Name: 풍부 하 고 대장균 에서 전송 RNAs의 레벨 충전의 정량화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 34 s
Description: 배우세요 대장균에서 전송 RNA의 풍부도와 충전 수준을 정량화하는 방법을. 성장 상태에 따른 tRNA 역학을 비교 분석하여 세포 내 RNA 변화를 연구할 수 있습니다.

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저자는 우수한 기술 지원 마리 트 Warrer를 감사합니다. 이 작품은 독립적인 연구에 대 한 덴마크 위원회에 의해 지원 되었다 | 자연 과학 [1323-00343B] 고 덴마크 연구 재단 [DNRF120].

1. 세균성 문화의 준비.
최대 1/6의 문화/플라스 크 볼륨 비율 삼각 플라스 크에 <ol><li>성장 모든 문화. 전형적인 실험 설정에서 성장 37.0 ° C에서 문화 및 morpholinepropanesulfonic 산 (MOPS) 최소한의 중간 18 선호 탄소 소스, 예를 들어 0.2% 포도 당, 적어도 10와 보완에 160 rpm에 떨고 RNA 수확을 하기 전에 연속 세대.</li>
	<li>RNA 수확 전에 하루 희석 MOPS 다음 날 원하는 시간에 원하는 OD 436 도달할 것 같은 방법으로 최소한의 매체에서 원하는 스트레인의 능가 해 문화. 계산 수식으로 접종에 사용할 능가 해 문화의 볼륨: <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/56212/56212eq1.jpg" /> 참고: 여기, OD 새로운 나타냅니다 원하는 OD 436 부 화, 후 V 새로운 상징 희석된 문화의 볼륨, OD 오래 된 능가 해 문화에서 희석의 OD 436 나타냅니다, G 세대 문화, 성장 수를 나타냅니다에서 희석 (t 1)로 산출 될 수 있다 (t 2) 후 일 필요는 시간이 하의 시간: 시간 t 1과 t 2 세대 시간 (분)으로 나눈 값 (분)에서 차이. 샘플링 시간에 정상 성장을 보장 하기 위해, G는 이어야 한다 &#8805; 10; V 오래 된 신선한 매체에 전송 해야-자란 문화의 볼륨을 나타냅니다. 이 방정식은 어떤 래그 단계; 고려 하지 않습니다는 근사 종종 신선한 미디어에서 밖으로 성장된 문화의 희석 후 관찰 하는 현상.
	<ol><li>성장 조건, 실험의 목적에 따라 달라 집니다 하지만 제한 셀 변형 tRNA 수준 (권장) 결과의 재현성을 증가 하 고 성장 샘플링 이전 상태를 꾸준히 문화 19.</li></ol></li></ol> 2. 스파이크 셀의 준비 참고: 대장균 스트레인 MAS1074, tRNA selC는 이소프로필 β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG)의 통제를 인코딩 selC 유전자 표현- 유도할 수 있는 발기인 스파이크에 긴장으로 사용 됩니다.
<ol><li>Dilute 능가 해 문화 MAS1074의 OD 436 MOPS에 0.05를 최소한의 미디어 100 µ g/mL 암 피 실린과 0.2% 포도 당으로 보충. 160 rpm에서 떨고 37 ° C에서 문화 성장. 
	: 참고는 대체 참조 긴장의 사용에 대 한 토론.</li>
	<li>에서 OD 436 ~ 0.1, tRNA selC의 표현을 유도를 1mm의 최종 농도에 IPTG을 추가 합니다. OD 436 ~0.5 문화 성장 (3-4 h 성장의) 문화 플라스 크를 얼음 목욕을 이동. RNA의 정화에 대 한 모든 샘플 수확 되었습니다 때까지 얼음에 스파이크에서 세포 배양을 유지.</li>
</ol> 3. 실험 샘플의 수확.
<ol><li>사전 따뜻한 (37 ℃) 한 출장 100 mL 삼각 플라스 크 (또는 유사한) 4 mL 10% (w/v) trichloroacetic 산 (TCA)를 포함 하는 온수 물 욕조에 그것을 배치 하 여 각 샘플. 
	참고: 주의 TCA 분해, 난방 시 염화 수소 및 클로 프롬을 포함 한 독성 및 부식성 가스를 생산 합니다. 물에서이 솔루션은 강한 산 성; 그것은 기지와 심하게 반응 하 고 많은 금속에 부식성 이다. 이 액체를 사용 하는 경우 적절 한 주의가지고 야 한다.</li>
	<li>셀 수확 직전 측정 하 고 기록 문화의 OD 436.</li>
	<li>셀 수확, TCA를 포함 하는 미리 데워 진된 플라스 크를 문화의 4 mL 전송.</li>
	<li>혼합 샘플 5 미 혼합 TCA와 즉시 모든 효소 활동을 억제 하 고 따라서는 tRNAs의 충전 레벨을 유지 플라스 크를 손으로 소용돌이. 
	참고: 여러 샘플 수집 될 경우, 계속 수확된 샘플 얼음에 TCA에서 모든 샘플이 수집 될 때까지.</li>
</ol> 4. 스파이크 셀의 추가 참고: 스파이크 셀의 준비 단계 2에서 설명.
<ol><li>때 모든 RNA 준비에 대 한 샘플 수집 되어, 각 샘플에 5% 스파이크 셀 (외경 기준) 추가. 
