에서 인플루엔자 a 바이러스 연구

Influenza A Virus Studies in a Mouse Model of Infection

인플루엔자 바이러스 500000 이상의 죽음 전세계1 원인과 관련 된 직접 의료 및 입원 비용 및 직장 결근2를 고려 하 고 혼자 미국에서 십억 12-14 달러의 연간 비용. 동물 모델은 바이러스 성 병 인, 호스트 병원 체 상호 작용, 면역 반응, 평가에 독감 바이러스 (IAV) 연구에 중요 한 그리고 현재 및 새로운 백신의 효능 antivirals 뿐만 아니라 접근. 마우스 유리 작은 동물 모델 때문에 그들의 면역 시스템은 진화론 인간에서 발견 비슷합니다, 그들은 유전으로 동일한 과목으로 상용 공급 업체에서 사용할 수 있습니다, 그리고 평가에 악용 될 수 있는 여러 변종이 있다 감염, 유전으로 그리고 그들은 상대적으로 저렴 하 고 조작 하기 쉬운. 기도 통해 인간 IAV 감염 정리를 마우스는 먼저 적절 한 biosafety 제약 아래 감염 IAVs와 intranasal 접종 전에 마 취. 감염 후 IAVs의 병 인 (몸 무게 손실) 병 적 상태와 사망률 (생존) 매일 모니터링 하 여 결정 됩니다. 또한, 바이러스 성 병 인도 위 (비 강 점 막) 또는 감염 된 쥐의 낮은 (폐) 호흡기 바이러스 복제를 평가 하 여 평가할 수 있습니다. IAV 감염 시 체액 응답 비-침략 적 출혈 및 이차 항 체 검출에 의해 급속 하 게 평가 될 수 분석 실험 목적 총의 존재를 검출 하거나 항 체를 중화. 여기, 우리는 일반적인 방법을 설명 intranasally 생쥐를 감염 하는 데 사용 (도)와 IAV pathogenesis, 체액 성 면역 반응 및 보호 효능 평가.

바이러스 성 병 인 쥐에서의 특성
IAV의 병 인은 병 적 상태와 사망률의 감염에 의해 발생 관련이 있습니다. 이러한 두 매개 변수 마우스에서 쉽게 계산 될 수 있습니다: IAV 병 적 이며 감염 된 쥐에 있는 몸 무게 손실과 관련 된 생존의 비율 (그림 1) 사망률을 나타낼 것 이다. 몸 무게와 IAV 감염 된 쥐에 있는 생존은 일반적으로 모니터링 매일 감염8,9,,1029후 적어도 2 주 동안. 가져온 생존 데이터 MLD50 리드와 Muench<sup class="x...

인플루엔자 A 바이러스 (IAVs)는 중요 한 인간의 호흡기 병원 균. IAVs pathogenicity 이해 하 고 새로운 백신 접근의 전 임상 시험 수행 인간의 생리를 흉내 낸 동물 모델은 필요. 여기, 우리가 IAV pathogenesis, 체액 성 반응과 감염 마우스 모델을 사용 하 여 백신 효능을 평가 하는 기법을 설명 합니다.

감염 마우스 모델에서 인플루엔자 A 바이러스 연구

Influenza viruses cause over 500,000 deaths worldwide1 and are associated with an annual cost of 12 - 14 billion USD in the United States alone ...

