Name: 신생아 마우스에서 내가 유전자 납품을 위한 후부 반원의 운하 접근 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 52 s
Description: 배우세요 신생아 마우스의 후부 반원관 접근법을 이용한 내이 유전자 납품 기술입니다. 이 방법은 신뢰할 수 있고 학습하기 쉬워 전체 내이에 유전자 치료를 효율적으로 전달할 수 있습니다.

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이 작품은 고급 이미징 코어는 NIDCD 사단의 교내 연구 /NIH (DC000082-02 W.W.C.,) 뿐만 아니라 DC000081에서에서 기금에 의해 지원 되었다. 우리는 동물에 대 한 배려를 위한 NIDCD 동물 시설 직원에 대 한 감사입니다.

모든 동물 절차 동물 관리 및 사용 위원회 귀 먹음과 다른 커뮤니케이션 무질서 (NIDCD ASP1378-15)에 국가 학회에 의해 승인 되었다.
1. 절차 설치 및 준비
<ol><li>모든 악기는 실험의 시작 부분에서 에틸렌 산화에 의해 소독. 동물, 사이 악기 비드 살 균을 사용 하 여 청소.</li>
	<li>마이크로-인젝터에 micropipette에 바이러스 성 유전자 치료를 포함 하는 솔루션을 로드 합니다. 이 연구에 사용 되는 바이러스 성 벡터는 AAV2/8-whirlin (1 x 10 밀리 리터, 당13 게놈 사본 자료의 표 참조). 참고: 일반적으로, 1.1 µ L 총 볼륨은 micropipette에 로드 됩니다.</li>
</ol>2입니다. 마 취
참고:이 연구에 사용 된 마우스 스트레인은 whirler 마우스. Homozygous 돌연변이 (Whrnwi/wi)와 heterozygous littermates (Whrn+ wi) 사용 되었다.
<ol><li>장소 (쓰레기 별도) 별도 새 장에 어머니.</li>
	<li>쥐를 따뜻하게 유지 하는 반복 열 패드 (37.5 ° C에서 집합)에 쓰레기 (P0-P5 새끼)를 포함 하는 홈 케이지를 놓습니다.</li>
	<li>라텍스 장갑의 손가락 부분을 잘라내어 그것에 강아지를 놓습니다.</li>
	<li>~ 2 분 동안 얼음 양동이에 라텍스 장갑 엄지에 강아지를 놓습니다.</li>
	<li>강아지와 팩의 표면 사이 4 "x4" 거 즈로 큰 광장 상업 플라스틱 고정 팩에 마 취 강아지를 놓습니다.</li>
	<li>짓 눌린 얼음, 중장비 라텍스 장갑을 강아지 주위 얼음 장갑 장소.</li>
	<li>강아지 (를 포함 하 여 회사 발가락 핀치) 다양 한 자극에 응답의 완전 한 부족에 의해 적절 하 게 취 경우 확인 합니다. 수술 (대략 5-10 분) 동안 얼음 팩에 강아지를 둡니다. 참고: 수술 하는 동안 더 이상 15 분 동안 얼음 팩에 새끼를 떠나는 것이 좋습니다.</li>
</ol>3. 수술 방법 (그림 1)
<ol><li>일단 동물 마 취는 요오드 지우기와 알코올 닦아 귀 뒤 피부를 청소.</li>
	<li>Postauricular 절 개 마이크로-가 위를 사용 하 여 뒤에 ~ 2 mm를 만들고 마이크로 위 sternocleidomastoid 근육을 나눕니다.</li>
	<li>안 면 신경와는 물집 식별 합니다. 물집 및 반투명 연골이 나이에 이며 그것은 거짓말 안 면 신경에 중간. Stapedial 동맥 유용한 랜드마크이 나이에 물집을 통해 볼 수 있습니다.</li>
	<li>머리 뒤로 안 면 신경에 따라 후부 반원의 운하 (PSCC)을 찾을. 근육 섬유와 부드러운 조직 overlying 후부 반원의 운하 마이크로-가 위를 사용 하 여 제거 합니다. 참고:에서 PSCC는이 나이에 연골.</li>
	<li>PSCC 유리 제 micropipette (~ 10 μ m 직경에서)를 사용 하 여 마이크로-인젝터에 침투.</li>
	<li>내가 바이러스 성 유전자 치료 주사. 참고: 일반적으로, 49의 20 주사의 총 유전자 치료의 nL는 배달 후부 반원의 운하 ~ 40에 s (전체 볼륨 ~ 1 µ L). 사용 하는 바이러스 titer mL 당 1 x 1013 게놈 복사본을 했다.</li>
	<li>5-0 polyglactin 봉합 사를 사용 하 여 피부 절 개를 닫습니다.</li>
</ol>4. 수술 후 관리
<ol><li>정상 체온으로 지속적인 수동 자극/낀된 인간의 손가락으로 마 취에서 복구 하는 동안 복원 하 온난 패드에 강아지를 두십시오.</li>
	<li>일단 강아지 깨어, 가정 그것의 감 금에 다시 놓습니다.</li>
	<li>홈 케이지 침구에 노출은 면봉으로 각 강아지를 애 무. 참고:이 목적으로 그들은 다시 그녀의 쓰레기 후 수술을 수락 하는 어머니의 가능성을 증가, 수술 전에 냄새 쥐를 것입니다. 만약에 가능 하다 면, 어머니 로부터 소변 수집 하 고 거부의 가능성을 더 감소를 면봉을 사용 하 여 강아지에 문질러 서 될 수 있습니다.</li>
	<li>그녀의8, 감도를 어머니의 코에 광 유를 적용 하 고 집으로 어머니를 다시.</li>
</ol>

