Name: 애완 동물 Neuroinflammation 11C DPA-713을 사용 하 여 허 혈 성 뇌졸중의 마우스 모델에서의 영상 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 1 s
Description: 배우세요 허혈성 뇌졸중 마우스 모델에서 TSPO-PET 영상을 이용한 신경염증 정량화 방법을. DPA-713 방사성 추적자를 사용하여 생체 내 신경염증을 실시간으로 시각화하고 검증하는 실험 프로토콜입니다.

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저자는 마우스 모델을 제공 하 고 dMCAO와 가짜 수술을 수행할 Buckwalter 연구소 (특히 박사 토 드 피터슨) 감사 하 고 싶습니다. 또한, 우리 Invicro에서 토마스 Liguori VivoQuant 이미지 분석 소프트웨어, 박사 팀도 일, 닥터로 라 피사, 스탠포드 대학에서 그들의 조언에 대 한 시설 이미징 SCi3 작은 동물에서 박사 Frezghi Habte와 그의 기술 지원에 대 한 감사 하 고 싶습니다, 이 이미징 프로토콜 및 Radiochemistry 시설 (특히 박사 6 월 공원) 그들의 도움 [11C]의 합성 개발에 지원 DPA-713.

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</ol>

저자 관심 없음 충돌 선언합니다.