	참고: 필요한 스파이크에 세포 배양의 수식으로 계산 됩니다: <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/56212/56212eq2.jpg" /> V 스파이크 스파이크에 세포 배양 필요의 볼륨을 나타냅니다 어디 V exp 볼륨을 나타냅니다 (TCA) 없이 수확된 실험적인 세포 배양의 OD 특급 TCA에 수확의 시간에서 실험 세포 배양의 OD 436을 나타냅니다. OD 스파이크 스파이크에 세포 배양의 OD 436 나타냅니다. 여러 샘플에서 다른 ODs 수확 하는 경우 스파이크 셀 추가 볼륨 각 샘플에 대 한 위의 공식에 따라 조정 되어야 합니다.</li>
	<li>관심, RNA 종 스파이크 셀에서 기여를 계량만 4 mL TCA와 스파이크 셀 4 mL를 혼합 하 여 스파이크 셀을 포함 하는 샘플을 준비 합니다. 이 샘플에서 준비 하는 경우와 동일한 방식으로 다른 샘플에서 RNA.</li>
	<li>필요에 따라 다른 플라스 크 셀, 스파이크 없이 실험은 샘플만 포함 하 고 척도 tRNA에 실험 샘플의 기여를 포함 selC 수준, 에 tRNA selC의 내 생 수준 대장균 K-12는 사소 하 게 낮은.</li>
</ol> 5. RNA의 준비 참고: 여기에 설명 된이 RNA 준비 프로토콜은 기본적으로 Varshney 그 외 여러분에 의해 설명 1; 동안을 피하기 위해 deacylation aminoacylated tRNAs의 정화 그것은 산 성 pH에서 고 정화의 과정을 통해 0 ° C에서 샘플을 유지 하는 것이 중요. 깨끗 한 무 균 튜브/플라스 크를 사용 하 여 샘플 및 솔루션, 그리고 물을 초순 (18.2 ㏁ 저항력)와 모든 솔루션을 준비.
<li>부 어 8 mL 얼음 냉장 원심 분리기 튜브에 각 샘플의 <ol>. 샘플 4 ° C. 완전히 제거 상쾌한에 9500 x g에서 10 분 원심 및 0.3 mL 차가운 0.3 M 아세트산 나트륨, pH 4.5, 10 mM EDTA에에서 resuspend.</li>
	<li>감기 1.5 mL microcentrifuge 관을 각 샘플을 전송 하 고 동일한 버퍼 equilibrated 0.3 mL 페 놀을 추가. 
	참고: 주의 페 놀 유독 가스를 생성 하 고 피부에 매우 부식성입니다.</li>
	<li>소용돌이 각 샘플 10 x 15에 대 한 최소 1 분 각 소용돌이 사이 s. Vortexing 사이 0에서 샘플을 계속 ° C. 샘플 감기 유지 되도록 자주 일시 중지를 사용 하 여.</li>
	<li>20000 x g 4에에 15 분 동안 원심 분리기 샘플 ° C. 전송 새로운 1.5 mL microcentrifuge 하 물 단계 (상위 단계) 튜브합니다. 이전과 0.3 mL 찬 페 놀 및 소용돌이 4 x 15 s 추가.</li>
	<li>20000 x g 4에서 10 분 원심 분리기 ° 2.5 배 96% 에탄올 (~ 750 µ L)의 볼륨을 포함 C. 전송 새, 차가운 1.5 mL microcentrifuge 하 물 단계 튜브 합니다. 1 시간 또는 밤새-80-20 ° C에서에 대 한 튜브를 배양 하 여 RNA를 침전 ° c.</li>
	<li>20000 x g 4에에 30 분 동안 원심 분리기 샘플 ° c.는 상쾌한 삭제 하 고 신중 하 게 RNA 펠 렛을 방해 하지 않고 1 mL 찬 70% 에탄올을 추가 합니다. 부드럽게 에탄올 튜브의 내부를 세척 한 번 반전. 
	참고: 펠 릿이이 단계에서 볼 힘들 수 있습니다.</li>
	<li>20000 x g 4에서 10 분 원심 분리기 ° C. 완전히는 상쾌한을 제거 하 고 아무 에탄올 왼쪽 때까지 펠 릿을 건조. 20 µ L 찬 10 나트륨 아세테이트 pH 4.5에서 1 mM EDTA에에서 적극적으로 vortexing에 의해 펠 릿 resuspend. 
	참고:-건조 하지 마십시오 펠 릿 resuspend 어렵다 될 것 이다.</li>
	<li>260에서 흡 광도 측정 하 여 필요에 따라 RNA의 농도 평가 nm.</li>
	<li>필요에 따라 agarose 젤 전기 이동 법 20 순화 된 RNA의 품질 평가.</li>
	<li>저장소 샘플-80에서 ° c. 
	참고: 프로토콜 일시 중지할 수 있습니다 여기.</li>
</ol> 6. 화학적으로 deacylated 컨트롤 샘플의 준비 참고: aminoacylated의 밴드를 구별 하는 북에 deacylated 대응에서 tRNA 오 점, 한 화학적 deacylated aliquot는 알칼리 처리에 의해 준비. 대부분의 목적에 대 한 각 북부 오 점에 대 한 deacylate 단일 샘플에 충분 하다.
얼음에 <ol><li>thaw RNA 샘플입니다. 새로운 튜브에 RNA 샘플의 4 µ L 약 수를 전송 합니다. 46 µ L Tris HCl pH 9.0을 추가 합니다. 2 h 37 ° c.에 대 한 품 어</li>
	<li>PH 4.5에서 0.3 M 나트륨 아세테이트의 15 µ L을 추가 하 고 그 후 96% 에탄올의 125 µ L을 추가. 1 헤에-20 ° C에서 RNA 침전</li>
	<li>20000 x g 4에에 30 분 동안 원심 분리기 ° C. 완전히 상쾌한을 제거 하 고 4 µ L 찬 10 m m 나트륨 아세테이트 pH 4.5 및 1 mM EDTA에 resuspend. 
