Name: 레이저 캡처 서 유전자 표정 분석에 대 한 마우스 눈에서 높은 순수 배수 채널의 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 47 s
Description: 학습하세요 레이저 캡처 현미경을 이용하여 마우스 눈에서 섬유질망을 분리하고 고품질 RNA를 추출하는 방법을. 이 기술은 안과 질환 관련 유전자 발현 연구에 활용됩니다.

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국립 환경 건강 과학 연구소 (NIEHS) 동물 관리 및 사용 위원회 (ACUC) NIEHS 동물 연구 제안 IIDL 05-46에서이 연구의 모든 방법론을 승인 했다.
1. 최적의 조직 컬렉션 레이저 기정에 대 한
<ol><li>2, 3 개월 된 생쥐를 얻을 남성 또는 여성 C57BL/6. 최소 1 분 또는 호흡 정지 했습니다 때까지 CO2 를 안락사. 감 금에서 동물을 제거 하 고 자 궁 경관 탈 구, 잘린, 또는 thoracotomy 죽음을 보장.</li>
	<li>해 부를 하기 전에 모든 해 부 도구는 깨끗 하 고 소독 확인. 참고: 눈의 제거를 위한 곡선가 위 및 톱니 모양의 팁으로 겸 (선호 하는 팁 크기: 0.5 x 0.4 m m) 필요 하 게 됩니다.</li>
	<li>누워 마우스 옆에 평평한 표면에 눈은 쉽게 접근할 수 있도록. 안구는 소켓에서 쉽게 반입할 수 있습니다 때까지 가이드로 눈 소켓을 사용 하 여 눈 주위를 잘라 눈에서 곡선에 직면 하 고, 곡선된가 위를 사용 하 여 다음 마우스를 안정화 하기 위해 집게와 법 (눈의 모서리)에 파악 (커브를 사용 하 여 하지는 가 위의 팁)입니다.</li>
	<li>부드럽게 당겨 그리고, 궤도 소켓에서 눈을 해제 시 신경 절단 곡선된가 위를 사용 하 여. 조심 스럽게 버퍼링 하는 인산 염 (PBS) x 1에 씻어 고 눈에서 비 눈 조직 제거. 1.3-1.4 contralateral 눈에 대 한 반복 합니다.</li>
	<li>포함 하기 전에 모든 습기를 제거 하는 조직 삭제 기능으로 눈을 가릴. 화살 섹션을 얻기 위하여 렌즈와 시 신경은 벤치 탑에 평행 되도록 표본 몰드 (25 x 20 x 5 m m3)로 눈을 놓습니다. 눈에 최적의 절삭 온도 (O.C.T.) 화합물을 포함 하 고 동결을 드라이 아이스에 놓습니다. 즉, 일단 저장-80 ° c.에 블록</li>
</ol>2. 냉동된 섹션 준비 레이저 기정
<ol><li>전에 사용 하 여 폴 리 에틸렌 테 레프 탈 산 (애완 동물)를 품 어 막 45 분에 대 한 최대 전력에서 UV cross-linker에 슬라이드.</li>
	<li>스프레이 브러시, 집게, 항아리, 커플링 및 척 장착에 RNase 오염 솔루션. 철저 하 게 닦아. Nuclease 무료 물으로 헹 구 고 건조. 100% 에탄올을 교차 오염을 피하기 위해 cryostat 아래로 닦으십시오.</li>
	<li>-18 ° c cryostat 조정 한 번에 한 냉동된 블록-80 ° C 냉장고에서 제거 하 고 드라이 아이스와 함께 cryostat 제공. 10 분의 최소 cryostat의 온도와 equilibrate 냉동된 블록을 허용 합니다.</li>
	<li>장착 덩어리 (그림 1A)에 O.C.T.의 작은 금액을 짜 내 고 형에서 조직 블록을 제거 하 고 신중 하 게 장착 척 (그림 1B)에 블록을 배치. 일단 장착 척에 조직 블록 고체 동결, cryostat (그림 2A)의 견본 홀더에 삽입 합니다.</li>
	<li>8 µ m 섹션을 잘라내어 신중 하 게 조직 샘플을 도달 하는 O.C.T. 블록을 통해 섹션 cryostat을 조정 합니다. 일단 조직 관찰 단면 중지 하 고 깨끗 한 면도날을 사용 하 여 모든 면에서 냉동된 블록 트림 한 페인트 브러시 (그림 2B)와 함께 처리 수 있도록 주변 조직 O.C.T.의 3-4 mm를 두고. 새로운 깨끗 한 페인트 브러시를 사용 하 여 샘플 교차 오염을 피하기 위해 각 샘플 변경 사이 롤 접시 대신.</li>
	<li>섹션을 신속 하 게 작업 하는 눈을 통해입니다. 빠른 단계 hematoxylin와 오신 (H & E) 슬라이드 범람 하 여 모든 제 3 섹션 60에 대 한 얼룩 얼룩 s, 수돗물으로 씻어, 건조, 개간 에이전트에 분명 공기와 coverslip로 충전된 유리 슬라이드에 탑재. 현미경 아래 보기 및 단면 컷된 섹션에 TM 분명 때까지 계속.</li>
	<li>일단 TM 표시를 시작, 2 섹션을 잘라내어 H & E LCM와 절삭에 대 한 지도를 얼룩 루틴에 대 한 청구 유리 슬라이드에 탑재. 참고: 지도 및 얼룩 세부 사항에 대 한 섹션 3 참조.</li>
	<li>후 첫 번째 H & E 슬라이드 지도, 및 줄은 cryostat에 6 직렬 8 µ m 두꺼운 부분을 잘라내어 애완 동물 멤브레인 슬라이드 (그림 3A, B)에 동시에 탑재. 짧게 막의 뒤로 따라 gloved 손가락을 슬라이딩 하 여 조직을 준수 합니다. 장착 후 드라이 아이스에 슬라이드 상자에 애완 동물 멤브레인 슬라이드를 즉시 놓습니다. 그러나 참고: 적은 부분에 탑재 될 수 있습니다, 그리고, 각 섹션은 실내 온도 공기에 노출 되는 시간의 양을 제한 하 여 RNA 저하를 줄이기 위해 권장은 슬라이드에 여러 섹션을 한 번에 장착.</li>
	<li>계속 6 섹션 마다 두 애완 동물 멤브레인 슬라이드 후 눈, 섹션, H & E 염색에 대 한 다른 지도 슬라이드를 만드는 충전된 유리 슬라이드에 두 개의 섹션을 수집 합니다. 단면, 약 100 직렬 8 µ m 두꺼운 부분, TM은 더 이상 표시 될 때까지 계속 합니다. 신속 하 게 충전된 유리 슬라이드 (2.6 참조)에 대 한 섹션을 착 색 하 여 확인 합니다.</li>
	<li>나중에 LCM 사용-80 ° C에서 모든 애완 동물 멤브레인 슬라이드를 저장 합니다.</li>
</ol>3. H & E 지도 슬라이드 얼룩 프로토콜 및 형태 검토
