Name: 태에서 Autophagy의 규제에 모성 비만과 관련 된 염증의 효과 연구 하는 기본 인간 Trophoblast 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-09-27T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 44 s
Description: 배우세요 인간 태반 융모 조직에서 세포영양막 세포를 분리하여 1차 배양하는 방법을. TNFα 처리를 통해 모성 비만 관련 염증이 영양막 세포 유전자 조절에 미치는 영향을 연구할 수 있습니다.

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저자는 여자를 들이 연구에 대 한 그들의 반응과 기증 감사 합니다. 우리 또한 조정 반응과의 컬렉션에 대 한 노동 및 배달 부 오 스 모자와 태아 연구 팀에 감사. 우리는 에릭 왕, 박사, 그리고 켈리 쿠오, MD 지원 감사 하 고 실험 방법 및 최적화에 도움이.
이 작품은 NIH HD076259A (오전)에 의해 투자 되었다와 AHA GRNT29960007 (오전).

placentae 프로토콜에서 동의와 제도적 검토 보드 오 레 곤 건강 과학 대학의 포틀랜드, 오 레 곤,에 의해 승인 아래는 노동 및 배달 단위 대학 병원에서 수집 된는 환자.
 1. 태 반 조직 컬렉션 <ol><li>준비 참고: 조직에서 발생 하는 모든 장비는 살 균 되어야 합니다.
	<ol><li>121에서 60 분 동안 압력가 마로 소독 하 여 해 장비를 소독 ° c.</li>
		<li>개인 보호 장비 (PPE) 사용: 연구실 코트/가운/스크럽, 장갑, 그리고 얼굴 방패 또는 고글 마스크.</li>
		<li>물 목욕과 37로 설정에 ° c.</li>
		<li>따뜻한 두 50 mL 원뿔 튜브, 완전 한 미디어의 각 포함 25 mL (Iscove &#39; s 수정 Dulbecco &#39; s 매체 보충 10 %FBS 1% 페니실린/스, 표 3) 37 ° C 물 욕조에.</li>
		<li>정보 환자 동의 제왕 절 개에 의해 배달 직후 태 반 얻기.</li>
		<li>될 태 반에 익숙해져야 합니다. 탯 태아 측 (chorionic 접시)에 삽입 되 고 혈관은 탯 삽입 사이트에서 밖으로 발산 하는 보실 수 있습니다. 반대 측 어머니 쪽, 또는 기저 판입니다. 그것은 decidua cotyledons 라는 배 나무를 포함 하는 구조 포함.</li>
	</ol></li> <li>Villous 조직 샘플링 참고: Villous 조직을 최대한 빨리 배달, 가급적 30 분 또는 그 이하의 다음 태에서 샘플링 해야 합니다.
	<ol><li>Chorionic 플레이트 2-3 풀-두께 섹션 (약 2.5 c m x 2.5 c m 크기에서) 소비 세 위쪽으로 직면 하 고 무작위로, 사용 하 여 집게와가 위 ( 그림 1A)에 태 반의의 주변에서 2-3 cm. 
		참고: 방지 비정상적인 (즉 백색 석 회화) 나타나는 태 부.</li>
		<li>Chorionic, 기저 접시 및 어떤 큰 혈관 떨어져 트림.</li>
		<li>따뜻한 완벽 한 미디어에서 결과 villous 조직 ( 그림 1B, 총 약 80-120 g)를 배치 하 고 샘플링의 30 분 이내 trophoblast 격리 시작. 
		참고: 일부 다운스트림 분석 실험 및 응용 프로그램은 영향을 배달, 샘플링, trophoblast 격리 사이 대기 기간. 으로 가능 하 고 격리 사이 일관 된이 짧은 기간을 유지 하는 것이 좋습니다.</li>
		<li>단계-1.2.1, 1.2.2에에서 설명 된 기술을 사용 하 여 샘플 5 무작위 1 cm × 1 cm 섹션 villous 조직 전체에서 태 반 (를 포함 하 여 센터).</li>
		<li>컷으로 4-5 더 작은 조각 (약 30 mg 각), 각 1 cm × 1 cm villous 조직 샘플 2 mL microcentrifuge 튜브에 놓고 플래시 액체 N 2에 고정 합니다. 스토어 나중 분석에 사용 하기 위해-80 ° C에.</li>
	</ol></li></ol> 2. Trophoblasts Villous 조직에서의 격리 <ol><li>준비 참고: 살 균 장비를 사용 하 고 층 류 두건에 있는 셀을 포함 하는 절차를 수행.
	<li>해 동 <ol>4 냉동된 밀도 기울기 (표 1, 표 필수 소모품, 시 약, 장비, 보충 자료를 참조) 4 ° C 밤 태 도착 하기 전에에서. 
		참고: 또는, 밀도 기울기 만들어질 수 있다 고립의 날.</li>
		<li>차례 원심 분리기 및 20에 ° c. 
		참고: 모든 원심 분리 단계가 최대 가속과 감속에서 달리 지정 하지 않는 한.</li>
		<li>HEPES 버퍼링 소금물 (HBSS) Ca + 2와 Mg + 2 (표 3) 보완 x 준비 1.</li>
		<li>따뜻한 trypsin 37 ° c.</li>
		<li>약 2720 kilounits/mL에서 살 균을 희석 DNase 보충 HBSS.</li>
		<li>갓 태어난 송아지 혈 청 (NCS) 37 ° c의 따뜻한 50 mL</li>
		<li>37 완전 한 미디어 따뜻한 ° c.</li>
		<li>따뜻한 어 미디어 (90 %FBS, 10 %DMSO, 표 3) 37 ° c. 
		주의: DMSO 독성과 장갑으로 처리 되어야 합니다.</li>
		<li>준비 소화 버퍼 (표 2와 3)의 308 mL를 혼합 하 여 보충 HBSS, Trypsin의 50 mL (3751.7 BAEE 단위/mL), 및 DNase의 0.5 mL (379.4 kilounits/mL) 무 균 병에서. 
		참고: villous 조직에서 세포를 분리 하는 데 필요한 대략적인 시간입니다 7 h.</li>
	</ol></li> <li>Villous 조직 처리 <ol><li>린스 50 mL 원뿔 튜브에서 villous 직물의 각 조각을 가득 실내 온도 인산 염 버퍼 식 염 수 (PBS). 반복 하 고 과잉 혈액 제거 될 때까지 필요한 만큼 PBS를 교체 (PBS 린스 됩니다 빛 빨간색 또는 분홍색 조직을 철저 하 게 씻어 서 때).</li>
		<li>Villous 조직 멸 균 페 트리 접시에 놓고 부드럽게 된다고 하 여 가능한 많은 혈관에서 현미경 슬라이드를 사용 하 여 혈관에서 부드러운 villous 조직 제거.</li>
		<li>정밀 하 게가 위를 사용 하 여 결과 villous 조직 말하다.</li>
	</ol></li> <li>Villous 조직 소화와 원유 절연 Trophoblasts <ol><li>trypsin의 구체적인 활동에 따라 계산 된 볼륨에 따라 소화 솔루션 불 임 병에 다진된 villous 조직 전송 그리고 DNase (165 mL, 표 2).</li>