제시 프로토콜 [11C]를 사용 하 여 dMCAO와 가짜 쥐에서 neuroinflammation의 정량화 하는 방법에 설명 합니다 DPA-713-애완 동물 TSPO 애완 동물 시각화 및 neuroinflammation에서 비보에 날짜에 대 한 가장 널리 조사 이미징 바이오 마커 이다. TSPO 식 비-침략 적 탐지와 정량화 neuroinflammation의 염증 동안 뇌에서 명과에 upregulated입니다. 또한, 그것은 매우 번역 기술, 임상 및 전 임상 연구에 귀중 한 도구를 만드는입니다. 이 프로토콜 및 대표 결과 강조 [11C]를 사용 하 여의 적 부를 감지 하 여 획 및 다른 신경 성 질환에 vivo에서에서 neuroinflammatory 변경 모니터링 DPA-713 애완 동물.
이 연구에서는 dMCAO 수술 실시 되었다 3 개월 C57BL/6 여성 쥐를 사용 하 여. 상승 제한 선 (예: 중간 대뇌 동맥의 다른 모델에 비해 낮은 가변성 영구적인 초점 허 혈의 모델을 제공 하는 somatosensory 피 질 높은 재현성 경색을 준다이 모델 선정 되었다 폐색 (MCAO) 필 라 멘 트 방법)14. 뇌졸중 모델의 애완 동물 이미징 contralateral 반구 내의 ROIs를 사용 하 여 각 동물에 대 한 뇌의 내부 참조 영역을 포함 하의 이점이 있다. 이후 혼자 수술 결과, 수술 가짜 연구 설계에 의하여 쥐 craniotomy를 포함 하는 것이 중요 하다 고 동맥 폐색 없이 meninges의 조작을 수행한 일부 염증이 있을 것입니다. 혼자 craniotomy 기본 신경 조직과 면역 응답 선20의 독립에 지도 하는 병원 체의 도입 중단 될 수 있습니다. 위장 수술 후 염증 일부는 따라서와 신호 때문에 혼자 수술의 가능성을 제외 하려면 dMCAO 동시에 평가 합니다. DMCAO 코 호트 분석에 선 없이 수술에서 발생 하는 염증 등을 피하기 위해, 미스터 이미징 성공적인 뇌졸중 수술 및 경색 개발 확인을 실시 해야 합니다. MRI는 또한 정확 하 게 경색 contralateral ROIs를 그리는 데 필수적 이다 구조 참조 프레임을 제공 합니다. 또한, 정확한 이미지 처리 이미지 등록 및 투자 수익의 정의 포함 하 여 신뢰할 수 있는 정량화를 위해 필요 하다.
C-11 애완 동물 및 autoradiography 연구 radiotracers 분류 작업 시 추가 제한 마음에 지켜져야 한다. 일반적으로 연구 기관 현지 싸이 클 로트 론 액세스 제한 사용 C-11, 짧은 반감기 (20.33 분)를 고려 하는 것이 필수적입니다. 적절 한 방사능 운송 경로, 복용량 관리 및 수집 시간-포인트 결정 되어야 합니다 사전에 실험의 워크플로의 미리 준비 된 자세한 계획 팀은 신속 하 고 효율적으로 일할 수 있도록. 디자인과이 연구의 C-11 추적 프로그램을 사용 하 여 데이터 출력을 얻을 수를 증가 하는 동시에 4 쥐의 이미지에 맞게 설명 되어 있다. 가능 하면, 그것은 모든 마우스 cannulated 권장 고 C-11 추적 프로그램 주입 전에 최소 radiotracer 감퇴 되도록 이미징 시설에 도착 하는 때 그들의 CT 검사 중간. 이 단계별 프로토콜은 또한 가장 빠른 cannulation, 복용량 측정, 추적 프로그램 삽입, 애완 동물 스캐닝 및 중요 한 방사성 붕괴 이전 뇌 단면 수 있도록 적어도 3 연구자를 포함 하는 팀에 의해 수행 됩니다. 애완 동물 검사의 시작 및 모든 4 쥐의 주입을 동시에 수행 하는 두 사람이 필요 합니다. 사출 직전 애완 동물 수집 시작 이유 약 동학 및 혈액에서 추적 프로그램 배포의 역학 및 관심 영역 정확 하 고 완전 하 게 캡처 되도록. 활발 한 교육 및 실험의 원활한 실행을 보장 하는 것 많은 단계가 필요할 수 있습니다. 특히,이 프로토콜은 그들의 꼬리에 검은 머리 때문에 어려울 수 있으며 뇌졸중 발생 한 후 또는 여러 시간-포인트에 동일한 마우스를 이미징 하는 경우 더 많은 도전 될 수 있습니다 C57BL/6 쥐의 성공적인 꼬리 정 맥 cannulation에 의존 .
애완 동물 화상 진 찰에 대 한 또 다른 고려 사항은 radiotracer 복용량 및 잔여 활동 측정, 측정의 정확한 시간을 포함 하 여의 주의 기록 포함 되어 있습니다. 이 검사의 때에 주입 된 복용량의 정확한 부패 정정 필수적 이며 각 투자 수익에 대 한 추적 프로그램 이해 (즉, %ID / g)의 정확 하 게 측정을 얻는 데 사용 됩니다. 정확한 이미지 분석을 보장 하기 위해 스캔의 시간에 각 마우스에 존재 하는 방사능의 정확한 금액을 알고 필수적입니다. 따라서, 그것은 복용량 교정기 C-11 같은 수명이 짧은 동위 원소를 사용 하 여 오류를 방지 하려면 스캐너 컴퓨터에 시계를 동기화 하는 것이 좋습니다.
정확한 애완 동물 이미지 정량화 또한 스캐너와 설치의 정확성에 의해 제한 될 수 있습니다. 따라서 PET/CT 이미지의 정확한 정량화를 위해, 그것은 스캐너의 CT와 애완 동물 구성 요소에 대 한 품질 관리 검사를 수행 하는 것이 중요. CT 품질 관리 검사 x-레이 소스 컨디셔닝, 다크/라이트, 및 설정된 교정 떨어져 센터 포함 됩니다. 이러한 교정 측정 되며 시스템 잡음과 해야 합니다에 대 한 올바른 인수 수행된 전에 스캐너 제조업체에서 권장 하는 대로. 교정은 또한 애완 동물 스캐너에 대 한 수행 되어야 한다. 이 일반적으로 알려진된 농도의 방사능을 포함 하는 "표준 / 애완 동물 팬텀" 스캔 스캔 포함 됩니다. 준비할 때 표준, 연구, 동물 영상으로 매개 변수는 마우스와 같은 수집의 본문에 비슷한 볼륨에서 단일 마우스를 관리에 비해 복용량에에서 사용 된 동일한 방사성 동위 원소를 사용 하 여 최상 이다. 물에 희석 radiotracer 가득 20 mL 주사기가 프로토콜에서 표준 교정 감지기에 의해 측정 된 실제 복용량에 따라 수정 계수를 계산 하는 데 사용 이후 애완 동물 이미징 결과 함께 사용 됩니다. 수정 비율 애완 동물 이미지에 대 한 관심의 영역에서 추적 통풍의 정확한 정량화를 위해 실험에서 얻은 영상 데이터에 적용할 수 있습니다. 이 검사의 날에 모든 백그라운드 작업을 고려 이외에 방사성 핵 종 양전자 범위에 대 한 계정. 복용량 교정기가 수정 계수의 세대의 필수적인 부분으로,이 장비 제조업체 지침에 따라 정기적으로 보정도 필수적입니다.
Ex vivo autoradiography 할 때 그것은 높은 신호-에-배경 관심의 지구에 되도록 주입 후 안락사에 대 한 최적의 시간 포인트를 선택 하는 것이 중요. 30 분 포스트 주입에는 vivo에서 [11C] DPA-713 autoradiography 동적 애완 동물 이미지-즉, 하는 동안 수집 된 데이터를 사용 하 여에 대 한 선정 가이드로, 또한 시간과 C-11의 짧은 반감기를 고려 하는 동안 동적 공군 섹션을 추출 후 뇌 조직의 노출 관련. 이것을 고려 하면 [11C] DPA-713 autoradiography 높은 [11C] DPA-713 복용량과 30 분의 주입을 위해 수 있도록 마우스의 별도 코 호트에서 수행 되어야 합니다 관류와 마 취 안락사에 대 한 시간-포인트. 작은 vivo에서 수행 autoradiography 비보 전 을 실시 하기 전에 3-4 쥐와 함께 애완 동물 파일럿 연구 autoradiography에 대 한 최적의 시간 포인트를 결정 하기 위한 도움이 될 것입니다. Ex vivo autoradiography에 대 한 추가 고려 생쥐 주입 후 복구 하거나 안락사까지 마 취 유지 여부입니다. 마 취 유지 스캔의 조건을 모방 하 고 radiotracer 배포 또는 배설 속도 론 복구에 의해 변경 되지 않습니다. 또한,이 복구 및 후속 유도 방지 하 여 쥐에 추가적인 스트레스를 방지 합니다. 마지막으로, ex vivo 프로토콜에 대 한 유용한 추가 immunohistochemical 경색 위치의 고해상도 이미지를 생성 하 (방사능 감쇄) 후 얼룩 통해 autoradiography 사용 두뇌 조각에서 지역 피해를 평가 하는 것과 볼륨입니다.
C-11 기반 추적 프로그램의 사용 제한으로,이 프로토콜은 더 현지 싸이 클 로트 론 없이 위치에 적용 될 수 있는 기반 F-18 (109.77 분의 반감기)와 함께 사용 TSPO 추적기에 대 한 쉽게 수정할 수 있습니다. 또한,이 프로토콜 4 마우스 이미지 설정의 사용을 설명합니다. 비록이 높은 처리량 방법 최적의 C-11 추적 프로그램을 사용 하는 경우,이 프로토콜은 침대를 이미징 한 마우스를 사용 하 여 그 또한 수정할 수 있습니다. 신중 하 게 계획 하 고이 프로토콜에 설명 된 기술 일관 된 훈련 [11C]를 사용 하 여 데이터의 생성으로 이어질 것입니다 DPA-713, neuroinflammation 질병 징후에의 역할을 쉽게 적용할 수 있는 고 신경 장애의 다른 설치류 모델에서의 진행 또한,이 기술은 immunomodulatory 치료 대상으로 microglia/세포 vivo에서 응답을 평가 하기 위해 사용 될 수 있습니다.

