Name: Li Fraumeni 증후군 환자에서 파생 된 유도 만능 줄기 세포를 사용 하 여 다리를 모델링 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 52 s
Description: 배우세요 Li Fraumeni 증후군 환자 유래 섬유아세포에서 유도 만능 줄기 세포를 생성하고 조골세포로 분화시키는 방법을. 이 모델은 골육종 연구와 약물 선별에 활용됩니다.

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R. Z. 친목을 위한 암 예방 연구 훈련 프로그램 Pre-Doctoral (암 예방과 연구 연구소의 텍사스 RP160015 부여) UTHealth 혁신에 의해 지원 됩니다. Jt는 첫 번째 제휴 병원의 썬 얏-센 대학교의 애 린 프로그램에 의해 지원 됩니다. D. 플로리다 암 연구에서 CPRIT 학자 이며 독립 수상 R00 CA181496 및 CPRIT 수상 RR160019 NIH 통로에서 지 원하는.

이 작품의 텍사스 대학 보건 과학 센터 휴스턴 (UTHealth) 동물 복지 위원회에 의해 승인 되었다. 실험 실험 동물 의학 & 케어 (CLAMC)는 실험 동물 배려 (AAALAC 국제)에 대 한 미국의 협회 공인 UTHealth 센터 설립 기준에 따라 수행 됩니다. 이 연구에서 인체 NIH SF424 설명서에서 정의한 대로 시나리오는 ("아니 인간 대상 연구")가을. 따라서, 그것은 UTHealth 인간의 연구 윤리 위원회에 의해 어떤 승인이 필요 하지 않습니다.
1. LFS Ipsc (그림 1A)의 생성
<ol><li>날-2, 6-잘 접시의 한 잘에 2 × 104 LFS 환자 fibroblasts 접시 하 고 37 ° c 습도 5%에서 섬유 매체 (표 1)와 셀 문화 CO2 배양 기. 섬유 아 세포 변환 (0 일)의 하루에 50-60% 합류에 도달 하는지 확인 합니다.</li>
	<li>0에 센다이 바이러스 변환을 수행 합니다. 이렇게 하려면 보낸된 매체를 미리 데워 진된 섬유 매체 바꿉니다. 얼음에 ( 재료의 표참조) 키트 바이러스 프로그래밍 상업 센다이 녹여 LFS fibroblasts 제조업체의 지침에 따라 혼합 센다이 바이러스 감염.</li>
	<li>섬유 매체 (주 1-6)에 transduced 셀의 유지 보수:<ol>
<li>하루 1, 변환, 후 24 h에 나머지 센다이 바이러스를 포함 하는 섬유 매체를 제거 하 고 2 mL 신선한 섬유 매체와 그것을 대체 합니다. 37 ° c 습도 5%에서 transduced fibroblasts 문화 CO2 배양 기.</li>
		<li>매일 하루 2-6에서에서 섬유 매체와 매체를 변경 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Transduced 셀 피더 문화 조건 (하루 7-28)의 유지 보수:<ol>
<li>준비 조사 CF1 마우스 미 발달 섬유 아 세포 (MEF) 문화 요리 주 6. 이 코트 할 30 분에 대 한 실 온에서 각 플레이트를 0.1% 젤라틴의 5 mL을 추가 하 여 6 개의 100 m m 조직 문화 요리 0.1% 젤라틴 코팅 후 발음.</li>
		<li>액체 질소 용기에서 MEFs를 제거 합니다. 제조업체의 지침에 따라 상용 녹고 시스템을 사용 하 여 MEFs 녹여 100 m m 조직 문화 접시 당 105 셀 x 6.7 주위의 시드 밀도에 젤라틴 코팅 접시에 셀 MEF/MSC 문화 매체 (표 1) 접시.</li>