		<li>후 35 분 70 분당 회전 (rpm)에서 떨고와 37 ° C 물 욕조에 외피의 기울기의 측면에 소화 병 고 소화 되지 않은 조각의 조직 병의 하단에 정착. 신중 하 게 정착된 조직 피하 혈 청 학적인 피 펫과 상쾌한 세우.</li>
		<li>분배는 상쾌한 50 mL 원뿔 관 사이 100 µ m 셀 스 트레이너를 통해. 
		참고: 시간을 절약 하는 것이 좋습니다 두 번째를 시작 하는 나머지 소화 솔루션 (110 mL, 표 2)를 추가 하 여 소화 정착 조직 및 2.3.2 단계에서 설명한 대로 부 화를 다시 시작.</li>
		<li>부드럽게 천천히 튜브의 아래쪽에는 혈 청 학적인 피 펫에서 분배 하 여 긴장된 상쾌한 아래 NCS의 3-5 mL를 계층. (Trophoblasts 포함) 긴장된 상쾌한 NCS 사이 초승달 표시 ( 그림 2A) 되어야 합니다.</li>
		<li>20 ° c.에서 15 분 1250 x g에서 NCS에는 supernatants 원심 결과 펠 릿 trophoblast 셀 ( 그림 2B)를 포함 하는 흰색 레이어 뒤 가장 낮은 계층에서 붉은 혈액 세포를 포함 합니다.</li>
		<li>단계 2.3.2-각 (110 mL 및 추가 83.5 m, 각각, 조직, 표 2의 병에 소화 솔루션의) 두 번째 및 세 번째 소화의 2.3.5 반복.</li>
		<li>모든 supernatants centrifuged 되었습니다, 일단 따뜻한 완벽 한 미디어의 5 mL에 각 펠 릿을 resuspend 하 고 다음 정지를 함께 풀.</li>
		<li>사이 두 50 mL 원뿔 튜브와 20 시 15 분 1250 x g에서 원심 분리기 세포 현 탁 액을 분할 ° c.</li>
		<li>부드럽게는 상쾌한을 제거 하 고 따뜻한 성의 6 mL에 각 셀 펠 릿 resuspend죽어 야 지 미디어.</li>
	</ol></li> <li>밀도 원심 <ol><li>천천히 그리고 신중 하 게 전송 피펫으로와 밀도 그라디언트 상단 세포 현 탁 액을 레이어 링 하 여 4 개의 밀도 기울기 (각 3 mL) 사이 세포 현 탁 액을 분할.</li>
		<li>최소 가속 및 감속 20 ° C에서 20 분 1250 x g에 밀도 기울기 원심. 이 구별 밴드 sedimented 셀 (표 4)을 생산 한다.</li>
		<li>Trophoblast 셀 (35-50 %DGM) 사이 포함 하는 불투명 밴드 (표 4)에 도달할 때까지 천천히 그리고 신중 하 게 밀도 그라데이션 미디어 (DGM)의 상위 레이어를 제거.</li>
		<li>Trophoblast 밴드 두 50 mL 원뿔 튜브로 전송 하 고 따뜻한 완벽 한 미디어 입력.</li>
		<li>부드럽게 혼합 하 고 20 시 15 분 1250 x g에서 원심 튜브 3-6 회 반전 ° c.</li>
		<li>는 상쾌한을 제거 하 고 따뜻한 완벽 한 미디어의 5 mL에 각 셀 펠 릿 resuspend. 셀 정지를 결합 하 고 가능한 셀 hemocytometer 고 Trypan 블루를 사용 하 여 (또는 선호 셀 계산 방법).</li>
	</ol></li> <li>는 Hemocytometer 계산 셀 <ol><li>serological 피펫으로와 아래로 pipetting 또는 부드럽게 반전 튜브 여러 번 세포 현 탁 액을 혼합.</li>
		<li>별도 튜브에 세포 현 탁 액 및 Trypan 블루 (즉 20 µ L 각)의 동등한 부분을 결합 하 고 부드럽게 혼합.</li>
		<li>실 온에서 1-2 분 동안 품.</li>
		<li>부드럽게 15-20 µ L 셀 Trypan의 분배는 coverslip와는 hemocytometer 혼합물을 블루와 모 세관 작용에 의해 그리드에 걸쳐 확산 셀 수.</li>
		<li>계산 집계 카운터와 4 개의 4 x 4 사분면의 각 가능한 셀 (죽은 세포 물 들일 것 이다 깊은 파랑). 셀이 한 번 이상 계산 되지 않습니다 보장 하기 위해 계산의 시스템 사용 (즉, 계산 하지 않음 아래쪽 또는 왼쪽된 경계 셀). 
		참고: 각 4 x 4 사분면은 50-150 셀 사이의 포함 되어야 합니다. 너무 적은 또는 너무 많은 세포 이상 또는 휴대폰 번호의 과소에 발생할 수 있습니다.</li>
		<li>10 곱하면 총 셀 4 x 4 사분면의 각각에서 계산 하는 평균 4, mL 당 셀의 수를 계산 하려면 희석 비율 (세포 현 탁 액을 Trypan 파랑)을 곱하면.</li>
		<li>총 양의 세포 현 탁 액 총 셀 수율을 계산 하 여 mL 당 세포의 수를 곱하면. 
		참고: 약 100 백만 셀 villous 조직의 80-120 g로 시작 하는 격리에서 예상 된다.</li>
	</ol></li> <li>도금 셀 <ol><li>3 백만 셀/잘 (3.3 c m 2 당 10 5 셀 x)는 6-잘 접시 (잘 당 서 스 펜 션의 2 개 mL) 접시 부드럽게 앞뒤로 바위 하 고 균일 하 게 배포 셀 측면에 사이드. 
		참고: Trophoblasts 제대로 준수를 취급 하는 조직 문화 접시 필요 합니다. 세포의 단층 syncytialization를 홍보 하는 데 필요한.</li>
		<li>떠나 약 30 분을 균등 하 게 배포, 정착, 인큐베이터에 배치 하기 전에 우물의 바닥에 고착 하기 시작 셀 수 있도록 층 류 두건에 도금된 셀.</li>
		<li>문화 셀 (와 매일 미디어 변화) 5% CO 2와 95%의 습도와 37 ° C 배양 기에서 최대 72 h. 
		참고: trophoblasts 문화의 모든 24 h x 10-20에 현미경으로 검사 합니다. Trophoblasts 증식 하지 않습니다 하 고 passaged 수 없습니다. 문화의 72 h 동안 라운드 개별 trophoblasts syncytium ( 그림 3A , B)를 형성 하기 위하여 융합.</li>
	</ol></li> <li>동결 세포 <ol><li>에서 1250 x g 20에서 10 분 동안 원심 분리 하 여 사용 하지 않는 셀을 작은 ° c.</li>
		<li>펠 릿에서 가능한 많은 미디어를 발음.</li>
		<li>미디어 (표 3)에 펠 릿 resuspend.</li>
		<li>동결 냉동 컨테이너 100% 소 프로 파 놀으로 가득-80 ° C에서 aliquots. 전송 냉동된 aliquots 액체 N 2 장기 저장에 대 한 다음 날. 
		참고: 세포는 동결 후에 경작 수.</li>
	</ol></li> <li>녹고 셀 <ol><li>냉동된 세포의 약 수를 제거 하 고 소용돌이 동안 37 ° C 물 욕조에 녹여. 바로 전에 완전히 액체에 해 동에 약 수 물 목욕에서 제거.</li>
		<li>해 동된 셀 15 ml 원뿔 튜브에 즉시 전송. 간헐적으로 혼합과 완전 한 미디어의 10 mL를 추가 시작, 처음에 둔화.</li>
		<li>혼합 튜브 여러 번 반전.</li>
