Name: Zebrafish 치명적인 골격 돌연변이 Penetrance 자손 테스트 하 여 이동 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-01T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 39 s
Description: 학습하세요 제브라피시 치명적인 골격 돌연변이의 침투율을 선택적 교배와 자손 테스트를 통해 조절하는 방법을. 이 기법은 유전적 메커니즘 연구와 고침투율 및 저침투율 계통 생성에 활용됩니다.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

우리 지도 대 한 척 Kimmel, 존 다우드가 번 식 전략 개발에 대 한 도움, 골격 얼룩, 완성에 그녀의 작품에 대 한 Macie 워커 및 Charline 워커와 보 니 울만 도움이 zebrafish 조언을 감사 하 고 싶습니다. 이 작품에 JTN K99/R00 DE024190에 의해 지원 되었다.

이 프로토콜에서 설명 하는 모든 실험 따라 그리고 콜로라도의 대학 및 대학 오 레 곤 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC)에 완성 되었습니다.
 1. 선택 되지 않은 시작 재고 준비 <ol><li>식별 heterozygous 항공사의 지 느 러 미에 의해 돌연변이 체 대립 유전자의 클립 11 및 유전형 전체 형제 동물의 주식 선택의 방법으로와 같은 KASP 12 , , 13 14. 이 프로토콜 zebrafish mef2ca b1086 긴장 수행 되었다.</li>
	<li>KASP 유전형 
	참고: KASP 위한 대립 유전자 특정 뇌관 (재료의 표 참조) 시 약을 제공 하는 회사에 의해 설계 되었습니다. 특정 실시간 PCR 기계에 대 한 적절 한 6-carboxyl-X-rhodamine (ROX) 염료 농도 회사 웹사이트를 방문.
	세포의 용 해 버퍼 (10 mM tris (pH 8.3), 50 m KCl m, 1.5 m m MgCl 2, 0.3% 비 이온 계면 활성 제, 0.3 %Octylphenyl-폴 리 에틸렌 글리콜)의 <ol><li>장소 zebrafish 꼬리 조직 50에서 µ L. 2-5 h 20 분 94 ° C 비활성화 단계 뒤 55 ° C에서 열 cycler에 96-잘 PCR 플레이트 및 다이제스트의 당 성분을 K 10 mg/mL의 10 µ L를 추가 합니다. 소화. 세포 제품을 냉장 참고: 세포 제품 준비 후 몇 달 동안 성공적으로 사용 될 수 있습니다. 조직 50 m m NaOH를 사용 하 여 lysed 했다 때 KASP 반응 실패 했다. 이 발견은 건의 한다 genomic DNA 준비의 NaOH 메서드 KASP와 호환 되지 않습니다.</li>
		<li>게놈 DNA를 분 광 광도 계를 사용 하 여 계량. 각 반응 포함 약 20-30 ng 되도록 분자 생물학 학년 물을 사용 하 여 게놈 DNA 템플렛을 희석. 
		참고: 4 또는 5 샘플 계량, 그들, 수영장 다음 평균에 따라 모든 샘플에 대 한 희석을 준비 합니다. 이 프로토콜을 성인 꼬리 조직에 사용 하는 경우 1: 100 희석은 종종 충분 합니다. DNA 농도의 정확한 정량화는 필요 하지 않습니다.</li>
		<li>추가 0.14 µ L KASP 뇌관의 혼합 및 1.5 mL microcentrifuge 튜브와 튜브의 하단에 내용을 수집 centrifuging 짧게 전에 잘 믹스에 얼음에 샘플 당 혼합 KASP 마스터의 5 µ L. 
		참고: KASP 마스터 혼합 열 및 민감한 빛 얼음에 대 한 재고 유지 이며, 직접 빛을 하지 마십시오.</li>
		<li>피펫으로 5 µ L 뇌관/마스터의 믹스 솔루션 사용 되 고 실시간 PCR 기계에 대 한 적합 한 96-잘 광학 PCR 격판덮개의 우물으로.</li>
		<li>피펫으로 5 µ L의 희석 (약 5-7 ng / µ L) 각 DNA 템플릿 샘플 고를 섞어 피 펫과 발음.</li>
		<li>Nuclease 무료 물 3 웰 스 노-템플릿 컨트롤 (NTC)으로 희석된 확인된 homozygous 야생 타입, 긍정적인 컨트롤 heterozygous 및 homozygous 돌연변이 DNA 템플렛의 5 µ L을 추가 하는 추가 5 µ L.</li>
		<li>영화에 각 잘 완전히 밀봉 판 보장 광학 투명 필름 밀폐 장소.</li>
		<li>짧게 원심 600 x g 하단에 내용을 수집 하 고 믹스에서 거품을 제거 하 고 접시. 
		참고: 진행 준비까지 빛에서 얼음 및 방패에 접시를 유지.</li>
		<li>표 1에 표시 된 순환 프로그램을 사용 하 여 주요 KASP 반응을 수행 하.</li>
		<li>볼 결과 점도 분석 컴퓨터에 의해 제작. 성공적인 반응 플롯 ( 그림 3)에 포인트의 4 가지 그룹을 표시 됩니다: 3 샘플 유전자, 및 원점 근처 NTCs의 한 그룹에 해당 하는 그룹. 긍정적인 컨트롤 적절 한 샘플 그룹화와 분리 해야 합니다.</li>
		<li>컴퓨터 프로그램에 해당 특정 genotypes, 추가 세트 자전거 하로 그룹화 될 수 있습니다 음모를 인식 하지 못하는 경우 (표 2) 필요 합니다. 반복 하 여 추가 프로그램 유전자 형에 의해 꽉 그룹을 인식 하는 컴퓨터.</li>
		<li>유전형 결과 쉽게 사용 및 분석에 대 한 스프레드시트 파일에 내보냅니다.</li>
	</ol></li> <li>함께 주 물 시스템에 식별된 heterozygous 동물 집.</li></ol>
 2.는 첫 번째 라운드의 자손 득점 <ol><ol><li>동물 핀 클립에서 복구 후 쌍 형제 heterozygotes 크로스 <li>인덱스도 intercrosses을 설정. 디바이 더를 사용 하 여 되도록 배아 동기 16.</li>
		<li>배아를 수집 하 고 계속 감 금 소를 사육에서 고립 된 부모의 쌍.</li>
		<li>호전적인 물고기 분리 하거나 커버와 함께 제공 될 수 있도록 격리 된 성인 모니터링 (났습니다 물고기 멋지게 작업 그물). 물고기를 먹여야 한다 고 그들의 물 고정 물에 IACUC 지침 변경.</li>
	</ol></li> <li>태아 양육 <ol><li>무대 고 표준 조건 17에서 애벌레를 zebrafish 태아.</li>