	참고: 프로토콜 일시 중지할 수 있습니다 여기, 샘플-80에 저장 된 경우 ° c.</li>
</ol> 7. 젤 전기 이동 법 그리고 북부 blotting <ol><li>믹스 4 µ L 샘플 (치료 또는 화학적 deacylated) 6 µ L 로드 버퍼 (0.1 M 나트륨 아세테이트 (pH 5.0), 8 M 요소, 0.05 %bromophenol 파랑 및 0.05% 자일 렌 cyanol). 
	참고: 기억 스파이크에 셀만,를 포함 하는 샘플을 포함 하는 화학적 deacylated 샘플 (및 스파이크에 셀을 하나 준비 하는 경우 없이 샘플).</li>
	<li>에 0.4 m m 두께 6.5 %polyacrylamide 젤 (19:1 acrylam-ide:bisacrylamide) 8 M 0.1 M 나트륨 아세테이트 버퍼 (pH 5.0)에서 요소를 포함 하는 샘플을 로드 합니다. TRNA의 적절 한 분리를 위한 60 cm 긴 젤 사용.</li>
	<li>에서 4 ° C에서 10 V/cm 젤 전기 이동 법으로 분리 되는 RNA 블루 bromophenol까지 젤 (~ 20 h)의 하단에 도달.</li>
	<li>자일 렌 cyanol 염료에서 지역 bromophenol 파랑 쪽으로 내려 20 cm 염료 blotting 사용 됩니다 (두 염료 사이의 거리는 25-30 cm 이어야 한다). 젤은 그들 중 하나에 남아 있다 그래야 신중 하 게 두 개의 유리 접시를 구분 합니다. 필터 종이의 얇은 조각 잘라 원하는 더 럽 히 면의 크기 이며 젤 blotting에 사용 될 부분 위에 배치. 필터 종이 적용 되지 않는 젤 부분의 차단 및 삭제. 필터 종이 사용 하 여 유리 접시에서 젤 조각을 조심 스럽게 들어올립니다. 
	참고: 큰 젤은 매우 깨지기 쉬운 그래서 관심을가지고 취급.</li>
	<li>충전 된 나일론 막 (예: Hybond N + 막) 젤 위에 놓이고 그것은 20 V 전송 버퍼 2 mM EDTA 40mm 트리 아세테이트 (pH 8.1)을 사용 하 여 90 분 electroblotted.</li>
	자외선을 사용 하 여 막에 <li>Crosslink RNA (0.12 J/c m 2). 
	참고: 막 실내 온도에 저장 될 수 있습니다 및 프로토콜 여기 일시 중지 될 수 있습니다.</li>
</ol> 8. 설계 및 검증의 프로브 참고: 설계 및 북부 오 점 프로브의 검증은 신뢰할 수 있는 결과 가져오고 다른 RNA 종족과 원치 않는 간 교 잡 방지 하는 중요 한 주의.
<ol><li>사용 조사로 짧은 합성 oligonucleotides. 그것은 관심의 tRNA의 시퀀스의 가장 독특한 부분에 보완-이것은 종종 anticodon 루프 방식에서 프로브 시퀀스 디자인. 
	참고: 다양 한 유기 체에서 예측된 tRNA 시퀀스 목록에서에서 찾을 수 있습니다 게놈 tRNA 데이터베이스 (GtRNAdb) 21.</li>
	<li>조정 한 예측를 시퀀스의 길이 55-65 ° c.의 온도 용융</li>
	<li>폭발 (기본적인 현지 줄 맞춤 검색 도구) 선택한 순서 22에 설명 된 대로 선택한 tRNA에는 확인 하는 실험에 사용 하는 세균성 긴장의 게놈 순서에 대 한 시퀀스. 
	주: 표 1 대장균 K12의 여러 다른 tRNAs에 대 한 제안된 프로브 시퀀스를 나열합니다. 프로브는 특정 관심의 tRNA에 대 한, 두 밴드는 북부 오 점 (충전 및 충전 tRNA)에 표시 하 고 단 하나의 밴드 deacylated 샘플 (충전된 tRNA)와 차선에 표시 됩니다. 두 개 이상의 밴드를 사용할 수 있는지 또는 경우 추가 유효성 검사 프로브 특이성의 토론을 참조 하십시오.</li>
</ol> 9. 북부 오 점 교 잡 참고: 다음 단계에서 막은 순차적으로 때 교배 프로브 프로브 특정 참조를 포함 하 여 원하는 특정 tRNAs에 무료 tRNA selC.
<ol><li>막 교 잡 튜브에 놓고 6 mL 교 잡 솔루션 추가 (0.9 M NaCl, 0.05 M NaH 2 포 4 (pH 7.7), 5 mM EDTA, 0.5% (w/v) SDS, 100 mg/mL의 전단 및 청 어 정자 DNA와 5를 변성 x Denhardt &#39; s 솔루션 (100 x Denhardt &#39; s 솔루션 2% 소 혈 청 알 부 민, 2% polyvinylpyrrolidone 40, 및 2% = Ficoll)).</li>
	<li>미리 1 h 42 ° C. 추가 30 pmol 방사성 올리고 DNA 프로브 5 회전에 대 한 버퍼에 막 교배 &#39;-엔드-32 P (Sambrook 그 외 여러분에 의해 설명 된 대로 준비와 함께 표시 23) 참고: 주의 32 P에서에서 고 에너지 베타 방출 상당한 피부와 눈 복용량 위험을 제시할 수 있습니다. 32 P. 방사성 폐기물을 사용 하 여 폐기 해야 합니다의 적절 한 제도적 안전 프로토콜에 따라 때 적절 한 주의가지고 야 한다.</li>
	<li>42에서 막 하룻밤 회전 프로브를 품 어 ° C. 제거 일회용 10 mL 피 펫을 사용 하 여 프로브. 