		<li>20 ° c.에서 10 분 동안 200 x g에서 원심 분리기</li>
		<li>는 상쾌한 발음 하 고 따뜻한 완벽 한 미디어의 2-5 mL에 펠 릿 resuspend.</li>
		<li>셀 및 앞에서 설명한 접시 계산.</li>
	</ol></li></ol> 3. 치료와 TNFα, 세포 Lysates의 컬렉션 서 부 럽 기본 Trophoblasts <ol><li>준비 <ol><li>37 완전 한 미디어 따뜻한 ° c.</li>
		<li>사용에 대 한 준비까지 완전 한 미디어에-20 ° C에 게 TNFα의 10 µ g/mL 재고 확인.</li>
		<li>완전 한 미디어 셀 치료를 준비 하는 경우에 TNFα의 작업 사진 1 µ g/mL 확인 합니다. 시리얼 TNFα 작업 사진 10 4 pg/mL, 10 3 pg/mL, 500 pg/mL, 250 pg/mL, 그리고 완전 한 미디어에 125 pg/mL로 희석. 
		참고: 10 4 pg/mL의 TNFα 농도 적당히 세포 독성. 테스트 TNFα 농도의 조정 원하는 다운스트림 응용 프로그램의 특성에 따라 달라 집니다.</li>
	</ol></li> <li>치료 셀 TNFα <ol><li>문화의 24 시간 후 배양 세포에서 발음 및 TNFα의 2 개 mL 바꿀 보충 6 잘 플레이트 (치료 및 차량 당 적어도 2 개의 우물에 잘 당 미디어 제어).</li>
		<li>후 24 h 문화 (48 h), TNFα-노출의 완전 한 미디어 TNFα 보충 매체 바꿉니다.</li>
	</ol></li> <li>수확 셀과 총 단백질 <ol><li>문화 (TNFα의 제거 과거 h 24)의 72 h 후 미디어 발음, 실내 온도, PBS로 세포를 부드럽게 씻어 하 고 얼음 감기 Radioimmunoprecipitation 분석 결과의 80 µ L을 추가 갓 들어 버퍼 (RIPA) 직접 각 잘 프로 테아 제와 인산 가수분해 효소 억제제 (표 3)을 추가.</li>
		<li>셀 스 크레이 퍼와 접시에서 셀을 제거합니다. 치료 그룹 내에서 우물을 풀링 1.5 mL microcentrifuge 튜브 셀 전송.</li>
		<li>Lyse 세포 vortexing에 의해 높은 튜브 15의 적어도 3 개의 간격에 대 한 s.</li>
		<li>셀 락을 15 분으로 4 ° C에서 품 어 
		참고: 또는, 후 단계 3.3.3., 셀 수 있는 알을 품을 간헐적으로 동요와 15 분 동안 얼음에 튜브, vortexing, 또는 최대 pipetting 고 할 터치 하 여wn.</li>
		<li>반복 단계 3.3.3.</li>
		<li>작은 세포질 파편을 4 ° C에서 5 분 동안 10000 x g에서 튜브 원심.</li>
		<li>이전 상쾌한 (포함 세포 단백질)는 새로운 1.5 mL microcentrifuge 튜브 스토어-80 ° c. 
		참고: 프로토콜 여기 중지 고 나중에 다시 시작 될 수 있습니다. 그것은 세포질 단백질 샘플을 여러 freeze-thaw 주기를 피하기 위해 몇 가지 aliquots을 확인 하는 것이 좋습니다.</li>
		<li>Bicinchoninic 산 분석 결과 등 원하는 방법으로 총 단백질 농도 결정 (BCA, 필수 용품, 시 약, 장비, 보조 자료의 표 참조).</li>
	</ol></li> <li>SDS 페이지와 루비콘 또는 단백질의 관심에 대 한 서 부 럽 참고: 따라 서 부 제조 업체에 따라 프로토콜 blotting &#39; 선호 실험실 시스템을 사용 하 여 s 지시.
	<ol><li>부하 12% 아크릴에 잘 당 샘플 버퍼 (표 3)에서 총 단백질의 20-40 µ g 사이 젤. 버퍼 (표 3)을 실행에 단백질 SDS-PAGE로 분리.</li>
		<li>젖은 전송 제조 업체에 따르면 polyvinylidene difluoride (PVDF) 막에 젤에서 단백질 &#39; s 명령을 전송 버퍼 (표 3).</li>
		<li>0.1 %Tris-Buffered 염 분에 5% 우유 가루에 막 품 어 락으로 실내 온도에 적어도 1 시간에 대 한 트윈 20 (TBST, 표 3).</li>
		<li>루비콘 1 차 항 체에 멤브레인을 품 어 (필수 소모품, 시 약, 장비, 보조 자료의 표 참조) 락 4 ° C에서 하룻밤 TBST에 1% 우유 가루에 1: 500에.</li>
		<li>TBS에서 락으로 실 온에서 막 3 x 5 분 TBST 및 1 x 5 분을 부드럽게 씻어.</li>
		<li>1: 2000-1: 5000 이차 항 체에에서 멤브레인을 품 어 (HRP 연결 또는 기본 표시 켤레 필수 소모품, 시 약, 장비, 보조 자료의 표 참조) 5 %TBST 우유 분말은 실내 온도에 적어도 1 시간에 대 한 락.</li>
		<li>3.4.5 단계에서 설명 하는 세척 절차를 반복 하 고 시각화 이미징 시스템에 적절 한 시각화 (즉 chemiluminescent) 기판으로 오 점.</li>
		<li>3.4.5 단계에서 설명 하는 세척 절차를 반복 하 고 제조 업체에 따라 기본 로드 컨트롤이 나 β-걸 막 프로브 &#39; s 지침.</li>
		<li>선호 이미지 분석 소프트웨어, 분석 식 흡 광도 (밴드 농도)의 수동 정량화 하 여 루비콘의 배경 흡 광도, 및 해당 로드를 정규화의 빼기 밴드 농도 제어. 단백질 수준에서 통계적으로 중요 한 변화에 대 한 테스트를 적절 한 통계 분석 수행.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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<li>Zi, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rubicon+deficiency+enhances+cardiac+autophagy+and+protects+mice+from+lipopolysaccharide-induced+lethality+and+reduction+in+stroke+volume%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cardiovasc.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Rubicon deficiency enhances cardiac autophagy and protects mice from lipopolysaccharide-induced lethality and reduction in stroke volume.</a> J. Cardiovasc. Pharmacol. 65 (3), 252-261 (2015).</li>
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저자는 공개 없다.

