Name: DNA 복제 타이밍 Zebrafish Vivo에서 모델 시스템으로 사용 하 여 프로 파일링 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-30T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 17 s
Description: 배우세요 제브라피시 배아에서 전체 게놈 DNA 복제 타이밍 맵을 생성하는 방법을. 이 기술은 생체 내에서 염색질 변화가 DNA 복제 개시에 미치는 영향을 연구하여 세포 주기와 발달 생물학 분야의 핵심 질문에 답할 수 있습니다.

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이 작품에 의해 지원 되었다 국립 연구소의 일반 의료 과학을 통해 국립 보건원의 5P20GM103636-02 (포함 Flow Cytometry 코어 지원) 및 1R01GM121703, 부여로 오클라호마 센터에서 성인 줄기 세포에 대 한 수상 연구입니다.

모든 동물은 오클라호마 의료 연구 재단 기관 동물 관리 및 사용 위원회에 의해 승인 하는 프로토콜에 따라 처리 합니다.
1. 성인 zebrafish 번 식에 대 한 설정
<ol><li>단일 스트레인의 성인 남성과 여성의 zebrafish의 대형 코 호트를 사용 하 여 번 식. 심지어 단일 스트레인의 zebrafish의 유전 메이크업에 있는 작은 차이, 큰 코 호트를 사용 하 여 결과 인구의 유전 가변성의 인구의 작은 부분 집합에 제한 되지 않도록.</li>
	<li>배아는 수집 전에 밤 사육 탱크에 수십 번 식 성인, 수 컷과 암컷의 약 동일한 번호를 사용 하 여. 실험에 따라 다음 번 식 전략 중 하나를 사용 합니다.<ol>
<li>번 식 전략 1: 개별 사육 탱크에 몇 남성과 여성의 zebrafish, 분배기와 여성에서 남성을 분리. 이 접근을 사용 하는 경우 많은 다른 사육 탱크를 설치 하 고 생물 다양성은 인구의 대표 되도록 각 배아 수영장.</li>
		<li>번 식 전략 2: 큰 사육 탱크에 남성과 여성의 zebrafish의 수십을 결합. 이 전략을 사용 하 여 배아의 충분히 큰 수 있다, 그것은 그들의 창시자 인구의 따라서 유전자 대표 다양 한에서 온 가정 하는 합리적.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 초과 matings-수집, 정렬 및 zebrafish 태아 실험 주택
<ol><li>시작 하자마자 빛 주기는 아침에 있는 시간 초과 matings를 수행 합니다. 하룻밤 사이 생성 된 모든 배아를 폐기.</li>
	<li>배아를 통해 탈출에 대 한 거짓 바닥 10 분 동안 얕은 물 (3-5 cm)에 사육 하는 물고기를 허용 합니다.</li>
	<li>10 분 후 스 트레이너를 통해 쏟아지는 고 세척 병으로 10 cm 격판덮개로 rinsing 하 여 배아를 수집 합니다. 수영장 같은 시간 지점에서 모든 배아 수집 수집, 및 28.5 ° c.에 인큐베이터에서 즉시의 시간으로 표시</li>
	<li>배아의 수백 하루에 단일 짝짓기 쌍에서 예상 될 수 있다. 성인 10 분 사이클까지 얻은 배아의 수를 미만 20 번 식을 허용 합니다.</li>
	<li>컬렉션, 죽음과 unfertilized 배아를 제거 하려면 정렬 배아 후 약 1-1.5 h. 배아를 정렬 하려면 인큐베이터에서 제거 하 고 해 현미경으로 관찰 합니다.<ol>
<li>배아를 계산 하 고 10 cm 접시 당 100 배아의 밀도에 장소.</li>
		<li>신선한 E3 매체 (5 m m NaCl, 0.17 m m KCl, 0.33 m m CaCl2, 0.33 m m MgSO4)을 추가 하 고 28.5 ° C 인큐베이터에 배아를 반환.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Dechorionate, deyolk, 그리고 zebrafish 태아를 수정
참고:이 섹션은 프로토콜의 48 h 게시물 수정 (hpf) 이전 배아에 대 한 설계 되었습니다. 개발의 나중 단계에서 배아의 chorions 제거 필요가 없습니다 (48 후 hpf), 그들은 종종 자연스럽 게 떨어지. 필요가 없습니다 deyolk 또는 제거는 chorions 물고기 이전 5 일 게시물 수정 (dpf).
<ol><li>배아 원하는 발달 연령에 도달, "단계의 배아 개발의는 제 브라"17에 따라 가벼운 현미경 형태학 상으로 개발의 적절 한 단계를 확인 합니다.</li>
	<li>15 mL 원뿔 튜브에 1500 무대 배아를 전송 하 고 e 3로 여러 번 씻어.<ol>
<li>E 3의 1 mL 및 모든 100 배아에 대 한 나 솔루션 (30 mg/mL)의 20 µ L을 추가 하 고 부드럽게 소용돌이. 1500 배아까지 e 3의 15 mL 단일 튜브에 dechorionated 일 수 있다.</li>
		<li>튜브의 측면에 누워 볼륨 비율 최대 표면 되도록도 계층에 배아를 배열 한다. 부드럽게 튜브 배아에서 떨어진 모든 chorions까지 모든 2-3 분 교 반 하십시오. 총 dechorionation 시간 나 활동에 따라 달라 집니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>상쾌한을 제거 하 고 부드럽게 씻어 3 번 e 3의 10 mL와 배아. 프로토콜의이 섹션의 나머지 부분에 대 한 얼음에 배아를 놓습니다.</li>
	<li>E 3를 제거 하 고 씻어 갓 준비 얼음 deyolking 버퍼와 배아 (칼슘 없이 Ginzburg 물고기 벨의 솔루션 x 0.5: 55 m m NaCl, 1.8 m m KCl, 1.25 m m NaHCO3).<ol>
<li>최대 500 개의 배아에 대 한 차가운 deyolking 버퍼의 1 mL를 추가 합니다.</li>
		<li>P1000를 사용 하 여 부드럽게 플라스틱 배아를 위아래로 5-10 회를 노 른 자 자루를 방해.</li>
		<li>1.5 mL microfuge 관을 5 분 동안 500 x g 4 ° C에서 원심 분리기 1 mL를 전송 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>얼음 처럼 차가운 1 x PBS (인산 염 버퍼 염 분, pH 7.0) 벨의 솔루션을 제거 하려면 1 mL로 세척 하 고 표면에 뜨는 펠 릿을 제거 합니다. 4 ° C에서 원심 분리기 그리고 5 분 동안 500 x g.</li>
	<li>신중 하 게 상쾌한을 제거 하 고 resuspend 1 x PBS의 1 mL에 셀. 얼음에 튜브를 놓습니다.</li>
	<li>15 mL 원뿔 튜브를 얼음 처럼 차가운 에탄올 (EtOH) 3 mL를 추가 합니다. 낮은 설정에 부드럽게 EtOH의 소용돌이 관.<ol>
<li>부드럽게 P1000, 천천히 (초당 1 방울) 물방울 zebrafish 태아 세포 현 탁 액 EtOH에 vortexing 동안를 사용 하 여.</li>
		<li>배아 세포 현 탁 액, 75%의 최종 고정 솔루션에 대 한의 1 mL의 총 추가 EtOH.</li>
	</ol>
</li>
	<li>셀의 1 mL 후 서 스 펜 션 추가 되었습니다, 부드럽게 혼합 하 고 적어도 1 시간 동안-20 ° C에 소용돌이 관. 볼륨 비율 최대 표면을 고 태아와 함께 하는 셀의 수를 줄이기 위해 그들의 편에서 튜브를 배치 하는 것이 좋습니다. 2-3 주 동안-20 ° C에서 배아 세포를 저장 합니다.</li>