본 실험 절차의 전반적인 목표는 감염 마우스 모델을 사용하여 인플루엔자 A 야생형 바이러스 또는 인플루엔자 백신에 의해 유도되는 병원성, 체액성 면역 반응 및 보호 효능을 평가하는 것입니다. 이 방법은 바이러스 병원성, 면역 반응, 인플루엔자 백신의 효능 및 항바이러스 효과와 같은 인플루엔자 A 바이러스의 생물학적 특성에 대한 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 마우스가 인간과 유사한 면역 체계를 가지고 있으며, 인플루엔자 A 바이러스 감염의 유전적 기초를 평가하는 데 활용할 수 있는 다양한 계통이 존재한다는 점입니다.이 방법은 새로운 인플루엔자 백신의 효능에 대한 통찰을 제공할 수 있으며, 항체나 약물을 포함한 잠재적 항바이러스 치료제를 평가하는 것과 같이 기존 시스템에도 적용될 수 있습니다. 무균 조건에서 6~8주령의 C57B6 마우스를 사육 및 마킹하고, 무균 조건에서 인플루엔자 A 바이러스 또는 IAV 희석액을 준비합니다. 저울을 사용하여 마우스의 체중을 측정하고 기록합니다.마우스에 마취를 실시하고 텍스트 프로토콜에 따라 마취 깊이를 확인한 후, 마우스를 등으로 누운 자세(dorsal recumbency)로 놓습니다. 바이러스 접종액 30 µL가 들어 있는 피펫 팁을 콧구멍에 삽입하고, 천천히 그러나 일정하게 용액을 배출합니다. 이환율과 사망률을 평가하기 위해, 텍스트 프로토콜에 기술된 대로 암컷 마우스 3~4그룹에 PR8 wild type 10 full doses를 감염시킵니다.식사 섭취로 인한 체중 변화를 최소화하기 위해 향후 14일 동안 대략 동일한 시간에 생쥐를 관찰하고 체중을 측정합니다. 바이러스 감염에서 살아남은 동물을 안락사시킨 후, 텍스트 프로토콜에 따라 바이러스 50% 생쥐 치사량 또는 MLD50을 계산합니다. 6~8주령의 암컷 생쥐에 PR8 야생형의 바이러스를 10에서 10⁴ fluorescent forming units 또는 FFU 용량으로 감염시킵니다.2일 차와 4일 차에 평가를 위해 마우스의 폐와 비강 점막을 수집합니다. 동물을 안락사시킨 후, 동물을 배측으로 눕히고 70% ethanol을 사용하여 흉부의 털을 소독합니다. 가위로 복부 하단부터 흉골까지 피부를 절개합니다.그 다음, 가위를 사용하여 절개 부위의 기저부부터 마우스의 측면 방향으로 1 cm 길이의 절개를 가합니다. 첫 번째 절개가 이루어진 복부 기저부까지 마우스의 상체 전체에서 피부를 제거합니다. 그런 다음 가위로 머리를 절단하여 건조하고 멸균된 페트리 접시에 넣습니다.가위를 사용하여 상악과 하악 사이의 연결 부위를 절단하고 하악을 제거합니다. 그런 다음 가위로 관골궁의 양 끝부분을 두 군데 절단하여 제거합니다. 해부용 핀셋을 사용하여 안구를 제거합니다.다음으로, 해부용 핀셋으로 두개골을 잡고 메스를 사용하여 시상 봉합선을 따라 두개골을 절개합니다. 비점막을 확인하기 위해 두개골의 양쪽 절반을 뇌와 함께 들어 올립니다. 메스를 사용하여 뇌가 포함된 두개골 부분을 절단하여 제거합니다.비강 점막이 포함된 나머지 두개골을 멸균 튜브에 넣습니다. 샘플을 당일에 처리하는 경우 튜브를 얼음에 보관하고, 나중에 처리할 예정이라면 드라이아이스로 빠르게 냉동하십시오. 샘플 오염을 방지하기 위해, 조직을 회수할 때마다 그리고 각 동물 해부 사이에 이산화염소 소독제를 사용하여 해부 도구를 세척 및 소독하십시오.그다음, 폐를 수집하기 위해 동물을 배측으로 눕히고 가위로 흉막을 절개합니다. 갈비뼈 하단에서 시작하여 흉골 양측 1cm 지점부터 갈비뼈 상단까지 가위로 절개합니다. 갈비뼈 상단 부위의 두 절개선 사이를 가위로 십자 모양으로 절개하여 흉벽을 제거합니다.핀셋으로 폐를 잡고, 폐 직전의 기관 끝부분을 절단한 후 폐를 멸균 튜브에 넣습니다. 폐 또는 비강 점막을 멸균 dounce homogenizer에 넣고 차가운 감염 배지 1 mL를 추가합니다. 실온에서 폐가 완전히 파쇄될 때까지 페스틀을 약 1분 동안 위아래로 움직여 시료를 균질화합니다.