	참고: 냉동 실에 저장 하는 경우 프로브 다시 사용할 수 있습니다.</li>
	<li>교 잡 튜브에 씻어 0.3 M NaCl, 30mm 나트륨 시트르산, 실 온에서 0.1% (w/v) SDS의 50 mL에 곧 막. 
	참고:이 첫 번째 워시 훨씬 언바운드 프로브를 포함 하 고 높은 방사성으로 처리 되어야 합니다.</li>
	<li>반복 9.4 번 단계 다음 평평한 플라스틱 컨테이너 또는 트레이 뚜껑을 포함 한 막 이동. 세척 솔루션 (0.3 M NaCl, 30mm 나트륨 시트르산, 0.1% (w/v) SDS) 막 고 실 온에서 30 분 동안 품 어.</li>
	<li>세척 솔루션을 변경 하 고 만족 신호 대 잡음 비 (자주 세척 솔루션의 3-4 변경) 얻은 되었습니다 때까지 세척을 계속. 가 거-뮐러 관을 사용 하 여 막의 빈 영역에서 방사선을 측정 하 여 잡음 신호 비율을 변경 하는 방법을 감지 하 여 프로브는 tRNA를 특히 때 교배는 어디 지역에 그것을 비교.</li>
	<li>노출, 후 막에서 프로브를 수 있을 것 (중요 한) 막 건조 하지 않습니다 밖으로 스트립 절차 전에 확인 합니다. 막 얇은 비닐 또는 플라스틱을 사용 하 여 단단히 포장 하 고 봉인 테이프 또는 용접으로 밀폐 되도록 포장에 놓습니다. Phosphorimaging 화면에 봉인된 막 장소. 
	참고: phosphorimaging 화면에 필요한 노출 시간에 따라 결정 됩니다 프로브, 특정 활동 RNA의 양을 조사 for, 그리고 프로브, 그리고 수의 교 잡 효율 크게; 다 몇 일 분. 경험으로,가 거-뮐러 관 막에 방사선의 강도 필요한 노출 시간에 대 한 좋은 표시를 제공 합니다. 신뢰할 수 있는 정량화, 화면 설쳐 하지 것이 중요 하다.</li>
	<li>레이저 스캐너를 사용 하 여 phosphorimaging 화면을 스캔 하 고 파일에 저장 &#34;.gel &#34; 형식. 
	참고: 높은 신호 대 잡음 비는 신뢰할 수 있는 정량화 필요 합니다. 두 밴드; 초래 한다는 tRNA에 대 한 한 포함 aminoacylated tRNA (느린 마이그레이션)와 1 개의 포함 deacylated tRNA (빠른 마이그레이션). 그림 2를 참조 하십시오.</li>
</ol> 10. 멤브레인 스트립 참고: 이전 프로브 막 벗 겨 서 먼저 제거 해야 합니다 전에 막 다른 tRNA에 대 한 탐색할 수 있습니다,.
<ol><li>열 충분히 스트립 버퍼 (15 m m NaCl, 1.5 m m 나트륨 구 연산 염, 0.1% (w/v) SDS) 커버 하는 막 고 막 위에 부 어. 실 온에서 15 분 동안 품 어.</li>
	<li>반복 단계 10.1 아무 방사선까지가 거-뮐러 관으로 검출 될 수 있다; 막 다시 교배 섹션 9에 설명 된 단계를 따라 될 수 있습니다.</li>
</ol> 11. TRNA를 측정 하 고 충전 레벨 <ol><li>부하는 영상으로.gel 파일 소프트웨어 (재료의 표 참조). 신호 수 있는 하지도, 그림 3A에서와 같이 같은 방법으로 그것은 레인의 너비의 대부분에 걸쳐 있지만 밴드의 가장자리는 제외 됩니다 샘플 레인의 각에 따라 수직 라인을 그릴.</li>
	<li>시각화를 클릭 하 여 각 차선에서 계산 &#34; 분석 &#34;-&#62; &#34; 그래프 만들기 &#34;. 그림 3B와 같이 각 차선에서는 충전 및 충전된 tRNA를 나타내는 두 개의 봉우리를 수동으로 정의.</li>
	<li>클릭 하 여 각 피크에서 카운트를 얻을 &#34; 분석 &#34;-&#62; &#34; 지역 보고서 &#34;, 두 봉우리의 각 영역을 기록.</li>
	<li>오 점 tRNA selC와 관심의 하나 이상의 tRNA 조사 되었습니다 때 tRNA selC 관심의 tRNA의 수준을 정상화.
	<ol><li>각 레인에 스파이크 셀에서 발생 하는 tRNA의 비율을 계산 하 고 방정식을 사용 하 여 그 차선에 총 신호에서 뺍니다: <img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/56212/56212eq3.jpg" /> 참고: 여기에서, TRNA 샘플 = 원하는 tRNA;에 대 한 조사는 막의 단일 차선에서 얻은 신호 샘플 selC = tRNA selC;에 대 한 조사 같은 막의 동일한 차선에서 얻은 신호 Ref tRNA 원하는 tRNA;에 대 한 조사 같은 막의 스파이크에만 셀 RNA를 포함 하는 차선에서 얻은 신호를 = Ref selC tRNA selC에 대 한 조사 같은 막의 스파이크에만 셀 RNA를 포함 하는 차선에서 얻은 신호를 =.</li>
		<li>정상화, 동일한 차선에서 tRNA selC 신호에 나누어 각 차선에서 교정된 tRNA 값. 
		참고: 샘플된 셀에서 tRNA selC 신호에 기여는 무시할 수 (참조 하십시오 그림 2 차선 표시 &#34;-selC &#34;).</li>
	</ol></li> <li>계산 하는 tRNA의 두 봉우리에서 신호의 합으로 청구 tRNA를 나타내는 피크 신호를 분할 하 여 각 레인에 대 한 레벨을 충전 (충전 + 충전).</li></ol>