		<li>Phenotypically 야생-타입 동물 수영 방광 클러치의 75%에 증가 될 때 5 또는 6에 유리 피 펫을 사용 하 여 수집 합니다. 어떤 부모 그들을 굴복 녹음 보육원에서 phenotypic 야생 종류 배치. 
		참고: 있는 치명적인, 사실 많은 골격 돌연변이 열성 돌연변이 체 대립 유전자와 homozygous 돌연변이 형태로 수영 방광 18 , 19 실패. 그러므로, phenotypic 야생 종류 수 있습니다 쉽게 분별 수 비정상적된 수영 방광에 따라 그들의 돌연변이 체 형제 자매에서.</li>
	</ol></li> <li>Alcian 블루/알리자린 레드 연골과 뼈 얼룩 <ol><li>0.17 g/L Tricaine를 사용 하 여 그들의 수영 방광 팽창 하지 않는 애벌레 Anesthetize-배아 미디어에 S. 넓은 구멍 유리 파스퇴르 피펫으로 1.5 mL microcentrifuge 튜브로 동물을 수집 합니다. 튜브 당 이상의 100 애벌레 추가.</li>
		<li>각 관에서 배아 물을 제거 하 고 관 당 1 x PBS에 2 %paraformaldehyde 1 mL에 동물 수정. 
		주의: 수성 PFA 가연성 이며 심각한 피부와 눈 자극을 일으킬 것 이다. 장갑과 눈 보호와 같은 적절 한 개인 보호 장비를 착용 하 고 사용 후 손을 씻으십시오.</li>
		<li>1 h 바위; 더 긴 고정 손상 뼈 얼룩. 이 기간 동안 정기적으로 튜브를 확인 하 고 없는 애벌레를 보장 하기 위해 모든 이후 락 단계 측면에 붙어 되거나 튜브의 하단에 clumped.</li>
		<li>유리 피 펫을 사용 하 여 튜브에서 정착 액 제거, 50% 에탄올과 락 10 분의 1 mL을 추가</li>
		<li>준비 20 µ L의 0.5%를 추가 하 여 솔루션 얼룩 신선한 공기로 Alcian의 1 mL 당 알리자린 레드 (0.04 %Alcian 블루/10 m m MgCl 2 / 80% 에탄올). 50% 에탄올을 제거, 각 관, 그리고 바위에 솔루션을 하룻밤 얼룩의 1 mL를 추가 합니다. 애벌레는 최대 5 일 동안 얼룩에 남아 있을 수 있습니다.</li>
		<li>튜브에서 얼룩이 솔루션을 제거 하 고 각 관을 80% 에탄올/10 m m MgCl 2 솔루션의 1 mL를 추가 합니다. 적어도 1 시간;에 대 한 튜브를 록 명확 하 게 Alcian 블루 얼룩을 생산할 수 있는 하룻밤을 rinsing.</li>
		<li>80% 에탄올/10 m m MgCl 2 솔루션 튜브에서 제거 및 추가 50% 에탄올의 1 mL; 5 분에 대 한 바위</li>
		<li>튜브에서 50% 에탄올 솔루션을 제거 하 고 25% 에탄올과 락 5 분의 1 mL을 추가</li>
		<li>튜브에서 50% 에탄올 솔루션을 제거 하 고 추가 1 mL 신선한 3% H 2 O 2 /0.5% 코 표백 솔루션입니다. 뚜껑 열기와 튜브 마이크로 튜브 랙 또는 희미 한 갈색 채색 솔루션의 위쪽 부분에서 볼 수 있습니다 때까지 약 10 분에 서 보자. 
		참고: 솔루션 위에 거품 형태의 레이어. 주의 타이밍은이 단계에서 필요 이상으로 표백 귀 착될 것 이다 가난한 더블 얼룩.</li>
		<li>표백 솔루션 제거 및 추가 25 %glycerol/0.1% 코의 1 mL; 1 h. 10 분 바위</li>
		<li>튜브에서 25 %glycerol/0.1% 코 솔루션을 제거, 각 관, 하룻밤에 10 분 동안 바위에 50 %glycerol/0.1% 코 솔루션의 1 mL을 추가.</li>
		<li>튜브에서 50 %glycerol/0.1% 코 솔루션을 제거 하 고 다시 각 튜브를 50 %glycerol/0.1% 코 솔루션을 추가 합니다. 락 하룻밤 도움이 됩니다 애벌레 내부 누적 될 수 있는 공기 방울을 제거. 사용 하지 않는 저장소 4 ° C에서 골격 준비 스테인드.</li>
	</ol></li> <li>형 점수 <ol><li>점수 스테인드 penetrance 선택한 표현 형의 대 한 돌연변이 자식. 니콜스 외에 1 돌연변이 소성 뼈의 모든 발생에 대 한 득점 했다. 
		참고: zebrafish 부모는 고정 물에 알리자린 레드 얼룩 시간 함께 사라질 수 있기 때문에, 그것은 중요 한 골격 준비 완료의 몇 일 이내에 해골 점수.</li>
		<li>Penetrance는 표현 형을 가진 유전자 형의 비율 이다. 다음 수식에 의해 계산 하는 백분율 penetrance: %penetrance (표현 형을 가진 돌연변이) = / (돌연변이의 총 수) × 100</li></ol></li></ol> 3. 가족 선택 <ol><li>선택 2 높은 penetrance, 다음 세대에 대 한 두 개의 낮은 penetrance 가족. Penetrance, 뿐만 아니라 통치와 활기; 전파 하는 가족을 선택할 때 고려 하는 것이 중요 하다 이 대 한 자세한 내용은 토론을 참조 하십시오.</li>
	<li>줄 각 부모의 쌍 하위 재고 식별자: 가족.01,.02, 등</li>
	<li>집 여러 혼합된 섹스와 메인 시스템에 부모의 쌍 &#39; 동반자 &#39; 물고기. 동반자 물고기 수 영구, 명백한 구별 기능, 변경 된 착 색 또는 탄 미 익 구조 등 어떤 제 브라 라인. 
	참고: 많은 연구원은 성공적으로 탱크에 쌍만 사육 유지할, 호의 베푸는 결과 볼 수 있습니다 여러 동반자 물고기와 쌍을 주택으로. 이 선택적 단계 더 큰 학교에 보관 하는 동물의 사육을 허용 하 고 그래서 그들은 수 있는 반복적으로 교차 필요에 따라 쉽게 검색. 부모의 쌍 대 전체 형제 가족; 생성 하 반복적으로 교차 수 있습니다. 같은 부모의 쌍 교차 반복 하기 전에 적어도 일주일 기다려.</li>
	<li>추려 단계 2.2.2에서에서 애벌레 가족. 그 다음 세대에 대 한 선택 하지 했다.</li>
	<li>탱크 그들의 돌연변이 체 형제에서 penetrance로 선택한 가족에서 야생-타입 형제 애벌레를 포함 하 고 정상적으로 성인 기에 발생.</li>
	<li>차세대 적어도 4 개의 풀-형제 가족, 위쪽 라인에 대 한 두과 아래쪽 라인에 대 한 2를 해야 합니다.</li>
	<li>애벌레 도달 성적인 성숙, 반복 새로운 세대와 함께 1 단계부터 시작 하는 프로토콜.</li>
</ol>