</ol>4. 얼룩이 DNA 및 FACS 배아를 정렬
참고:이 섹션은 프로토콜의는 1 dpf에서 태아에 대 한 설계 되었습니다.
<ol><li>-20 ° C와 5 분 동안 4 ° C 1500 x g에서 원심 분리기에서 EtOH 고정 배아 세포를 제거 합니다.<ol>
<li>얼음에 신중 하 게 제거 상쾌한 튜브를 배치 합니다. 갓된 차가운 PBS-BSA (1 x PBS, 1% 소 혈 청 알 부 민)의 1 mL에 셀 resuspend 부드럽게 한 P1000 사용 하 여.</li>
		<li>4 ° C와 5 분 동안 1500 x g 세포를 원심 고 얼음에 놓습니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>제거 상쾌한 및 resuspend 셀 propidium 요오드 화물 (PI)에 얼룩이 솔루션 (50 µ g/mL PI, 100 µ g/mL RNase A, PBS, pH 7.0), 200 µ L를 사용 하 여 모든 1000 배아에 대 한.<ol>
<li>얼음에 30 분 마다 5 분을 부드럽게 혼합 PI 솔루션에서 품 어를 셀 수 있습니다.</li>
		<li>얼음에 50 mL 원뿔 튜브에 40 µ m 나일론 셀 여과기를 놓습니다. 부드럽게 혼합 하 고 메시를 통해 필터링 셀 플라스틱. 참고: 여러 개의 튜브 같은 timepoint에서 배아의 프로토콜의 섹션 3에서에서 수집 된 경우 결합이 배아가 시점에서 그들은 모두 함께 정렬 있도록.</li>
		<li>메쉬 셀의 모든 나머지 덩어리 중단 부드럽게 주사기 플런저의 끝 내부 평면을 사용 하 여.</li>
		<li>모든 1000 배아에 대 한 차가운 PBS-BSA의 500 µ L로 필터를 통해 세포를 씻어.</li>
		<li>얼음에 15 mL 원뿔 튜브에 40 µ m 메쉬를 놓고 15 mL 튜브에 세포 현 탁 액 50 mL 원뿔 튜브에서 두 번째 시간을 필터링 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>악기를 정렬 하는 적절 한 셀을 사용 하 여 레이저 여기 561-및 방출 감지 610/20 propidium 요오드 화물 검색을 설정 합니다.<ol>
<li>Vortexing와 4 ° c.에 악기에 의해 짧게 스테인드 셀의 혼합 15 mL 튜브</li>
		<li>셀 느린 흐름에 속도, 이상적으로 1.0 mL/min, 깨끗 한 세포 주기 프로필을 가져올 하 고 g 1를 혼합 하지 마십시오 또는 S와 G2/M 세포 인구 단계를 실행 합니다.</li>
		<li>첫째, FSC-A x SSC에 대 한 게이트-는 (앞으로 피해 지역 측면 분산형 지역) 파편 (그림 1A)를 제거 하. 참고: 세포는 배아에서 무대와 셀 유형에 따라 크기 변화 수 있습니다. 중간 농도 (ND) 필터는 1.0 및 현재 셀의 크기에 따라 1.5 사이 전환 될 필요가 있습니다. 대부분의 세포를 수집 파편을 제거 하는 큰 지역 게이트</li>
		<li>PI-지역 (PI-A), 파편 및 셀 남자 (그림 1B)를 제거 하 여 SSC-지역 (SSC-A)에 대 한 두 번째, 게이트.</li>
		<li>셋째, 대 한 게이트 SSC-A SSC-W (폭) 모든 나머지 셀 남자 (그림 1C)을 제거 하 여.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Y 축과 propidium 요오드 화물 지역에 셀 번호 (카운트) 히스토그램에 문이 인구를 표시 (PI-A)는 x 축에. 24 hpf 배아에 대 한이 그림 1D처럼 틀에 박힌 세포 주기 프로필을 주어 야 한다.<ol>
<li>S 단계 인구를 정렬 하려면 최소한의 양의 g 1과 g 2 인구를 포함 하 여 g 2 피크의 왼쪽 게이트 g 1의 오른쪽에서 설정 합니다. 24 hpf 배아에 대 한이 일반적으로 문이 인구의 약 10-15%를 구성 된다 ( 그림 1D참조).</li>
		<li>G 1 인구를 정렬 하려면 g 1 피크 피크의 상단을 통과 하는 하지의 왼쪽에는 게이트를 설정 합니다. 조정 가능한 좁은 G1 게이트의 폭 ( 그림 1D참조).</li>
		<li>다시 g 1과 S 단계 인구 적절 한 초기 제어 (그림 1E) 되도록 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>G 1과 S 단계 인구 3 mL 15 mL 원뿔 튜브에 PBS BSA의 정렬. 목표는 분수 (g 1과 S 단계) 당 500, 000 그리고 1 백만 이상의 정렬된 셀 사이 해야 합니다.</li>
	<li>정렬이 완료 되 면, 1500 g x와 10 분 동안 4 ° C 원심 분리기 튜브 합니다. 참고: 작은 셀 펠 릿 어려운 볼 수 있을 것입니다 그리고 그것을 방해 하지 않도록, 그래서 사용 선호 진동 물통 회전자 고정 각도 터를 통해 하는 것이 중요 하다.</li>
	<li>신중 하 게 상쾌한을 제거 하 고 resuspend 1 x PBS의 1 mL와 펠 릿. 1.5 mL microfuge 관을 원심 분리기에서 6000 x g와 4 ° C 5 분에 대 한 셀을 전송 합니다.</li>
	<li>조심 스럽게 튜브에서 모든 액체를 제거 하 고 동결 건조 펠 릿-20 ° c.에 2-3 주 동안-20 ° C에서 펠 릿을 저장 합니다.</li>
</ol>5. DNA 고립과 RNase 처리, DNA 정화
<ol><li>-20 ° C와 얼음에 장소에서 셀 펠 릿을 제거 합니다.<ol>
<li>SDS 버퍼 (50 mM Tris HCl (pH 8.0) 10 mM EDTA, 1 M NaCl, 0.5 %SDS) 펠 렛 및 resuspend의 400 µ L를 추가 합니다.</li>
		<li>가수분해 K 0.2 mg/mL의 최종 농도에 추가 하 고 vortexing에 의해 짧게 혼합.</li>
		<li>2 h, 소용돌이 매 15 분을 위한 56 ° C에서 샘플을 품 어.</li>
	</ol>
</li>
	<li>2 시간 후 페 놀-클로 프롬 추출 (페 놀: 클로 프롬: Isoamyl 알콜 25:24:1, 10 mM Tris, pH 8.0, 1 mM EDTA와 포화) 페 놀을 클로 프롬의 400 µ L을 추가 하 여 수행 합니다.<ol>
<li>16000 x g 단계 구분을 5 분에서 20 및 원심 분리기 샘플 소용돌이.</li>
		<li>조심 스럽게 위 수성 단계 (400 µ L) 및 1.5 mL 튜브에 제거.</li>
	</ol>
</li>
	<li>EtOH 강수량 3 M 나트륨 아세테이트 (pH 5.2), 2 µ L의 glycogen, 그리고 1 mL EtOH 40 µ L을 추가 하 여 수행 합니다.<ol>
<li>철저 하 게 혼합 하 여-20 ° C 하룻밤 DNA를 침전에 소용돌이. 샘플-80 ° C에 또는 1 시간을 위한 드라이 아이스에 또한 침전 수 있습니다.</li>
		<li>4 ° C와 30 분 펠 릿 DNA 16000 x g에서 원심 분리기 샘플.</li>
		<li>1 mL 70%와 함께 폐기 세척 하 고 표면에 뜨는 펠 릿 EtOH. 4 ° C에서 원심 분리기 그리고 5 분 동안 16000 x g.</li>
		<li>2-3 분에 대 한 주위 온도에 표면에 뜨는 고 air-dry 펠 릿을 삭제 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>압력가 마로 소독 물 96 µ L에 펠 릿을 녹이 고 4 µ L의 RNase A (2 mg/mL) 추가.<ol>