태 반, 태아의 성장 조절에 대 한 책임6비만 환경 손상 된 기능을 전시 한다. Trophoblasts의 높은 신진 대사 요구에도 불구 하 고 산 모 비만과 반응과 미토 콘 드 리아 기능 장애 호흡6,19전시. Placental 대사에서 변화는 합병증과 비만 임신3,,67에서 관찰 된 불리 한 태아 결과의 발생률이 증가에 기여할 수 있습니다. Autophagy는 또한 산 모 비만 반응과에 손상 됩니다. 남성 태아와 비만 임신에서 반응과 기능 장애 autophagic 플럭스 autophagosomes13의 축적에 의해 입증으로 표시. 최적의 autophagic 유량을 유지 하는...

비만 과잉 지방이 많은 직물 및 양분 가용성에서 형태소 분석 만성 낮은 학년 염증이 특징 염증 성 상태입니다. 비만, proinflammatory cytokines는 상승 된 대사 조직 뿐만 아니라 체계적으로 순환. 증거의 강력한 시체는 TNFα 크게 상승 비만의 설정에서 의미와 함께 인슐린 저항성 및 대사 부전1에 보이고 있다. TNFα의 활성화는 또한 암 등 면역, 그것에 게 매력적인 치료 대상2를 만드는 조건에서 질병 병 인에 기여.
염증 비만에서 임신, 또한 proinflammatory 상태3,4에 의해 복합입니다. 그것은 이전 보였다 태 반 TNFα 콘텐츠 여성 태아와 임신에서 모성 adiposity와 증가. 또한, TNFα 처리 TNFα는 성적으로 동종이 형 방식으로5placental 신진 대사 조절에 관여 하는 것을 건의 하는 여성만 아니라 남성 trophoblast 셀에 미토 콘 드리 아 호흡을 억제. 산 모 비만 임신 동안에, 사 산를 포함 하 여 남성 태아는 가장 취약3,6,7,8 되와 관련 된 다양 한 합병증의 발생률이 증가 . 때문에 산 모 신생아 인터페이스에서의 주요 역할, 염증 신호에 대 한 응답 비만 자궁내 환경에 태 반의 기능 용량에 변화 중재 비만 임신의 결과에 중요 한 역할을 재생할 수 있습니다.
Cytotrophoblasts 및 syncytiotrophoblasts는 태 반의의 villous 조직에 내 분 비 신호 및 어머니와 개발 태아9영양소와 산소 교환에 대 한 중요 하다. 태아 건강 및 개발 villous cytotrophoblasts (trophoblasts 라 함)의 기능 용량에 중단 위태롭게 될 수 있습니다. 이 프로토콜 멀리 trophoblasts 기본 세포 배양에 대 한 격리에 대 한 최적화 절차를 함께 chorionic 및 기저 판 해 부하 여 villous 조직의 인간의 용어 태에서 샘플링 하는 방법을 설명 합니다. 이 프로토콜은 기질 trophoblasts10, 을 차동 밀도 원심 분리에 의해 뒤에서 셀 출시 villous 조직의 효소 소화와 관련 된 설립된 방법론에서 파생 된 11,12. 이 프로토콜 세부 사항 산 모 비만과 관련 된 방법을 반응과 마른 임신에서에서 기본 trophoblasts 문화 미디어 TNFα 선 동적인 환경에의 한 구성 요소를 시뮬레이션 하기 위해 보충으로 취급 됩니다. 마지막으로, TNFα 처리 trophoblasts 유전자 발현에서 변화를 감지 하 더럽혀 서 뒤에서 총 세포 lysates 수확에 대 한 간단한 절차 설명 되어 있습니다.
이 모델에는 전체에서 환경에 utero obesogenic 정리 하지 않습니다, 하는 동안 trophoblasts' 응답으로 TNFα 중재 염증의 개별 기여에 밖으로 구문 분석할 수 있도록 제어 시스템 제공 임산부 비만입니다. 이 모델 발견 하거나 직접 TNFα trophoblasts에서 신호에 의해 통제 하는 분자 목표를 확인 하는 모두 기회를 월급으로 유전자 식 패턴의 변화에서 관찰 vivo에서 모자와 반응과에서 테스트 한 비만은 TNFα 중재 염증의 결과 수 있습니다.
여기에 설명 된 방법은 인간의 trophoblasts autophagy의 규제에 염증 TNFα 중재의 효과 테스트 하려면 구현 되었습니다. 남성 태아 전시와 함께 비만 임신에서 trophoblasts autophagic 회전율, 또는 autophagosome 성숙13중단. 리소좀을 늦은 endosomes 지역화, 최근으로 설명 하고있다 "브레이크" autophagic 매출 과정에서 그것은으로 작동 하기 때문에 (실행 도메인 단백질 상호 작용 하는 Beclin1 및 시스테인-부자 포함), 루비콘 이라고 불리는 단백질 autophagosome 성숙14,15의 레 귤 레이 터. 사실, 루비콘 autophagy, 그것에 게 귀중 한 치료 목표를 억제 하는 단백질의 드문 예입니다. 아주 작은 정보는 microbials16,17 cardiomyocyte 보호18에 타고 난 면역 반응에 있는 그것의 역할을 제외 하면 루비콘의 병 태 생리 의미에 대 한 사용할 수 있습니다. 여기 설명 된 프로토콜을 사용 하 여, 루비콘 upregulated 여성 기본 trophoblasts 250 pg/mL까지 TNFα의 농도 증가 함께 치료에 대 한 응답에서에 발견 된다. 루비콘의 규제 수 역할 어떻게 여성 태아 요금에 임신에 남성 보다 더 나은 산 모 비만. 에 중요 한 통로의 규칙에 비만 자궁내 환경에 미치는 영향을 연구 플랫폼을 제공 업과 인간의 trophoblasts 외 인 TNFα 노출 하 여 비보 전 산 모 비만과 관련 된 염증 trophoblasts 및 확장, 태 반 기능.