균질화된 샘플을 멸균 튜브에 넣습니다. 상온에서 300 x G로 5~10분 동안 샘플을 원심 분리합니다. 상층액을 새 멸균 튜브에 수집하고 펠릿은 폐기합니다.바이러스 역가 측정을 당일에 수행하는 경우 상층액을 4 °C에서 보관하십시오. 역가 측정 전날, MDCK 상피세포를 조직 배양 배지에 넣어 96-웰 플레이트에 분주하여 약 80~90%의 합류도(confluence)에 도달하도록 합니다. 세포를 5% 이산화탄소가 포함된 37 °C 배양기에서 하룻밤 동안 배양하십시오.균질화된 폐 또는 비강 점막 시료의 1:10 희석액을 준비하려면, 96-웰 플레이트의 각 웰에 감염 배지 90 µL를 추가합니다. 각 시료의 바이러스 역가를 3회 반복 측정하여 평가하기 위해, 균질화된 시료 중 하나의 상층액 10 µL를 웰 A1, A2, A3에 추가합니다. 그런 다음, 다른 균질화 시료의 상층액 10 µL를 웰 A4, A5, A6에 추가합니다. A행에 시료 상층액을 추가한 후, 멀티채널 피펫을 사용하여 피펫팅으로 혼합합니다.A행에서 B행으로 10 µL를 옮기고 잘 혼합합니다. 희석 단계마다 팁을 교체하며 B행에서 C행으로 옮기는 과정을 반복하고, 마지막 H행에 도달할 때까지 동일한 방식으로 계속합니다. 진공 흡입기 멀티 채널 어댑터를 사용하여 96웰 플레이트 내 MDCK 세포의 조직 배양 배지를 제거하고, 웰당 100 µL의 1x PBS를 사용하여 세포를 2회 세척합니다. 높은 희석 배수부터 낮은 희석 배수 순으로, 균질화된 샘플의 연속 희석 상청액 50 µL를 MDCK 세포가 담긴 96웰 플레이트의 각 웰에 옮기되, 높은 희석 배수부터 세포 플레이트의 H행에서 A행 순으로 옮깁니다.바이러스가 흡착될 수 있도록 96웰 플레이트를 흔들침대(rocking platform) 위에 올려놓고 상온에서 1시간 동안 둡니다. 그 다음, 진공 흡입기 멀티채널 어댑터를 사용하여 접종액을 제거하고, 웰당 100 µL의 감염 후 배지를 첨가합니다. 감염된 세포를 5% CO2가 포함된 33 °C 또는 37 °C 인큐베이터에서 8시간 동안 배양합니다.텍스트 프로토콜에 설명된 대로 고정, 염색, 이미지 촬영 및 바이러스 역가 계산을 진행하십시오. 본 실험에서는 마우스에 서로 다른 용량의 PR8 야생형을 감염시켰습니다. 감염 후 14일 동안 그룹당 5마리 마우스의 체중과 생존율을 측정하였습니다.PR8 야생형을 더 높은 FFU로 면역화한 마우스는 체중 감소가 더 빠르고 심하게 나타났으며, 결과적으로 모두 폐사하였습니다. Reed-Muench 방법으로 계산한 본 실험 내 PR8 야생형의 MLD50은 1.5 x 10² FFU였습니다. IV 감염으로 유도된 체액성 면역 반응을 분석하기 위해, 면역화 14일 후 마우스의 혈액을 채취하여 혈구응집억제(HAI) 분석 및 바이러스 미세중화(VN) 분석을 통해 전체 바이러스 단백질에 대한 항체 존재 여부와 바이러스 HA 단백질을 표적으로 하는 중화 항체의 존재 여부를 분석하였습니다.여기서 볼 수 있듯이, 분석 결과 PR8 생약독화 인플루엔자 바이러스(LAIV)를 고용량으로 접종한 마우스의 혈청이 저용량으로 접종한 마우스의 혈청보다 전체 PR8 단백질에 대해 더 높은 항체가를 나타냈습니다. HAI 및 VN 분석을 통해 확인한 결과, PR8 LAIV를 최대량으로 접종한 마우스의 혈청에서 중화 항체가가 가장 높게 나타난 반면, 저용량으로 접종한 마우스의 혈청에서는 PR8에 대한 중화 항체가가 가장 낮게 나타났습니다. 이 영상을 시청한 후, 여러분은 마우스에 인플루엔자 A 바이러스를 감염시키는 방법과 발병 기전, 체액성 및 면역 반응, 그리고 상기도 및 하기도에서의 바이러스 복제 능력을 평가하는 방법을 충분히 이해하게 될 것입니다.이 기술의 개발 이후, 인플루엔자 A 바이러스 분야의 연구자들은 감염 마우스 모델을 사용하여 생백신 항체의 병원성, 면역원성 및 보호 효능을 탐구할 수 있는 길을 열었습니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