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</ol>

저자는 공개 없다.

이 프로토콜 특정 대장균 의 충전 레벨을 동시에 측정 하는 방법에 설명 합니다 tRNAs 다른 샘플에 tRNAs의 상대적 수준을 비교 하 고. 1) 2)는 다른 샘플에서 상대 tRNA 수준을 안정적으로 비교 될 수 있다, 같은 방식으로 tRNA 수량을 정상화 하 고 3) sp 셀룰러 tRNA 충전 레벨 유지 되는 방식으로 샘플을 처리 하는 프로토콜의 중요 한 포인트는 관심의 tRNAs에 대 한 선택 된 프로브 ecificity. 이러한 포인트는 아래 별도로 해결 됩니다.
tRNA 정화
tRNAs는 그들의 휴대 전화 충전 레벨을 유지 하기 위해 최적화 된 부드러운 방식으로 대장균 에서 정화. 그것은 우리의 경험이이 프로토콜 주로 150 보다 짧은 RNAs를 추출 하는 nt, 따라서 tRNA 구성 순화 된 RNA의 큰 분수. 이러한 이유로, 그것은 대장균에서 총 RNA 정화이 프로토콜을 사용...

다음, 우리는 특정 tRNAs 측정에 대 한 방법을 제시 하 고 북부 blotting에 의해 레벨을 측정 하 고 그들의 충전. 방법은 먼저 Varshney 그 외 여러분 에 의해 개발 된 기술에 기반 1. trichloroacetic 산 (TCA)으로 세포를 수확 하 고 RNA 정화에 걸쳐 0 ° C에서 샘플을 유지는 tRNA는 아미노산 사이의 에스테 르 결합은 보존된2,,34. Aminoacylated tRNAs 구별 될 수 있다 그들의 nonacylated에서 젤 전기 이동 법 그리고 북부 blotting에 의해 때문에 aminoacylated의 감소 이동성에 기인한 covalently 바인딩된 아미노산5젤에 tRNA. 또한, 우리는 스파이크 셀 거의 사용된 tRNAselC 4overexpressing의 추가 의해 tRNA 수량 정상화에 대 한 프로토콜을 제시.
tRNAs 세균성 세포 및 번역 기계에의 한 절대적으로 중요 한 부분에 있는 가장 풍부한 분자의 일부입니다. tRNAs는 아미노산 바인딩 그리고 번역 리보솜에 그들을 전송. (Aminoacylation 또는 충전) tRNAs에 아미노산의 바인딩 aminoacyl tRNA synthetases에 의해 촉진 된다. Underrepresentation는 동계어의 청구 주어진된 메신저 RNA (mRNA) 코 돈에 tRNA 근처 동계어 tRNA는 가능성을 증가 하기 때문에 다른 충전된 tRNAs의 관계 되는 풍부는 단백질 합성의 품질 보장을 위한 중요 한 잘못 리보솜6에 성장 polypeptide 사슬의 아미노산을 제공 합니다. TRNA 위탁된의 중요성;는 tRNA의 충전 레벨에 심각한 드롭 대장균 세포의 광범위 한 응답에 반영 됩니다. 엄격한 응답입니다. 엄격한 응답 동안 tRNAs 리보솜 RNAs, 대부분 mRNAs의 합성은 아미노산 생 합성 및 스트레스 생존와 관련 된 특정 mRNAs의 녹음 방송에 찬성 하 여 하향 조정 하 고 세포의 성장 율은 극적으로 낮 췄 다7 . 또한, 우리와 다른 사람에 의해 최근 작품 대장균 적극적으로 대부분 tRNA 레벨의 조정 될 수 있습니다 제안 번역4,8을 제한 하는 스트레스에 대 한 응답에서의 tRNA의 저하를 보이고 있다 이러한 스트레스와 대처에 대 한 중요 한. 따라서, tRNA 나타났는데 및 충전 레벨의 신뢰할 수 있는 측정 세균성 긴장 응답을 완전히 이해 하기 위한 중요 한 도구가 됩니다.
대장균 은 일반적으로 재조합 단백질을 표현 하는 데 사용 됩니다 그리고 차이 codon 사용법에서 종 사이, 차선 식 자주 직면 하는 문제9. 이 재조합 mRNA10번역 하는 데 필요한 추가 tRNAs의 표현에 의해 피할 수 있다. 이러한 긴장에 레벨 충전 하는 tRNA의 측정 문제 해결 노력을 안내 하 고 단백질 식이 최적화 하는 데 도움이 수 있습니다.
이 메서드는 또한 "mischarging";의 검색을 수 있습니다. 비 동계어 아미노산 tRNA 분자 aminoacylated 다른 아미노산에 의해 Aminoacylation polyacrylamide 젤1,11을 통해 약간 다른 속도으로 마이그레이션할 tRNA를 발생할 수 있습니다. 경우에 따라 방법 또한 달리 동일한 tRNAs3에 다른 수정 패턴을 구별 하 사용할 수 있습니다.
다른 레벨을 충전 하는 tRNA의 조사는 산화를 periodate에 대 한 생 화 확 적인 절차를 설립. 메서드는 tRNA에서 보호 하는 aminoacylated periodate 산화 및 충전된 tRNA는 관찰에 의존 합니다. 후에 수확된 하는 RNA의 충전 수준을 추정 하는 데 사용은 tRNA의 재충전 산화 치료 periodate. 그러나, 여러 tRNAs 충전 표시 되었습니다 일부 부정확12제공 하는 치료에 의해 영향을 받을 것. 방법 제시 여기 측정값 순화 된 RNA에서 직접 충전, 따라서 화학 또는 효소 반응에서 어떤 편견을 제외. 이 방법의 한 가지 한계는 그 하나만 tRNA 종 그것은 어렵고 다소 많은 tRNAs에 데이터를 수집 하는 힘이 드는 비록 동일한 북부 오 점 제거 하 고 여러 tRNAs에 대 한 reprobed 될 수 있으므로 한 번에 검색.
서로 게 샘플을 정상화의 신뢰할 수 있는 방법은 목표 다른 샘플에서 분자의 상대적 수준을 비교 하는 연구에 생명 이다. 여기 우리는 RNA 어디 드문 tRNAselC overexpressing 대장균 세포의 작은 약 수는으로 추가 스파이크에 RNA 정화 전에 모든 실험 샘플에 대 한 표준화 절차를 소개 합니다. 이 방법은 tRNAs 검사 하는 경우에 뿐만 아니라 그러나 RNA의 어떤 종의 상대 정량화에 대 한 모든 샘플에서 동일한 세포 농도에 현재 아무 생 RNA 수 신뢰할 수 있는 그런 실험적인 체제 때 유용 하다. 예를 들어 다른 사이 다른 RNA의 상대적 양을 비교 하는 내 생 참조 샘플13로 "가사" RNA 같은 리보솜 RNA의 수준 자주 사용. 그러나 이것은 거의 사용 경우 참조 RNA의 세포 농도 샘플, 사이 차이 수 ribosomal RNA의 경우 샘플링 스트레스 응답15,,1617 또는 도중 발생 하는 경우 고정 단계17로 항목입니다. 스파이크 셀 이전에 RNA 정화 실험 샘플의 추가 샘플링 설치의 독립적인 정규화의 견고 하 고 정확한 방법을 제공합니다. 표준화의 또 다른 방법은 RNA 정화 후 하나 이상의 스파이크에 RNAs 실험 샘플의 추가 이다. 그러나,이 방법은 견본 사이의 RNA 복구에 차이 대 한 고려 하지 않습니다.
대장균 세포를 사용 하 여 참조 RNA 스파이크 셀 ( 그림 1참조)으로 대장균 에 대 한 실험 결과 단점이 그 overexpress 또한 외 인 대장균 의 작은 금액의 총 RNA에는 샘플입니다. 우리는이 추가 대 한 실험 샘플 (참조 그림 2, 차선 "selC" 라는 오 점 북)와 병렬로 스파이크에만 셀을 포함 하는 샘플을 분석 하 여 수정 합니다. 제시 하는 프로토콜은 대장균 K-12 위해 개발 하지만 대부분 세균성 종에 적용 될 것입니다.