<ol><li>Nichols, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ligament+versus+bone+cell+identity+in+the+zebrafish+hyoid+skeleton+is+regulated+by+mef2ca%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Ligament versus bone cell identity in the zebrafish hyoid skeleton is regulated by mef2ca.</a> Development. 143 (23), 4430-4440 (2016).</li>
<li>Sheehan-Rooney, K., Swartz, M. E., Zhao, F., Liu, D., Eberhart, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ahsa1+and+Hsp90+activity+confers+more+severe+craniofacial+phenotypes+in+a+zebrafish+model+of+hypoparathyroidism%2C+sensorineural+deafness+and+renal+dysplasia+%28HDR%29%5BTitle%5D)+AND+%22Dis+Model+Mech%22%5BJournal%5D)">Ahsa1 and Hsp90 activity confers more severe craniofacial phenotypes in a zebrafish model of hypoparathyroidism, sensorineural deafness and renal dysplasia (HDR).</a> Dis Model Mech. 6 (5), 1285-1291 (2013).</li>
<li>Cox, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+essential+role+of+variant+histone+H3.3+for+ectomesenchyme+potential+of+the+cranial+neural+crest%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">An essential role of variant histone H3.3 for ectomesenchyme potential of the cranial neural crest.</a> PLoS Genet. 8 (9), e1002938(2012).</li>
<li>DeLaurier, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+mef2ca+in+developmental+buffering+of+the+zebrafish+larval+hyoid+dermal+skeleton%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Role of mef2ca in developmental buffering of the zebrafish larval hyoid dermal skeleton.</a> Dev Biol. 385 (2), 189-199 (2014).</li>
<li>McGurk, P. D., Ben Lovely, C., Eberhart, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analyzing+Craniofacial+Morphogenesis+in+Zebrafish+Using+4D+Confocal+Microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Analyzing Craniofacial Morphogenesis in Zebrafish Using 4D Confocal Microscopy.</a> J Vis Exp. (83), e51190(2014).</li>
<li>Kemp, H. A., Carmany-Rampey, A., Moens, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generating+chimeric+zebrafish+embryos+by+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Generating chimeric zebrafish embryos by transplantation.</a> J Vis Exp. (29), e1394 (2009).</li>
<li>Lush, J. L. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0022030235931095">Progeny test and individual performance as indicators of an animal's breeding value.</a> J Dairy Science. 18 (1), 1-19 (1935).</li>
<li>Lerner, I. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLerner%2C+IM+%22Population+Genetics+and+Animal+Improvement%22">Population Genetics and Animal Improvement</a>. , Cambridge University Press. (1950).</li>
<li>Shinya, M., Sakai, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+Highly+Homogeneous+Strains+of+Zebrafish+Through+Full+Sib-Pair+Mating%5BTitle%5D)+AND+%22G3%22%5BJournal%5D)">Generation of Highly Homogeneous Strains of Zebrafish Through Full Sib-Pair Mating.</a> G3. 1 (5), 377-386 (2011).</li>
<li>Neff, M. M., Neff, J. D., Chory, J., Pepper, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((dCAPS%2C+a+simple+technique+for+the+genetic+analysis+of+single+nucleotide+polymorphisms%3A+experimental+applications+in+Arabidopsis+thaliana+genetics%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+J%22%5BJournal%5D)">dCAPS, a simple technique for the genetic analysis of single nucleotide polymorphisms: experimental applications in Arabidopsis thaliana genetics.</a> Plant J. 14 (3), 387-392 (1998).</li>
<li>Xing, L. Y., Quist, T. S., Stevenson, T. J., Dahlem, T. J., Bonkowsky, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+and+Efficient+Zebrafish+Genotyping+Using+PCR+with+High-resolution+Melt+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Jove-Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Rapid and Efficient Zebrafish Genotyping Using PCR with High-resolution Melt Analysis.</a> Jove-Journal of Visualized Experiments. (84), e51138(2014).</li>
<li>He, C., Holme, J., Anthony, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SNP+genotyping%3A+the+KASP+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">SNP genotyping: the KASP assay.</a> Methods Mol Biol. 1145, 75-86 (2014).</li>
<li>Semagn, K., Babu, R., Hearne, S., Olsen, M. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/article/10.1007/s11032-013-9917-x">Single nucleotide polymorphism genotyping using Kompetitive Allele Specific PCR (KASP): overview of the technology and its application in crop improvement.</a> Molecular Breeding. 33 (1), 1-14 (2014).</li>