독감 바이러스에 동시 감염 asymptomatic 동안 침투 폐렴 구균 질환의 유도에 연루 요인 중...

사이 Synergism을 맡은 이후로 발광 생물 이미징을 사용하여 연쇄상 구균 pneumoniae</em유아 마우스에서>와 인플루엔자 바이러스

출처: Lenhard, A. 외. 바이러스 공동 감염 시 폐 렴 구균이 집착자에서 병원체로 전환되는 마우스 모델은 연령에 따른 악화된 질병을 재현합니다. J. Vis. 경험 (2022)이 영상은 인플루엔자 바이러스가 폐 렴구 균을 정착자에서 병원체로 전환시키는 쥐 공동 감염 모델을 보여줍니다. 박테리아 정착, 바이러스 감염, 질병 진행에 관련된 단계를 개괄합니다.

바이러스 공동 감염 후 폐렴구 균 의 병원성 전이를 연구하기 위한 마우스 모델

Source: Wang, M., et al, Evaluation of T Follicular Helper Cells and Germinal Center Response During Influenza A Virus Infection in Mice. J. Vis. Exp. (2020).This video demonstrates intranasal infection of a mouse with a pathogenic influenza virus to establish a respiratory tract infection. The procedure outlines the administration of the virus into the nasal cavity. The virus enters host cells, replicates, and activates the immune system.

Intranasal Infection of a Mouse with a Pathogenic Influenza Virus

이 비디오는 재조합 루시페라아제와 형광 단백질 발현 바이리포터 인플루엔자 A 바이러스를 사용하여 마우스 모델에서 바이러스 감염을 추적하는 방법을 보여줍니다. 이 방법은 생체 내 및 생체 외 연구를 모두 가능하게 하여 연구자가 바이러스 역학 및 중재의 효과에 대한 통찰력을 얻을 수 있도록 합니다.

바이러스 감염을 추적하기 위한 Luciferase-Fluorescent Reporter 인플루엔자 바이러스

백신이 어떻게 작용하는지에 대한 전반적인 지식이 부족합니다. 여기에서는 수지상 세포와 T 세포 면역에 특히 중점을 두고 백신에 대한 초기 숙주 면역 반응에 대한 통찰력을 얻기 위해 역유전학과 골수 키메라 마우스를 함께 사용할 것을 제안합니다.

키메라 마우스 모델에서 재조합 인플루엔자 백신의 비강 관리는 점막 면역을 연구하기 위해

인간 인플루엔자 A 바이러스에 대한 전신 및 국소 제브라피시 감염 모델을 보여줍니다. 전신 감염 모델을 사용하여 제브라피시를 사용하여 항바이러스제를 스크리닝할 수 있습니다. 국소 감염 모델을 사용하여 제브라피시를 사용하여 숙주 면역 세포 반응을 특성화할 수 있습니다.

인간 인플루엔자 바이러스 감염의 Zebrafish의 모델을 사용하여 항 바이러스 약품을 화면 및 호스트 면역 세포 반응의 특성을

이 연구에서는 선물이 인플루엔자 바이러스 감염 후 murine tracheal 점 막에서 2 광자 intravital 이미징 및 세포 상호 작용 분석을 수행 하는 프로토콜. 이 프로토콜은 호흡기 감염 시 면역 세포 역학을 공부 하는 연구자와 관련이 있을 것입니다.

영상 셀 상호 작용 Tracheal 점 막에서 2 광자 Intravital 현미경 검사 법을 사용 하 여 인플루엔자 바이러스 감염 중

인플루엔자 A 바이러스 (IAV)는 연간 전염병과 간헐적 인 전염병을 일으키는 전염성 호흡기 병원체입니다. 여기서, 우리는 새로운 재조합 루시퍼라제 및 형광 발현 바이 리포터 IAV(BIRFLU)를 사용하여 생체 내에서 바이러스 감염을 추적하는 프로토콜을 기술한다. 이 접근법은 연구원에게 생체 내에서 IAV를 연구할 수 있는 훌륭한 도구를 제공합니다.

루시퍼라제-형광 리포터 인플루엔자 바이러스 감염 의 실시간 이미징 및 정량화

이 논문은 인플루엔자 바이러스 감염의 마우스 모형에 있는 Tfh 및 GC B 반응을 평가하는 프로토콜을 기술합니다.

인플루엔자 A 바이러스 감염 중 T 여포 도우미 세포 및 발아 센터 반응 평가

이 논문은 바이러스 감염 동안 폐렴구균이 무증상 집락 상태에서 질병을 유발하는 병원체로 전환하기 위한 새로운 마우스 모델을 설명합니다. 이 모델은 질병 진행의 여러 단계 동안 다양한 숙주에서 다미생물 및 숙주-병원체 상호작용을 연구하는 데 쉽게 적용할 수 있습니다.

바이러스 동시 감염 시 콜로니자에서 병원체로 Streptococcus pneumoniae 의 전환을 위한 마우스 모델은 연령 악화 질병을 요약합니다.

이 프로토콜은 IAV의 비강내 투여 및 마우스 폐 손상 및 폐 세포 유형에 대한 관련 전사 변화의 다운스트림 분석에 대한 지침을 제공합니다.

인플루엔자 감염 후 이형성 및 기능적 폐포 복구 모델링

학습하세요 마우스 감염 모델을 이용한 인플루엔자 A 바이러스 병원성 및 백신 효능 평가 방법을. C57B6 마우스를 활용한 체액성 면역 반응 분석 기술을 익혀 바이러스학 연구에 활용하세요.

감염 마우스 모델에서 인플루엔자 A 바이러스 연구

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