<ol><li>시각화 하 고 충전된 유리 슬라이드에 지도 슬라이드를 검토, 수정 얼룩 항아리에 즉시 전송 하 여 조직의 가득 급속 한 고정 솔루션의 100 mL 7 미 린스 슬라이드에 그것을 찍기 하 여 증류수 10-20 회 다음 깨끗 한 증류수와 커플링 항아리를 슬라이드를 전송.</li>
	<li>물에서 슬라이드를 제거 하 고 조직 닦아 건조 가장자리를 되 리. 피펫은 200 µ L 수정 해리스 되며 각 섹션에 필터링 및 30에 대 한 품 어 실 온에서 s. 조심 스럽게 씻어 물 실행 취소 될 때까지 수돗물을 실행 하는 아래의 슬라이드. 과잉 액체를 제거 하려면 각 단계 (3.2-3.5에서 각 단계 사이 오 점) 사이 조직 삭제 기능으로 슬라이드의 끝을 오 점.</li>
	<li>1 x 30에 대 한 실 온에서 PBS에 장소 슬라이드 s. 그럼, 신중 하 게 씻어 30 수돗물 실행 하는 아래의 슬라이드 s.</li>
	<li>3-4 회 95% 에탄올 목욕으로 슬라이드를 찍어. 슬라이드에 티슈 커버 15 알을 품을 정도로 오신 Y 염료 솔루션 적용 실 온에서 s.</li>
	<li>두 번을 10-20 빠른 딥 각 95% 에타 놀 목욕에서 슬라이드를 씻어. 100% 에탄올 욕실 두 번 10-20 빠른 딥 각에서 슬라이드를 씻어. 그런 다음 슬라이드 두 번에에서 린스 크 실 렌 목욕 (10-20 빠른 딥 각).</li>
	<li>수 지 장착 매체 조직에 적용 하 여 탑재, 신중 하 게을 피하기 위해 공기 방울 후드에 하룻밤 말리 coverslip 추가.</li>
	<li>시각적으로 또는 디지털 슬라이드 스캐너를 사용 하 여 H & E 슬라이드를 검토 합니다. TM 명확 하 게 표시 하 고 절단에 대 한 접근으로 지도 슬라이드를 식별 합니다. 애완 동물을 사용 하 여 이들 사이 막 슬라이드는 LCM에 대 한 슬라이드를 지도.</li>
</ol>4. 폴 리 에틸렌 테 레프 탈 산 (애완 동물) 막 슬라이드 처리 및 얼룩 프로토콜
<ol><li>냉동 고에서 제거 애완 동물 슬라이드 먼저 0.3 g cresyl 바이올렛 아세테이트 75% 에탄올 20 mL에 용 해 하 여 cresyl 바이올렛 재고 솔루션을 준비 하 고에 배치 하기 전에 6 월 보다 2 h. 필터 0.22 μ m 살 균 필터 단위와 4 ° C에서 더 이상 저장소 솔루션에 대 한 셰이 커 ths입니다.</li>
	<li>1:4 비율로 신선한 75% 에탄올 오신 Y 알코올 솔루션을 준비 합니다. 얼음에 깨끗 한, nuclease 무료, 50 mL 원뿔 폴 리 프로필 렌 튜브에 고정 (75% 에탄올) 및 탈수 솔루션 (75%, 95%, 및 100% 에탄올)를 준비 합니다. 각 솔루션에 RNase 억제제를 추가 합니다.</li>
	<li>-80 ° C 냉동 고에서 언된 조직 단면도 포함 하는 슬라이드 상자를 제거 하 고 드라이 아이스에 배치. 번에 하나의 슬라이드를 처리 합니다. 30에 대 한 차가운 75% 에탄올으로 즉시 슬라이드를 삽입 하 여 슬라이드를 수정 s.</li>
	<li>부드럽게 슬라이드에 대 한 10-15 O.C.T. 조직 섹션을 방해 하지 않고 해산 nuclease 무료 물에 담근 다.</li>
	<li>신중 하 게 1.5 %cresyl 바이올렛 아세테이트 솔루션 섹션에 직접의 300 µ L 플라스틱 및 45 품 어 실 온에서 s. 다음, 30 미 피 펫 200 µ L 오신 Y 솔루션 섹션에 대 한 75% 에탄올 욕조에 그것을 배치 하 여 한 번 세척 하 고 3-5에 대 한 품 어.</li>
	<li>75% 에탄올, 95% 에탄올, 및 마지막으로, 100% 에탄올 30에 이후에 슬라이드를 삽입 하 여 조직을 탈수 s 각. 과잉 액체를 제거 하려면 모든 단계 사이 조직 삭제 기능으로 슬라이드의 끝을 오 점. 슬라이드 어 후드 5 분 동안 완전히 건조 보자. 일단 건조, LCM 즉시 그 후 수행 합니다. 참고: 것이 좋습니다이 단계에 대 한 크 실 렌의 사용을 피하기 위해, 그것은 inadequately 막 슬라이드에 결합 조직 섹션을 발생할 수 있습니다 조직 캡처의 효율성을 감소 시킨다.</li>
</ol>5. 레이저 서 UV 레이저
<ol><li>컴퓨터를 켜고 부팅을 허용. 현미경 흰색 빛 전원 공급 장치를 켭니다. 설정 UV 레이저 키와 노란색 led가 켜 집니다. LCM 소프트웨어를 시작, 그것은 완벽 하 게 로드 하 고 라이브 비디오 표시 됩니다 수 있습니다. 컨트롤러 상자에 레이저 버튼을 누르고 녹색 LED가 켜 집니다.</li>
	<li>현미경 단계에 새로운 유리 슬라이드 로드 다음 직접 유리 슬라이드 위에 얼룩진된 조직 면 애완 동물 멤브레인 슬라이드를 장소. 멤브레인 및 유리 슬라이드는 현미경 스테이지에 단단히 짝는 다는 것을 확인 하십시오.</li>
	<li>첫 번째 슬라이드 제한을 설정 하 여 LCM을 시작입니다. 최저 4 배속 선택 객관적인 패널 (그림 4)에 확대. 금속와 막 만나는 왼쪽된 상단에 라이브 비디오 피드, 보도 "제한 1" 버튼 빨간색 사각형도로 지도에 표시 됩니다 표시 됩니다 때까지 현미경 xy 스테이지를 이동 하 여 막 슬라이드의 작업 영역을 정의 합니다. 다음, 반대 코너를 xy 스테이지를 이동 하 고 "제한 2" 버튼을 누릅니다. 설정된 한계 사이 조직과 막의 로드맵 이미지를 만드는 "스캔" 버튼을 누릅니다.</li>
	<li>더블 클릭 로드맵 내 눈 섹션 중 하나의 TM 근처, TM iridocorneal 각도 (그림 5A)의 꼭대기 근처에 있을 수 있습니다. TM 식별 되 면 10 배와 수동으로 TM 배율을 늘립니다. 20 X 40 X 목적과 함께 반복 합니다. TM 40 X 목표 (그림 5B)와 초점에 있을 때 근처의 빈 영역으로 이동 (초점 약간 조정 해야 합니다), "프리 핸드 그리기 도구"를 선택 하 고 조직의 빈 영역에 긴 줄을 그립니다.</li>