<li>Yuan, J., Wen, Z., Gu, C., Wang, D. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/273260117_Introduction_of_High_Throughput_and_Cost_Effective_SNP_Genotyping_Platforms_in_Soybean">Introduction of high throughput and cost effective SNP genotyping platforms in soybean.</a> Plant Genet Genomics Biotech. 2 (1), 90-94 (2014).</li>
<li>Walker, M. B., Kimmel, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+two-color+acid-free+cartilage+and+bone+stain+for+zebrafish+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22Biotech+Histochem%22%5BJournal%5D)">A two-color acid-free cartilage and bone stain for zebrafish larvae.</a> Biotech Histochem. 82 (1), 23-28 (2007).</li>
<li>Nasiadka, A., Clark, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+breeding+in+the+laboratory+environment%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+J%22%5BJournal%5D)">Zebrafish breeding in the laboratory environment.</a> ILAR J. 53 (2), 161-168 (2012).</li>
<li>Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8589427">Stages of embryonic development of the zebrafish.</a> Dev dyn. 203 (3), 253-310 (1995).</li>
<li>Schilling, T. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Jaw+and+branchial+arch+mutants+in+zebrafish+I%3A+branchial+arches%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Jaw and branchial arch mutants in zebrafish I: branchial arches.</a> Development. 123, 329-344 (1996).</li>
<li>McCune, A. R., Carlson, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Twenty+ways+to+lose+your+bladder%3A+common+natural+mutants+in+zebrafish+and+widespread+convergence+of+swim+bladder+loss+among+teleost+fishes%5BTitle%5D)+AND+%22Evol+Dev%22%5BJournal%5D)">Twenty ways to lose your bladder: common natural mutants in zebrafish and widespread convergence of swim bladder loss among teleost fishes.</a> Evol Dev. 6 (4), 246-259 (2004).</li>
<li>Mrakovčič, M., Haley, L. E. <a target="_blank" href="http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1095-8649.1979.tb03612.x/abstract">Inbreeding depression in the Zebra fish Brachydanio rerio (Hamilton Buchanan).</a> J Fish Biol. 15 (3), 323-327 (1979).</li>
<li>Charlesworth, D., Willis, J. H. <a target="_blank" href="http://www.nature.com/nrg/journal/v10/n11/full/nrg2664.html">The genetics of inbreeding depression.</a> Nat Rev Genet. 10 (11), 783-796 (2009).</li>
<li>McCune, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+low+genomic+number+of+recessive+lethals+in+natural+populations+of+bluefin+killifish+and+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A low genomic number of recessive lethals in natural populations of bluefin killifish and zebrafish.</a> Science. 296 (5577), 2398-2401 (2002).</li>
<li>Streisinger, G., Walker, C., Dower, N., Knauber, D., Singer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+clones+of+homozygous+diploid+zebra+fish+%28Brachydanio+rerio%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Production of clones of homozygous diploid zebra fish (Brachydanio rerio).</a> Nature. 291 (5813), 293-296 (1981).</li>
<li>Dreosti, E., Lopes, G., Kampff, A. R., Wilson, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+social+behavior+in+young+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neural+Circuits%22%5BJournal%5D)">Development of social behavior in young zebrafish.</a> Front Neural Circuits. 9, 39(2015).</li>
<li>Eames, B. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FishFace%3A+interactive+atlas+of+zebrafish+craniofacial+development+at+cellular+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Dev+Bio%22%5BJournal%5D)">FishFace: interactive atlas of zebrafish craniofacial development at cellular resolution.</a> BMC Dev Bio. 13 (1), 23(2013).</li>
<li>Nichols, J. T., Pan, L., Moens, C. B., Kimmel, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((barx1+represses+joints+and+promotes+cartilage+in+the+craniofacial+skeleton%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">barx1 represses joints and promotes cartilage in the craniofacial skeleton.</a> Development. 140 (13), 2765-2775 (2013).</li>
<li>Sasaki, M. M., Nichols, J. T., Kimmel, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((edn1+and+hand2+Interact+in+early+regulation+of+pharyngeal+arch+outgrowth+during+zebrafish+development%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">edn1 and hand2 Interact in early regulation of pharyngeal arch outgrowth during zebrafish development.</a> PLoS One. 8 (6), e67522(2013).</li>
</ol>