<table><tbody><tr><td>10X HBSS</td><td>Gibco</td><td>14185-052</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2(무수)</td><td>시그마-알드리치</td><td>C1016-100G</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4 (무수물)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M7506-500G</td><td></td></tr><tr><td>Hepes</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP310-500</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin</td><td>Gibco</td><td>15090-046</td><td></td></tr><tr><td>DNAse</td><td>Worthington Biochemical Corp.</td><td></td><td></td>LS002139</tr><tr><td>프로테아제/포스파타제 억제제</td>: <td>Thermofisher Scientific</td><td>88668</td><td></td></tr>, <tr><td>Tris HCl</td>, <td>Invitrogen</td><td>15506-017</td><td></td></tr>, <tr><td>EDTA</td><td>Invitrogen</td>: <td>15576-028</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td>, <td>Sigma-Aldrich,</td><td>S7653-1KG</td><td></td></tr><tr><td>, SDS,</td><td>Fisher Scientific</td>, <td>BP166-600</td><td></td></tr>, <tr><td>소듐 데옥시콜레이트.</td><td>피셔 사이언티픽</td><td>AAJ6228822</td><td></td></tr><tr><td>트리톤 X-100</td><td>시그마-알드리치</td><td>X100-500ML</td><td></td></tr><tr><td>이스코브 s 수정된 둘베코' s Medium (IMDM)</td><td>Gibco</td><td>12440-046</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td><td>Corning</td><td>35-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>Neonatal Calf Serum (NCS)</td><td>Gibco</td><td>26010-074</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin/Streptomycin (Pen/Strep)</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>10% Formalin</td><td>Fisher Scientific</td><td>23-427-098</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D2650-100ML</td><td></td></tr><tr><td>TNF&알파;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>SRP3177-50UG</td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수(PBS)</td><td>Gibco</td><td>70013-032</td><td></td></tr><tr><td>K2EDTA vacutainer 혈액 채취 튜브</td><td>BD</td><td>366450</td><td></td></tr><tr><td>Percoll (Density Gradient Media, DGM)</td><td>GE Healthcare</td><td>17-0891-01</td><td></td></tr><tr><td>6웰 플레이트</td><td>Corning</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>Cell 스트레이너</td><td>Fisher Scientific</td><td>22363549</td><td></td></tr><tr><td>Eppendorf Safe-Lock Tubes 2.0 mL, 천연</td><td>Fisher Scientific</td><td>22363352</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue</td><td>Corning</td><td>25-900-Cl</td><td></td></tr><tr><td>Bio-Rad Mini-PROTEAN Tetra System</td><td>Bio-Rad</td><td>1658001FC</td><td></td></tr><tr><td>Bio-Rad Mini Trans-Blot Cell</td><td>Bio-Rad</td><td>1658033</td><td></td></tr><tr><td>TGX FastCast Acrylamide Kit, 12% </td><td>Bio-Rad</td><td>1610175</td><td></td></tr><tr><td>Mini-Protean 3 멀티 캐스팅 챔버</td><td>Bio-Rad</td><td>1654112</td><td></td></tr><tr><td>4X Laemmli 샘플 버퍼</td><td>Bio-Rad</td><td>1610747</td><td></td></tr><tr><td>2-Mercaptoethanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M3148-100ML</td><td></td></tr><tr><td>글리신</td><td>Bio-Rad</td><td>1610718</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7949-500ML</td><td></td></tr><tr><td>인스턴트 무지방 분유</td><td>카네이션</td><td></td><td></td></tr><tr><td>루비콘 (D9F7) 토끼 mAb</td><td>세포 신호 기술</td><td>8465S</td><td></td></tr><tr><td>단클론 항 -&beta; -마우스</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2228-100UL</td><td></td>에서 생성 된 Actin 항체</tr><tr><td>IgG, HRP 결합 항체</td><td>세포 신호 기술</td><td>7074S</td><td></td></tr><tr><td>안티 마우스 IgG, HRP 연계 항체</td><td>세포 신호 기술</td><td>7076S</td><td></td></tr><tr><td>SuperSignal West Pico PLUS 화학발광 기판</td><td>Thermo Scientific</td><td>34578</td><td></td></tr></tbody></table>