		<li>MEF 접시 (7 일)에 transduced 세포 접종: 0.25%의 1 mL를 사용 하 여 transduced 셀 Trypsinize 트립 신-EDTA 실 온에서 2-4 분 100 mm 접시 당. 트립 신 구와 매체의 9 mL를 중화. 원뿔 관에 전송 셀 및 4 분 37 ° C에서 230 x g에서 원심 분리기 세포 transduced fibroblasts 주 6에는 6 개의 MEF 요리에 접시 접시 당 섬유 매체의 8 mL에 문화. 참고: MEFs의 confluency는 약 20 %MEF 접시에 불리고 셀을 뿌리기 전에.</li>
		<li>8 일에 섬유 매체를 삭제 하 고 hESC 매체 (표 1)으로 바꿉니다.</li>
		<li>(그림 1C) 일 9 월 28 일에서에서 iPS 클론의 출현을 기다립니다. 매일 지출된 hESC 매체를 변경 하 고 현미경 iPS 클론의 출현을 모니터링. Ipsc 클론 맨 눈으로 관찰할 수 있을 만큼 큰 때까지 기다립니다 고 피더 무료 문화 조건에 iPS 클론 확장을 진행 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>등장된 iPS의 확장 급지대 무료 문화 조건에 클론 (주 29-79 ~ 99):<ol>
<li>매트릭스-코팅 접시를 준비 하려면 잘 당 지하실 멤브레인 매트릭스 코팅 솔루션 (표 1)의 120 µ L와 48-잘 접시 코트. 지하실 막 매트릭스 코팅 솔루션 잘 커버 하 고 문화 접시 표면 코트 다는 것을 확인 하십시오. 즉시 사용 하기 전에 코팅 솔루션 1 h. Aspirate에 대 한 실 온에 둬 고 2 µ M 바위 억제제 Thiazovivin와 당 hESC 매체의 250 µ L를 추가 합니다.</li>
		<li>하루 28에서 보낸된 hESC 중간 발음 하 고 iPS 클론 1 x DPBS 세척 합니다. 보이는 iPS 클론 1 mL 피 펫 팁 및 치료 48-잘 접시 (단계 1.4.1)의 우물으로 이동을 선택 합니다. 48-잘 접시의 당 종자 한 식민지.</li>
		<li>셀 첨부 파일을 촉진 하기 위하여 4 분 230g x에서 격판덮개 원심 37 ° c 습도 5%에서 iPS 클론 문화 CO2 배양 기.</li>
		<li>다음 날 (29 일), 지출된 hESC 매체를 제거 하 고 각 잘에서 상용 iPSC 매체의 250 µ L를 추가 합니다.</li>
		<li>37 ° c 습도 5%에서 iPS 클론 유지 CO2 배양 기, 그리고 변경 iPSC 매체 매일.</li>
		<li>하위 1시 10분에서 세포 iPS 클론 85% 합류에 도달, 문화 영역에서 비율. 세포를 분리 하 여 3 분 동안 37 ° C에서 품 어 상업 passaging 솔루션의 60 µ L를 추가 합니다.</li>
		<li>2 µ M 바위 억제제 Thiazovivin와 hESC 매체의 1 mL에 지하실 멤브레인 매트릭스 코팅 12-잘 접시에 분리 Ipsc의 씨앗. 1시 10분에서 잘하고 subculture Ipsc 당 상용 iPSC 매체의 1 mL와 함께 12-잘 접시에 iPS 클론 문화 비율 통로 10를 도달할 때까지. 참고: Ipsc는 교양 1시 10분에 5-7 일 마다 하위 비율. 그것은 통로 10 도달 iPS 클론에 대 한 10 주까지 걸립니다. iPSC characterizations 셀 형태학, 알칼리 성 인산 가수분해 효소 (AP) 활동, 및 pluripotency 요인과 hESC 마커, 표현의 Ipsc (일반적으로 약 10 후 시연에 센다이 바이러스의 제거를 확인 한 후에 시험 될 수 있다 구절) (그림 1B-E) IPSC 특성화에 대 한 항 체 및 뇌관 정보는 표 2 와 4에 포함 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 차별화 LFS Ipsc 중간 엽 줄기 세포 (MSCs) (그림 2A)에