<li>Vortexing에 의해 잘 혼합 하 고 1 시간 동안 37 ° C에서 품 어.</li>
	</ol>
</li>
	<li>페 놀-클로 프롬 추출 단계 5.2.1-5.2.2에서에서 페 놀-클로 프롬 및 다음 절차의 100 µ L을 추가 하 여 수행 합니다.</li>
	<li>EtOH 강수량 3 M 나트륨 아세테이트, 1 µ L glycogen, 그리고 EtOH와 절차 단계 5.3.1-5.3.5에에서 따라 250 µ L의 추가 10 µ L을 수행 합니다.</li>
	<li>TE 버퍼 (10 mM Tris HCl (pH 8.0) 10 mM EDTA (pH8.0))의 60 µ L에 펠 릿을 resuspend 하 고 양적 형광 기반 방법을 사용 하 여 DNA 농도 결정 합니다. -20 ° c.에 DNA가 참고: 그것은 DNA DNA 바인딩 형광 기반 염료, 또는 자외선 분 광 계 기반 방법 보다 더 신뢰할 수 있는 다른 수단을 사용 하 여 계량 하는 것이 중요.</li>
</ol>6. DNA 라이브러리 및 다음 세대 시퀀싱 준비
참고: G1 복사 번호 참조 샘플 각 생물 소스는 각 시퀀싱 실행 (즉, WT, 돌연변이, 유전자 변형, 세포 선, 등)에 대 한 필요 합니다. 같은 g 1은 참조를 실행 하는 동일한 시퀀싱에 동일한 생물학 소스에서 모든 S 단계 샘플을 비교 합니다. 샘플 간의 일관성을 보장 하기 위해 각 샘플의 실행된 2 생물 복제 합니다.
<ol><li>1 µ g의 DNA 50 µ L 쥡니다 위한 특수 튜브에 최종 볼륨을 희석.</li>
	<li>제조업체의 사양 및 프로토콜에 따라 초점 을된 ultrasonicator에 250-300 bp의 대상에 대 한 게놈 DNA 전단</li>
	<li>제조업체의 사양 및 프로토콜에 따라 자동화 된 전기 기계를 사용 하 여 전단된 genomic DNA의 품질 및 크기를 확인 합니다. 확인 ~ 250-300의 큰 피크 깎된 genomic DNA에 대 한 혈압.</li>
	<li>제조 업체의 프로토콜에 따라 시퀀싱 Illumina 플랫폼에 대 한 다중 oligos을 DNA 도서관 준비 키트를 사용 하 여 시퀀싱 라이브러리를 준비 합니다.</li>
	<li>제조 업체의 프로토콜에 따라 자동화 된 전기 기계를 사용 하 여 라이브러리 준비의 품질을 확인 합니다. 400 ~ 450의 큰 피크 확인 혈압, 있다 뇌관 이합체 (80-85 bp)와 어댑터 이합체에 대 한 최소한의 봉우리 (~ 120 bp).</li>
	<li>제조 업체의 프로토콜에 따라 다음-세대 DNA 연속을 위한 DNA 도서관 정량화 키트를 사용 하 여 라이브러리를 계량.</li>
	<li>라이브러리 5 nM와 결합의 농도의 희석 15 µ L로 고유 하 게 원하는 달성 하는 데 필요한 라이브러리를 다중화 매핑 읽기 샘플 당 수. 참고: 샘플 당 고유 매핑 읽기 수 해상도 결정 합니다. 사용 최소 5 백만 매핑된 zebrafish 게놈에 대 한 복제 타이밍을 평가 하기 위해 읽습니다. 10-20 백만 읽기로 시작 하는 것이 좋습니다.</li>
	<li>제조업체의 지침에 따라 다음 세대 시퀀싱 플랫폼에 샘플의 100 쌍-엔드 bp 전체 게놈 DNA 시퀀싱을 수행 합니다.</li>
</ol>7입니다. 시퀀싱 데이터의 분석
참고:이 섹션의 지침 분석에 대 한 지침으로 위한 것입니다. 추가 메서드를 사용 하 여 시퀀싱 정렬, 필터링, 처리, 등등. 이 섹션은 프로토콜의이 작품에서 분석의 기본 방법으로 처리 됩니다. 추가 메서드를 사용 하는 경우 매개 변수 및 그 목적에 맞게 기능 조정 합니다. 아래 명령은 설치 적절 한 패키지와 함께 Ubutnu 또는 맥 터미널에 입력 됩니다.
<ol><li>Zebrafish 게놈의 최신 버전 얻기 (danRer10,이 프로토콜 작성 때 기준) 다음 명령을 사용 하 여 UCSC 게놈 브라우저에서: wget ftp://hgdownload.cse.ucsc.edu/goldenPath/danRer10/bigZips/danRer10.fa.gz-O danRer10.fa.gz<ol>
<li>다음 명령 사용 하 여 fa.gz 파일을 압축 해제: gunzip danRer10.fa.gz</li>
		<li>BWA mem 다음 명령을 사용 하 여를 사용 하 여 게놈 시퀀싱 데이터 정렬: bwa mem t-8 danRer10.fa read_1.fastq read_2.fastq > output.sam</li>
	</ol>
</li>
	<li>.Sam 파일 samtools 다음 명령을 사용 하 여.bam 파일을 변환: samtools 볼-bS input.sam > output.bam<ol>
<li>Samtools 다음 명령을 사용 하 여 정렬 된 시퀀스 파일 정렬: samtools 정렬 output.bam > output_sorted.bam</li>
		<li>Samtools 다음 명령을 사용 하 여.bam 파일을 색인: samtools 인덱스 output.bam</li>
	</ol>
</li>
	<li>다음 명령을 사용 하 여 피와 함께 마크 PCR 중복: 자바-Xmx2g-picard.jar MarkDuplicates jar \ INPUT=input.bam OUTPUT=output.bam REMOVE_DUPLICATES = false METRICS_FILE=output_metrics.txt</li>
	<li>다음 명령을 사용 하 여 각 염색체에 대 한 읽기의 텍스트 (.txt) 파일을 생성: 나에 (1.25); CHROM 할 "chr" $i; = 에코 $CHROM; samtools 보기 input.bam $CHROM | -f 2,4,5,7,8,9 컷 > readsChr$ {i}.txt; 완료 참고: 열 결과.txt 파일에는 플래그, 위치, mapQ, 쌍 chr, 쌍 위치 및 조각 크기, 각각.</li>
	<li>Matlab (또는 기타 유사한 소프트웨어) textscan 함수를 사용 하 여.txt 파일을 읽을.<ol>
<li>30의 mapQ 임계값을 설정 하 여 낮은 매핑 품질 읽기를 필터링 하십시오.</li>
		<li>읽기 플래그와 하지 기본 정렬, PCR 중복 또는 다른 염색체 쌍 매핑을 제거 합니다.</li>
		<li>모든 읽기 2000 bp의 거리 임계값을 넘어 그들의 쌍을 필터링.</li>
		<li>평가 결과 읽기 읽기 통계, 범위, 삽입 크기 및 품질 (그림 2)의 수를 결정 하는 통계.</li>
	</ol>
</li>
	<li>각 염색체의 길이 걸쳐 읽기 100 bp 간격에서의 수를 계산 하 여 각 샘플에 대 한 100 bp 고정 윈도우에서 읽기 범위를 결정 합니다.<ol>
<li>평균 읽기 모든 창에 대 한 수를 계산 합니다.</li>
		<li>중간에서 5 표준 편차 보다 큰 윈도우를 제거 하 여 높은 범위의 영역을 필터링.</li>
	</ol>
</li>
	<li>슬라이딩 윈도우를 사용 하 여 200 읽기와 함께 각 염색체에 따라서 세그먼트를 찾는 하 여 g 1 참조 샘플에 분석에 대 한 영역을 정의 합니다.<ol>
<li>200-읽기 개수 창 동반 g 1 참조에 대 한 정의에서 S 단계 읽기의 수를 계산 하 여 각 S 단계 샘플에서 읽기 깊이 결정 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>10-16의 보간 계수 (p)와 소프트웨어에서 csaps 함수를 사용 하 여 원시 데이터를 부드럽게.</li>
	<li>0의 평균 및 표준 편차 1의 z-점수를 반반 하 게 데이터를 정상화.</li>
</ol>