뇌졸중 사망의 다섯 번째 주요 원인이 고 미국1에 장애의 주요 원인입니다. 허 혈 성 뇌졸중 발생 하는 경우 (예: 혈액 응고 또는 지방 예금) 뇌에 혈액의 흐름에 지역화 된 중단의이 경우 (~ 87%), 압도적인 다를 나타냅니다. 영향을 받는 지역에 산소와 영양소 공급 감소 이후 하 고 복잡 한 pathologic 폭포 주변 지역 외에 선 코어 (경색) 내 신경 죽음의 결과로 시작 됩니다. Neuroinflammation 두 주민 두뇌 면역 세포 (microglia)이이 손상으로 이어지는 통로에 중요 한 구성 요소 이며이에 기여할 생각 주변 면역 세포 (호 중구, T 세포, B 세포, 및 monocytes/대 식 세포) 침투 파괴적인 캐스케이드2,3. 활성화 된 microglia 및 대 식 세포는 뇌경색2다음과 같은 해로운과 유익한 효과의 보고서와 함께이 neuroinflammatory 응답을 중앙. 따라서, 뇌졸중 다음이 셀의 비보에 기여를 평가 하는 것이 필수적 이다.
애완 동물 이다 vivo에서 11C, 13N, 방사성을 방출 하는 양전자 (β +)으로 표시 하는 특정 분자의 사용을 통해 처리 하는 생물학의 시각화를 가능 하 게 강력한 3 차원 분자 이미징 기술 15O와 18f. 이 비-침략 적 방법 생활 그대로 과목, 실시간으로, 분자 정보 수집을 허용 하 고 경도 조사 허용 전 비보 방법 (예: immunohistochemistry)에 비해 많은 이점이 있다. 애완 동물 TSPO, 활성화 microglia 및 주변 혈통 골수성 세포의 표식의 계량 및 신체 내에서, 타고 난 면역 세포 응답을 추적 하는 수단을 제공 합니다 영상과 선과 응답 치료 후 염증을 평가 하기 위해 이용 될 수 있다 개입입니다. TSPO, 이전 주변 장치 형 다이아 수용 체로 알려진 콜레스테롤 수송 및 neurosteroids4의 합성에 역할으로 18 kDa 단백질 이다. 또한, 증거 TSPO neuroinflammation에 신경 생존5,6, 염증 선7를 포함 하 여 관련 된 많은 신경 성 질환의 증가 식의 보고서와 관련 되어 제안 8치 매, 파 킨 슨 병9 그리고 다 발성 경화 증10. TSPO는 외부 미토 콘 드리 아 막에 있으며 매우 주변, 특히 스테로이드 관련된 조직 (예: 분 비)와 심장, 신장, 그리고 폐10에서 중간 수준에에서 표시 됩니다. 그러나 건강 한 뇌, TSPO 레벨은 낮고 명과6,11주로 제한. 시 신경 손상, 뇌졸중, 관찰 등 중앙 신경 시스템 (CNS)에 TSPO 수준을 크게 증가. TSPO의 관찰된이 upregulation 식 수준의 염증의 심각도의 정확한 표시기를 제공 하 이미지 neuroinflammation vivo에서 에 악용 될 수 있습니다. 따라서,이 방법의 목표는 정확 하 게 계량 neuroinflammation TSPO-애완 동물을 사용 하 여 허 혈 성 뇌졸중의 마우스 모델에서의비보에 기여
여러 TSPO 추적기 개발 된 neuroinflammation의 애완 동물 화상 진 찰에 대 한. 여기, TSPO-애완 동물 영상 설명 [11C] DPA-71312를 사용 하 여 유망한 2 세대 TSPO 추적, 향상 된 신호 소음 및 일반적인 바인딩 보다 더 역사적으로 사용된 [11C]를 표시 한 PK11195 13 . 예를 들어, 뇌졸중의 dMCAO 마우스 모델이 방법14에 대 한 선정 되었습니다. 이 모델에는 일시적인 craniotomy somatosensory 피 초점 국 소 빈 혈 결과 원심 중간 대뇌 동맥의 영구 결 찰 포함 됩니다. 이 전 임상 선 연구의 허 혈 성 손상 및이 모델과 관련 된 낮은 사망률 높은 재현성 때문에 유리 하다. 날짜 하려면, TSPO-애완 동물 이미징 연구는 아직 dMCAO 설치류 모델에 보고 됩니다. 그러나, 이전 애완 동물 이미징 연구 중간 대뇌 동맥 폐색 (MCAO) 모델을 사용 하 여, 쥐와 쥐, 더 심각 하 고 가변 스트로크 모델 보고 3 일 및 7 일 후 스트로크15, 주위 피크 증가 TSPO 식 16,,1718. 따라서, 우리는 높은 TSPO 식에 맞춰 6 일 포스트-dMCAO 이미징 애완 동물을 수행. [11C] 뇌의 DPA 713 이해 (infarcted) 동측에 평가 되었다 고 contralateral 반구. TSPO 애완 동물 구조 MRI, 경색의 정확한 묘사와 관심사 (ROIs)의 contralateral 지역 수와 결합 되었다. 여기 우리 아틀라스 기반 및 [11C] DPA-713 이해를 계산 하는 MRI 기반 ROI 접근을 설명 합니다. 비장에 radiotracer 이해 그룹 간의 염증의 주변 수준 조사를 평가 했다. 이 방법은 spatiotemporal 역학과 뇌졸중 및 기타 신경학 상 질병에 특정 neuroimmune 상호 작용의 역할에 대 한 중요 한 통찰력을 제공 하는.

