2017년 12월 10일
여기 우리는 그대로 마우스 난소에서 수동 선명도 난소 맥 관 구조 및 follicular 모세 혈관의 시각화를 위한 3D 재구성 방법의 적응을 제시.
이 프로토콜의 전반적인 목표는 마우스 난포의 모세혈관 분포에 대한 완전한 3차원 보기를 제공하고 그 관계를 보여주는 것입니다. 난소는 생식과 내분비학에서 필수적인 기관입니다. 난포와 체세포의 서로 다른 발달 단계를 각각 세십시오.
또한 다른 기관과 달리 난소는 기능 단위의 반복적인 분기를 보이지 않습니다. 국소 혈관 시스템은 신경계와 함께 있을 수 있으며 성인 여성의 경우 각 월경 주기에서 큰 변화를 겪을 수 있습니다. 난소에 수동적 투명도를 적용하면 난소의 세포와 여포 사이의 전반적인 분포와 연결을 볼 수 있습니다.
이 측정의 가장 중요한 점은 난소에 미치는 영향이 가장 적고 다양한 마커가 제거된다는 것입니다. 현미경 이미지의 재구성을 통해 우리는 난소의 지도를 제공했습니다. 혈관, 뉴런 및 난포의 일부 세부 사항을 명확하게 관찰할 수 있습니다.
이미지 분석을 위해 Imaris의 일부 옵션을 사용하여 난소와 구조 간의 관계를 평가했습니다. 기사 지침에 따라 풍부한 용액을 준비하고 얼음 위에 보관하십시오. 마우스를 마취하고 마우스에 발가락 끼임 반응이 없는지 확인합니다.
에탄올을 분사하고 우심방을 절개한 다음 분당 10ml의 속도로 얼음처럼 차가운 PBS 20ml를 좌심실에 즉시 주입하여 혈액을 씻어냅니다. 그런 다음 같은 속도로 차가운 하이드로겔 용액으로 동물을 듬뿍 주입하십시오. 난소 형태학의 무결성을 유지하기 위해 난소와 자궁을 수집합니다.
분리된 난소를 차가운 하이드로겔 용액으로 옮깁니다. 실체 현미경으로 난소 주변의 지방 조직을 제거합니다. 조직 고정의 더 나은 결과를 얻으려면 난소 윤활낭을 제거하는 것이 좋습니다.
난소를 하이드로겔 용액에 3일 동안 보관합니다. 3일 후, 난소를 유리관으로 옮기고 튜브에 새로운 하이드로겔 용액을 채웁니다. 튜브 상단 위로 파라필름을 늘린 다음 튜브 목에 다른 파라필름을 감습니다.
파라필름과 하이드로겔 용액 사이에 기포가 없는지 확인합니다. 유리관을 섭씨 37도의 셰이커 인큐베이터에 젤이 형성될 때까지 2시간 동안 놓습니다. 종이 필터로 난소 주변의 여분의 젤을 조심스럽게 제거하십시오.
15ml 튜브에 난소를 넣고 튜브에 10ml의 클리어링 용액을 채웁니다. 튜브를 섭씨 37도의 쉐이커 인큐베이터에 최소 2개월 동안 놓습니다. 처음 3일 동안은 매일 세척액을 교체하고 그 다음에는 난소가 투명해질 때까지 매주 교체하십시오.
모든 면역 염색 절차는 쉐이커에서 섭씨 37도에서 수행됩니다. 먼저 PBST에서 24시간 동안 난소를 세척합니다. 두 번째는 PBST로 희석된 1차 항체에서 2일 동안 난소를 배양합니다.
셋째, PBST 완충액으로 1차 항체를 씻어냅니다. 넷째, PBST에서 원하는 2차 항체와 함께 난소를 2일 동안 배양합니다. 다섯째, PBST로 2차 항체를 씻어냅니다.
여섯째, RI 균질화를 위해 난소를 굴절률 정합 용액으로 옮깁니다. 시각적 투명도를 확인하고 난소가 완전히 정화되면 이미지화할 수 있습니다. 먼저 깨끗한 유리 바닥 접시를 준비합니다.
퍼티 실린더를 만들어 말굽 모양으로 만듭니다. 바깥쪽 가장자리를 유리 슬라이드에 단단히 눌러 밀폐된 공간을 만듭니다. 퍼티의 높이는 난소보다 약간 높아야 합니다.
난소를 조심스럽게 중앙으로 옮기고 장착 용액을 추가합니다. 퍼티 위에 접시를 밀어 넣고 두 개의 퍼티 조각을 사용하여 고정하십시오. 난소를 이미지화할 준비가 되면 16X 렌즈가 장착된 Nikon 컨포칼 현미경을 선택하여 이미지화할 수 있습니다.