	<li>"컷" 속도가 34%, "초점"은 58%, 그리고 "파워" 70% (그림 4), "잘라내기" 버튼을 누르면 레이저 매개 변수를 설정 합니다. 조정을 잘 레이저 속도, 포커스, 그리고 파워 매개 변수를 명확 하 고 정밀한 커팅 라인 (참조 그림 5C) 관찰 때까지. 정확한 절단, 절삭 그려진된 라인을 다음과 같이 확인 합니다.</li>
	<li>절연 튜브 뚜껑 캡 홀더를 로드 하 고 튜브를 엽니다. 모자-리프트에 뚜껑 홀더를 부착 하 고 튜브 반전 다는 것을 확인. 접착제 모자 소재 원하는 조직을 제대로 캡처 되도록 뚜껑의 끝 넘어 돌출을 확신 합니다.</li>
	<li>소프트웨어 패널에서 "수동" 해 부 모드를 선택 합니다. (그림 5B) TM 절연 튜브 바로 아래에 주의 깊게 검토. 화이트 밸런스를 설정 하 고 최적의 이미지 품질 (그림 4)을 취득 하는 밝기를 조정 합니다.</li>
	<li>절단을 시작, 수동으로 초점을 조정 및 자유형 도구를 사용 하 여 선 그리기, 컬렉션 모자 아직 막 만지고 위쪽 위치에 남아 해야 합니다. TM sclera (그림 5C), 만나는 근처 그리기 부분 동그라미 누릅니다 "잘라." 첫 번째 컷 일단 뚜껑 아래 위치에 위치에 초점을 다시 조정 그리고 언론 "잘라내기" 그리고 조직 섹션에서 수집 TM, 주위에 동그라미를 완료 하는 두 개의 부분 동그라미를 연결할 오픈 또는 자유 공간에서 두 줄을 그립니다 확인 TM 서 모자 (그림 5 D-F)에 의해 포착 되었다.</li>
	<li>위쪽에 다시 모자를 위치 하 고 나머지 부분에 (5.2-5.8)를 반복 합니다. 약간 모든 격리 샘플 뚜껑에 적합 하 고 (그림 5G)를 덮지 캡 위치를 조정 합니다. 일관성을 위해 시간 창 한 슬라이드에 대 일 분 사용 애완 동물 당 적은 부분 슬라이드 모든 섹션에서 TM을 분리 하는 데 더 많은 시간이 필요 하는 경우입니다. 다음 애완 동물 멤브레인에 대 한 새로운 절연 튜브를 삽입 하 고 섹션 5를 반복 합니다.</li>
</ol>6입니다. Microdissected TM 조직 세포
<ol><li>갓 LCM 절연 조직 lyse RNA 세포의 용 해 버퍼를 준비 합니다. 세포의 용 해 버퍼의 각 1 mL에 10 µ L β-mercaptoethanol을 추가 합니다. 1 개월 이상에 대 한 실 온에서 β-mercaptoethanol와 세포의 용 해 버퍼를 저장 합니다.</li>
	<li>캡 홀더는 서의 시작부터 20 분 이내에서 절연 튜브를 제거 합니다. TM의 캡처 수 있도록 눈으로 뚜껑 표면 시각화.</li>
	<li>신중 하 게 세포의 용 해 버퍼 완전히 커버 microdissected TM 보장 컬렉션 튜브의 뚜껑에 10 µ L 세포의 용 해 버퍼 플라스틱. 부드럽게 접착제 뚜껑 닫고 컬렉션 튜브 거꾸로 10 분 동안 실 온에서 품 어. 부 화, 이후 2 분 동안 800 x g에서 원심 하 고 드라이 아이스에 lysate 놓습니다. 이후 정화 및 분석-80 ° C에서 lysates를 저장 합니다.</li>
</ol>7. RNA 격리 및 품질 분석
<ol><li>샘플 실 온에서 해 동 하 여 RNA 품질을 분석. 수영장 함께 모든 샘플 한 RNase 무료 1.5 mL microfuge 관으로 단일 마우스에서 고립. 참고: 예를 들어 각 생물 복제에 대 한 10-12 튜브 microdissected 모자 10 µ L lysate에서 생성 된 그리고 모든 lysates 각 생물 복제 (100-120 µ L lysate)에 대 한 단일 관으로 옮겨 졌다.</li>
	<li>각 lysate 솔루션 (RNase 무료 물으로 만든) 갓된 70% 에탄올에의 한 볼륨을 추가 합니다. 그런 다음 RNA 격리 키트 사용자 지침에 따라 총 RNA 정화. 각 RNA 샘플에서 게놈 DNA의 제거를 확인 합니다. 참고: 게놈 DNA 다운스트림 RNA 분석을 방해할 수 있습니다.</li>
	<li>함께 각 마우스에서 샘플 풀링 하 고 (그림 6A) 리보솜 RNA 무결성을 분석 하 여 TM에서 격리 하는 RNA의 품질을 측정 합니다. 참고: TM의 작은 크기로 인해 ribosomal RNA 봉우리 되지 않을 수 있습니다 관찰 (그림 6B) RNA 품질 프로 파일 ( 그림 6A, C1000-4000 bp 사이 관찰 하는 두 개의 봉우리)에 RNA 무결성 번호 (린) 계산에 사용 되 47.<ol>
<li>막 슬라이드에 더 풍부한 나머지 조직에서 RNA를 분리 하 여 RNA 무결성의 더 정확한 측정을 얻을. 대표 린, pipetting 10 막 슬라이드에 안구 조직에서 격리 RNA를 µ L 세포 하나의 조직 섹션에 버퍼 고 RNA 격리를 수행 합니다. RNA 품질을 분석 하 고 린 (그림 6 c)를 계산 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>다운스트림 RNA에 대 한 응용 프로그램에 대 한 재현를 시퀀싱 및 cDNA 라이브러리 생성을 위한 낮은 입력된 RNA 키트 LCM의 작은 80 섹션에서 결과 사용 하 여 TM 고립.</li>
</ol>8입니다. 분석
<ol><li>수집 조직 TM 관련 된 유전자에 농축 사실 확인, microdissected 전체 눈, sclera, 홍 채, 망막, 각 막 및 렌즈 3 별도 마우스에서에서 여러 추가 RNA를 수집 합니다. LCM와 결합에서이 RNA에서 RNA를 수집 사용 고립 TM 및 ciliary 바디 4 별도 마우스에서 수집.</li>
	<li>Microdissected 샘플에서 RNA는 cDNA cDNA 역방향 전송 키트를 사용 하 여 변환 합니다. LCM 격리 샘플에서 RNA를 증폭 및 낮은 입력 RNA cDNA 키트를 사용 하 여 cDNA를 변환.</li>
	<li>배수 채널 유전자, myocilin (MYOC)와 알파 걸 2 (ACTA2), 표현에 대 한 모든 RNA를 분석 하 고 디지털 PCR (그림 7A-B), HSP90a1 내부 관리 유전자를 사용 하 여 정상화.</li>
</ol>