<table><tbody><tr><td>우레아</td><td>머크</td><td>57-13-6</td><td>순도 >99%</td></tr><tr><td>폴리아크릴아미드</td><td>Serva</td><td>79-06-7</td><td></td></tr><tr><td>bis(N,N'-메틸렌-비스-아크릴아미드)</td><td>BIO-RAD</td><td>161-0201</td><td></td></tr><tr><td>트리클로로아세트산(TCA)</td><td>시그마</td><td>76-03-9</td><td></td></tr><tr><td>페놀</td><td>머크</td><td>108-95-2</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>포도당</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>, 나트륨 아세테이트</td><td></td><td></td><td></td></tr>, <tr><td>EDTA,</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>에탄올</td><td></td><td></td><td></td></tr>, <tr><td>트리스,</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>염산</td><td></td><td></td><td></td></tr>, <tr><td>염화</td><td></td><td></td><td></td>나트륨</tr>, <tr><td>NaH2PO4</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>나트륨 구연산</td><td></td><td></td><td></td></tr>염 <tr><td>SDS</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>청어 정액 DNA</td><td>시그마</td><td>100403-24-5</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Polivinylpyrrolidone</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ficoll</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>P32 &gamma; ATP</td><td>Perkin Elmer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DNA 올리고 (프로브)</td><td>TAG Copenhagen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hybond N+ membrane</td><td>GE Healthcare</td><td>RPN203B</td><td></td></tr><tr><td>Crosslinker</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Electroblotter</td><td>BIO-RAD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Typhoon FLA 7000 스캐너</td><td>GE Healthcare</td><td>28955809</td><td></td></tr><tr><td>분광 광도계</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>수화 오븐</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Geiger-M&uuml; ller 튜브</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>인광체 이미저 스크린</td><td>GE 헬스케어</td><td></td><td></td></tr><tr><td>하이브리드화 튜브</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>배양 플라스크</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>20ml 원심분리기 튜브</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>카탈로그 번호</td><td>코멘트</td></tr><tr><td>소프트웨어</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ImageQuant</td><td>GE 헬스케어</td><td></td><td></td></tr><tr><td>엑셀</td><td>마이크로소프트</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

풍부 하 고 대장균 에서 전송 rnas의 레벨 충전의 정량화

Quantification of the Abundance and Charging Levels of Transfer RNAs in Escherichia coli

이동 RNA (tRNA) 변환 기계 어떤 유기 체에서의 필수적인 부분입니다. tRNAs 바인딩할 하 고 번역 리보솜에 아미노산을 전송. 다른 tRNAs의 상대 수준 및 aminoacylated의 비율 충전 수준으로 알려진 총 tRNA에 tRNA는 정확성과 번역의 속도 결정에 중요 한 요소. 따라서, 풍요로 움과 tRNAs의 충전 레벨 측정 단백질 합성, 다양 한 스트레스 조건 예를 공부 하는 때에 중요 한 변수가 있다. 여기, 우리가 수확 하는 tRNA와 직접 상대 풍요로 움과 대장균에 특정 tRNA의 절대 충전 레벨을 측정 하는 방법을 설명 합니다. tRNA는 tRNA의 아미노산 사이 정한 채권 유지 되는 그런 방법으로 수확 이다. RNA는 다음 젤 전기 이동 법 그리고 북부 더럽혀, 충전 및 충전 tRNAs의 분리에는 결과를 받게 됩니다. 다른 샘플에서 특정 tRNAs 수준의 스파이크 셀 정규화의 추가 때문에 비교할 수 있습니다. RNA 정화, 전에 우리는 각 샘플에 드문 tRNAselC 당신과 대장균 세포의 5%를 추가 합니다. TRNA 종의 샘플에 관심의 금액은 다음 tRNAselC 동일한 샘플의 양을 정규화 됩니다. 스파이크에 RNA 정화 이전 셀의 추가 또한 샘플 사이 세포 세포의 용 해 효율 차이 차지 하는 순화 된 스파이크에 RNAs의 추가 이점이 있다.

절차를 사용 하 여 풍부 하 고 전과 아미노산 기아 중 레벨 3 tRNAs의 대장균 K-12에 측정 되었다 충전 여기, 설명 합니다.
아르기닌 주별 NF9154 스트레인 (세 레이 그의 아 티 mtl supE44) MOPS 최소한의 매체와 0.4% 글리세롤, 50 µ g/mL 트레오닌, 신, 아르기닌, 37 ° C에서 흔들어에서 5 µ g/mL 히스티딘 보충에 10 세대 이상 성장 했다 160 rpm을. 아르기닌 기아 문화와 신선한 MOPS 매체 아르기닌 하지 않고 위의 물의 resuspension의 여과 의해 도입 되었다. 아르기닌 기아 중 단백질 합성은 강하게 감소 하지만 아르기닌 기존 단백질의 회전율에 의해 발표를 사용 하 여 낮은 수준에서 계속 됩니다. 샘플은 시간에 수확 했다 <s...

여기에 우리가 직접 스파이크에 추가에 따라 다른 샘플에서 이동 RNA의 상대적 수준 또는 다른 짧은 RNA를 비교 하는 방법 뿐만 아니라 순화 된 대장균 RNA에서 레벨을 충전 하는 전송 RNA를 측정 하는 방법 제시 셀 참조 유전자 표현입니다.

풍부 하 고 대장균 에서 전송 RNAs의 레벨 충전의 정량화

Transfer RNA (tRNA) is an essential part of the translational machinery in any organism. tRNAs bind and transfer amino acids to the translating ribosome. ...