태에서 autophagy의 규제에 모성 비만과 관련 된 염증의 효과 연구 하는 기본 인간 trophoblast 모델

A Primary Human Trophoblast Model to Study the Effect of Inflammation Associated with Maternal Obesity on Regulation of Autophagy in the Placenta

산 모 비만 가능성이 autophagy의 dysregulation, 부분에서, 표시 될 수 있습니다 손상 된 태 반 기능에 의해 중재 불리 한 perinatal 결과의 위험 증가와 연결 됩니다. 비만 임신에서 반응과 autophagy 레 귤 레이 터의 식에서 벗어난 변화는 비만 및 임신과 관련 된 염증 과정에 의해 통제 될 수 있습니다. 여기서 설명 하는 것은 villous 조직의 샘플링 및 기본 세포 배양에 대 한 용어는 인간의 태 반 으로부터 villous cytotrophoblasts의 격리에 대 한 프로토콜이입니다. 이것은 종양 괴 사 인자 알파 (TNFα), proinflammatory cytokine은 고가의 비만 마른 임신에서 기본 trophoblasts 치료 하 여 비만 자궁내 환경에 선 동적인 환경 시뮬레이션을 위한 방법으로 뒤 임신입니다. 여기에 설명 된 프로토콜의 구현을 통해 외 인에 노출 있다 TNFα 루비콘, 여성 태아와 마른 임신에서 trophoblasts에서 autophagy의 부정적인 레 귤 레이 터의 표현을 조절. 다양 한 비만 자궁내 환경에 생물학적 요인 trophoblasts 중요 한 통로 변조 가능성이 유지,이 비보 전 시스템은 식 패턴 vivo에서 관찰 된 경우 결정 하는 데 특히 유용 모성 비만과 인간의 반응과에서 TNFα 신호의 직접적인 결과입니다. 궁극적으로,이 방법은 월급 autophagy 및 다른 중요 한 세포 경로에 영향을 미칠 가능성이 있는 trophoblasts 모성 비만과 관련 된 염증의 규제 및 분자 의미 밖으로 구문 분석 하는 기회 태 반 기능입니다.

엎드려 서에서 인간의 반응과 용어 (임신 전 체 질량 지 (수 BMI) &lt; 25) 단순한 임신 여성 자손을 들고 어머니 수집 하 고 제왕 절 개 (노동) 배달의 15 분 이내 샘플링 했다. 반응과 석 회화 및 일반적인 개발의 부재에 대 한 조사 했다: 모양, 15-25 cm 직경, 그리고 탯 줄의 중간에 삽입 사이에서 라운드 탯 300-600 g와 막 제거 무게는 태 반입니다. Villous 조직 기초 및 chorionic 판 (그림 1), 태 반 전체에서 2-3 샘플에서 저조한 villous 조직의 기본 trophoblast 격리에 대 한 자료를 시작으로 약 100 g에서 해 부 했다. 20 분 이내 villous 조직 샘플링, 설명 된 대로 기본 trophoblasts 분리 절차 시작 되었다 여기, 0.8-사이 저조한 1 x 108 가능한 셀. 세포는 3 x 106 (3...

여기에 제시 된 인간 placental villous 조직의 기본 세포 배양에 대 한 cytotrophoblasts의 격리 다음 샘플링에 대 한 프로토콜이입니다. TNFα와 trophoblasts의 치료 비만 자궁내 환경에 염증이 분자 대상 산 모 비만과 염증 반응과에 의해 규제의 발견을 촉진 한다.

태에서 Autophagy의 규제에 모성 비만과 관련 된 염증의 효과 연구 하는 기본 인간 Trophoblast 모델

Maternal obesity is associated with an increased risk of adverse perinatal outcomes that are likely mediated by compromised placental function that can be ...