<ol><li>Chien, W. W., Monzack, E. L., McDougald, D. S., Cunningham, L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapy+for+sensorineural+hearing+loss%5BTitle%5D)+AND+%22Ear+Hear%22%5BJournal%5D)">Gene therapy for sensorineural hearing loss.</a> Ear Hear. 36, 1-7 (2015).</li>
<li>Askew, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tmc+gene+therapy+restores+auditory+function+in+deaf+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Tmc gene therapy restores auditory function in deaf mice.</a> Sci Transl Med. 7, 295(2015).</li>
<li>Akil, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restoration+of+hearing+in+the+VGLUT3+knockout+mouse+using+virally+mediated+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Restoration of hearing in the VGLUT3 knockout mouse using virally mediated gene therapy.</a> Neuron. 75, 283-293 (2012).</li>
<li>Pan, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+therapy+restores+auditory+and+vestibular+function+in+a+mouse+model+of+Usher+syndrome+type+1c%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Gene therapy restores auditory and vestibular function in a mouse model of Usher syndrome type 1c.</a> Nat Biotechnol. 35, 264-272 (2017).</li>
<li>Isgrig, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+Therapy+Restores+Balance+and+Auditory+Functions+in+a+Mouse+Model+of+Usher+Syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Ther%22%5BJournal%5D)">Gene Therapy Restores Balance and Auditory Functions in a Mouse Model of Usher Syndrome.</a> Mol Ther. 25, 780-791 (2017).</li>
<li>Lentz, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rescue+of+hearing+and+vestibular+function+by+antisense+oligonucleotides+in+a+mouse+model+of+human+deafness%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Rescue of hearing and vestibular function by antisense oligonucleotides in a mouse model of human deafness.</a> Nat Med. 19, 345-350 (2013).</li>
<li>Shibata, S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+Interference+Prevents+Autosomal-Dominant+Hearing+Loss%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Hum+Genet%22%5BJournal%5D)">RNA Interference Prevents Autosomal-Dominant Hearing Loss.</a> Am J Hum Genet. 98, 1101-1113 (2016).</li>
<li>Van Sluyters, R. C., Obernier, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+the+care+and+use+of+mammals+in+neuroscience+and+behavioral+research%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp+Top+Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Guidelines for the care and use of mammals in neuroscience and behavioral research.</a> Contemp Top Lab Anim. 43, 48(2004).</li>
<li>Chien, W. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+Therapy+Restores+Hair+Cell+Stereocilia+Morphology+in+Inner+Ears+of+Deaf+Whirler+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Ther%22%5BJournal%5D)">Gene Therapy Restores Hair Cell Stereocilia Morphology in Inner Ears of Deaf Whirler Mice.</a> Mol Ther. 24, 17-25 (2016).</li>
<li>Hirose, K., Hartsock, J. J., Johnson, S., Santi, P., Salt, A. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systemic+lipopolysaccharide+compromises+the+blood-labyrinth+barrier+and+increases+entry+of+serum+fluorescein+into+the+perilymph%5BTitle%5D)+AND+%22J+Assoc+Res+Otolaryngol%22%5BJournal%5D)">Systemic lipopolysaccharide compromises the blood-labyrinth barrier and increases entry of serum fluorescein into the perilymph.</a> J Assoc Res Otolaryngol. 15, 707-719 (2014).</li>
<li>Okada, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+transfer+targeting+mouse+vestibule+using+adenovirus+and+adeno-associated+virus+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Otol+Neurotol%22%5BJournal%5D)">Gene transfer targeting mouse vestibule using adenovirus and adeno-associated virus vectors.</a> Otol Neurotol. 33, 655-659 (2012).</li>
<li>Suzuki, J., Hashimoto, K., Xiao, R., Vandenberghe, L. H., Liberman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cochlear+gene+therapy+with+ancestral+AAV+in+adult+mice%3A+complete+transduction+of+inner+hair+cells+without+cochlear+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Cochlear gene therapy with ancestral AAV in adult mice: complete transduction of inner hair cells without cochlear dysfunction.</a> Sci Rep. 7, 45524(2017).</li>
</ol>