이 실험의 전반적인 목표는 대장균(Escherichia coli)에서 전달 RNA의 풍부함과 전하 수준을 정량화하는 것입니다. 이 방법은 다양한 성장 상태에서 tRNA 충전 수준이 어떻게 변하는지와 같은 세포 생물학의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 방법의 주요 장점은 세포 내 RNA의 구성을 크게 변화시키는 성장 상태 간에도 RNA 수준을 정량적으로 비교할 수 있다는 것입니다.텍스트 프로토콜에 따라 실험적이고 스파이크인 E.coli 배양을 성장시키는 것으로 이 실험을 시작합니다. 160RPM으로 흔들면서 섭씨 37도에서 스파이크 인 배양을 성장시킵니다. 스파이크인 배양액이 약 0.1의 OD436에 도달하면 IPTG를 첨가하여 tRNA cell C의 발현을 유도합니다.약 0.5의 OD436에 도달할 때까지 배양물을 성장시킵니다. 그런 다음 모든 샘플이 수확될 때까지 배양물을 얼음으로 옮깁니다. 그 후, 섭씨 37도의 수조에서 각 샘플에 대해 10%TCA 4밀리리터가 함유된 100밀리리터 뚜껑이 있는 배양 플라스크 1개를 예열합니다.세포 수확 직전에 실험 배양의 OD436을 측정하고 기록합니다. 그런 다음 배양액 4ml를 플라스크가 함유된 예열된 TCA로 옮깁니다. 플라스크를 5초 동안 휘젓면서 샘플을 손으로 혼합하면 모든 효소 활성이 즉시 비활성화되어 tRNA의 충전 수준을 유지합니다.모든 샘플이 수집되면 각 샘플에 5%스파이크인 셀을 추가합니다. 또한 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 스파이크인 세포로만 구성된 대조군 샘플을 준비합니다. RNA 추출을 시작하려면 대조군을 포함한 각 시료 8ml를 얼음 냉각 원심분리기 튜브에 붓습니다.섭씨 4도에서 9, 500 x G에서 10분 동안 샘플을 원심분리합니다. 상등액을 완전히 제거한 후, 10 밀리몰라 EDTA를 함유한 0.3 밀리리터의 차가운 아세트산 나트륨에 펠릿을 다시 현탁시킵니다. 각 샘플을 차가운 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브로 옮기고 펠릿을 다시 현탁하는 데 사용되는 버퍼와 평형을 이룬 0.3ml의 페놀을 추가합니다.그런 다음 각 샘플을 매번 15초 동안 10번 소용돌이칩니다. 각 소용돌이 사이 0 °C에 적어도 1 분으로, 표본을 차갑게 유지하기 위하여. 다음으로, 20, 000 x G에서 섭씨 4도에서 15분 동안 샘플을 원심분리합니다.상부 또는 물 면을 새로운 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브로 옮깁니다. 물 표면에 0.3ml의 차가운 페놀을 첨가하고 앞에서 설명한 대로 샘플을 각각 15초씩 4번 소용돌이칩니다. 그런 다음 섭씨 4도에서 20, 000 x G에서 샘플을 10분 동안 원심분리합니다.물 표면을 새로운 차가운 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브로 옮기고 차가운 96% 에탄올 2.5부피를 추가합니다. 그런 다음 섭씨 20도에서 1시간 동안 튜브를 배양하여 RNA를 침전시킵니다. 20, 000 x G에서 섭씨 4도에서 30분 동안 샘플을 원심분리하십시오.상등액을 제거한 후 RNA 펠릿에 차가운 70% 에탄올 1ml를 조심스럽게 넣고 방해하지 않도록 합니다. 튜브를 한 번 부드럽게 뒤집어 에탄올로 씻으십시오. 마지막으로, 20, 000 x G에서 10분 동안 섭씨 4도에서 원심분리기.상등액을 완전히 제거하고 에탄올이 완전히 제거될 때까지 펠릿을 자연 건조시킵니다. 1 밀리몰 EDTA를 함유 한 20 마이크로 리터의 차가운 아세트산 나트륨에서 펠릿을 다시 현탁시키기 위해 격렬하게 소용돌이칩니다. 전기영동을 시작하려면 각 시료 4마이크로리터를 6마이크로리터의 로딩 버퍼와 혼합합니다.대조군을 포함한 샘플을 8개의 몰 ureal 및 0.1 몰 아세트산 나트륨 완충액이 포함된 0.4mm 두께의 6.5 폴리아크릴아미드 겔에 로드합니다. 그런 다음 브로모페놀 블루 염료가 겔 바닥에 도달할 때까지 약 20시간 동안 섭씨 4도에서 겔 10볼트/센티미터로 전기영동을 실행하여 RNA를 분리합니다. 젤이 그 중 하나에 남아 있도록 두 개의 유리판을 조심스럽게 분리합니다.크실렌 시아놀 염료의 겔 영역과 브로모페놀 염료 쪽으로 20cm 아래로 블로팅을 사용합니다. 얇은 여과지 조각을 원하는 블로팅 영역의 크기로 자릅니다. 블로팅에 사용할 젤 부분 위에 여과지를 놓습니다.여과지로 덮이지 않은 젤 부분을 잘라서 버리십시오. 그런 다음 여과지를 사용하여 유리판에서 젤을 조심스럽게 들어 올립니다. 젤 위에 양전하를 띤 나일론 멤브레인을 놓고 20볼트의 전사 버퍼에서 90분 동안 전기로 블롯팅합니다.UV 광선을 사용하여 RNA를 멤브레인에 가교하여 마무리합니다. 다음으로, 가교 멤브레인을 혼성화 튜브에 넣고 6ml의 혼성화 용액을 추가합니다. 튜브를 섭씨 42도에서 1시간 동안 회전시켜 멤브레인을 사전 혼성화합니다.그런 다음 30 피크 몰 방사성 올리고 DNA 프로브, 5 프라임 및 P32 표지를 추가합니다. 밤새 회전하여 프로브와 함께 멤브레인을 섭씨 42도에서 배양합니다. 배양 후 일회용 10ml 피펫을 사용하여 프로브를 제거합니다.다음으로, 실온에서 15 밀리리터의 세척 용액에 혼성화 튜브에서 멤브레인을 두 번 빠르게 세척하십시오. 멤브레인을 평평한 플라스틱 용기로 옮기고 세척액으로 덮고 뚜껑을 닫습니다. 셰이커에 멤브레인을 실온에서 30분 동안 배양합니다.용액을 변경하고 만족스러운 신호 대 잡음비에 도달할 때까지 세척을 계속하십시오. 가이거 뮬러 튜브를 사용하여 프로브가 tRNA와 혼성화된 영역의 방사선과 빈 영역의 방사선을 비교하여 신호 대 잡음비를 얻습니다. 그 후, 멤브레인을 비닐 랩으로 단단히 감싸고 용접으로 밀폐하십시오.이 멤브레인을 인광 이미징 스크린에 놓습니다. 적절한 노출 시간 후 레이저 스캐너를 사용하여 화면을 스캔하고 파일을 젤 형식으로 저장합니다. 그런 다음 젤 파일을 이미징 소프트웨어에 로드합니다.각 샘플 레인을 따라 수직선을 그려 신호가 고르지 않을 수 있는 대역의 가장자리를 제외하면서 레인 너비의 대부분에 걸쳐 있도록 합니다. 각 레인의 개수를 시각화하려면 분석을 클릭한 다음 그래프를 만듭니다. 각 lane에서 전하를 띤 tRNA와 전하를 띱 하지 않은 tRNA를 나타내는 두 개의 피크를 수동으로 정의합니다.그런 다음 분석을 클릭한 다음 영역 보고서를 클릭하여 각 피크에서 개수를 가져옵니다. 마지막으로 두 봉우리 각각의 아래 면적을 기록합니다. 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 tRNA 수준을 계산합니다.이 방법은 아르기닌 결핍 전과 도중에 다양한 tRNA와 E.Coli nf915의 풍부함을 측정하는 데 사용되었습니다. 서로 다른 tRNA 프로브와 교잡된 북부 플롯에서는 전하 tRNA를 나타내는 밴드와 전하를 띠지 않은 tRNA를 나타내는 밴드 사이에 명확한 분리가 있습니다. 각 차선을 따라 있는 방사선 프로파일은 이미징 소프트웨어를 사용하여 북쪽 블롯에서 얻었습니다.각 레인의 방사선 신호는 블롯에서 각각을 분리하여 정량화되었습니다. 단일 레인에서 신호의 정량화를 나타내는 그래프는 두 개의 피크를 보여줍니다. 왼쪽 피크는 아미노아실화된 tRNA에서 나오고 오른쪽 피크는 탈아실화된 tRNA에서 옵니다.추가 분석을 위해 각 피크 아래의 영역을 내보냅니다. 북부 블롯에서 띠를 정량화하면 테스트된 모든 tRNA 종의 상대적 풍부도가 아미노산 결핍 동안 빠르고 현저하게 감소했음을 보여줍니다. 반면에, 아르기닌을 수용하는 tRNA의 tRNA 충전 수준은 아르기닌 제거 시 급격히 떨어졌다가 굶주림 기간 동안 약간 증가했습니다.그러나 다른 tRNA의 전하 수준은 굶주림 시 약간 증가한 다음 거의 굶주림 이전 수준으로 감소했습니다. 이 동영상을 시청한 후에는 tRNA 충전 및 존재량을 정량화할 수 있는 방식으로 RNA를 정제하는 방법과 정규화를 위해 스파이크인 세포를 사용하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 이 절차를 진행하는 동안 RNA의 가수분해를 방지하기 위해 RNA를 차갑고 산성으로 유지하는 것이 중요합니다.