저자는 공개 없다.

선택적인 Breeding 유전자 기능의 예민을 발표
더 또는 덜 심각한 선택적인 breeding에 의해 돌연변이 고기 이동 유전자 기능에 새로운 통찰력을 얻을 하는 간단한 방법입니다. 선택 되지 않은 번 식의 표준 방법으로 비교, 여기에 제시 된 프로토콜 돌연변이 고기의 훨씬 더 완전 한 이해를 얻을 수 있습니다. 특히, 심한 긴장을 생성 하 여 돌연변이 고기의 전체 폭 수 계시 될, 선택 되지 않은 주식으로 관찰 되지 않은 것을 포함 하 여. 따라서, 유전자 연구에 대 한 새로운 발달 역할 검색 될 수 있습니다. 반대로, 가벼운 긴장을 생성 하는 것은 관심사의 유전자에 대 한 가장 중요 한 역할 밝힐 수 있다. 받아, 예를 들어 단일 표현 형 가벼운 돌연변이에 지속. 여기 가장 비판적으로 가벼운 긴장에서 방해 남아 발달 과정에서 유전자의 기능 필요 가능성이 높습니다. 따라서, 주어진된 돌연변이의 전체 phenotypic 시리즈 선택적인 breedi...

Zebrafish는 골격 발달을 이해 하기 위한 강력한 모델 시스템입니다. 돌연변이 제 브라 긴장와 생물학 skeletogenesis 동안 유전자 기능을 해독할 수 있습니다. 그러나, zebrafish 골격 돌연변이 고기 가변 penetrance1,2,,34 개발 및 유전자 분석을 방해할 수 있는 제시할 수 있습니다. 이 방법의 목적은 3 겹 이다. 첫째, 지속적으로 심각한 고기 생산 zebrafish 돌연변이 라인 생성 시간 경과 기록5 와 이식6같은 다운스트림 발달 연구 수 있습니다. 연구의 이러한 종류 고기 일관성 명단만 공부 하 여 무력화 될 수 있습니다. 둘째, zebrafish 긴장 inbreeding 유전 배경 변화, 따라서 실험 일관성과 재현성을 홍보를 줄일 수 있습니다. 예를 들어 모든 현장에서 수행 교 잡 분석 한 선택적으로 타고 난된 긴장에 수 혼란 가변성을 감소 하며 결론을 강화. 셋째, 심각 하 고 가벼운 긴장을 생성 하는 것은 특정 돌연변이에서 발생할 수 있는 전체 phenotypic 시리즈를 발표할 예정 이다.
언뜻 보기에 치명적인 돌연변이의 선택적인 breeding 불가능 보인다. 선택에 대 한 득점은 동물 들이 죽은 때 어떻게 penetrance에 대 한 하나의 품종을 수 있습니까? 다행히, 가족 선택, 테스트, 특히 자손에 의해 선택적인 breeding 방법 많은 년7,8에 대 한 프로그램을 사육 하는 가축에 효과 증명 하고있다. 이 프로그램 주로 암소에 우유 생산 또는 할 꺼야에 계란 생산 한 섹스에만 되는 특성에 대 한 선택적인 breeding에 사용 됩니다. 이 종족의 남성을 직접 득점 수 없습니다 하지만 그들의 자손은 득점 하 고 값은 부모에 게 할당. 이 전략에서 대출, 여기에 제시 된 프로토콜 고정 및 스테인드 돌연변이 자손 zebrafish의 쌍에서 관심사의 돌연변이 유전자에 대 한 heterozygous는 득점을 포함 한다. 어떤 개인은 라인에 다음 세대를 생산할 예정 이다 결정할 때 homozygous 치명적인 돌연변이 자손의 표현 형의 penetrance 부모에 게 할당 됩니다. 우리는이 방법은 penetrance zebrafish 치명적인 골격 돌연변이1에 이동 하는 효과적인 수단을 찾으십시오.
다른 연구와 마찬가지로,이 선택적인 breeding 프로토콜 클러치 크기, 자손의 생존, 배아, 그리고 섹스 비율9의 정상적인 개발 고려 조건에서 걸립니다. 그러나, 이러한 요인은 돌연변이 penetrance 이동의 목적으로 돌연변이 배경의 맥락에서 모두 간주 됩니다. 따라서,이 프로토콜 배경 동질성을 증가 뿐만 아니라 발달 돌연변이 분석을 강화 하는 방법을 제공 하 여 이전 선택적인 breeding 패러다임을 확장 합니다.
이 프로토콜 사전에 안정적이 고 신속한 유전형 프로토콜을 개발 하는 것이 중요 하다 그래서 광범위 한 유전형을 요구 한다. 그러나 많은 유전형 프로토콜 사용할 수 있는10,11, 우리는 KASP 유전형12,,1314 찾을 빠릅니다, 더 비용 효율적인, 그리고 방법 보다 더 신뢰할 수 있는 증폭된 시퀀스10의 제한 효소 절단을 기반으로 합니다. 따라서, 우리는이 작품에서 KASP 프로토콜을 포함. 또한, 우리는이 프로토콜에 골격 돌연변이 고기에 집중 하 고 Alcian 블루/알리자린 레드 얼룩 이전 프로토콜15수정 절차를 포함.
여기 설명 하는 방법을 상향 또는 하향 치명적인 돌연변이 penetrance 변화는 간단한 전략입니다. 이 프로토콜은 골격 돌연변이 고기에 초점을 맞추고, 하는 동안 우리는 모든 돌연변이 제 브라 라인의 축산에 대 한 유용한 전략 될 것입니다 믿습니다. 사실,이 번 식 전략 가능성의 유틸리티 zebrafish 넘어 확장 됩니다. 우리가 예측 penetrance 생물의 광범위 한 범위에서 이동이 프로토콜을 수정할 수 있습니다. 치명적인 penetrance 자손 테스트 하 여 이동 하는 것은 어떤 발달 유전학의 진도 앞으로 밀어 것을 도울 수 있다.