저자는 공개 없다.

TM는 중요 한 역할을 적극적으로 유지 하는 항상성 IOP와 그 장애는 널리 고혈압 녹 내장1,,219에 대 한 주요 원인이 되는 요소 하실. GWAS 분석에 의해 확인 된 여러 유전자에 있는 단 하나 뉴클레오티드 동 질 다 상 수 증가 녹 내장 위험 및 TM;에서 아 유출 시설에 증가 저항에 연결 된 그러나,이 질병을 정확한 분자 메커니즘은 아직 완전히 이해21,,2223,,2425. 유전 마우스 모델 녹 내장의 분자 메커니즘을 공부에 대 한 강력한 도구를 제공할 수 있습니...

녹 내장 질병 광섬유 신경 및 망막 궁극적으로 돌이킬 수 없는 실명1,2리드 특징의 그룹입니다. 2020 이상에 의해 70 백만 명 세계적으로 살게 될 것입니다 질병3,,45,,67의 일종으로 추정 된다. 기본 개방 각 녹 내장 (POAG), 녹 내장, 가장 널리 퍼진 유형의 액 (AH) 유출 증가 안구 내부 압력 (IOP)8,,910, 선도 저하에 의해 특징입니다. 11,12,13,143,15,,1617,18. 왼쪽된 치료, 만성 높은 IOP 망막 및 시 신경 머리 방사형 실명1,2,19를 일으키는 진보적이 고 돌이킬 수 없는 손상으로 이어집니다. Ciliary 바디 아의 생산의 속도 감소 또는 그것의 유출1,,89, 를 강화 하 여 IOP를 감소에 녹 내장의 진행을 둔화에 대 한 모든 현재 메서드 10 , 11 , 12 , 13 , 14. 주 아 유출 통로 적극적으로 조절에 중요 한 역할을 담당 하는 배수 채널 (TM)의 부적절 한 함수 이며 고혈압 녹 내장1,,219에 대 한 원인이 되는 요소. 그러나, TM 부전와 어떻게 그것은 아 배수 조절 관련 분자 메커니즘 아직 완전히 이해 되지 않는다 며 현재 녹 내장 연구1,2,19, 의 주요 초점 20. 여러 게놈 넓은 협회 연구 결과 (GWAS)는 녹 내장 및 TM에서 아 유출 시설에 증가 저항 유전자의 수를 연결 하 고, 하는 동안 질병으로 이어질 하지 않은 정확한 분자 메커니즘이 아직 완전히 이해21 , 22 , 23 , 24 , 25.
동물 모델 크게3,15,16,26,,2728, (광범위 하 게 검토 하는 녹 내장에 질병 진행의 우리의 현재 지식 향상 29,,3031,,3233). 몇 가지 선구적인 방법은 TM34,,3536 연구 개발 되었습니다 고 정상과 병에 걸리는 직물의 우리의 현재 이해를 사전에 이러한 방법을 널리 사용 되었습니다. 하나의 영역을 광범위 하 게 탐험 되지 않은 TM 실패의 분자 메커니즘 연구를 유전자 변형된 마우스 모델의 사용 이다. 유전자 변형 노크에 Myocilin (Myoc)37,38 등 Cyp1b139, TM 관련 유전자의 녹아웃 마우스 연구 되었습니다 공부 TM의 분자 메커니즘을 위한 기본 도구 기능입니다. 당연 하 게도, 작은 크기의 마우스에서 TM이이 조직 공부를 시작 하기 위하여 극복 되어야 하는 심각한 장애물이 나타냅니다. 마우스 모델 LCM 기술에서 가장 작고 가장 섬세 한 조직, TM 등의 연구 능력을 필요한 도구를 제공 하는 동안 유전학 및 질병의 분자 메커니즘을 공부를 위한 강력한 도구를 나타냅니다.
이 보고서에는 강력 하 고 재현 방법 후속 RNA 격리 및 다운스트림 식 분석에 대 한 증폭 마우스 눈에서 높은 농축된 TM의 LCM에 대 한 설명 되어 있습니다. 유사한 방법에서에서 사용 된 성공적으로 쥐 눈 조직40,41,42,,4344의 분리, 다른 여기 보고 방법론을 적용할 수 있습니다. RNA, 예측에 관한, DNA, 단백질 공부 하 고 눈의 개별 조직. 중요 한 것은,이 기술은 유전자 변형된 쥐 녹 내장과 눈 질병3,,1516,17 TM 장애의 분자 병 인을 이해를 사용할 수 있습니다. ,18,26,31,,4546. LCM에 의해 마우스 눈의 TM을 능력 추가 여러 눈 질환의 분자 메커니즘에 대 한 통찰력을 얻기에 있는 유용한 기술 될 것입니다.