<table><tbody><tr><td>Inveon PET/CT 스캐너</td><td>Siemens</td><td>버전 4.2</td><td></td></tr><tr><td>MRI 스캐너</td><td>Varian</td><td></td><td>7 Telsa</td></tr><tr><td>ParaVision 소프트웨어</td><td>Bruker</td><td>버전 6.0.1</td><td>MRI 운영 소프트웨어</td></tr><tr><td>VivoQuant 소프트웨어</td><td>InVicro</td><td>버전 2.5</td><td>이미지 분석 소프트웨어</td></tr><tr><td>Inveon Research Workspace 소프트웨어</td><td>Siemens</td><td>버전 4.2</td><td>스캐너 운영 소프트웨어. microQView, 후처리 관리 소프트웨어</td></tr><tr><td>용량 보정기</td><td>Capintech</td><td></td><td>CRC-15 PET</td></tr><tr><td>태풍 형광체 이미저 9410</td><td>GE 헬스케어</td><td>8149-30-9410</td><td></td></tr><tr><td>버터플라이 카테터</td><td>SAI Infusion Technologies</td><td>BFL-24</td><td>27.5 G 바늘</td></tr><tr><td>1 mL 주사기</td><td>BD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>인슐린 주사기</td><td>BD</td><td>329461</td><td>바늘이 있는 0.5 mL 인슐린 주사기</td></tr><tr><td>20 mL 주사기&nbsp;</td><td>VWR</td><td>BD302831</td><td>BD 주사기 슬립 팁 눈금</td></tr><tr><td>조직 접착제</td><td>Santa Cruz Animal Health</td><td>sc-361931</td><td>3 mL</td></tr><tr><td>열 램프</td><td>Fluker</td><td>27002</td><td>클램프 및 스위치가 있는 5.5" 파충류 열 램프</td></tr><tr><td>0.9% 멸균 식염수</td><td>Pfizer</td><td>00409-4888-10</td><td>주입용 0.9% 염화나트륨, 10 mL</td></tr><tr><td>눈 윤활제</td><td>Watson Rugby</td><td>PV926977</td><td>인공 눈물 윤활제 눈 연고, 1/8 oz</td></tr><tr><td>Chux 흡수 시트</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>1420662</td><td>일회용 흡수 패딩</td></tr><tr><td>아이리스 가위</td><td>세계 정밀 기기</td><td>503708-12</td><td>11.5 cm, 스트레이트, 12팩</td></tr><tr><td>수술용 테이프</td><td>3M Durapore</td><td>1538-0</td><td>1/2" x 10 야드 롤, 실크, 알레르기 유발 성분이 없는</td></tr><tr><td>마우스 PET 침대</td><td>집 내</td><td></td><td>4 마우스 PET 침대</td></tr><tr><td>라이터</td><td>Bic</td><td>UDP2WMDC</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Henry Schein</td><td>NDC 11695-6776-2</td><td>등매, 흡입 마취제, 250 mL</td></tr><tr><td>산소</td><td>Praxiar</td><td>UN1072</td><td>압축 가스</td></tr><tr><td>Autoradiography cassette</td><td>Cole Palmer</td><td>EW-21700-34</td><td>알루미늄, 8" x 10"</td></tr> <tr><td>Autoradiography film</td><td>GE Life Sciences</td><td>28-9564-78</td><td>저장 인광 스크린 BAS-IP SR 2025 E 초해상도, 20 &times; 25 cm, 스크린 전용</td></tr><tr><td>마이크로톰 블레이드</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>30-508-35</td><td>MB35 프리미어 일회용, 34도; 절단 각도</td></tr><tr><td>마이크로톰</td><td>마이크로미</td><td></td><td>HM 550</td></tr><tr><td>현미경 슬라이드</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-550-15</td><td>슈퍼프로스트&트레이드; Plus Microscope Slides</td></tr><tr><td>OCT liquid</td><td>VWR</td><td>25608-930</td><td>-10°C의 온도에서 저온 유지 절편을 위한 수용성 글리콜 및 수지 제형; C (14&deg; F) 이하</td></tr><tr><td>동결 금형</td><td>Poly sciences</td><td>18646A-1</td><td>일회용 파라핀 금형</td></tr><tr><td>Saran 랩</td><td>Saran</td><td>25700001300</td><td></td></tr><tr><td>소독제</td><td>Virkon S</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

애완 동물 neuroinflammation [11c] dpa-713을 사용 하 여 허 혈 성 뇌졸중의 마우스 모델에서의 영상

PET Imaging of Neuroinflammation Using [11C]DPA-713 in a Mouse Model of Ischemic Stroke

Neuroinflammation은 뇌경색을 다음과 같은 병 적인 캐스케이드에 중앙 이다. 비-침략 적 분자 이미징 방법 임시 역학과 뇌졸중에 특정 neuroimmune 상호 작용의 역할에 대 한 중요 한 통찰력을 제공 하기 위해 가능성이 있다. 특히, 양전자 방출 단층 촬영 (PET) 이미징 translocator 단백질 18 (TSPO), kDa 활성화 microglia 및 주변 혈통 골수성 세포의 감 적의를 감지 하 여 neuroinflammation 비보를 추적 수단을 제공 합니다. 여기, 선물이 neuroinflammation를 사용 하 여 정확 하 게 계량 하는 방법 [11C]N,N-Diethyl-2-[2-(4-methoxyphenyl)-5,7-dimethylpyrazolo[1,5-a]pyrimidin-3-yl]acetamide ([11C] DPA-713), 유망한 2 세대 TSPO-애완 동물 radiotracer, 원심 중간 대뇌 동맥 폐색 (dMCAO) 운영 하는 가짜 쥐에 비해. MRI는 뇌졸중을 확인 하 고 경색 위치와 볼륨 정의 수행된 2 일 포스트 dMCAO 수술을 했다. 애완 동물/계산 단층 촬영 (CT) 영상 캡처 다음 스트로크 TSPO 수준에서 피크 증가 6 일 포스트 dMCAO 실행 되었다. 애완 동물 이미지의 정량 [11C]의 통풍 관을 평가 하기 위해 실시 되었다 두뇌와 중앙과 주변 염증의 수준을 평가 하기 위해 dMCAO와 가짜 쥐의 비장에 DPA-713. Vivo에서 [11C] DPA 713 뇌 이해 autoradiography 비보 전 을 사용 하 여 확인 되었다.