<ol><li>적어도 2 주 동안 MEF 접시에 복제 하 문화 iPSC (하루 ~-14-0): 앞에서 설명한 MEF 요리 (100 m m 조직 문화 접시) 준비 (1.3.1-1.3.2). Ipsc hESC 매체에 유지 하 고 매일 매체를 변경. 때마다 Ipsc 도달 90% 합류, subculture Ipsc 1:10 희석.</li>
	<li>Ipsc (0 일)에서 MEFs의 제거:<ol>
<li>Ipsc MEFs에 2 주 동안 유지, 후 셀까지 100 m m 조직 문화 요리에서 문화 Ipsc 합류 80-90%에 도달 합니다. 보낸된 hESC 매체를 제거 하 고 1 x DPBS의 5 mL와 Ipsc를 씻어. 세포를 분리 하 여 3 분 동안 실 온에서 품 어 세포 분리 솔루션의 1 mL를 추가 합니다.</li>
		<li>세포 분리 솔루션 활동을 중화 하 고 어떤 코팅 없이 새로운 100 m m 조직 문화 접시에 분리 된 세포를 전송 하는 접시 MEF/MSC 문화 매체의 9 mL를 추가 합니다.</li>
		<li>접시에 연결할 MEFs 수 있도록 30 분 동안 실내 온도에 세포를 품 어.</li>
		<li>신중 하 게 첨부 되지 않은 Ipsc, 및 4 분 4 ° C에서 230 x g에서 원심 분리기를 포함 하는 상쾌한을 수집 합니다. 참고: MEFs의 분리를 리드 살짝 접시 바닥을 홍 조.</li>
	</ol>
</li>
	<li>MSCs (하루 0-28)를 향해 Ipsc의 차별화:<ol>
<li>30 분 동안 실내 온도에 잘 당 0.1% 젤라틴의 1 mL와 함께 6 잘 플레이트의 3 웰 스 코트.</li>
		<li>2.2.4에서 수집된 Ipsc의 상쾌한을 제거 합니다.</li>
		<li>잘 (0 일) 당 2 mL와 MSC 차별화 매체 (표 1) 및 3 개의 코팅 스 씨 셀의 6 ml에서 Ipsc resuspend.</li>
		<li>연결 되지 않은 및 죽은 세포 (주 1-28)를 제거 하 MSC 차별화 매체 매 2 일 변경.</li>
	</ol>
</li>
	<li>IPSC 파생 MSCs (하루 28-45)의 성숙:<ol>
<li>보낸된 MSC 차별화 매체를 제거 하 고 씻어 1 x DPBS의 1 mL로 세포.</li>
		<li>0.25%의 0.5 mL와 MSCs trypsinize 트립 신-EDTA 3 분 동안 실내 온도에 잘 당.</li>
		<li>MEF/MSC 문화 매체의 1.5 mL에 의해 트립 신을 무력화 하 고 한 15 mL 원뿔 튜브에 3 개의 우물에서 MSCs를 수집 합니다. 4 분 4 ° C에서 230 x g에서 원심 분리기.</li>
		<li>제거는 상쾌한 고 MEF/MSC 문화 매체와 한 60 m m 0.1% 젤라틴 코팅 접시 (28 일)에 격판덮개의 3 mL에서 MSCs를 resuspend.</li>
		<li>MEF/MSC 문화 매체에서 MSCs 문화 그리고 매체 매 2 일 변경. 셀 100% 합류, 0.25%를 사용 하 여 1:3 비율로 subculture MSCs를 도달 하는 때 트립 신-EDTA. 참고: MSCs 표시 구와 같은 형태 (그림 2B). MSCs는 고밀도에 성장, 길쭉한 MSCs 소용돌이 모양의 패턴 (그림 2B)를 형성할 수 있습니다.</li>
		<li>MSC 표면 마커 CD44, CD73, CD105, 및 CD166를 검사 하 여 iPSC 파생 MSCs를 평가 하기 위해 immunofluorescent 얼룩 수행 (그림 2C). 참고: 항 체의 희석 표 2에 표시 됩니다. 라이브 셀의 immunofluorescent 얼룩 제조업체의 지침에 따라 수행 됩니다.</li>