<table><tbody><tr><td>ACTA2 ddPCR 프라이머 (dMmuCPE5117282)</td><td>BioRad</td><td>10031252</td><td>FAM</td></tr><tr><td>애질런트 2100 바이오분석기</td><td>애질런트 테크놀로지</td>스 <td>G2946-90004</td><td></td></tr><tr><td>애질런트 RNA 6000 피코 키트</td><td>애질런트 테크놀로지</td>스 <td>5067-1513</td><td></td></tr><tr><td>BioRad QX200 액적 디지털 PCR 시스템</td><td>BioRad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>소형 페인트 브러시</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Charged Glass Microscope Slide</td><td>Thermo scientific</td><td>4951PLUS-001</td><td></td></tr><tr><td>Cresyl Violet Acetate</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C5042</td><td></td></tr><tr><td>곡선 가위</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Eosin Y 염료</td><td>Thermo scientific</td><td>71204</td><td></td></tr><tr><td>에탄올</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>집게</td><td></td><td></td> 곡선 <td>및 톱니 모양 팁(권장 팁 크기: 0.5 x 0.4mm)</td></tr><tr><td>HemaCen</td><td>American MasterTech</td><td>STHEM30</td><td></td></tr><tr><td>고용량 cDNA 역전사 키트</td><td>응용 Biosystems</td><td>4368814</td><td></td></tr><tr><td>Hsp90a ddPCR 프라이머(dMmuCPE5097465)</td><td>BioRad</td><td>10031255</td><td></td></tr><tr><td>VEX Leica CM1850 Cryostat</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Millex-GS 필터 유닛</td><td>EMD Millipore</td><td>SLGS033SB</td><td>0.22 &micro; m</td></tr><tr><td>MMI CellCut UV 절단 모델</td><td>분자 기계 및 산업:</td><td></td><td>LCM, intrument</td></tr><tr><td>, MMI, CellTools, 소프트웨어</td><td>, 분자 기계 및 산업</td><td>50202</td> 레이저 캡처 용 <td>LCM 소프트웨어</td></tr><tr><td>샘플 튜브 Microdisssection</td><td>ASEE 제품</td><td>ST-LMD-M-500</td><td>절연 캡 튜브 / 독일의 Microdissect GmBH에서 제조하고 ASEE 제품에 의해 배포</td></tr> 레이저 <tr><td>캡처 미세 해부 용 샘플 튜브 (대안)</td> <td>분자 기계 및 산업</td><td></td><td></td></tr><tr><td>수정 Harris Hematoxylin</td><td>Thermo scientific</td><td>7211</td><td>FAM</td></tr><tr><td>MYOC ddPCR 프라이머(dMmuCPE5095712)</td><td>BioRad</td><td>10031252</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Memebrane Slides, RNase Free</td><td>ASEE 제품</td><td>FS-LMD-M-50r</td><td>폴리에틸렌 테레프탈레이트(PET) 멤브레인/독일의 Microdissect GmBH에서 제조하고 ASEE 제품</td></tr><tr><td>Memebrane Slides, RNase Free (Alternative)</td><td>Molecular Machines & 산업</td><td>50102</td><td></td></tr><tr><td>래피드 픽스</td><td>써모 과학</td><td>6764212</td><td>H& E 염색</td></tr><tr><td>RLT 버퍼</td><td>Qiagen</td><td>79216</td><td>LCM 샘플에 사용되는 용해 버퍼</td></tr><tr><td>RNAseZap</td><td>Sigma</td><td>R2020</td><td>RNase 오염 제거 솔루션</td></tr><tr><td>Protect RNA RNAse 억제제</td><td>Sigma Aldrich</td><td>R7397</td><td></td></tr><tr><td>RNeasy Micro Kit</td><td>Qiagen</td><td>74004</td><td>RNA 분리 키트</td></tr><tr><td>SMART-Seq v4 초저입력 RNA 키트</td><td>Takara Clontech</td><td></td><td>LCM 샘플용 저입력 RNA to cDNA 키트</td>634888</tr><tr><td>SuperMix(dUTP 없음)</td><td>BioRad</td><td>1863023</td><td>디지털 PCR 마스터 믹스</td></tr><tr><td>Tissue-Tek Cryomold(25mm x 20mm x5mm)</td><td>Sakura</td><td>4557</td><td></td></tr><tr><td>Tissue-Tek O.C.T. 컴파운드</td><td>Sakura</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>Stratalinker UV Crosslinker</td><td>Stratagene</td><td>400075</td><td></td></tr><tr><td>Xylene</td><td>Macron</td><td>8668</td><td></td></tr></tbody></table>

레이저 캡처 서 유전자 표정 분석에 대 한 마우스 눈에서 높은 순수 배수 채널의

Laser Capture Microdissection of Highly Pure Trabecular Meshwork from Mouse Eyes for Gene Expression Analysis

레이저 캡처 기정 (LCM)는 단일 세포의 유전자 표정 분석을 허용 하 고 조직 섹션에서 세포 인구를 풍성 하 게. LCM 기본 세포 분화와 개발 및 녹 내장을 포함 하 여 다양 한 질병의 진행 하는 분자 메커니즘의 연구에 대 한 훌륭한 도구입니다. 녹 내장, 진보적인 광섬유 neuropathies의 가족 구성, 전세계 돌이킬 수 없는 실명의 가장 흔한 원인입니다. 녹 내장을 개발 하기 위한 주요 위험 요소 증가 안구 내부 압력 (IOP), 구조 변경 및 배수 채널 (TM) 내에서 손상 발생할 수 있습니다. 그러나, 관련 된 정확한 분자 메커니즘이 아직도 제대로 이해 하 고. 유전자 표정 분석을 수행 하는 기능 추가 이러한 셀 및 IOP와 녹 내장 개발의 규칙에 있는 그것의 역할의 기능에 대 한 통찰력을 얻기에 중요 한 될 것입니다. 이를 위해, 높은 격리에 대 한 재현 방법 실시간 정량 및 RNA-Seq 필요와 같은 마우스 눈 및 다운스트림 유전자 표정 분석 방법의 냉동된 섹션에서 TM 농축. 여기에 설명 된 메서드는 다운스트림 디지털 PCR 및 microarray 분석에 대 한 마우스 눈에서 높은 순수 TM을 개발 된다. 또한,이 기술은 다른 매우 풍부한 눈 세포 및 마우스 눈에서 분리 하기 어려운 세포 구획의 격리에 대 한 쉽게 적용할 수 있습니다. LCM 및 RNA 분석의 조합을 녹 내장 기본 셀룰러 이벤트의 보다 포괄적인 이해에 기여할 수 있다.