마우스 수술 성공 선과 [11C] 확인 MRI DPA-713 애완 동물 4 마우스를 동시에 검색 하 여 실행 되었다. 애완 동물, CT 및 MR 이미지 공동 등록 이전에 수동으로 뇌 ROIs를 드로잉 하 고 반자동된 분할 뇌 아틀라스 분석 동측 contralateral 지역 (그림 2) 통풍 관 추적 조사를 했다.
PET/CT 이미지 및 시간 활동 곡선 (시간의 기능으로 공군 radiotracer 활동) 동측 contralateral 반구 (그림 3A) 대에서 증가 [11C] DPA-713 통풍 관을 표시합니다. 50-60 분에서 표현 하는 사용 하 여 동적 애완 동물 뇌 이미지의 정량화 데이터 공개 추적 통풍 관 (%ID / g)는 동측에 (infarcted) 사용 하 여 수동으로 그려진 가짜 쥐에만 dMCAO, contralateral 반구에 비해 크게 증가 투자 수익 접근 방식 (그림 3B). 증가 된 통풍 관 또한 dMCAO 및 가짜 쥐 사이 동측 반구에서 관찰 되었다. 동측 contralateral 반구 사이의 중요 한 차이가 아틀라스 ROIs (보통 somatosensory 피 질 제한) 경색의 크기 보다 더 크게 되 고 따라서 diluting 인해 가능성이 아틀라스 방식을 사용 하 여 관찰 했다는 신호입니다. 그러나, dMCAO 가짜에 비해 전반적인 증가 된 통풍 관은 관찰 모든 ROIs 경색19외부 지역에 있는 증가 TSPO 식 시연 MCAO 모델 마우스를 사용 하 여 이전 보고서 정렬 하. 동측 contralateral 비율; 두 가지 방법을 사용 하 여 가짜 쥐 대 dMCAO에서 증가 했다 그러나,이 다름은만 투자 수익 접근 방식에 큰 차이 때문 뇌 아틀라스 접근을 사용 하는 피 질에서 중요 한 이었다. 이 각 그룹에 있는 쥐의 수를 증가 하 여 극복할 수 있습니다. [11C] DPA-713 글귀 비장에의 부 량 그룹 (그림 4) 사이 상당한 차이가 나타났다.
뇌 dMCAO 마우스 애완 동물 화상 진 찰 결과 ex vivo 높은 해상도 디지털 autoradiography (그림 5)에 의해 확인 되었다. 증가 [11C] DPA-713 통풍 관은 건강 한 뇌 조직 주변에 무시할 수 신호 infarcted 조직에서 관찰 되었다. 이러한 이미지의 정량 동측 1.4에서 2.09 dMCAO 마우스에 이르기까지 contralateral 비율을 밝혔다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57243/57243fig1.jpg"> 그림 1: 애완 동물 스캐너 및 작업 영역 설정. 모든 작업은 무 균 환경을 만들기 위해 보호 흡수 성 패딩에 덮여 있었다. (A) 교정, 후 4 마우스를 동시에 이미징 위해 3D 인쇄 마우스 침대 스캐너 및 마 취에 연결 된 모든 4 쥐 코 콘에서 확보 했다. (B) 애완 동물 화상 진 찰에 대 한 필요한 장비 준비 되었다 사전에 식 염 수 채워진 27.5 G 카 눈 윤 활 유, 에탄올 면봉, 열 램프, 외과 테이프, 조직 접착제, 0.5 mL 복용량 주사기가 위, 라이터를 포함 하 여. (C) radiotracer 주입, 식 염 수-플러시 주사기와 스캐너 뒤가 위 장소. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57243/57243fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57243/57243fig2.jpg"> 그림 2: 동측 Contralateral 수익과 오른쪽/왼쪽-분할 반구 뇌 아틀라스 애완 동물 이미지 분석 과정. 이미지 분석 소프트웨어는 수동으로 사용 하 여 관심사 (ROIs)의 동측 contralateral 지역에 추적 프로그램 도입을 결정 하는 데 사용 되었다 그려진 ROIs 및 반자동된 3D 분할 아틀라스 접근. 자동 3D PET/CT 등록은 CT 이미지에 정의 된 해당 마우스 두개골 내에서 뇌 MRI의 수동 등록 뒤 실시 됐다. 3D ROI 도구를 수동으로 동측 (빨간색)을 그리는 데 사용 및 contralateral (녹색) ROIs MRI에는 경색을 사용 하 여 참조로. 분할 방법에 대 한 3D 왼쪽/오른쪽-분할 마우스 뇌 아틀라스 로드 되었고 CT 이미지에서 정의 된 두개골 안에 장착. 뇌 ROIs이 3D 마우스 뇌 아틀라스에서 정량화에 대 한 사용 포함 왼쪽 피 질 (어두운 회색), 왼쪽 해 마 (수레 국화 파란색), 왼쪽이 (딥 핑크), 오른쪽 피 질 (토마토 레드), 오른쪽 해 마 (녹색), 그리고 오른쪽 Striatium (청록색). [11C]의 통풍 관 각 지역에서 DPA 713 nCi/cc에서 얻은 고 각 마우스에 대 한 검색의 시간에서 부패 수정 복용량을 정상화 하 여 그 후에 %ID/g 변환 되었습니다. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57243/57243fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57243/57243fig3.jpg"> 그림 3 : DMCAO에 가짜 쥐 DPA-713 뇌 이해 대표 Vivo에서 [11C]. (A) 동적 PET/CT 이미지와 공군 입증 받았다 DMCAO 쥐의 동측 외피에 증가 [11C] DPA-713 글귀 (n = 3) 가짜에 대 한 약간의 증가 (n = 3) 운영 하는 상당히 큰 시연 DMCAO 쥐와 쥐 경색과 뇌 (%ID/g)의 contralateral 측 사이 비율 주입 된 복용량에 대비. (B) 애완 동물 정량화 (50-60 분 요약) 동측 ROI ROI 접근을 사용 하 여 그리고 분할 아틀라스 접근을 사용 하 여 피 질 (Ctx)에 크게 증가 된 통풍 관을 밝혔다. 상당한 차이가 마 (HC) 또는 (Str)에서 발견 됐다. 분석 모두를 사용 하 여 접근 했지만 뇌 아틀라스 방식을 사용 하 여 Ctx에 통계적으로 유의 한 증가를 contralateral 동측 비율 보였다. * (p &lt; 0.05), * * * (p &lt; 0.001) <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57243/57243fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57243/57243fig4v2.jpg"> 그림 4: DMCAO에 대표 비보 [11C] DPA-713 비장 글귀와 가짜 쥐. (A) [11C] DPA 713 동적 PET/CT 이미지를 보여주는 비장 ROIs dMCAO에서 (n = 3)와 가짜 (n = 3) 쥐. (B) 양적 결과 dMCAO 및 가짜 쥐 사이 비장 이해에 중요 한 결과 보여 줍니다. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57243/57243fig4v2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57243/57243fig5v2.jpg"> 그림 5 : 대표 Autoradiography 결과. 디지털 autoradiography 이미지 contralateral 반구에 비해 증가 [11C] DPA-713 통풍 관은 동측에서 보여 줍니다. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57243/57243fig5v2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

양전자 방출 단층 촬영 (PET) 이미징 translocator 단백질 18 kDa (TSPO)의 개발에 neuroinflammation의 동적 역할 및 뇌 질환의 진행을 시각화 하 비-침략 적 수단을 제공 합니다. 이 프로토콜에는 허 혈 성 뇌졸중의 마우스 모델에서 neuroinflammation를 검색 하기 위해 TSPO-애완 동물 및 비보 전 autoradiography를 설명 합니다.