<table><tbody><tr><td>파라포름알데히드, 펠릿화, 고체</td><td>Ted Pella Co.</td><td>18501</td><td>펠렛 PFA는 분말 PFA</td></tr><tr><td>염화마그네슘, 고체</td><td>Acros 유기물</td><td>223210010</td><td></td></tr><tr><td>10x PBS, 수성</td><td>Fisher</td><td>BP3994</td><td></td></tr><tr><td>190 증거 에탄올</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alcian Blue, 고체</td><td>Anatech Ltd.</td>에 대한 더 안전한 대안입니다.<td>867</td>은 <td>Anatech</td></tr><tr><td>Alizarin Red, 고체</td><td>Sigma</td><td>A5533-25G</td><td></td></tr><tr><td>글리세롤, 액체</td><td>Fisher</td><td>BP229 1</td><td></td></tr><tr><td>과산화수소, 액체</td><td>Fisher</td><td>BP263500</td><td></td></tr><tr><td>수산화칼륨,&nbsp; 고체</td><td>Fisher</td><td>P250 500</td><td></td></tr><tr><td>StepOnePlus Real-time PCR Machine</td><td>Applied Biosystems</td><td></td><td>에서 가져와야 합니다.</td></tr><tr><td>MicroAmp Fast Optical 96-well Reaction Plate with Barcode (0.1 mL)</td><td>Applied Biosystems</td><td>4346906</td><td></td></tr><tr><td>Microseal 'B' seal</td><td>BioRad</td><td>MSB1001</td><td></td></tr><tr><td>KASP Master Mix, High ROX</td><td>LGC</td><td>KBS-1016-022</td><td>https://www.lgcgroup.com/products/kasp-genotyping-chemistry/#.WOPX41UrKUk</td></tr><tr><td>KASP By Design Primer Mix</td><td></td><td>LGC KBS-2100-100</td><td></td></tr><tr><td>트리스 HCl, 고체</td><td>Fisher</td><td>BP153 500</td><td></td></tr><tr><td>염화칼륨, 고체</td><td>Fisher</td><td>BP366 500</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20, 액체</td><td>Fisher</td><td>BP337 100</td><td></td></tr><tr><td>Nonidet P40</td><td>ThermoFisher</td><td>28324</td><td></td></tr><tr><td>트리카인-S</td><td>서부 화학</td><td></td><td></td></tr><tr><td>단백질 분해 효소 K</td><td>Fisher</td><td>BP1700 100</td><td></td></tr><tr><td>T100 Thermal Cycler</td><td>BioRad</td><td>1861096</td><td></td></tr><tr><td>제어 드롭 파스퇴르 피펫</td><td>Fisher</td><td>13-678-30</td><td></td></tr><tr><td>DNA 정량화를 위한</td> <td>Nanodrop</td><td>ThermoFisher</td><td></td></tr></tbody></table>

zebrafish 치명적인 골격 돌연변이 penetrance 자손 테스트 하 여 이동

Shifting Zebrafish Lethal Skeletal Mutant Penetrance by Progeny Testing

Zebrafish 돌연변이 고기는 수시로 불완전 하 게 침투 하 고, 일부 돌연변이 명시. 일관성 없이 나타나는 재미 있는 고기 공부 하 고, 어려울 수 있으며 결과 혼동으로 이어질 수 있습니다. 여기에 설명 된 프로토콜은 증가 하 고 감소에 치명적인 zebrafish 골격 돌연변이 penetrance 간단 번 식 패러다임 이다. 치명적인 돌연변이 수 없습니다 선택적으로 사육 될 직접, 때문에 자손 테스트의 고전적인 선택적 번 식 전략 채택 된다. 이 메서드는 또한 Kompetitive 대립 유전자 특정 PCR (KASP) 유전형 zebrafish 및 얼룩 애벌레 zebrafish 연골과 뼈에 대 한 프로토콜을 포함합니다. 여기에 설명 된 농업 전략 적용 다운스트림 응용 프로그램에 더 많은 결과 재현할 수 있도록 재미 있는 골격 표현 형의 penetrance를 증가할 수 있다. 또한,이 선택적 번 식 전략을 통해 돌연변이 penetrance 감소 가장 결정적인 돌연변이 유전자의 기능을 해야 하는 개발 프로세스를 밝힐 수 있다. 골격은 구체적으로 간주 하지만 여기, 우리는이 방법론은 모든 zebrafish 돌연변이 라인에 대 한 도움이 될 것입니다 제안 합니다.

이 프로토콜은 장기 축산 기술 이해 zebrafish 골격 돌연변이 (그림 1)에 대 한 유용. 선택적인 breeding 자손을 테스트 하 여 전반적인 penetrance 하향 및 상향 몇 세대 (그림 2)에 있는 변화를 항복 한다. 우리의 이전 작품에서는, 선택적인 breeding의 2 라운드 3117%에서 평균 penetrance 아래로 몰고. 마찬가지로, 우리의 위쪽 라인에서 우리 이동 평균 penetrance 위쪽으로 63%에서 93%로 3 세대. 선택적인 breeding의 4 라운드 후 아래쪽 또는 위쪽으로 penetrance 응답 하지 않으면, 득점 되는 표현 형 자손 테스트 하 여 선택적인 breeding에 과민 하지 않다 가능 하다.
<p class="jove_content" fo:keep-togeth...

이 프로토콜의 목표 zebrafish에 치명적인 골격 돌연변이 고기 penetrance 선택적인 breeding에 의해 변경 하는 것입니다. 치명적인 돌연변이 성인 기에 성장 될 수 없는 자신을 사육, 따라서이 프로토콜 추적 하 고 여러 세대에 걸쳐 penetrance 테스트 자손에 의해 선택 하는 방법에 설명 합니다.

Zebrafish 치명적인 골격 돌연변이 Penetrance 자손 테스트 하 여 이동

Zebrafish mutant phenotypes are often incompletely penetrant, only manifesting in some mutants. Interesting phenotypes that inconsistently appear can be ...