LCM TM에서 RNA를 수집 및 4 다른 마우스에서 모양 몸은 유전자 발현을 분석 하 고 비교 전체 눈, sclera, 홍 채, 망막, 각 막, 및 렌즈 3 별도 쥐에서 고립에서 그 식 수 절연. TM 유전자 표현, MYOC48 와 ACTA249 격리 TM 샘플 TM에 농축 실제로 높게 했다 확인 모든 수집 된 조직에서 분석 되었다. LCM 샘플에서 cDNA의 매우 낮은 수량에 따라 디지털 PCR 사용 되었다는 입증 된 더 적은 소재50재현할 수 있습니다. MYOC 및 ACTA2 의 식 HSP90a1 내부 관리 유전자를 사용 하 여 정규화 되었는지 다음 각 조직 전체 눈의 비교 되었다. 이러한 결과 MYOC (...

여기, 우리 다운스트림 RNA 분석에 대 한 배수 채널 (TM)를 격리 하기 위한 재현성 레이저 캡처 기정 (LCM)에 대 한 프로토콜을 설명 합니다. TM에 유전자 발현에 변화를 분석 하는 능력은 TM 관련 눈 질병의 근본적인 분자 메커니즘을 이해에 도움이 됩니다.

Laser capture microdissection (LCM) has allowed gene expression analysis of single cells and enriched cell populations in tissue sections. LCM is a great ...