저자 아무 관련 공개 수 있도록 있다.

몇 가지 수술 방법은 설치류 내 귀에 액세스 하려면 설명 있다. Cochleostomy 및 둥근 창 접근 가장 일반적으로 사용 됩니다 달팽이 관에 액세스 하려면 반면 후부 반원의 운하 endolymphatic sac 접근은 일반적으로 사용 되는 및 vestibular 장기1에 액세스 하. 최근 연구에서 우리는 바이러스 성 유전자 치료의 고효율 vestibular 기관과 달팽이 관5에 머리 세포 변환의 결과 후부 반원의 운하를 보였다. 사실, 달팽이 머리 세포 변환 때 후부 반원의 운하 주사를 통해 더 높은 유전 청력 손실과 vestibular 부전5,9같은 마우스 모델에서 둥근 창 주사와 비교. 둥근 창과 달팽이 관 사이 해부학 근접을 감안할 때, 그것은 역설적 둥근 창 주사 후부 반원의 운하 주사에 비해 낮은 달팽이 머리 세포 변환 발생할...

내가 유전자 치료의 급속 하 게 발전 분야 이다. 그것은 다양 한 동물 모델에서 전투 ototoxicity, 소음 외상, 그리고 유전 청력 손실1에 적용 되었습니다. 여러 최근 연구의 청각과 균형 기능 기능 복구 돌연변이 생쥐에서 내가 유전자 치료 배달2,3,,45,6, 후 7. 핵심 중 하나는 내가 유전자 치료의 성공을 내가 액세스 하는 데 사용 하는 외과 접근은 결정 요인. 이상적으로, 외과 접근은 실행 하기 쉬운 것, 해부학 랜드마크 일관 되 고 쉽게 식별, 것 및 타겟된 세포 유형의 결과 변환 높은 것입니다.
최근 연구에서 우리는 바이러스 성 유전자 치료는 whirler 돌연변이 마우스 (청력 손실과 vestibular 부전의 모델)의 후부 반원의 운하를 통해 주입 했다 때 감각 머리 세포의 효율적인 변환 보였다는 vestibular에 보였다 달팽이 관5에서 기관 뿐만 아니라. 감각 머리 세포 변환의 높은 효율 결과 이러한 돌연변이 생쥐에서 청각과 vestibular 기능 개선.
이 문서에서는, 우리가 자세히 설명 신생아 마우스 내가 액세스 하려면 후부 반원의 운하 접근.