이 육종 전략의 전반적인 목표는 돌연변이 침투율을 높이거나 낮추는 것입니다. 이러한 선택적 육종 방법을 통해 돌연변이 표현형을 더욱 완전하게 이해할 수 있습니다. 고침투율 및 저침투율 돌연변이 균주를 생성함으로써, 특정 돌연변이의 전체 표현형 범주를 파악할 수 있습니다.대부분의 제브라피시 척도는 돌연변이가 열성 치사성이므로, 동형 접합 돌연변이는 직접 교배하기 전에 사망합니다. 따라서 본 논문에서 시연하는 바와 같이, 우리는 자손 검사라는 고전적인 선택적 교배 전략을 사용합니다. 우리는 이 방법을 이異소성 골세포 발달의 타임랩스 기록을 시도하는 과정에서 처음으로 도입하게 되었습니다.안타깝게도 추가적인 골세포가 빈번하게 나타났기 때문에, 우리는 선택적 교배를 통해 돌연변이 침투도를 변경하기로 했습니다. 비록 우리는 돌연변이 라인을 사용하여 제브라피쉬 규모로 이 방법을 수행하지만, 다른 제브라피쉬 돌연변이 표현형 및 아마도 다른 생물체에도 적용할 수 있을 것입니다. 텍스트 프로토콜에 따라 선택되지 않은 시작 제브라피쉬 스톡을 준비한 후, 다음과 같이 KASP 유전자형 분석을 수행하십시오.제브라피시 꼬리 조직을 96웰 플레이트의 각 웰에 50 µL의 용해 버퍼와 함께 넣습니다. 각 웰에 10 mg/mL Proteinase K 10 µL를 첨가하고, 써모사이클러(thermocycler)에서 55 °C로 2~5시간 동안 조직 샘플을 분해합니다. 이어서 94 °C에서 20분간 비활성화 단계를 수행합니다.소화 후 용해 산물을 냉장 보관하십시오. 분광광도계를 사용하여 게놈 DNA의 양을 정량하십시오. 그런 다음, 분자생물학 등급의 물을 사용하여 각 반응당 약 20 내지 30 nanograms이 포함되도록 게놈 템플릿을 희석하십시오.얼음 위에서 1.5 mL 마이크로원심분리 튜브에 샘플당 0.14 µL의 KASP 프라이머 믹스와 5 µL의 KASP 마스터 믹스를 넣고 잘 섞습니다. 그 후, 짧게 원심분리하여 내용물을 튜브 바닥으로 모읍니다. 사용 중인 실시간 PCR 기기에 적합한 96-well 광학 PCR 플레이트의 웰에 프라이머 마스터 믹스 용액 5 µL를 피펫으로 분주합니다.그런 다음, 희석된 DNA 템플릿 샘플 5 µL를 각 웰에 피펫으로 넣고 피펫팅하여 혼합합니다. 플레이트 위에 광학 투명 필름 씰을 덮어 각 웰이 완전히 밀봉되었는지 확인합니다. 플레이트를 600 x G에서 짧게 원심 분리하여 내용물을 바닥으로 모으고 혼합물에서 기포를 제거합니다.주 KASP 반응을 수행한 후, 분석 컴퓨터에서 생성된 산점도를 확인하십시오. 확인된 헤테로 접합체 동물들을 메인 수조 시스템에 함께 수용하십시오. 동물이 지느러미 절단술로부터 회복되면, 쌍별 상호 교배를 설정하고 분리대를 사용하여 배아가 동기화되도록 하십시오.배아를 수집하고, 부모 쌍은 브리딩 케이지에 격리하여 유지하십시오. 격리된 성어를 모니터링하여 공격성이 강한 개체는 분리하거나 은신처를 제공하십시오. 배아의 75%에서 부레가 팽창하는 5일 또는 6일째에, 유리 피펫을 사용하여 표현형이 야생형인 개체들을 수집하여 사육하십시오.표현형 야생형 개체들을 보육소에 배치하고, 어떤 부모로부터 얻었는지 기록합니다. 텍스트 프로토콜에 따라 부레가 팽창하지 않는 유충을 마취시킨 후, 광구 유리 파스퇴르 피펫을 사용하여 동물들을 1.5 milliliters 마이크로원심분리 튜브에 수집합니다. 각 튜브에서 배아 수를 제거하고 1x PBS에 희석된 2%paraformaldehyde 1 milliliter로 교체합니다.동물을 고정하기 위해 튜브를 1시간 동안 흔들어 줍니다. 이 단계와 이후의 모든 셰이킹 단계에서 튜브를 정기적으로 확인하여 유충이 튜브 벽면에 달라붙거나 바닥에 뭉치지 않았는지 확인하십시오. 유리 피펫을 사용하여 튜브에서 고정액을 제거합니다.그 다음 50% ethanol 1 mL를 첨가합니다. 샘플을 10분 동안 추가로 흔들어 줍니다. Alcian premix 1 mL당 0.5% alizarin red 20 µL를 첨가하여 신선한 염색액을 준비합니다.50% ethanol을 제거하고, 각 튜브에 염색 용액 1 mL를 추가합니다. 그 후, 튜브를 하룻밤 동안 흔들어 줍니다. 텍스트 프로토콜에 따라 배아를 표백한 후 며칠 이내에, 염색된 돌연변이 자손에서 침투형(penetrants)이 있는지 확인하여 점수를 매깁니다.이 예제에서는 골격 주제의 모든 발생 여부에 대해 점수를 매깁니다. 다음 세대를 위해 고침투성 가족 2개와 저침투성 가족 2개를 선택하십시오. 각 부모 쌍에 서브 스톡 식별자를 부여하십시오(예: family 4.01, 02 등).또한 모든 라벨에 근교계 세대 번호를 표시하는 것이 도움이 됩니다. 주 시스템에서 성별이 혼합된 여러 마리의 동반어와 함께 부모 쌍을 사육하십시오. 동반어는 색소 침착이나 지느러미 구조의 변화와 같이 영구적이고 뚜렷한 구별 특징을 가진 모든 제브라피쉬 라인을 사용할 수 있습니다.선택된 가계의 야생형 형제 유충이 들어 있는 탱크에 돌연변이 형제들 중 침투도가 나타나는 개체들을 함께 표시하고, 평소와 같이 성어까지 키웁니다. 자손 검정을 통한 선택적 교배를 통해, 몇 세대 후에 전체적인 침투도가 하향 또는 상향으로 이동하게 될 것입니다. 이 예시에서는 mef2ca b1086 돌연변이에 적용하였으며, 치사성 동형접합 돌연변이체의 아가미 덮개(opercal ray)와 새鰓막(branchiostegal ray) 사이의 외골격 뼈 침투도가 높거나 낮은 개체들을 선택하였습니다.성공적인 캐스트 과정에서, 유전자 유형에 해당하는 샘플의 유형 그룹은 컴퓨터 프로그램에 의해 인식되어야 하며, 충분한 사이클이 수행된 후 NTC는 플롯의 원점 근처에 위치해야 합니다. 여기서 보여준 바와 같이, Alcian blue 및 alizarin red 염색이 성공적이라면 뼈와 연골 요소가 투명하거나 희미하지 않고 선명하게 염색될 것입니다. 연골 요소의 경계는 뚜렷하게 나타나야 하며, 개별 chondrocyte를 식별할 수 있어야 합니다.Alcian blue의 농도가 너무 높으면 다른 조직과 명확히 구분되지 않아 분석이 불가능해집니다. 제브라피시 계통 유지 단계부터 이 기술을 적용하면 몇 세대 후에 침투율이 변경될 가능성이 큽니다. 이 절차 이후에 NC2 하이브리다이제이션 및 타임랩스 이미징 연구와 같은 다른 방법들을 병행하면 더 일관된 결과를 얻을 수 있습니다.우리는 표현형 변이의 유전 가능성을 탐구하기 위해 이 기술을 사용합니다. 이 영상을 시청한 후에는, 돌연변이가 치사성인 경우라도 침투도를 변경하기 위해 돌연변이 계통을 선택적으로 교배하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