애완 동물 Neuroinflammation [11C] DPA-713을 사용 하 여 허 혈 성 뇌졸중의 마우스 모델에서의 영상

Neuroinflammation is central to the pathological cascade following ischemic stroke. Non-invasive molecular imaging methods have the potential to provide ...

이 실험의 전반적인 목표는 TSPO-PET 및 MR 이미징을 사용하여 허혈성 뇌졸중의 마우스 모델에서 신경염증의 공간적 분포와 정도를 정확하게 정량화하고 생체 외 자가방사선 촬영을 사용하여 이러한 생체 내 결과를 검증하는 것입니다. PET 이미징을 사용하여 살아있는 피험자의 신경염증을 시각화하는 방법에 대한 이 단계별 가이드를 공유하게 되어 정말 기쁩니다. 여기서는 스트로크의 마우스 모델을 예로 사용합니다.이제 이 기술을 사용하려는 이유는 무엇입니까? 몇 가지 이유가 있습니다. 첫 번째는 중추신경계에서 발생하는 염증인 신경염증이 뇌졸중뿐만 아니라 알츠하이머병, 다발성 경화증, 파킨슨병 등 수많은 뇌 질환의 기저에 있는 것으로 생각된다는 것입니다.따라서 이러한 생물학적 현상을 실제로 연구할 수 있는 기술을 보유하는 것이 매우 중요합니다. 둘째, PET 이미징은 보다 전통적인 기술에 비해 많은 이점을 제공합니다. 예를 들어, 이러한 전통적인 기술의 대부분은 인간과 쥐의 사후 뇌 조직을 모두 사용하는 데 크게 의존하고 있으며, 여러 가지 중요한 통찰력을 제공했지만 이러한 기술은 본질적으로 정적이므로 한 순간에 대한 정보만 실제로 알려줄 수 있습니다.우리는 뇌와 면역 체계가 모두 매우 역동적이라는 것을 알고 있기 때문에 살아 있고 손상되지 않은 시스템에서 이러한 분자 과정을 실제로 포착할 수 있는 기술을 원한다는 것은 이치에 맞으며, 이것이 바로 PET 이미징이 하는 일입니다. 여기에서는 TSPO 또는 트랜스로케이터 단백질에 결합하는 것으로 알려진 특정 PET 방사성 추적자인 DPA-713을 사용하는 방법을 보여드리겠습니다. 한 마리의 마우스뿐만 아니라 네 개의 마우스에 동시에 이미지를 동적으로 주입하는 방법을 구체적으로 보여드리며, 이것이 왜 그렇게 중요한지 동일한 추적자 배치로 주어진 날에 이미지화할 수 있는 마우스의 수를 늘리는 데 실제로 도움이 되어 실험을 간소화하는 데 실제로 도움이 되기 때문입니다.기술적으로는 어려운 일이지만, 이 비디오가 자신의 실험실에서 이 작업을 수행할 수 있도록 안내하는 데 도움이 되기를 바랍니다. 먼저 마취된 마우스를 PET/CT 스캐너 베드에 엎드려 놓고 콧방울 안에서 곧게 펴지고 단단히 고정되었는지 확인합니다. 부드러운 수술용 테이프로 각 마우스의 머리와 몸통을 침대에 테이프로 붙여서 테이프 배치로 인해 호흡이 제한되지 않도록 합니다.동물이 침대에 고정되고 호흡이 안정되면 레이저 십자선을 켜고 스캔 침대를 움직여 4마리의 쥐 모두의 뇌와 정렬되도록 합니다. 스캐너 베드를 마우스의 뇌가 시야의 중심에 최대한 가깝게 있는 획득 위치로 이동합니다. 마우스의 스카우트 보기 이미지를 획득하여 위치를 확인하고, 필요한 경우 인터페이스에서 시야 상자를 드래그하여 위치를 조정합니다.마지막으로, 스캐너 소프트웨어에서 Start Workflow(워크플로 시작)를 클릭하여 CT 스캔을 시작하고, Display Interactive User Prompts(대화형 사용자 프롬프트 표시)를 선택하여 추적자 주입 전에 PET 스캔을 수동으로 시작할 수 있습니다. 마우스가 CT에서 PET로 자동으로 진행되면 방사성 추적자 주입을 위해 스캐너 뒷면을 설정합니다. 보호적이고 흡수력이 좋은 패딩을 선반에 놓고 가위와 라이터를 손에 들고 있는지 확인하십시오.밀봉된 카테터 튜브를 가위로 잘라냅니다. 카테터 라인에 기포가 없는지 확인하고 10-20마이크로리터 식염수 세척을 수행하여 캐뉼라가 여전히 정맥 내에 있는지 확인한 다음 이전에 측정된 선량 주사기를 4개의 카테터 각각에 로드하여 각 마우스에 투여된 용량을 추적합니다. PET 스캔을 시작할 준비가 되면 확인을 클릭하는 동시에 10초 타이머를 시작합니다.두 명의 연구원을 스캐너 뒤쪽에 놓고 투여 주사기를 손에 들고 타이머가 0이 되면 4개의 마우스를 동시에 주입하도록 합니다. 각 카테터를 50-100마이크로리터의 식염수로 세척하여 전체 용량이 꼬리 정맥으로 들어가도록 하고 라이터를 사용하여 튜브를 다시 한 번 밀봉합니다. 다음으로, 선량 교정기를 사용하여 선량 주사기를 측정하여 잔류 방사능 값을 구합니다.값과 값이 기록되는 시간을 기록해 둡니다. 스캔이 완료되면 모션 제어 패널 내의 수평 홈 버튼을 사용하여 PET 베드를 원래 위치로 되돌립니다. 스캐너에서 마우스를 제거하고 카테터를 조심스럽게 제거합니다.과도한 출혈을 방지하기 위해 캐뉼레이션 부위에 부드럽게 압력을 가합니다. 그런 다음 용량 교정기를 사용하여 카테터의 잔류 활성을 측정합니다. 마지막으로, 첫 번째 파일에서 생성된 히스토그램 데이터를 사용하여 각 스캔을 자동으로 재구성하는 후처리 관리 소프트웨어를 열어 데이터를 재구성합니다.PET 분석의 경우, 먼저 이미지 분석 소프트웨어를 열고, Open Data(데이터 열기) 아이콘을 클릭하여 CT 이미지를 로드하고, Append Data(데이터 추가) 아이콘을 선택하여 동적 PET를 로드합니다. 