이 레이저 현미해부 절차의 전반적인 목표는 후속 RNA 분리 및 다운스트림 발현 분석을 위해 레이저 캡처 현미경을 사용하여 마우스 눈에서 고도로 농축된 섬유주 그물망을 분리하기 위한 강력하고 재현 가능한 방법을 개발하는 것입니다. 이 방법은 잘못 조절될 경우 안구 질환으로 이어질 수 있는 중요한 유전자 및 신호 전달 경로가 무엇인지와 같은 안과 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 유전자 발현 분석을 위해 마우스 눈의 섬유주 그물망에서 고품질 RNA를 재현성 있게 분리할 수 있다는 것입니다.일반적으로 이 방법을 처음 접하는 개인은 레이저 현미해부는 전체 프로토콜에 걸쳐 다양한 문제 해결 단계를 포함하는 강력한 기술이기 때문에 어려움을 겪을 것입니다. 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 레이저 현미해부를 위한 최적의 조직 채취로 이 절차를 시작합니다. RNase 오염 제거 용액을 브러시, 집게, 커플링 용기 및 장착 척에 분사합니다.철저히 닦은 후 뉴클레아제가 없는 물로 기기를 헹구고 건조시킵니다. 교차 오염을 방지하기 위해 100% 에탄올로 저온 유지 장치를 닦아냅니다. 마운팅 척에 소량의 OCT를 짜낸 다음 금형에서 조직 블록을 제거하고 블록을 마운팅 척에 조심스럽게 놓습니다.장착 척의 조직 블록이 단단히 얼면 저온 유지 장치의 표본 홀더에 삽입합니다. 다음으로, 저온 유지 장치를 조정하여 8미크론 절편을 절단하고 O.C.T. 블록을 통해 조심스럽게 절편하여 조직 샘플에 도달합니다. 조직이 관찰되면 절편을 중지하십시오.깨끗한 면도날을 사용하여 모든 면의 얼어붙은 블록을 다듬고 티슈 주위에 3-4mm의 OCT를 남겨 두어 페인트 브러시로 다룰 수 있도록 합니다. 눈을 통해 절단하고 빠르게 작업합니다. 60초 동안 빠른 원스텝 H&E 스테인으로 슬라이드를 가득 채워 세 번째 섹션마다 얼룩을 더럽힙니다.수돗물로 섹션을 헹구고 자연 건조하십시오. 투명화제로 섹션을 청소한 후 커버 슬립으로 충전된 유리 슬라이드에 섹션을 장착하고 현미경으로 검토합니다. 염색된 부분에서 TM이 분명해질 때까지 절편을 계속합니다.TM이 나타나기 시작하면 두 개의 절편을 절단하고 일상적인 H&E 염색을 위해 충전된 유리 슬라이드에 장착하여 레이저 캡처 현미해부로 절단하기 위한 지도를 형성합니다. 첫 번째 H&E 맵 슬라이드 후, 저온 유지 장치에서 8미크론 두께의 직렬 섹션 6개를 절단하여 정렬한 다음 동시에 PET 멤브레인 슬라이드에 장착합니다. 장갑을 낀 엄지손가락으로 멤브레인 뒤쪽을 따라 짧게 밀어 조직을 부착합니다.장착 후 PET 멤브레인 슬라이드를 드라이아이스의 슬라이드 상자에 즉시 넣습니다. 계속해서 눈을 절개합니다. 각각 6개의 섹션이 있는 2개의 PET 멤브레인 슬라이드마다 하전된 유리 슬라이드에서 2개의 섹션을 수집하여 H&E 염색을 위한 또 다른 맵 슬라이드를 만듭니다.TM이 더 이상 보이지 않을 때까지 약 100개의 연속된 8미크론 두께 절편을 계속 절편화합니다. 충전된 유리 슬라이드의 한 부분을 빠르게 염색하여 TM의 부족을 확인합니다. 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 H&E 맵 슬라이드 염색을 수행한 후 현미경을 사용하여 H&E 슬라이드를 시각적으로 검토합니다.TM이 명확하게 보이고 절단을 위해 접근할 수 있는 지도 슬라이드를 식별합니다. LCM에 대해 이러한 맵 슬라이드 사이에 PET 멤브레인 슬라이드를 사용합니다. 영하 80도의 냉동고에서 냉동 조직 섹션이 들어 있는 슬라이드 상자를 꺼내 드라이아이스에 올려 놓습니다.슬라이드를 한 번에 하나씩 처리합니다. RNase 억제제가 함유된 차가운 75% 에탄올에 슬라이드를 즉시 30초 동안 넣어 단면을 고정합니다. 조직 단면을 방해하지 않고 O.C.T.를 용해시키기 위해 10-15초 동안 슬라이드를 뉴클레아제가 없는 물에 부드럽게 담그십시오.300 마이크로 리터의 1.5 % 크레실 바이올렛 아세테이트 용액을 조심스럽게 섹션에 직접 피펫하고 실온에서 45 초 동안 배양합니다. 그런 다음 75% 에탄올 수조에 30초 동안 넣어 섹션을 한 번 세척합니다. 200 마이크로 리터의 Eosin Y 용액을 섹션에 피펫팅하고 3-5 초 동안 배양합니다.슬라이드를 75% 에탄올, 95% 에탄올, 마지막으로 100% 에탄올 욕조에 각각 30초 동안 배치하여 조직을 탈수합니다. 과도한 액체를 제거하기 위해 모든 단계 사이에 티슈 물티슈로 슬라이드 끝을 닦습니다. 후드 아래에서 슬라이드 공기를 5분 동안 완전히 건조시킵니다.건조되면 그 직후 LCM을 수행하십시오. 마지막 세척 단계에서 자일렌을 사용하지 마십시오. 크실렌 처리는 조직 섹션이 멤브레인 슬라이드에 부적절하게 장착되도록 합니다.크실렌은 또한 LCM에 의한 조직 포획의 효율성을 감소시킵니다. 염색된 조직 면이 아래를 향하도록 PET 멤브레인 슬라이드를 현미경 스테이지에 로드된 새 유리 슬라이드 바로 위에 놓습니다. 멤브레인과 유리 슬라이드가 현미경 스테이지에서 단단히 페어링되어 있는지 확인하십시오.먼저 슬라이드 한계를 설정하여 LCM을 시작합니다. Objective(대물) 패널에서 가장 낮은 4X 배율을 선택한 다음 금속과 멤브레인이 만나는 왼쪽 상단 모서리가 라이브 비디오 피드에서 보일 때까지 현미경의 XY 스테이지를 이동하여 멤브레인 슬라이드의 작업 영역을 정의합니다. 이 시점에서 Limit 1 버튼을 누르면 빨간색 사각형이 도로 지도에 나타납니다.그런 다음 XY 스테이지를 반대쪽 모서리로 이동하고 Limit 2 버튼을 누릅니다. Scan 버튼을 눌러 설정된 한계 사이의 멤브레인과 조직의 로드맵 이미지를 생성합니다. 도로 지도에 있는 눈 부분 중 하나의 TM 근처를 두 번 클릭합니다.TM은 홍채각막각의 정점 근처에 위치할 수 있습니다. TM이 식별되면 배율을 10X로 늘리고 수동으로 TM에 초점을 맞춥니다. 20X 및 40X 대물렌즈로 반복합니다. TM이 40X 대물렌즈에 초점이 맞춰지면 빈 영역으로 이동하여 자유형 그리기 도구를 선택하고 조직의 빈 영역에 긴 선을 그립니다.절단 속도가 34%, 초점이 58%, 출력이 70%가 되도록 레이저 매개변수를 설정한 다음 절단 버튼을 누릅니다. 명확하고 미세한 절단선이 관찰될 때까지 속도, 초점 및 출력 매개변수를 미세 레이저로 조정합니다. 정확한 절단을 위해 절단 동작이 그려진 선을 따르는지 확인하십시오.그런 다음 분리 튜브 뚜껑을 캡 홀더에 넣고 튜브를 엽니다. 캡 홀더를 캡 리프트에 부착하고 튜브가 뒤집혀 있는지 확인합니다. 또한 접착 캡 재료가 캡 끝 너머로 돌출되어 원하는 조직이 제대로 포착되도록 합니다.섬유주 그물망이 집어올려져 격리 캡에 부착되었는지 시각적으로 확인하는 것이 중요합니다. 소프트웨어 패널에서 수동 해부 모드를 선택합니다. TM이 분리 튜브 바로 아래에 있는지 주의 깊게 검토하십시오.화이트 밸런스를 설정하고 밝기를 조정하여 최적의 이미지 품질을 얻습니다. 자르기를 시작하려면 수동으로 초점을 조정하고 자유형 도구를 사용하여 선을 그립니다. 수집 캡이 아직 멤브레인에 닿지 않고 위쪽 위치에 있는지 확인하십시오.TM이 공막과 만나는 곳 근처에 부분 원을 그리고 Cut을 누릅니다. 첫 번째 절단이 완료되면 캡을 아래쪽 위치에 놓고 초점을 다시 조정한 다음 열린 공간 또는 빈 공간에 두 개의 선을 그려 두 개의 부분 원을 연결하여 TM 주위의 원을 완성합니다. 그런 다음 Cut을 누르고 섹션에서 조직을 수집합니다. TM이 현미해부 캡으로 집어들었는지 확인합니다.캡을 다시 위쪽 위치에 놓고 나머지 섹션에서 반복합니다. 분리된 모든 샘플이 캡에 맞고 겹치지 않도록 캡 위치를 약간 조정합니다. 다음 PET 멤브레인의 경우 새 분리 튜브를 삽입하고 이 섹션을 반복합니다.미세절부된 TM 조직의 용해를 수행하려면 10마이크로리터의 용해 완충액을 채취 튜브의 뚜껑에 조심스럽게 피펫으로 주입하여 용해 완충액이 현미절부된 TM을 완전히 덮도록 합니다. 접착 캡을 부드럽게 닫고 수집 튜브를 실온에서 10분 동안 거꾸로 배양합니다. 배양 후 800g에서 2분 동안 원심분리하고 드라이아이스에 용해물을 놓습니다. 나중에 정제 및 분석할 수 있도록 용해물을 섭씨 영하 80도에서 보관하십시오.RNA가 빠르게 분해되면 다운스트림 RNA 분석에 영향을 미칠 수 있습니다. RNA 품질은 미세유체역학 기반 플랫폼을 사용하여 측정하고 정량화해야 합니다. 섬유주 그물망에서 정제된 고품질 total RNA의 유전자 발현 분석의 대표적인 결과가 여기에 나와 있습니다.레이저 미세해부 후 안구 조직에서 남아 있는 총 RNA에 대한 디지털 겔은 후속 다운스트림 RNA 분석에 필요한 높은 RNA 무결성 수를 보여줍니다. 조직에서 양질의 RNA가 추출되면 micro-array, RNA-Seq 및 qPCR과 같은 다운스트림 분석을 수행할 수 있습니다. 여기에서는 LCM에서 수집된 RNA에서 섬유주 그물망 관련 유전자, 미오실린 및 ACTA2의 발현을 분석하기 위해 정량적 디지털 PCR 분석을 사용했습니다.마이크로 어레이 분석에서 얻은 데이터에서 생성된 히트 맵은 이 기술을 사용하여 IOP 표현형이 상승한 야생형 마우스 및 녹아웃 마우스의 섬유주 그물망에서 유전자 발현 변화를 이해하는 데 사용할 수 있음을 보여줍니다. 이 기술을 숙달하면 제대로 수행하면 생물학적 동물 한 마리당 하루 만에 완료할 수 있습니다. 레이저 현미해부 단계는 관심 세포의 시각화가 어렵고 이러한 고유한 샘플에 대한 표준이 없기 때문에 배우기 어렵기 때문에 이 방법의 시각적 시연이 필수적입니다.숙련된 작업자에게 의존하는 것이 중요합니다. 이 절차를 시도하는 동안 소량의 조직에 있는 RNA가 빠르게 분해될 수 있다는 점을 기억하는 것이 중요합니다. RNase에서 장비의 오염을 제거하고, 공기 노출을 최소화하고, 조직을 차갑게 유지하는 것과 같은 예방 조치를 취해야 합니다.이 방법은 안압 증가가 섬유주 그물망 특정 유전자 발현에 미치는 영향에 대한 통찰력을 제공할 수 있지만, 안압 증가로 인한 망막의 유전자 발현 변화를 평가하는 것과 같은 다른 시스템에도 적용할 수 있습니다. 이 절차에 따라 RNA-Seq 또는 마이크로 어레이와 같은 다른 방법을 수행하여 안압이 상승한 마우스의 섬유주 그물망에서 어떤 신호 경로가 변경되는지와 같은 추가 질문에 답할 수 있습니다. 개발 후 이 기술은 연구자들이 마우스 모델의 섬유주 그물망에서 유전자 발현 변화를 보다 효과적으로 연구할 수 있는 길을 열었습니다.