<table><tbody><tr><td>작동 현미경</td><td>Zeiss</td><td></td><td>OPMI Pico ENT 현미경. 다른 해부 현미경도 사용할 수 있습니다.</td></tr><tr><td>Micro-forcepts</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-10, 11295-51</td><td>#5 및 #55 Dumont</td></tr><tr><td>Micro-scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>15002-08</td><td></td></tr><tr><td>Nanoliter2000 microinjector</td><td>World Precision Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heating pad</td><td>Mastex</td><td>Model 500/600</td><td></td></tr><tr><td>5-0 vicryl 봉합사</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AAV8-whirlin</td><td>Vector Biolabs</td><td></td><td></td></tr><tr><td>유리 피펫</td><td>셔터 기기</td><td>B100-75-10</td><td>붕규산 유리</td></tr></tbody></table>

신생아 마우스에서 내가 유전자 납품을 위한 후부 반원의 운하 접근

Posterior Semicircular Canal Approach for Inner Ear Gene Delivery in Neonatal Mouse

내가 유전자 치료는 난청과 현기증에 대 한 잠재적인 치료로 큰 약속을 제공합니다. 내가 유전자 치료의 성공의 중요 한 결정 요인의 한 청력 손실을 최소화 하면서 타겟된 세포 유형의 일관 변환 효율 귀착되는 전달 방법을 찾는 것입니다. 이 연구에서 우리 신생아 쥐에 내가 유전자 납품을 위한 실행 가능한 방법으로 후부 반원의 운하 접근 방식을 설명합니다. 우리 후부 반원의 운하를 통해 유전자 배달 전체 내가 perfuse 수 보여줍니다. 후부 반원의 운하의 쉬운 해부학 식별 뿐만 아니라 필요한 측 뼈의 최소한의 조작, 게가 외과 접근 내가 유전자 납품을 위한 매력적인 선택권.

주입 후부 반원의 운하를 통해 신생아 whirler 쥐로 AAV8 whirlin 유전자 치료의 결과 utricular 세포 (그림 2)에서 식 (그린) whirlin 53.1%의 전반적인 감염 효율 (SD 38.1, n = 28)5 . 머리 세포 transduced stereocilia (레드) contralateral 비 주입 귀에서 머리 세포에 비해 길쭉한 했다 (3.20 ± 0.34 µ m와 5.35 ± 2.11 µ m 각각)5.
AAV8 whirlin의 후부 반원의 운하 주사도 whirler 쥐 (그림 3)에 있는 달팽이 관 세포의 변환 결과. 평균 내 면 머리 세포...

이 연구에서 우리 신생아 쥐에 있는 내가 유전자 납품에 대 한 신뢰할 수 있는 방법으로 후부 반원의 운하 접근 방식을 설명합니다. 우리 후부 반원의 운하를 통해 유전자 배달 전체 내가 perfuse 수 보여줍니다.

Inner ear gene therapy offers great promise as a potential treatment for hearing loss and dizziness. One of the critical determinants of the success of ...