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저자는 공개 없다.

Zebrafish는 새롭고 독특한 vivo에서 모델 시스템 공부 DNA 복제 타이밍을 제공 합니다. 타임된 matings로 수행 되는 때이 실험 프로토콜에 자세히, 배아의 수천을 수집할 수 있습니다에 실험에 대 한 하루. 이러한 배아 동기적으로 정확 하 게 초과 하 고 분명히 특징이 개발의 단계를 통해 개발. 제 브라 수 있습니다 쉽고 정확 하 게 준비 zebrafish 태아 외부에서 개발 하 고 광학 투명 한 stereomicroscope를 사용 하 여 형태학에 의해. 이 프로토콜 척추 개발에 걸쳐 복제 타이밍 공부 zebrafish 태아의 사용을 자세히 설명 합니다.
문제가 발생할 수 있습니다 프로토콜의 지역 동기 개발 zebrafish 태아의 준비, FACS 정렬 및 라이브러리 준비 하는 동안 세포의 손실을 보장 포함 됩니다. Zebrafish 개발의 타이밍은 온도 의존, 따라서 사용 zebrafish 명암 주기를 적응 및 실험을 위한 28.5 ° C에서 지...

셀 분할 성공적으로, 그들은 먼저 정확 하 고 충실 하 게 복제 해야 그들의 전체 게놈입니다. 게놈 복제 재현할 패턴, DNA 복제 타이밍 프로그램1에서 발생 합니다. DNA 복제 타이밍 chromatin 조직, 후 성적인 부호 및 유전자 식2,3와 상관 된다. 복제 타이밍에 변화 개발, 걸쳐 발생 되며 크게 transcriptional 관련된 프로그램 및 변경 chromatin 마크와 조직4,5. 또한, 복제 타이밍 mutational 주파수와 상관 및 타이밍에서 변경 다양 한 유형의 암6,7,8에서 관찰 된다. 이러한 관측에도 불구 하 고 메커니즘 및 복제 타이밍 설립 및 규정의 결정 요인 여전히 크게 알려지지 않은, 하 고 개발에서 재생 역할 질병 결정 됩니다. 또한, 최근 게놈 넓은 복제까지 타이밍 척추 개발에 걸쳐 발생 하는 변화 했다만 되어 검사 셀 문화 모델에.
Zebrafish, Danio rerio는 개발 하는 동안 복제 타이밍에서 vivo에서 공부 하는 데 적합 한 짝짓기 쌍 포유류 개발9, 많은 유사점을 빠르게 개발 하는 배아의 수백의 얻을 수 있습니다. 10. 또한, zebrafish 개발에 걸쳐 세포 주기, chromatin 조직과 DNA 복제 타이밍11관계를 공유 하는 transcriptional 프로그램에 변화가 있다. Zebrafish는 또한 우수한 유전자 모델 그들은 특히 순종 transgenesis, mutagenesis, 그리고 타겟된 돌연변이, 조작 하 고 유전 스크린 척 추가 있는 발전12에 필요한 많은 유전자를 확인 했다. 따라서, zebrafish 복제 타이밍 설립 및 유지 보수에 관련 된 유전자를 식별 하 고 deregulating 척추 개발에 복제 타이밍의 효과 관찰을 사용할 수 있습니다. 유전자 변형 라인 복제 타이밍 개별 셀 형식 다른 발달 timepoints 또는 질병 조건에서 고립에서 평가 하기 위해 사용할 수 있습니다. 중요 한 것은, 인간 질병 질병 형성 및 진행9,,1314복제 타이밍의 역할을 조사 하는 데 사용할 수의 다양 한 zebrafish 모델 있다.
최근, 첫 번째 복제 타이밍 프로필 zebrafish, 복제 vivo에서15시간을 공부 하는 모델 시스템으로 수립에서 생성 되었습니다. 이 위해 세포는 성인 제 브라에서 고립 된 셀 형식 및 개발의 여러 단계에서 zebrafish 태아에서 수집 되었다. 셀은 다음 FACS (형광 활성화 된 세포 분류) DNA 내용에 따라 g 1과 S 단계 인구를 분리 하 여 정렬 됩니다. G 1 샘플을 사용 하 여 복사 번호 컨트롤로 복사 번호 유사 S 단계 인구에서 결정 되었고 상대 복제 타이밍16를 유추 하는 데 사용. 복제 타이밍에 있는 변화 다음 비교 될 수 있다 직접 다른 발달 샘플 및 세포 유형 사이 고이 비보에 척추 개발에 걸쳐 발생 하는 복제 타이밍에 변화를 결정 하는 데 사용 되었다. 이 방법은 제공 합니다 다른 게놈 방법에 비해 몇 가지 장점을 주로 티 미 딘 아날로그 또는 DNA4,6의 immunoprecipitation로 필요 하지 않습니다 그.
여기 상세한 프로필 게놈 전체 DNA 복제에서 타이밍에 프로토콜 zebrafish에 고해상도. 이러한 프로토콜 zebrafish 게놈으로 개발 하는 동안 발생 하는 이러한 관계에 변화를 프로 파일링에서 게놈 그리고 후 성적인 기능 관계를 결정 하기 위해 사용 되었습니다. 이러한 프로토콜은 또한 쉽게 복제 타이밍 zebrafish의 돌연변이 체 긴장 및 질병 모델에에서 변화를 공부에 적응 됩니다. 또한이 메서드는 첫 번째는 제 브라에서 개별 셀 유형을 밖으로 정렬 하 여 특정 세포 유형에서 복제 타이밍을 연구에 따라 확장 될 수 있는 토대를 제공 합니다. Zebrafish는 우수한 vivo에서 모델 시스템으로 복제 타이밍을 공부 하 고 궁극적으로 중요 한이 후 성적인 특성의 생물 학적 기능을 사용할 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>NaCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP358-10</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>P217-500</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Fisher Scientific</td><td>C79-500</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4</td><td>EMD Millipore</td><td>MMX00701</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP328-500</td><td></td></tr><tr><td>프로나제</td>, <td>시그마</td><td>, 10165921001</td><td>프로테아제 용액</td></tr><tr><td>, 인산염 완충 식염수(PBS),</td> <td>시그마</td><td>D1408</td><td></td></tr>, <tr><td>에탄올(EtOH)</td><td>KOPTEC</td><td>V1016</td><td></td></tr>, <tr><td>소 혈청 알부민(BSA)</td><td>시그마</td><td>A9647-100G</td><td></td></tr>, <tr><td>프로피듐 