드롭다운 메뉴에서 시계열 연산자를 통해 데이터의 시각적 품질 제어를 수행합니다. 참조(reference)와 전역(global)을 선택하고 색상 스케일에 적절한 최소값과 최대값을 적용합니다.동적 PET 데이터를 프레임별로 시각화하여 방사능 흡수를 확인하고 스캔 내에서 교란된 움직임이 있는지 확인합니다. 그런 다음, 산술 함수를 사용하여 평균 PET 이미지를 만듭니다. 선택한 평균을 선택하고 참조를 선택 취소한 다음 입력 1, 입력 2 및 입력이 선택되어 있는지 확인하여 모든 PET 프레임의 평균을 생성합니다.데이터 관리자 탭으로 이동하고 평균 이미지를 입력 1 위치까지 끌어다 놓으면 평균 PET 이미지를 사용하여 PET 신호를 시각화할 수 있습니다. 그런 다음 Min/Max 도구에서 자동 계산을 클릭하여 색상 스케일을 재분배합니다. 다음으로, 방향 재배치 정합(Reorientation Registration) 드롭다운 메뉴의 자동 3D 기능을 사용하여 CT를 평균 PET 파일에 등록합니다.Ref 및 Input 1을 선택하고 Rigid, Fast, Input 1 to Ref registration을 선택합니다. 3차원 모두에서 정합을 육안으로 확인하고 필요한 경우 Translation 및 Rotation 기능을 사용하여 Manual 3D 탭에서 수동으로 조정합니다. 등록이 만족스러우면 입력 2 및 입력을 선택하고 확인 표시를 클릭하여 모든 PET 프레임에 적용합니다.DM에서 CT 및 PET 파일을 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 원본으로 저장합니다. 그런 다음 드롭다운 메뉴에서 자르기를 선택하고 이미지 경계를 드래그하여 뇌간 아래에서 한 번에 한 마우스의 머리를 자릅니다. 두개골이 모든 차원에서 직선이 되도록 PET 및 CT 이미지의 방향을 수동으로 변경합니다.인터페이스의 왼쪽 상단에 있는 Append Data(데이터 추가) 버튼을 사용하여 해당 마우스에 대한 MR 이미지를 로드합니다. 수동 3D 방향 전환을 사용하여 MR을 이동하고 CT 이미지 내의 두개골에 맞춥니다. 그런 다음 Visual Controller 탭에서 PET 시각화를 선택 취소하여 끄고 MR과 CT만 사용하여 관심 영역 또는 ROI를 그립니다.3D ROI 도구에서 Add ROI 버튼을 클릭하여 새 ROI를 생성하고 이름을 Infarct로 지정합니다. 스플라인 툴을 선택하고 마우스 왼쪽 버튼을 클릭하여 ROI 경계를 그리고 마우스 오른쪽 버튼을 클릭하여 닫습니다. 그런 다음 새 ROI를 만들고 반대 레이블을 지정합니다.Infarct ROI를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 Export를 선택합니다. 그런 다음 ROI를 위치 2, 입력 1로 이동하여 새 ROI를 시각화하고 수동으로 방향을 변경할 수 있습니다. Input 1만 선택한 상태에서 ROI 상자를 선택하고 View Only를 선택하여 방향을 바꾸지 않고 Infarct ROI를 시각화할 수 있습니다.Reorientation Registration 메뉴에서 Operator 기능을 사용하여 좌우 대칭 이동을 적용하고 새 ROI를 반대쪽 측면의 동일한 영역으로 수동으로 이동합니다. 그런 다음 산술 연산자를 선택하고 새 ROI에 2의 스칼라 곱셈을 적용하여 ROI를 독립적으로 정량화할 수 있습니다. 3D ROI 도구로 돌아갑니다.Expert and Experimental 탭으로 이동하여 Import ROI 버튼을 클릭합니다. 대화 상자에서 입력 1을 선택하여 새 볼륨을 반대쪽 ROI로 로드합니다. 마지막으로 평균 PET 이미지를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하고 언로드한 다음 PET를 다시 켭니다.3D ROI 도구 내의 Export Results 아이콘을 사용하여 정량적 흡수 결과를 생성합니다. 결과 PET/CT 이미지 및 시간 활동 곡선은 동측 반구와 대측 반구에서 증가된 방사성 추적자 흡수를 보여줍니다. 50분에서 60분 사이의 합산된 데이터를 사용하여 동적 PET 뇌 이미지를 정량화한 결과, dMCAO의 반대쪽 반구에 비해 동측에서 추적자 흡수가 크게 증가했지만 수동으로 뽑은 ROI 접근 방식을 사용한 가짜 마우스에서는 그렇지 않은 것으로 나타났습니다.이 기술을 시청한 후에는 자동 및 수동 이미지 분석 방법을 모두 사용하여 TSPO-PET를 통해 허혈성 뇌졸중의 마우스 모델에서 신경염증을 정확하고 효율적으로 정량화하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 중요한 것은 체외 디지털 방사선 촬영을 사용하여 이러한 생체 내 소견을 확인할 수 있어야 한다는 것입니다. Carbon 11 반감기는 매우 짧기 때문에 데이터의 양과 품질을 극대화하기 위해 이 절차를 시도하기 전에 명확한 실험 계획과 일정을 계획하는 것이 중요합니다.이 절차에 따라 면역조직화학과 같은 다른 방법을 수행하여 신경교세포 활성화와 TSPO 발현 사이의 상관관계와 같은 추가 질문에 답할 수 있습니다. 방사능을 사용하는 것은 매우 위험할 수 있음을 명심하십시오. 노출을 최소화하려면 보호복, 납 보호막을 사용하고 이 절차를 수행할 때 거리를 늘리십시오.