shifting-zebrafish-lethal-skeletal-mutant-penetrance-progeny

Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

여기, 우리는 개발을위한 체계적인 접근 방법을 제시 생리 학적 관련성이 민감하고...

Danio rerio를 사용하여 병적 인 인간 게놈의 생체 모델링에

제브라피시는 이제 근이영양증, 선천성 근병증 및 관련 신경근 질환을 모델링하기 위한 확립되고 강력한 도구입니다. 복굴절(Birefringence)과 촉각(touch-hoked) 탈출 행동은 초기 발달 과정에서 제브라피시 배아의 근육 무질서 및 기관차 손상 정도를 결정하는 데 사용되는 두 가지 일반적인 비침습적 분석법입니다.

복굴절(Birefringence) 및 촉각-유발 탈출 반응 분석(Touch-evoke Escape Response Assay)에 의한 유충 제브라피시의 골격근 결손 분석

제브라피쉬는 고등 척추동물과의 유전적 유사성으로 인해 발생 생물학 및 인간 질병 연구를 위한 강력한 모델 시스템입니다. 이 프로토콜은 초기 배발생에 필수적인 유전자의 열성 돌연변이를 식별하기 위한 전방 스크리닝 전략에 활용할 수 있는 반수체 제브라피시 배아를 만드는 방법론을 설명합니다.

반수체 제브라 피쉬 배아의 생산에 의해<em&gt; 체외</em&gt; 시비

Zebrafish는 유전자 편집 기술의 출현으로 특히 생물 의학 연구에서 안정적인 유전자 모델 생물으로 사용 되었습니다. 애벌레 고기 예상 되는, DNA 추출 및 유전자 식별 전하실 수 있습니다. 여기, 꼬리 자르기, 빠르면 72 h 후 수정 하 여, zebrafish 애벌레에 대 한 효율적인 유전형 절차를 설명 합니다.

높은 처리량 DNA 추출 및 지 느 러 미 클리핑에 의해 3dpf Zebrafish 애벌레의 유전형

이 작업은 제브라피쉬 배아에 형질전환 구조를 만들어 주입하기 위한 게이트웨이 기반 복제 방법인 모듈식 Tol2 형질전환 시스템에 대한 프로토콜을 설명합니다.

Zebrafish Tol2 시스템: 유연한 모듈식 게이트웨이 기반 트랜스제네시스 접근 방식

이 프로토콜은 zSpRY-ABE8e를 사용하여 정확한 제브라피쉬 질병 모델을 구성하기 위해 PAM 제한 없이 효율적인 아데닌 염기 편집을 수행하는 방법을 설명합니다.

zSpRY-ABE8e를 사용한 인간 유전 질환의 Zebrafish 모델링을 위한 효율적인 PAM 없는 염기 편집

이 프로토콜은 수정 후 3-7일 후에 제브라피시 유충에 대한 약물 스크리닝 절차와 형태학적 평가를 설명합니다.

초기 단계 제브라피시 유충의 소분자 스크리닝 및 독성 테스트

RASopathies는 RAS-MAPK 경로 과활성화에 의해 발생하는 다계통 유전 증후군입니다. 검증을 기다리는 잠재적인 병원성 변이가 지속적으로 나타나고 있으며, 전임상 근거가 부족하여 치료가 제한됩니다. 여기에서는 Teen-reporter 제브라피시의 라이브 FRET 이미징에 의한 배아 발생 중 RASopathy 관련 ERK 활성화 수준과 약리학적 조절을 테스트하고 교차 검증하기 위한 생체 내 프로토콜에 대해 설명합니다.

Live FRET 현미경 검사 및 면역형광을 통해 초기 제브라피시 누난 증후군 모델에서 ERK 활동 조절을 평가하기 위한 효율적인 프로토콜

여기에서는 안정적인 zpc:cas9 knock-in line과 sgRNA 발현 카세트의 Tol2 매개 전달을 결합하는 모계 돌연변이를 생성하기 위한 프로토콜에 대해 설명합니다.

zpc:cas9 Knock-in 제브라피시를 사용한 모계 돌연변이 생성

이 연구는 무료 소프트웨어(tpsDigs2, MorphoJ, PAST)를 사용하여 제브라피시 유생의 얼굴 구조 변화를 측정하기 위한 두개안면 연골 형태를 정량화하는 프로토콜을 설명합니다.

형태 측정 분석: 제브라피시에서 두개안면 형태 정량화를 위한 분석 소프트웨어 툴박스

학습하세요 제브라피시 치명적인 골격 돌연변이의 침투율을 선택적 교배와 자손 테스트를 통해 조절하는 방법을. 이 기법은 유전적 메커니즘 연구와 고침투율 및 저침투율 계통 생성에 활용됩니다.

Zebrafish 치명적인 골격 돌연변이 Penetrance 자손 테스트 하 여 이동

더 많은 동영상 탐색