이 절차의 전반적인 목표는 유전자 전달을 위해 쥐 내이에 접근하는 것입니다. 이 방법은 유전자 치료를 마우스 내이에 효율적인 방식으로 전달하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 신뢰할 수 있고 배우기 쉽다는 것입니다.일반적으로 이 방법을 처음 접하는 사람들은 쥐 내이의 크기가 작기 때문에 어려움을 겪을 것입니다. 그러나 연습을 통해 대부분의 사람들은 10분 이내에 외과적 해부를 완료할 수 있습니다. 멸균 기구로 절차를 시작하고 비드 살균기를 켜서 동물 사이의 기구를 세척합니다.마이크로 주입기에 부착된 10미크론 직경의 마이크로피펫에 치료용 바이러스를 로드합니다. 실험에 사용된 바이러스 벡터는 AAV28-whirlin이며 역가는 밀리리터당 13개의 게놈 복제에 10 곱하기 입니다. 이 비디오에서는 시각화를 용이하게 하기 위해 메틸렌 블루 염료를 사용했습니다.베타딘 스크럽 3회에 걸쳐 귀 뒤쪽 피부를 닦은 후 알코올 와이프를 사용합니다. 그런 다음 마이크로 가위를 사용하여 귀 뒤쪽 약 2mm 지점에 귀 후를 만들고 아래에 있는 연조직을 나눕니다. 안면 신경과 수포를 식별합니다.흉쇄유돌근은 안면 신경에 수직으로 놓여 있습니다. 등골 동맥은 유용한 랜드마크인 수포를 통해 볼 수 있습니다. 안면 신경을 위와 후방으로 따라가서 후방 반고리관을 찾습니다.마이크로 가위를 사용하여 후방 반고리관 위에 있는 근육 섬유와 연조직을 제거합니다. 그런 다음 마이크로 주입기에 장전된 유리 마이크로피펫으로 후방 반고리관을 관통하고 염료를 내이에 주입합니다. 일반적으로 49나노 리터를 총 20회 주입하면 총 부피가 약 1마이크로리터에 대해 40초 동안 후방 반고리관으로 전달됩니다.마지막 부피를 투여한 후 즉시 피펫을 회수하십시오. 그런 다음 5-0 폴리글락틴 봉합사를 사용하여 피부 절개 부위를 닫습니다. 이 비디오에서 볼 수 있듯이 신생아 소용돌이 마우스에 AAV8-whirlin을 주입하면 난소 유모 세포에서 녹색으로 보이는 소용돌이 발현이 나타났습니다.형질도입된 유모 세포는 주사를 맞지 않은 반대쪽 귀의 유모 세포에 비해 빨간색으로 표시된 길쭉한 입체 섬모를 가지고 있었습니다. AAV8-whirlin의 후방 반고리관 주입은 또한 소용돌이 마우스에서 달팽이관 유모 세포의 형질전환을 초래했습니다. 형질도입된 유모 세포는 입체섬모 끝에서 소용돌이를 발현했으며, 주사를 맞지 않은 반대쪽 귀의 유모 세포에 비해 입체섬모가 길었습니다.이 절차에 따라 ABI 및 스테레오 테스트와 같은 다른 방법을 수행하여 내이 유전자 전달이 청각 및 전정 기능에 영향을 미치는지 여부와 같은 추가 질문에 답할 수 있습니다. 개발 후, 이 기술은 내이 유전자 전달 분야의 연구자들이 쥐 내이의 유전자 전달 결함을 탐구할 수 있는 길을 열었습니다.

posterior-semicircular-canal-approach-for-inner-ear-gene-delivery

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

마우스 내이 (内耳)는 누구의 발달 프로그램의 회임 기간 동안 정교하고 있습니다 placode 파생 감각 기관이다. 우리를...

에 의해 개발 마우스 내이 (内耳)에 진 전송<em&gt; VIVO에서</em&gt; Electroporation

출처: Kozin, E. D., et.al. 청각 경로의 광유전학적 자극을 위한 쥐 등쪽 달팽이관 핵의 직접 시각화. J. Vis. 경험. (2015년)이 비디오는 빛 유도 청각 자극을 가능하게 하기 위해 마우스 등쪽 달팽이관 핵(DCN)으로의 바이러스 매개 유전자 전달을 보여줍니다. 빛에 민감한 이온 채널인 옵신을 암호화하는 바이러스 벡터는 직접 접근을 위해 개두술 및 소뇌 흡인 후 DCN에 주입됩니다. 발현된 옵신은 뉴런이 빛에 의해 활성화될 수 있도록 하여 광유전학을 사용하여 청각 경로 반응을 연구하기 위한 모델을 제공합니다.

빛 유도 청각 자극을 위한 마우스 등쪽 달팽이관 핵으로의 바이러스 매개 유전자 전달

이 비디오는 청력과 전정 기능의 손상을 최소화하면서 반고리관을 통해 쥐의 내이로 국소 약물을 전달할 수 있는 절차인 이관절개술을 보여줍니다. 이 방법을 사용하면 바이러스 벡터, 의약품 및 소분자를 마우스의 내이에 접종할 수 있습니다.