요오드화물(PI),</td> <td>인비트로겐</td><td>P3566</td><td></td></tr><tr><td>Tris-HCl</td><td>, Fisher Scientific</td><td>BP153-500</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>시그마</td><td>E9844</td><td></td></tr><tr><td>SDS</td><td>산타 크루즈</td><td>sc-24950</td><td></td></tr><tr><td>단백질 분해 효소 K</td><td>NEB</td><td>P8107S</td><td></td></tr><tr><td>페놀 : 클로로포름</td><td>시그마</td><td>P3803-100ML</td><td></td></tr><tr><td>아세트산 나트륨</td><td>J.T.Baker</td><td>3470</td><td></td></tr><tr><td>글리코겐</td><td>Ambion</td><td>AM9510</td><td></td></tr><tr><td>RNase A</td><td>Thermo Scientific</td><td>EN0531</td><td></td></tr><tr><td>Quanit-iT</td><td>Invitrogen</td><td>Q33130</td><td>형광 기반 DNA 정량화용 시약</td></tr><tr><td>Covaris AFA microTUBE</td><td>Covaris</td><td>520045</td><td>초음파 처리를 위한 특수 튜브</td></tr><tr><td>Covaris E220 Sonicator</td><td>Covaris</td><td>E220</td><td>집속 초음파 발생기</td></tr><tr><td>Agilent 4200 Tapestation</td><td>Agilent</td><td>G2991AA</td><td>자동 전기영동 기계</td></tr><tr><td>D1000 ScreenTape</td><td>Agilent</td><td>5067-5582</td><td>자동 전기영동 기계용 시약</td></tr><tr><td>NEBNext Ultra DNA 라이브러리 준비 키트 Illumina용</td><td>NEB</td><td>Cat#E7370L</td><td>DNA 라이브러리 준비 키트</td></tr><tr><td>NEBNext Multiplex Oligos Kit for Illumina(인덱스 프라이머 세트 1)</td><td>NEB</td><td>Cat#E7335S</td><td>DNA 라이브러리 준비 키트</td></tr><tr><td>용 멀티플렉스 올리고NEBNext Multiplex Oligos Kit for Illumina (Index Primers Set 2)</td><td>NEB</td><td>Cat#E7500S</td><td>추가 멀티플렉스 올리고 for DNA library preparation kit</td></tr><tr><td>NEBNext Library Quant Kit for Illumina</td><td>NEB</td><td>E7630L</td><td>quantification kit for library preparation</td></tr><tr><td>Agencourt AMPure XP beads</td><td>Beckman Coulter</td><td>A63882</td><td>magnetic beads</td></tr><tr><td>Illumina HiSeq 2500</td><td>Illumina</td><td>SY&ndash; 401&ndash; 2501</td><td>차세대 DNA 염기서열분석 플랫폼</td></tr><tr><td>40 &micro; m Falcon 나일론 세포 여과기</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-771-1</td><td></td></tr><tr><td>VWR 일회용 페트리 접시 100 x 25 mm</td><td>VWR</td><td>89107-632</td><td></td></tr><tr><td>Nichiryo 모델 8100</td><td>VWR</td><td>89078-446</td><td></td>Posi-Click Tube용 6.0 mL 주사기</tr><tr><td>, 1.7 mL, 자연 색상</td><td>Denville Scientific</td><td>C2170 (1001002)</td><td>Dnase/Rnase free</td></tr><tr><td>Vortex Genie 2</td><td>Scientific Industries</td><td>SI-0236</td><td></td></tr><tr><td>세척 병</td><td>VWR</td><td>16650-022</td><td>저밀도 폴리에틸렌, 와이드 마우스</td></tr><tr><td>스트레이너</td><td>VWR</td><td>470092-440</td><td>6.9 cm, 미세 메쉬</td></tr><tr><td>Corssing 탱크</td><td>Aquaneering</td><td>ZHCT100</td><td>개별 사육 탱크</td></tr><tr><td>iSpawn</td><td>Techniplast</td><td>N/A</td><td>대형 사육 탱크</td></tr><tr><td>FACSAria II</td><td>BD biosciences</td><td>N/A</td><td>세포 선별 기계</td></tr><tr><td>Wild M5a steromicroscope</td><td>Wild Heerbrugg</td><td>N/A</td><td>해부 현미경</td></tr><tr><td>Qubit 3 형광계</td><td>Thermo Scientific</td><td>Q33216</td><td>DNA 농도 측정을 위한 정량적 형광 기반 방법</td></tr><tr><td>Matlab</td><td>Mathworks</td><td>버전 2017a</td><td></td></tr><tr><td>Matlab Statistics Toolbox</td><td>Mathworks</td><td>버전 11.1</td><td></td></tr><tr><td>Matlab Curve Fitting Toolbox</td><td>Mathworks</td><td>버전 3.5.5</td><td></td></tr></tbody></table>