		<li>확인 후 100 m m 조직 문화 요리에서 1:3 비율로 MSCs를 확장 합니다. 튜브 (100 m m 조직 문화 접시 당 3 튜브) 아래로 고정 10 %DMSO 90%를 포함 하는 동결 매체를 사용 하 여 FBS. 참고: MSC 인구 풍부 하 MSCs 정렬할 수 있습니다 CD105를 사용 하 여+, CD24-조건 흐름 cytometry9,17. iPSC 파생 MSCs 분화 PDGF AB-기반 메서드를 사용 하 여 일반적으로 MSC 정체성9의 손실 없이 문화에 2-3 개월 동안 유지할 수 있습니다. MSC 특성을 확인 한 후 초기 통로 번호에서 MSCs를 고정 합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Osteoblasts (그림 3A)를 LFS MSCs의 차별화
<ol><li>MSCs osteogenic 차별화 (주-1)에 대 한 준비<ol>
<li>Osteogenic 분화 프로토콜을 완료 하려면 셀의 충분 한 수량을 유지 하려면 100 m m 조직 문화 요리 95% 합류를 경작 하는 MSCs로 시작 합니다. 소비 문화 매체를 제거 하 고 1 x DPBS의 5 mL와 MSCs를 씻어.</li>
		<li>3 분 동안 실 온에서 100 mm 접시 당 0.25% trypsin EDTA의 1 mL와 MSCs를 trypsinize. 셀 이상 trypsinized 하지 있도록 셀 초연의 50%는 현미경 관찰 trypsinization 중지.</li>
		<li>MEF/MSC 문화 매체의 9 mL에 의해 트립 신을 무력화 하 고 한 15 mL 원뿔 튜브로 3 우물에서 MSCs를 수집 합니다. 4 분 4 ° C에서 230 x g에서 원심 분리기.</li>
		<li>발음은 상쾌한, MSC 매체의 5 mL에 MSCs를 resuspend 하 고 셀의 수를 계산 하는 hemocytometer에 의해.</li>
		<li>플레이트 문화 접시에 MSCs의 적절 한 번호 참고: 셀 수가 12-잘 접시, 6 잘 플레이트, 그리고 100 m m 조직 문화 접시의 표 3에 요약 되어 있습니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Osteoblast 차별화 매체 (ODM) (표 1) (0-24 일)에 의해 osteogenic 분화의 유도:<ol>
<li>MEF/MSC 문화 매체를 발음 하 고 ODM의 적절 한 볼륨으로 바꿉니다 (1 mL, 2 mL와 8 mL 12-잘 접시의 각 잘, 6 잘 플레이트, 그리고 100 m m 조직 문화의 각 음에 대 한 접시, 각각) osteoblasts (0 일)를 MSCs를 차별화 하는 데.</li>
		<li>보낸된 ODM 발음 고 osteogenic 차별화 과정에서 매 2 일 ODM의 적절 한 볼륨으로 바꿉니다.</li>
		<li>알칼리 성 인산 가수분해 효소 (AP)를 수행 하 고 3, 6, 9, 12, 15, 18, 21, 및 24 ( 일에 알리자린 레드 S (ARS) 뼈 관련 알칼리 성 인산 가수분해 효소 preosteoblasts에 의해 생산 및 무기물 공 술 서 제작한 감지 하 얼룩 성숙 osteoblasts, 각각, 그림 3B). 참고: AP 얼룩 및 ARS 얼룩 상용 키트 다음 제조 업체 프로토콜을 사용 하 여 수행 됩니다.</li>
		<li>Preosteoblast 하 고 성숙한 osteoblast 마커 (ALPL 및 preosteoblasts;에 대 한 COL1A1 식 수준 검사 PTH1R 및 BGLAP에 대 한 성숙 osteoblasts) qRT-PCR (그림 3C)에 의해. 참고: 긍정적인 AP 얼룩이 지는 하루 9 osteogenic 차별화의 후와 긍정적인 ARS 얼룩 osteogenic 차별화의 날 21 후 예상 될 수 있다. MSCs MEF/MSC 문화 매체에 성장 AP 얼룩 및 ARS 얼룩의 부정적인 컨트롤로 제공 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. LFS MSC 파생 Osteoblasts (그림 4A)의 Tumorigenesis Vivo에서 공부를 종이 식 모델