이 영양막아세포 배양 모델의 전반적인 목표는 비만 관련 염증이 영양막아세포의 중요 경로 조절에 미치는 영향을 측정하는 것입니다. 이 제어 시스템의 주요 장점은 산모 비만의 맥락에서 TNF 알파 매개 염증과 태반의 유전자 조절 사이의 관계를 확립한다는 것입니다. 이 실험 시스템의 가장 큰 장점은 산모 비만의 맥락에서 TNF-알파 매개 염증과 태반의 유전자 조절 사이의 관계를 확립한다는 것입니다.이 절차를 시연하는 사람은 제 연구실의 기술자인 Bailey Simon과 Matt Bucher입니다. 융모 조직은 분만 후 가능한 한 빨리, 가급적이면 30분 이내에 태반에서 샘플을 채취해야 합니다. 융모막판이 위를 향하게 하여 집게와 가위를 사용하여 태반 주변에서 2-3cm 안쪽으로 2-3개의 전체 두께 부분을 무작위로 절제합니다.비정상적으로 보이는 태반 부위를 피한다. 융모막판과 기저판, 큰 혈관을 잘라냅니다. 생성된 융모 조직을 따뜻하고 완전한 배지에 놓습니다.융모 조직 샘플링 후 30분 이내에 영양막 분리를 시작합니다. 실온 PBS로 채워진 50ml 원뿔형 튜브에 융모 조직의 각 조각을 넣고 부드럽게 저어 조직에 여분의 혈액을 방출합니다. PBS의 디캔트를 선택하고 새 PBS로 교체하십시오.과도한 혈액이 대부분 제거될 때까지 PBS 헹굼을 반복합니다. PBS 헹굼은 조직이 완전히 헹궈질 때 연한 빨간색 또는 분홍색이 됩니다. 융모 조직을 멸균된 페트리 접시에 넣고 현미경 슬라이드를 사용하여 혈관에서 부드러운 융모 조직을 부드럽게 긁어내어 가능한 한 많은 혈관을 제거합니다.가위를 사용하여 생성된 융모 조직을 잘게 다집니다. 다진 융모 조직을 트립신과 DNase의 특정 활성에 따라 계산된 부피에 따라 소화액이 있는 멸균 병으로 옮깁니다. 소화 병을 섭씨 37도의 수조에서 70rpm으로 35분 동안 흔들어 배양합니다.35분 후 소화 병을 옆으로 기울이고 소화되지 않은 조직 조각이 병 바닥에 가라앉도록 합니다. 침전된 조직을 피하고 혈청학적 피펫으로 상등액을 조심스럽게 끌어냅니다. 100 미크론 세포 여과기를 통해 50 밀리리터 원뿔형 튜브 사이에 균등하게 상층액을 분배합니다.남아 있는 침전 조직에 소화 용액을 추가하고 섭씨 37도의 수조에서 병을 배양하여 두 번째 소화를 시작합니다. 튜브 바닥에 있는 혈청학적 피펫에서 천천히 분주하여 첫 번째 소화 시 변형된 상등액 아래에 3-5ml의 신생아 송아지 혈청(NCS)을 부드럽게 층을 이룹니다. 영양아세포(trophoblast)와 NCS를 포함하는 변형된 상등액 사이의 반월판이 보여야 합니다.NCS를 통해 상등액을 1, 250회 g, 20°C에서 15분 동안 원심분리한다. 생성된 펠릿에는 가장 낮은 층에 적혈구가 포함되고 영양막 세포가 포함된 흰색 층이 포함됩니다. 같은 방법으로 두 번째 및 세 번째 소화에서 상등액을 걸러냅니다.변형된 상층액과 원심분리기 아래에 NCS를 1, 250회 g, 섭씨 20도에서 15분 동안 층을 이룹니다. 모든 상층액을 원심분리하고 NCS와 상층액을 제거한 후 각 펠릿을 5ml의 따뜻하고 완전한 배지에 다시 현탁시킨 다음 현탁액을 풀링합니다. 두 개의 50 밀리리터 원뿔형 튜브와 원심 분리기 사이에 세포 현탁액을 균등하게 나누고 섭씨 20도에서 15 분 동안 1, 250 회 g으로 원심 분리기를 나눕니다.상층액을 부드럽게 제거하고 각 세포 펠릿을 6ml의 따뜻하고 완전한 배지에 다시 현탁시킵니다. 이 절차를 시작하려면 전달 피펫을 사용하여 세포 현탁액을 4개의 밀도 구배 간에 균등하게 나누고 밀도 구배 위에 세포 현탁액을 천천히 조심스럽게 겹쳐 놓습니다. 최소 가속 및 감속으로 섭씨 20도에서 20분 동안 1, 250배 g의 밀도 구배를 원심분리합니다.이것은 퇴적된 세포의 구별 가능한 띠를 생성해야 합니다. 영양막 세포를 포함하는 불투명 밴드에 도달할 때까지 밀도 구배 매체의 최상층을 천천히 조심스럽게 제거합니다. 영양막 밴드를 두 개의 50ml 원추형 튜브로 옮기고 따뜻하고 완전한 배지로 채웁니다.튜브를 3-6회 부드럽게 뒤집어 혼합하고 섭씨 20도에서 15분 동안 1, 250회 g으로 원심분리합니다. 상층액을 제거하고 각 세포 펠릿을 5ml의 따뜻하고 완전한 배지에 다시 현탁시킵니다. 세포 현탁액을 결합하고 혈구계와 trypan blue를 사용하여 생존 가능한 세포를 계수합니다.세포 계수 후 다음 단계는 세포를 플레이트하는 것입니다. 각 6개의 웰 플레이트에 웰당 300만 개의 세포를 플레이트로 만듭니다. 플레이트를 앞뒤로 그리고 좌우로 부드럽게 흔들어 세포를 고르게 분배합니다.도금된 세포를 층류 통풍구에 약 30분 동안 그대로 두어 세포가 고르게 분포하고 침전되어 웰 바닥에 부착되기 시작할 수 있도록 합니다. 30분 후, 이산화탄소 5%와 습도 95%의 섭씨 37도 인큐베이터에 플레이트를 넣습니다. 배양 24시간 후 현미경으로 영양막을 검사하여 부착과 적절한 영양막아세포 형태를 확인합니다.세포는 배양 24시간 후에 처리할 수 있습니다. 세포에서 배양 배지를 흡입하고 웰당 2ml의 TNF 알파 보충 배지로 교체합니다. 플레이트를 섭씨 37도의 인큐베이터에 다시 넣습니다.TNF 알파 노출 24시간 후, TNF 알파 보충 배지를 완전한 배지로 교체합니다. 24시간 더 배양합니다. TNF 알파 제거 후 24시간이 지나면 배지를 흡인하고 실온 PBS로 세포를 부드럽게 헹굽니다.갓 첨가된 프로테아제와 포스파타아제 억제제가 함유된 80마이크로리터의 얼음처럼 차가운 방사성 면역침전 분석 완충액을 각 웰에 직접 첨가합니다. 셀 스크레이퍼로 플레이트에서 셀을 제거합니다. 세포를 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브로 옮겨 치료 그룹 내에 웰을 모읍니다.15초씩 최소 3회 간격으로 튜브를 높은 온도로 소용돌이쳐 세포를 얼음찜질합니다. 섭씨 4도에서 15분 동안 흔들면서 세포를 배양합니다. 튜브를 다시 높은 곳에서 소용돌이치십시오.10, 000 시간 g에 분리기는 세포질 파편을 펠릿으로 만들기 위하여 4 섭씨 온도에 5 분 동안 이용한다. 상층액을 새로운 1.5ml 마이크로 원심분리기 튜브로 옮깁니다. 관심 단백질에 대한 Western blotting으로 분석할 때까지 세포 단백질 샘플을 섭씨 80도에서 보관하십시오.72시간의 배양 후, 1차 영양막아세포에서 빨간색으로 표시된 사이토케라틴 7의 면역세포화학적 분석을 통해 세포가 다핵 세포 덩어리의 존재로 입증된 세포융합화를 겪었음을 확인했습니다. 더욱이, 역시 빨간색으로 표시된 비멘틴(vimentin)에 대한 면역세포화학적 분석에서는 오염성 섬유아세포가 거의 발견되지 않았습니다. 핵 카운터 염색은 두 이미지 모두에서 파란색으로 표시됩니다.TNF 알파 처리는 밀리리터당 최대 250피코그램으로 루비콘 발현을 상향 조절했습니다. TNF 알파 농도가 밀리리터당 250피코그램 이상일 경우, 루비콘 발현 수준은 기준선으로 다시 감소했으며 심지어 그 이하로도 감소했습니다. 마찬가지로, 루비콘은 순수 대조군에 비해 여성 태아를 동반한 비만 임신에서 태반의 플래시 냉동 융모 조직 생검에서 유의하게 상향 조절됩니다.일단 숙달되면, 융모 조직에서 영양막아세포를 분리하는 것이 적절하게 수행된다면 6-7시간 내에 완료될 수 있습니다. 이 절차를 시도하는 동안 신중하고 효율적으로 작업할 수 있도록 재료와 시약을 미리 준비하는 것이 중요합니다. 이 절차에 따라 세포 생물 에너지학을 측정하는 것과 같은 다른 분석을 수행하여 비만 자궁 내 환경의 염증이 영양막의 대사 능력에 영향을 미치는가와 같은 추가 질문에 답할 수 있습니다.이 개발 방법은 태반 연구자가 영양막 기능에 대한 모계 환경의 영향을 확립할 수 있는 길을 열었습니다. 이 비디오를 시청하면 세포 배양 실험을 위해 융모 조직에서 영양막아세포를 분리하는 방법과 영양막아세포의 중요 경로 조절에 대한 TNF 알파 매개 염증의 영향을 결정하는 방법을 잘 이해할 수 있을 것입니다. 인체 조직, 배양된 세포, DMSO, 아크릴아마이드 및 환원 시약으로 작업하는 것은 매우 위험할 수 있으므로 이 절차를 수행하는 동안 항상 적절한 PPE 착용 및 무균 기술 사용과 같은 예방 조치를 취해야 한다는 것을 잊지 마십시오.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