dna 복제 타이밍 zebrafish vivo에서 모델 시스템으로 사용 하 여 프로 파일링

Profiling DNA Replication Timing Using Zebrafish as an In Vivo Model System

DNA 복제 타이밍은 중요 한 세포 특성, 전시 chromatin 구조, 전사, 및 DNA 돌연변이 속도와 중요 한 관계 이다. 복제 타이밍에 변화가 개발 과정 및 암, 하지만 역할 복제 타이밍 개발에서 활약 하 고 질병 알려져 있지 않다. Zebrafish 최근 연구 복제 타이밍을 vivo에서 모델 시스템으로 설립 되었다. 여기 상세한 DNA 복제 타이밍을 결정 하는 제 브라를 사용 하기 위한 프로토콜. 성인 zebrafish 태아에서 셀 정렬 후 다음 세대 시퀀싱 데이터의 분석을 통해 DNA 복사본 수에 변화를 확인 하 여 고해상도 게놈 전체 DNA 복제 타이밍 패턴을 생성할 수 있습니다. Zebrafish 모델 시스템은 개별 세포 유형, 질병 모델, 또는 돌연변이 라인에 변화를 평가 하기 위해 사용할 수 있습니다 개발, 걸쳐 vivo에서 발생 하는 복제 타이밍 변경의 평가 대 한 수 있습니다. 이러한 방법을 개발 하는 동안 메커니즘 및 복제 타이밍 설립 및 유지 보수의 결정 요인 조사 연구 하면, 역할 복제 타이밍 돌연변이 tumorigenesis, 및 perturbing의 효과 개발 및 질병에 복제 타이밍입니다.

게시 된 복제 타이밍 데이터를 사용 하 여 대표 복제 타이밍 프로필 및 품질 관리 측정은15을 제공 됩니다. 처리의 초기 단계는 게놈, 읽기 길이 및 게놈 검사 통계, 계산 및 낮은 품질, 짝이 없는, 필터링 및 PCR 중복 읽기를 시퀀싱 데이터 정렬 포함. 전형적인 zebrafish 연속 샘플에 대 한 읽기 통계는 그림 2에 표시 됩니다. 필터링 후 읽기 카운트 변수 크기의 창과 데이터에서 결정 됩니다 부드럽게 하 고 정상화. 생물 복제에 대 한 대표적인 zebrafish 염색체의 일반적인 부드럽게/정규화 복제 타이밍 프로필 그림 3A에 표시 됩니다. 생물학 및 실험 복제에 대 한 프로필 시각적으로 매우 유사한 ( 그림 3A참조) 하 고 또한 염색체 (<strong c...

Zebrafish 최근 연구 개발 하는 동안 DNA 복제 타이밍을 vivo에서 모델 시스템으로 사용 되었다. 여기 상세한 프로필 복제 타이밍에 zebrafish 태아를 사용 하기 위한 프로토콜. 이 프로토콜 돌연변이, 개별 세포 유형, 질병 모델, 그리고 다른 종에서 복제 타이밍을 공부 하기 쉽게 적응 될 수 있다.

DNA 복제 타이밍 Zebrafish Vivo에서 모델 시스템으로 사용 하 여 프로 파일링

DNA replication timing is an important cellular characteristic, exhibiting significant relationships with chromatin structure, transcription, and DNA ...