quantification-abundance-charging-levels-transfer-rnas-escherichia

Research

연구

JoVE Journal

Biochemistry

생화학

우리는 모든 tRNAs의 상대 aminoacylation 수준을 결정하기 위해 microarray 분석을위한 방법을...

Microarrays을 사용하여 tRNA의 Aminoacylation (충전) 레벨의 게놈 - 와이드 분석

출처: Stenum, T. S. 외 대장균에서 전이 RNA의 풍부도와 충전 수준 정량화. J. Vis. 경험 (2017)이 영상은 젤 전기영동과 북부 블롯팅을 사용하여 대 장균 내 전이 RNA의 충전 수준을 아미노아실화 및 탈아실화 형태를 분리하여 검출하고 비교하는 방법을 시연합니다.

젤 전기영동과 북부 블롯팅을 통해 대장균에서 tRNA 충전 수준을 검출합니다

생체 내 생체 분자에 대한 연구는 생물학적 맥락에서 분자 기능을 이해하는 데 중요합니다. 여기에서는 DNA 또는 단백질과 같은 형광 생체 분자를 살아있는 미생물로 내재화할 수 있는 새로운 방법을 설명합니다. 형광 현미경 검사로 기록된 생체 내 데이터 분석도 제시되고 논의됩니다.

일렉트로을 통해 생활 미생물의 국제화 및 형광 생체 분자의 관측

여기, 비 코딩 DNA 요소의 transposon 중재 무작위 삽입의 힘의 최적의 염색체 위치를 해결 하기 위해 사용 되었다.

소설 Transposon 중재 방식을 사용 하 여 대장균 의 DNA 요소에 대 한 최적의 염색체 위치 결정

이 원고 붙일 표시 된 DNA 프로브, 대장균에 있는 단일 분자 형광 제자리에서 교 잡 (smFISH) 실험에 사용 하기 위해 개별 메신저 RNA (mRNA) 성적표를 라벨에 대 한 방법을 설명 합니다. smFISH 동시 탐지, 지역화, 고 고정된 개별 셀에 단일 mRNA 분자의 정량화를 허용 하는 시각화 방법입니다.

단일 분자 형광 제자리에서 교 잡 실험에 대 한 개별 대장균 세포에 성적표를 라벨에 대 한 방법

이 방법에서, 우리는 세균 세포에서 단순, 살아있는, 리포터 분석법을 사용하여 동축 및 비동종 결합 부위에 RNA 결합 단백질(RBPs)의 결합 친화도를 정량화한다. 분석은 기자 유전자의 억압에 근거를 둔다.

박테리아에서 단백질 RNA 결합을 정량화하기위한 분석

이 프로토콜은 mRNA 합성 및 분해의 생체 내 운동학을 측정하기 위해 시상 혼성화(smFISH)에서 단일 분자 형광의 적용을 설명합니다.

시투 혼성화에서 2색 단일 분자 형광을 사용하여 에샤리치아 대장균의 공간과 시간에서 mRNA 운동학을 프로빙

MAPS 기술은 생체 내에서 특정 조절 RNA의 표적을 면밀히 조사하기 위해 개발되었습니다. 관심의 sRNA는 RNA 의 RNA 파트너의 공동 정화및 RNA 시퀀싱에 의한 그들의 식별을 가능하게 하는 MS2 aptamer로 태그됩니다. 이 수정 된 프로토콜은 특히 그램 양성 박테리아에 적합합니다.

그람 양성 박테리아에서 RNA 염기서열분석과 결합된 MS2-선호도 정화

절대 정량 RNA 염기서열분석(AQRNA-seq)은 생물학적 혼합물에서 모든 소형 RNA의 환경을 정량화하기 위해 개발된 기술입니다. 여기에서는 AQRNA-seq의 라이브러리 준비 및 데이터 처리 단계를 모두 시연하여 기아 유발 휴면 기간 동안 Mycobacterium bovis BCG의 전달 RNA(tRNA) 풀의 변화를 정량화합니다.

small RNA 정량을 위한 AQRNA-seq

이 프로토콜은 비염증 조건에서 pks+ 대장 균 쥐를 정착하는 데 필요한 절차와, 대변 내 pks+ 대장균 확장의 비침습적 확립 및 평가 방법을 설명합니다.

비염증 조건에서 마우스 pks+ 대장균에 의한 정착

배우세요 대장균에서 전송 RNA의 풍부도와 충전 수준을 정량화하는 방법을. 성장 상태에 따른 tRNA 역학을 비교 분석하여 세포 내 RNA 변화를 연구할 수 있습니다.

풍부 하 고 대장균 에서 전송 RNAs의 레벨 충전의 정량화

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