이 프로토콜에서는, 우리는 Percoll 기울기를 사용하여 trophoblast 세포의 분리에 이어 임신 d10.5에 마우스에서 placentae의 절개를 설명합니다. 우리는 matrigel의 침공 분석에서 분리 된 세포의 사용을 보여줍니다.

기본 마우스 Trophoblast 셀 및 Trophoblast의 침략 분석의 절연

이 원고는 저산소증/재산소화 하에서 배양된 면역정제된 인간 융모 세포영양아세포 세포의 독특한 체외 모델을 제시합니다. 이 모델은 멜라토닌과 같은 유망한 치료법이 산화 스트레스 증가 및 태반 기능 변화와 관련된 임신 합병증에 대한 보호 효과를 연구하는 데 적합합니다.

인간의 기본 영양막 세포 멜라토닌에 대해 저산소증의 보호 효과를 연구하기 위해 세포 배양 모델 / 재산 소화에 의한 혼란

기본 인간의 태반 (융모) 및 탈락 기관 배양을 설정하는 간단한 방법을 설명한다. 융모와 탈락 기관 배양은 인간의 모체 - 태아 인터페이스에서 발병 기전을 연구하기위한 귀중한 도구입니다. 통성 세포 내 세균 리스테리아 균에 감염이 증명된다.

인간의 태반과 탈락 오르간 문화는 산모 - 태아 인터페이스에서 감염을 연구하는

이 프로토콜 수 있습니다 격리 하 고 특성화 연구원 조직 상주 다양 한 세포 특징 염증된 조직 변화 무질서의 다이어트 유발 모델에서 추출.

절연, 특성화 및 비만 관련 염증에 의해 영향을 받는 조직에서 세포의 정화

여기, 우리는 3 개의 생체 외 분석 실험을 사용 하 여 인간의 trophoblast 셀에 셀 운동 평가 위한 매우 액세스할 수 있는 프로토콜 제시: 스크래치 분석 결과, transwell 침략 분석 결과 및 세포 확산 분석 실험.

마이그레이션, 침공, 불멸 하 게 인간의 첫 번째 임신 Trophoblast 셀 라인의 확산을 평가를 생체 외 분석 실험에서

우리는 살아있는 유기체의 합병증 없이 모계 염증에 태아 노출을 시뮬레이션하기 위하여 chorioamnionitis의 모형을 개발했습니다 자손의 창자 발달에 FEMI의 효력을 검토합니다. 이것은 chorioamnionitis 다음 장 상해의 발달을 위한 기계론적인 원인의 연구를 허용합니다.

신생아 장 발달에 급성 chorioamnionitis의 효력을 연구하기 위하여 모성 염증에 태아 노출의 Murine 모형

여기에 제시된 것은 단백질과 마이크로 RNA 발현을 조절하기 위해 성숙한 아디포사이클로 작은 간섭 RNA(siRNA), 마이크로 RNA 모방(miRs), 또는 항마이크로RNA(anti-miR)와 같은 올리고뉴클레오티드를 전달하는 프로토콜이다.

아디포세포 기능에 대한 단백질 및 마이크로 RNA 변조의 영향을 연구하는 세포 배양 모델

다음은 일정한 흐름 조건에서 태반 외식을 배양하기 위한 프로토콜입니다. 이 접근법은 동적 생리학적 환경의 복제를 가능하게 하여 기존의 정적 융모 배양 시스템을 향상시킵니다.

Ex Vivo (체외 주행) 태반 이식 유동 배양 - 자궁의 동적 조건 모방

이 프로토콜은 인간 기저 배반의 소추모 및 융모막에서 1차 HLA-G+ 외 영양층(EVT)의 정제, 특성 분석 및 배양을 가능하게 합니다. 1차 EVT 배양은 96시간 동안 생존 가능성을 유지하여, 샘플이 일치한 모체 면역세포와의 공동 배양과 이들의 상호작용에 대한 유동 세포 및 분자 분석을 가능하게 합니다.

표현형 및 기능 분석을 위한 HLA-G+ 외 영양층 정제 인간 임기 태반 조직에서

체외 이식 모델을 사용하여, 저지방 쥐의 내장 백색 지방 조직의 앞부분 일부를 7일에서 10일간 배양하여, 고지방 식이 섭취 중 지방 조직 염증을 유도하고 연구할 수 있게 합니다.

고지방 식이와 유사한 지방 조직 염증을 위한 체외 마우스 모델

배우세요 인간 태반 융모 조직에서 세포영양막 세포를 분리하여 1차 배양하는 방법을. TNFα 처리를 통해 모성 비만 관련 염증이 영양막 세포 유전자 조절에 미치는 영향을 연구할 수 있습니다.

태에서 Autophagy의 규제에 모성 비만과 관련 된 염증의 효과 연구 하는 기본 인간 Trophoblast 모델

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