이 절차의 전반적인 목표는 다양한 발달 단계에 있는 제브라피시 배아에서 전체 게놈 DNA 복제 타이밍 맵을 생성하는 것입니다. 이 방법은 배아 발달 중에 발생하는 염색질 변화가 DNA 복제 분기점의 시작에 어떤 영향을 미칠 수 있는지와 같은 세포주기 및 염색질 생물학 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 정의된 배아 발달 단계에서 생체 내에서 발생하는 복제 변화를 매핑한다는 것입니다.이 방법은 제브라피시 발달 중에 DNA 복제가 어떻게 변화하는지에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만 튜니케이트, 개구리 및 파리와 같은 다른 시스템이나 모델 유기체에도 적용할 수 있습니다. 일반적으로 이 방법을 처음 사용하는 사람들은 제브라피시 배아에서 단세포 현탁액을 생성하는 데 약간의 연습이 필요하기 때문에 어려움을 겪을 수 있습니다. 배아를 채취하기 전날 밤, 거의 같은 수의 수컷과 암컷을 사용하여 수십 마리의 번식 성체를 번식 탱크에 넣습니다.실험에 따라 다음 번식 전략 중 하나를 사용하십시오. 첫 번째 번식 전략의 경우 몇 마리의 수컷과 암컷 제브라피시를 개별 번식 탱크에 배치하고 칸막이를 사용하여 수컷과 암컷을 구분합니다. 이 접근 방식을 사용하는 경우 다양한 육종 탱크를 설정하고 각 배아를 풀링하여 생물학적 다양성이 개체군을 대표하는지 확인합니다.두 번째 번식 전략을 위해 수십 마리의 수컷과 암컷 제브라피시를 큰 번식 탱크에 결합하십시오. 배아 수가 충분히 많은 경우 이 전략을 사용하십시오. 그들이 다양한 설립자로부터 왔기 때문에 유전적으로 인구를 대표한다고 가정하는 것이 합리적입니다.시간 제한 짝짓기를 수행하려면 아침에 빛의 주기가 시작되자마자 시작하십시오. 물고기가 얕은 물에서 10분 동안 번식할 수 있도록 하고 배아가 빠져나갈 수 있도록 거짓 바닥을 만듭니다. 10분 후, 배아를 여과기에 붓고 세척 병을 사용하여 10cm 접시에 헹구어 배아를 채취합니다.같은 시점에 수집된 모든 배아를 풀링하고 수집 시간을 표시한 다음 즉시 섭씨 28.5도의 인큐베이터에 넣습니다. 동시에 발달하는 배아를 수집하려면 10분마다 배아 배치를 수집하는 것이 중요합니다. 이것은 배아 발달의 초기 단계에서 특히 중요합니다.하루에 한 쌍의 짝짓기 쌍에서 수백 개의 배아를 기대할 수 있습니다. 성체가 얻은 배아의 수가 20개 미만이 될 때까지 10분 주기로 번식할 수 있도록 합니다. 채취 후 약 1-1.5시간 후에 배아를 분류하고, 인큐베이터에서 배아를 꺼내 해부 현미경으로 관찰하고, 분류하여 죽은 난자와 수정되지 않은 난자를 제거합니다.배아를 세고 10cm 플레이트당 100개의 배아 밀도로 놓습니다. 새로운 E3 배지를 추가하고 배아를 섭씨 28.5도의 인큐베이터로 되돌립니다. 배아가 원하는 발달 단계에 도달하면 Stages of Embryonic Development of the Zebrafish에 따라 광학 현미경으로 단계를 형태학적으로 확인합니다.배아가 48hpf 이하인 경우 최대 1500개의 단계적 배아를 15ml 원뿔형 튜브에 이식하고 E3를 사용하여 여러 번 세척합니다. 배아 100개당 E3 1ml와 프로나제 용액 20마이크로리터를 넣고 부드럽게 휘젓습니다. 15밀리리터의 E3가 함유된 단일 튜브에서 최대 1,500개의 배아를 제거할 수 있습니다. 튜브를 옆으로 눕히고 최대 표면 대 부피 비율을 보장하기 위해 배아를 균일한 층으로 배열합니다.모든 융모막이 배아에서 떨어질 때까지 2-3분마다 튜브를 부드럽게 교반합니다. 총 디코리온테이션 시간은 Pronase 활동에 따라 다릅니다. 상층액을 제거하고 10ml의 E3로 배아를 세 번 부드럽게 헹굽니다.배아를 얼음 위에 놓고 남은 E3를 제거한 후, 배아 500개당 갓 준비한 얼음처럼 차가운 탈노킹 완충액 1ml를 사용하여 샘플을 세척합니다. 다음으로, P1000을 사용하여 배아를 위아래로 5-10회 부드럽게 피펫팅하여 난황 자루를 파괴합니다. 그런 다음 1ml를 1.5ml 마이크로분리 튜브에 옮기고 섭씨 4도, 중력의 500배에서 5분 동안 샘플을 원심분리합니다.샘플은 세포를 용해시키지 않고 단일 세포 현탁액을 생성할 수 있을 만큼 충분히 격렬하게 피펫팅해야 합니다. 이 단계에서는 몇 가지 연습이 필요합니다. 상등액을 제거하고 얼음처럼 차가운 1x PBS 1ml를 사용하여 펠릿을 세척하여 Ringer의 용액을 제거합니다.그런 다음 샘플을 다시 원심분리합니다. 상층액을 조심스럽게 제거하고 1x PBS 1ml에 세포를 재현탁합니다. 그런 다음 얼음 위에 튜브를 놓습니다.15ml 원뿔형 튜브에 얼음처럼 차가운 에탄올 3ml를 넣고 낮은 설정에서 EtOH 튜브를 부드럽게 소용돌이칩니다. P1000을 사용하여 소용돌이를 계속하면서 제브라피시 배아 세포 현탁액을 EtOH에 천천히 떨어뜨립니다. 총 1ml의 배아 세포 현탁액을 첨가하여 75%EtOH의 최종 고정 용액을 만듭니다.1ml의 세포 현탁액을 첨가한 후 튜브를 부드럽게 소용돌이쳐 혼합하고 섭씨 영하 20도에서 최소 1시간 동안 옆으로 눕히거나 현탁액을 2-3주 동안 냉동실에 보관합니다. 배아 DNA를 염색하기 위해 영하 20도에서 EtOH 고정 배아 세포를 제거한 후 중력의 1500배, 섭씨 4도에서 5분 동안 튜브를 원심분리합니다. 튜브를 얼음 위에 놓고 상층액을 조심스럽게 제거합니다.그런 다음 P1000을 사용하여 갓 준비한 차가운 PBS-BSA 1ml에 세포를 부드럽게 재현탁합니다. 중력의 1500배와 섭씨 4도의 온도에서 5분 동안 세포를 원심분리하고 샘플을 얼음 위에 놓습니다. 그런 다음 상층액을 제거하고 배아 1,000개당 200마이크로리터의 프로피듐 요오드화물 염색 용액을 추가하고 세포를 재현탁합니다.세포가 얼음 위에서 30분 동안 PI 용액에서 배양하도록 하고 5분마다 부드럽게 혼합합니다. 얼음 위의 50ml 원뿔형 튜브에 40마이크로미터 나일론 셀 스트레이너를 놓습니다. 그런 다음 세포를 부드럽게 피펫팅하여 메쉬를 통해 세포 용액을 혼합하고 여과합니다.주사기 플런저의 평평한 안쪽 끝을 사용하여 메쉬에 남아 있는 세포 덩어리를 부드럽게 파괴합니다. 매 1, 000 배아마다, 여과기를 통해서 세포를 헹구기 위하여 찬 PBS-BSA의 500 마이크로리터를 이용하십시오. 얼음 위의 15ml 원뿔형 튜브 위에 40마이크로미터 메쉬를 놓고 50ml 원뿔형 튜브의 세포 현탁액을 15ml 튜브로 두 번째로 여과합니다.마지막으로, 적절한 세포 분류 기기를 사용하여 레이저 여기를 561 나노미터로 설정하고 방출 감지를 20 대 610으로 설정하여 프로피듐 요오드화물을 검출합니다. 세포를 정렬하고 텍스트 프로토콜에 따라 추가 분석을 수행합니다. 읽기 매핑 품질을 결정하려면 먼저 mapQ 값의 통계를 사용하여 염기서열분석 데이터를 게놈에 정렬해야 합니다.또한, 계산된 판독 길이 통계량은 모든 시퀀싱 판독에 대한 삽입 크기 분포의 히스토그램으로 표시됩니다. 이 특정 실험의 결과는 170bp의 중앙값입니다. 이 막대 그래프는 총 매핑된 판독, 저품질 플래그를 포함하는 판독, 다른 염색체에 매핑되는 쌍을 사용한 판독, 거리 임계값을 초과하는 쌍을 사용한 판독 및 PCR 중복에 대한 판독 통계를 보여줍니다.제브라피시 샘플의 일반적인 염기서열분석 실행에 대한 총 매핑, 매핑되지 않은 및 페어링되지 않은 읽기, 적용 범위 및 읽기 해상도의 대표 수치가 여기에 나열되어 있습니다. 필터링 후 읽기 횟수는 가변 크기 창에서 결정되고 데이터는 평활화되고 정규화됩니다. 생물학적 복제에 대한 대표적인 제브라피시 염색체의 일반적인 평활화되고 정규화된 복제 타이밍 프로파일이 여기에 나와 있습니다.생물학적 복제와 실험적 복제에 대한 프로필은 매우 유사해야 하며 염색체의 길이를 따라 높은 상관관계를 보여야 합니다. 또한 프로필은 게놈 전체의 타이밍 값 간에 높은 상관관계를 표시해야 합니다. 색상 맵은 Pearson의 상관 계수를 나타냅니다.이 절차를 시도하는 동안 동시에 발달하는 배아가 수집되었는지 확인하는 것이 가장 중요합니다. 이 절차에 따라 모르폴리노 주사 또는 CRISPR-Cas9 돌연변이 유발과 같은 다른 방법을 수행하여 DNA 복제가 다른 발달 과정과 조정되는 메커니즘은 무엇입니까? 이 비디오를 시청한 후에는 동시에 발달하는 제브라피시 배아에서 세포주기의 특정 단계에서 세포를 수집하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.이러한 샘플의 수집은 전체 게놈 DNA 복제 타이밍 맵을 생성하는 데 중요합니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Genetics