컨포칼 현미경을 사용한 이미징의 경우 먼저 Ni-E 패널에서 렌즈를 선택합니다. 패널 획득에서 채널 수를 선택합니다. 먼저 Eye Port 탭과 XY 컨트롤러 조이스틱을 사용하여 현미경 접안렌즈로 확인하여 조직을 필드 중심으로 이동합니다.
둘째, 셔터등을 끈 후 라이브 탭을 클릭하여 각 채널의 레이저 출력, HV 및 오프셋을 조정합니다. 패널에서 Z Intensity Correction 상단 레이어에 대한 획득을 조정하고, 더하기 버튼을 클릭하여 상단을 정의하고, 렌즈를 렌즈 아래로 이동하고, 적절한 HV 및 레이저 파워를 조직 하단에 설정하고, 가장 낮은 레이어 정보를 추가하고, ND를 클릭하여 설정을 패널 및 획득과 동기화합니다. 그리고 획득 시 먼저 스캔 단계 수를 설정합니다.
Z 탭과 큰 이미지를 클릭합니다. 둘째, scan large image window로 이동하여 조직의 경계에 따라 필드의 크기를 정의합니다. 셋째, ND 획득으로 돌아가서 스캐닝 필드의 크기를 입력하고 10 및 50% 내에서 오버랩을 선택한 다음 Z 보정 실행을 클릭하고 이미징 프로세스를 기다립니다.
먼저 imagic을 사용하여 원본 NIS 파일을 엽니다. 이미지 버튼을 클릭하고 색상을 선택하고 채널을 표시한 다음 파일을 클릭하고 이미지 시퀀스를 선택하고 별도로 tiff 파일로 저장합니다. 둘째, Imaris를 사용하여 tiff 파일 중 하나를 엽니다.
편집 버튼을 클릭하고 채널 추가를 선택하여 나머지를 추가합니다. 이름과 색상은 디스플레이 조정에서 변경할 수 있습니다. 조직의 두께는 이미지 속성에서도 수정해야 합니다.
셋째, 편집 버튼을 클릭하고 자르기 3D를 선택하여 여분의 부분을 자릅니다. 먼저 필라멘트 버튼을 클릭하고 다음을 클릭합니다. 슬라이스 패널로 이동하여 추적 vessel과 거리를 찾은 다음 Surpass로 돌아가서 static을 입력하고 next를 클릭합니다.
둘째, 시작 및 설정 임계값을 조정합니다. 카메라 패널에서 선택을 선택하고 Shift 키를 누른 다음 추가 부품을 제거할 지점을 클릭합니다. 셋째, 가장 높은 임계값을 선택하고 다음을 클릭합니다.
포인트 감지를 선택하고 다음으로 이동하지 마십시오. 일부 초과 부분은 편집 패널에서 제거할 수 있습니다. 색상을 클릭하여 색상을 편집할 수 있습니다.
CD31 면역염색 후 난소 혈관 구조 3D 구조를 조사했습니다. 3D 구조는 다른 슬라이스를 통한 슬라이스 또는 볼륨 렌더링을 통해 전체적으로 관찰할 수 있습니다. CD 31은 성체 마우스의 여포성 혈관 구조의 염색을 실시하였다.
필라멘트에 의한 모세혈관의 재구성을 통해 우리는 개별 난포와 모세혈관 사이의 관계를 보여줄 수 있습니다. 난소는 여성과 마찬가지로 항상 활동적이며 상호 교환이 가능합니다. 그러나 전통적인 조직학적 분석의 한계로 인해 이러한 복잡한 구성 요소 간의 관계를 설명하기가 매우 어렵습니다.
새로 개발된 방법인 수동적 선명도는 광학적 장애물을 극복하고 전체 조직의 무결성을 유지하며 기능적 단서를 제공하는 데 도움이 될 수 있습니다.
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이 연구는 온전한 생쥐 난소의 난소 혈관계와 난포 모세혈관을 시각화하기 위한 패시브 CLARITY 방법의 적용을 제시합니다. 이 프로토콜은 난소 난포 내 모세혈관 분포의 포괄적인 3차원 보기를 제공하는 것을 목표로 합니다.
Visualizing intact ovarian vasculature in 3D enables mechanistic de-risking of reproductive target hypotheses by clarifying structural relationships between follicles and their capillary networks. This approach supports predictive confidence in early discovery by providing quantitative, reproducible readouts of vascular architecture that can inform target validation and phenotypic screening workflows. The method addresses a key discovery-stage challenge: linking anatomical context to functional ovarian biology without tissue distortion.
The method integrates into the discovery continuum by enabling hypothesis-driven analysis of vascular contributions to follicle maturation, supporting lead identification through phenotypic vascular profiling, and informing preclinical validation via intact tissue phenotyping.