성체 쥐의 내이(inner ear of a adult mouse)로의 국소 약물 전달을 위한 관절개술(canalostomy for local drug delivery into the inner ear of a adult mouse)

출처: Akil, O., et al., 둥근 창막을 통해 마우스 내이에 바이러스 매개 유전자 전달을 위한 수술 방법. J. Vis. 경험. (2015년)이 비디오는 유전적 난청이 있는 쥐 강아지의 내이에 치료 유전자를 전달하는 절차를 보여줍니다. 아데노 관련 바이러스(AAV) 벡터를 사용하여 유전자를 둥근 창막을 통해 주입하여 바이러스 입자가 유모 세포에 들어가 글루타메이트 수송체 생성을 회복하고 뇌에 대한 소리 신호를 재설정할 수 있도록 합니다.

마우스 모델에서 청력 회복을 위한 바이러스 벡터 기반 유전자 치료

설명된 귀 후 수술 접근법은 출혈과 동물 폐사를 최소화하면서 쥐의 달팽이관 스칼라 고막으로 빠르고 직접 전달할 수 있습니다. 이 방법은 둥근 창막을 통해 출생 후 마우스에게 분자, 약리학 및 바이러스 전달을 사용하는 달팽이관 치료에 사용할 수 있습니다.

라운드 창 멤브레인을 통해 마우스 내부 귀에 바이러스로 매개 유전자 전달을위한 수술 방법

우리는 배아 쥐 내이에서 달팽이관 이식의 격리 및 배양을 설명하는 방법을 제시합니다.  또한 구형파 전기천공법을 통해 달팽이관 이식으로 유전자를 전달하는 방법을 보여줍니다. 유전자 전달 기술과 결합된 체외 이식 배양을 통해 연구자들은 발달 중 유전자 발현 변경의 영향을 연구할 수 있습니다.

Electroporation에 의한 배아 마우스 달팽이의 Explants의 문화 유전자 전송

이 프로토콜의 목표는 쥐 모델에서 배측 달팽이관 핵에 직접 접근할 수 있도록 하는 수술적 접근 방식을 설명하는 것입니다.

청각 통로의 Optogenetic 자극에 대한 쥐의 등쪽 달팽이 핵의 직접 시각화

내이로의 국소 약물 전달을 위한 두 가지 미세수술 접근법이 여기에 설명되어 있으며 청력 매개변수, 달팽이관 세포 구조 및 염증 마커 발현에 미치는 영향 측면에서 비교됩니다.

마우스 내부 귀를 대상으로 약물 전달 방법의 비교 연구 : Bullostomy 대 Transtympanic 주입

이 프로토콜의 목표는 신생아 생쥐 달팽이 explants의 준비, 문화, 치료 및 immunostaining를 입증하는 것입니다. 이 기술은 청각 연구 에서 체외 선별 도구로 활용 될 수 있습니다.

신생아 쥐의 달팽이관 Explant 기법으로<em&gt; 체외에서</em&gt; 청력 연구의 스크리닝 도구

우리는 둥근 창 막 통해 비 인간 영장류, 일반적인 마모 셋 (Callithrix jacchus)의 내가 약물을 관리 하는 수술 방법을 보고 합니다.

비 인간 영장류 일반 비단 (Callithrix jacchus)에서 내가 의약품의 관리에 대 한 수술

여기는 청각 및 vestibular 함수에 최소 손상 반원의 운하를 통해 성인 및 신생아 쥐의 내 귀에 로컬 약물 전달 수 있는 canalostomy 절차에 설명 합니다. 이 메서드는 마우스 내가 바이러스 성 벡터, 제약, 그리고 작은 분자를 접종을 사용할 수 있습니다.

성인 및 신생아 쥐의 내 귀에 로컬 약물 전달에 대 한 외과 접근으로 Canalostomy

배우세요 신생아 마우스의 후부 반원관 접근법을 이용한 내이 유전자 납품 기술입니다. 이 방법은 신뢰할 수 있고 학습하기 쉬워 전체 내이에 유전자 치료를 효율적으로 전달할 수 있습니다.

신생아 마우스에서 내가 유전자 납품을 위한 후부 반원의 운하 접근

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