유전학

신진 대사 연구 용 활용을 받아왔다 강력한 척추 모델을 대표 Zebrafish. 여기를 측정 할 수있는 빠른 방법을...

Zebrafish 태아의 대사 프로필 분석

여기, 우리는 개발을위한 체계적인 접근 방법을 제시 생리 학적 관련성이 민감하고...

Danio rerio를 사용하여 병적 인 인간 게놈의 생체 모델링에

고해상도 용융 분석 (르마)와 함께 PCR은 제브라 피쉬의 유전자형에 신속하고 효율적인 방법으로 보여줍니다.

고해상도 용융 분석과 PCR을 이용하여 신속하고 효율적인 Zebrafish의 유전자형

제브라피쉬는 고등 척추동물과의 유전적 유사성으로 인해 발생 생물학 및 인간 질병 연구를 위한 강력한 모델 시스템입니다. 이 프로토콜은 초기 배발생에 필수적인 유전자의 열성 돌연변이를 식별하기 위한 전방 스크리닝 전략에 활용할 수 있는 반수체 제브라피시 배아를 만드는 방법론을 설명합니다.

반수체 제브라 피쉬 배아의 생산에 의해<em&gt; 체외</em&gt; 시비

세포와 조직에서 단백질 수준은 종종 단단히 단백질 생산 및 통관의 균형에 의해 조절된다. 광 (FDAP) 후 형광 감쇄를 사용하면, 단백질의 클리어런스 동력학 실험적 생체 내에서 측정 할 수있다.

광 변환 한 후 형광 붕괴를 사용하여 생활 Zebrafish의 태아의 단백질 안정성을 측정 (FDAP)

유사분열은 모든 살아있는 유기체에 매우 중요하며 결함은 종종 암과 발달 장애로 이어집니다. 이 이미징 프로토콜과 제브라피시를 모델 시스템으로 사용하여 연구원들은 살아있는 척추 동물 유기체의 유사 분열과 유사 분열 과정에 결함이 있을 때 발생하는 수많은 결함을 시각화할 수 있습니다.

라이브 Zebrafish의 배아에서 유사 분열 부문 및 역학을 관찰

Zebrafish는 유전자 편집 기술의 출현으로 특히 생물 의학 연구에서 안정적인 유전자 모델 생물으로 사용 되었습니다. 애벌레 고기 예상 되는, DNA 추출 및 유전자 식별 전하실 수 있습니다. 여기, 꼬리 자르기, 빠르면 72 h 후 수정 하 여, zebrafish 애벌레에 대 한 효율적인 유전형 절차를 설명 합니다.

높은 처리량 DNA 추출 및 지 느 러 미 클리핑에 의해 3dpf Zebrafish 애벌레의 유전형

핵 표면 퍼짐은 만피증 도중 염색체 사건을 공부하기 위한 필수적인 공구입니다. 여기서 우리는 제브라피쉬 정자세포로부터 의한 1단계 진행 중에 메오성 염색체를 준비하고 시각화하는 방법을 시연한다.

제브라피쉬 정자세포에서 메오틱 염색체 스프레드 의 준비

골격 근 재생 조직 상주 근육 줄기 세포에 의해 구동, 근육 이영양증 등 많은 근육 질환에서 손상 되는, 그리고이 재생 하는 근육의 무능력 결과. 여기서는 근육 질환의 제브라피시 모델에서 근육 재생을 검사할 수 있는 프로토콜을 설명합니다.

근육 질환의 제브라피시 모델에서 근육 재생 검토

이 논문은 온전한 제브라피쉬 배아 내에서 정상 및 비정상적인 시토신 메틸화의 신속하고 효율적인 시공간적 모니터링을 위한 프로토콜을 설명합니다.

온전한 Zebrafish 배아 내에서 정상 및 비정상적인 시토신 메틸화에 대한 신속하고 효율적인 시공간 모니터링

RASopathies는 RAS-MAPK 경로 과활성화에 의해 발생하는 다계통 유전 증후군입니다. 검증을 기다리는 잠재적인 병원성 변이가 지속적으로 나타나고 있으며, 전임상 근거가 부족하여 치료가 제한됩니다. 여기에서는 Teen-reporter 제브라피시의 라이브 FRET 이미징에 의한 배아 발생 중 RASopathy 관련 ERK 활성화 수준과 약리학적 조절을 테스트하고 교차 검증하기 위한 생체 내 프로토콜에 대해 설명합니다.

Live FRET 현미경 검사 및 면역형광을 통해 초기 제브라피시 누난 증후군 모델에서 ERK 활동 조절을 평가하기 위한 효율적인 프로토콜

배우세요 제브라피시 배아에서 전체 게놈 DNA 복제 타이밍 맵을 생성하는 방법을. 이 기술은 생체 내에서 염색질 변화가 DNA 복제 개시에 미치는 영향을 연구하여 세포 주기와 발달 생물학 분야의 핵심 질문에 답할 수 있습니다.

DNA 복제 타이밍 Zebrafish Vivo에서 모델 시스템으로 사용 하 여 프로 파일링

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