laser-capture-microdissection-highly-pure-trabecular-meshwork-from

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

포유 동물 조직의 레이저 캡처 Microdissection

레이저 microdissection은 현지화된 RNAi를 받게 Drosophila 날개 디스크의 특정 구획에있는 유전자 발현 프로 파일링을 분석에...

레이저 Microdissection는 세포의 하위 집합 유전자 발현 프로 파일링에 적용 Drosophila 윙 디스크

마우스 뇌의 특정 영역별 RNA 발현 프로파일링을 위해서는 정밀하고 재현 가능한 조직 수집 전략이 필요합니다. 본 문서에서는 관상면 뇌 절단과 조직 코어러(corer) 보조 미세 절제술을 모두 사용하는 프로토콜을 설명합니다. 결과 샘플에서 얻은 총 RNA의 수율과 품질은 상술한 방법의 유용성을 입증합니다.

총 RNA의 분리 및 다운 스트림 차세대 시퀀싱 및 유전자 발현 프로 파일링에 대한 개별 마우스 뇌 영역의 Microdissection 아닌 레이저 캡처 현미경 접근법

우리는 정량 실시간 PCR 및 / 또는 전체를 게놈 microarrays를 사용하여 후속 유전자 발현 분석을위한 부상을 쥐의 뇌의 냉동 섹션에서 hippocampal 뉴런 또는 단일 뉴런의 풍부한 인구를 얻기 위해 레이저 캡처 microdissection (LCM)를 사용하는 방법에 대해 설명합니다.

외상성 뇌 손상 후 뉴런 또는 유전자 발현 분석을위한 단일 뉴런의 강화 인구의 레이저 캡처 Microdissection

이 기사에서는 R26R-Confetti 마우스를 사용하여 다중 색상 계통 추적 실험을 설계하고 수행하는 원칙을 설명합니다. 당사는 다른 관심 조직에 대해 변형될 수 있는 각막 상피 세포를 추적하기 위한 특정 프로토콜을 제공합니다.

멀티 컬러 형광 기자 마우스를 사용하여 각막 세포의 리니지 추적하는 방법

레이저 포획 미세해부(LCM) 프로토콜은 골세포의 유전자 발현 분석을 위한 고품질 RNA의 충분한 양을 얻기 위해 개발되었다. 현재 연구는 마우스 대퇴골 섹션에 초점을 맞추고. 그러나, 여기에 보고된 LCM 프로토콜은 임의의 경조직의 세포에서 유전자 발현을 연구하는데 사용될 수 있다.

신선 냉동 마우스 뼈에서 고품질 RNA를 생성하는 레이저 캡처 미세 해부 프로토콜

이 프로토콜은 마우스 배아의 신선한 냉동 섹션에서 연골과 뼈의 분리를 위한 레이저 포획 미세 분부를 설명합니다. 연골과 뼈는 크레실 바이올렛 염색에 의해 빠르게 시각화되고 전사분석을 위한 고품질 RNA를 산출하기 위하여 정확하게 집합될 수 있습니다.

유전자 발현 분석을 위한 마우스 배아 연골 및 뼈의 레이저 포획 미세 해부

여기에 제시 라이브 마우스 안구 표면 이미징을위한 다광 현미경 플랫폼입니다. 형광 형질 전환 마우스는 안구 표면 내의 세포 핵, 세포 막, 신경 섬유 및 모세 혈관의 시각화를 가능하게합니다. 콜라주 구조에서 파생된 비선형 제2 고조파 생성 신호는 기질 아키텍처에 대한 라벨없는 이미징을 제공합니다.

마우스 각막과 결막의 라이브 이미징을 위한 맞춤형 다광현미경 플랫폼

이 논문은 설치류의 안구 미세 해부에 대한 프로토콜을 제시합니다. 이 과정에는 니티팅 멤브레인(즉, 세 번째 눈꺼풀)과 함께 안구의 적출술이 포함됩니다. 그런 다음 후방 안구 컵과 전방 안구 컵을 분리합니다.

설치류 눈의 미세 해부

이 프로토콜은 마우스 안구 수정체 상피와 섬유 세포 벌크 질량의 분리에 이어 RNA 분리 및 qPCR 분석을 자세히 설명합니다. 이 방법을 사용하면 상피 세포와 분화된 섬유 세포의 전사체 및 생물학적 과정을 보다 자세히 분석하기 위해 수정체 세포 구획을 분리할 수 있습니다.

마우스 안구 수정체 상피 및 섬유 세포 벌크 덩어리에서 RNA 분리

학습하세요 레이저 캡처 현미경을 이용하여 마우스 눈에서 섬유질망을 분리하고 고품질 RNA를 추출하는 방법을. 이 기술은 안과 질환 관련 유전자 발현 연구에 활용됩니다.

레이저 캡처 서 유전자 표정 분석에 대 한 마우스 눈에서 높은 순수 배수 채널의

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