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Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

출처: Chaney, A. M., et.al. [11C]DPA-713 허혈성 뇌졸중의 마우스 모델에서.J. Vis. 특급 (2018). 이 비디오는 허혈성 뇌졸중의 마우스 모델에서 신경염증의 생체 내 이미징 기술을 보여줍니다. TSPO 전용 방사성 추적자. 주사 후 방사성 추적자는 외부 미토콘드리아 막에 위치하며 활성화된 면역 세포에서 과발현되는 단백질인 TSPO에 결합합니다. PET/CT 스캐너는 방사성 추적자의 분포를 감지하고 CT 데이터와 함께 등록된 이미지를 생성하여 뇌의 신경염증 부위를 정밀하게 국소화할 수 있습니다.

허혈성 뇌졸중의 마우스 모델에서 경색 형성을 감지하기 위한 TSPO-PET/CT 이미징

출처: Ouyang, Y., et al. 마우스 뇌 저산소증-허혈 중 동시 PET/MRI 영상. J. Vis. Exp. (2015)이 비디오는 동시 양전자 방출 단층 촬영(PET) 및 자기 공명 영상(MRI)을 통해 뇌 저산소증 손상을 평가하는 기술을 보여줍니다. 마취된 쥐는 총경동맥(CCA) 결찰술을 받아 한쪽 뇌 반구로 가는 혈류를 감소시키고 저산소증으로 인한 손상에 걸리기 쉽습니다. PET 및 MRI 영상은 저산소증 중 포도당 대사 및 구조적 변화를 평가합니다. MRI는 제한된 수분 확산을 감지하는 반면, PET는 포도당 흡수 감소를 나타내어 저산소증으로 인한 세포 스트레스 및 대사 장애를 나타냅니다.

마우스 모델에서 뇌 저산소증-허혈에 의해 유도된 뇌 손상 이미징

뇌허혈로 인한 뇌 손상은 주사 가능한 방사성 프로브인 18F-fluorodeoxyglucose와 결합된 전임상 양전자 방출 단층 촬영을 사용하여 쥐에서 비침습적으로 이미지화하고 연구할 수 있습니다. 또한 VOI(Volume of Interest) 뇌 템플릿을 포함하는 최신 소프트웨어 도구를 사용하면 이러한 연구에서 수집한 정량적 정보가 크게 증가합니다.

과 양전자 방출 단층 촬영을 이용하여 비 침습적 영상 및 뇌허혈의 분석 생활 쥐<sup&gt; (18)</sup&gt; F-FDG

여기에 제시된 방법은 동시 양전자 방출 단층 촬영 및 자기 공명 영상 법을 사용한다. 대뇌 저산소증 - 허혈 모델에서, 확산 및 당 대사에 역동적 인 변화는 동안과 손상 후 발생합니다. 의미있는 멀티 모달 촬상 데이터를 취득 할 경우에이 모델 진화 재생 불가능한 손상 동시 획득을 필요.

마우스 대뇌 저산소증 - 허혈 동안 동시 PET / MRI 영상

여기에서는 비가역적 내피 산화질소 합성효소(eNOS) 억제제(L-Nio)의 국소 주입에 의해 쥐 백질에서 초점 스트로크를 생성하는 방법론을 제시합니다. 제시된 것은 두 가지 정위 변형, 역행 신경 세포 추적, 그리고 이 기술의 잠재적 응용을 확장하는 새로운 조직 라벨링 및 해부입니다.

축삭 변성과 백질 신경 생물학의 연구를위한 다목적 쥐 모델 피질의 흰색 물질 스트로크

설치류 모델에서 [14C]-요오도안티피린(IAP) 흡수를 측정하고 중추 뇌졸중 후 통증(CPSP)에 관여하는 신경 기질의 활성화를 평가하는 프로토콜을 제시합니다.

의 방사 법적 측정 [<sup&gt; (14)</sup&gt; 중앙 후 스트로크 통증에 따라 쥐의 뇌에서 C] -Iodoantipyrine

이 프로토콜은 대뇌 thromboemboli을 시각화 결합 된 근적외선 형광 (NIRF) 이미징 및 마이크로 컴퓨터 단층 촬영 (microCT)의 응용 프로그램을 설명합니다. 이 기술은 혈전 부담과 진화의 정량화 할 수 있습니다. microCT 기술은 금 나노 입자를 사용하여 살아있는 동물 내부 혈전 가시화하면서 NIRF 이미징 기술은 형광 절제 뇌 혈전 표지 가시화.

직접 대뇌 Thromboemboli 시각화를위한 결합 된 근적외선 형광 이미징 및 마이크로 계산 된 단층 촬영

이 작업은 허혈성 뇌졸중의 비침습적 이미징을 위한 다중 모드 초음파 기반 이미징 플랫폼의 사용을 보여줍니다. 이 시스템은 광음향 영상을 통한 혈액 산소화의 정량화와 음향 혈관 조영술을 통한 뇌의 관류 장애를 허용합니다.

허혈성 뇌졸중의 비침습적 전뇌 영상을 위한 통합 광음향, 초음파 및 혈관조영 단층촬영(PAUSAT)

여기에서는 C57BL/6J 마우스에서 경두개 전기응고를 통해 원위 중뇌동맥 폐색(dMCAO) 모델을 확립하고 후속 신경학적 행동 및 조직병리학적 특징을 평가하기 위한 프로토콜을 제시합니다.

원위 중동맥 폐색 기법을 사용한 마우스의 급성 허혈성 뇌졸중 유도

모든 광학 접근 방식을 사용하여 허혈성 뇌졸중을 유도하는 동시에 깨어 있고 행동하는 마우스의 새로운 뇌졸중 코어에서 형광 바이오센서를 사용하여 신경 Ca2+ 활동을 기록합니다.

행동하는 마우스에서 허혈성 뇌졸중을 유도하고 모니터링하기 위한 동시 광혈전증 및 섬유 측광

배우세요 허혈성 뇌졸중 마우스 모델에서 TSPO-PET 영상을 이용한 신경염증 정량화 방법을. DPA-713 방사성 추적자를 사용하여 생체 내 신경염증을 실시간으로 시각화하고 검증하는 실험 프로토콜입니다.

애완 동물 Neuroinflammation [¹¹C] DPA-713을 사용 하 여 허 혈 성 뇌졸중의 마우스 모델에서의 영상

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