<ol><li>Osteoblasts LFS MSCs의 차별화:<ol>
<li>시드 3-4.5 x 100 m m 조직 문화 접시에 105 MSCs입니다. 1 피하 주입에 대 한 5 개의 요리를 준비 합니다.</li>
		<li>하루 14까지 3.2에 설명 된 대로 osteoblasts를 MSCs를 차별화 하는 ODM에 문화 MSCs.</li>
	</ol>
</li>
	<li>피하 주사에 대 한 차별화 된 osteoblasts의 준비:<ol>
<li>Osteoblast 분리 솔루션 (표 1)를 준비 하려면 1 g 유형 II 콜라 콜라 II 솔루션 (1 mg/mL) αMEM 매체의 1000 mL에 녹. -20 ° c.에 콜라 II 솔루션을 유지 0.25% 믹스는 osteoblasts 분리 솔루션으로 만들기 위해 트립 신-EDTA와 1:1 비율로 콜라 II 솔루션.</li>
		<li>보낸된 ODM를 제거 하 고 100 mm 접시 당 1 x DPBS의 5 mL와 함께 차별화 된 osteoblasts 세척.</li>
		<li>100 mm 접시 당 osteoblast 분리 솔루션의 1.5 mL를 추가 하 고 요리 30 분 검사에 대 한 37 ° c를 품 어 현미경 검사 법에 의해 osteoblast 분리를 보장.</li>
		<li>ODM에 의해 osteoblasts 분리 솔루션을 무력화 하 고 50 mL 원뿔 튜브에서 분리 osteoblasts 수집 합니다. 5 분 동안 4 ° C에서 230 x g에서 원심 분리기.</li>
		<li>상쾌한을 제거 하 고 ODM 매체의 25 mL에 있는 세포를 resuspend. 집계 된 세포를 제거 하는 70 µ m 셀 스 트레이너를 통해 세포를 전달 합니다. hemocytometer를 사용 하 여 셀 수를 계산 합니다.</li>
		<li>1 x 107 osteoblasts 피하 주입, 및 4 ° C에서 230 x g에서 원심 분리기 세포 당 4 분에 대 한 준비.</li>
		<li>50 µ L 얼음 1에에서 1 × 107 osteoblasts resuspend x DPBS. 믹스는 osteoblasts 페 놀 레드 무료 지하실 멤브레인 매트릭스 (osteoblasts 펜션과 지하실 멤브레인 매트릭스 1:1 비율로 혼합)의 50 µ L로 분화 하 고 주입 전에 얼음 osteoblasts를 유지 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Vivo에서 이 종이 식 종양 모델 LFS MSC 파생 osteoblasts의:<ol>
<li>1 L/min의 산소 (CLAMC에서 제공)에서 5% (v/v) 흡입 isoflurane 공급 챔버에 8 주 오래 된 여성 immunocompromised 뉴/뉴 마우스 anesthetize 동물 휴식 후, 원뿔, 공급 200 mL/min의 산소 (CLAMC에서 제공)에서 2% (v/v) 흡입 isoflurane 마 취 전달 시스템 전환 합니다. 쥐를 만들기 위해 각 막 및 페달 반사 충분히 마 취 및 수술 중 불편에서 고통을 하지 확인 하 여 마 취의 깊이 모니터링 합니다.</li>
		<li>액체 및 70% 소 프로 파 놀의 대체 면봉으로 주입 영역을 치료. 26 G 바늘을 사용 하 여 8 주 된 immunocompromised 뉴/뉴 마우스 (그림 4A)의 뒷 다리의 한쪽으로 지하실 멤브레인 매트릭스 혼합 LFS osteoblasts의 피하 주사를 수행.</li>
		<li>피하 결 밀도의 성장을 위한 사출 사이트에서 주간 촉진을 수행 하 여 마우스를 모니터링 합니다. 종양의 형성 (그림 4B) 주입 후 약 6-10 주를 관찰할 수 있습니다.</li>
		<li>뒤에 자 궁 경부 전위 이산화탄소 질 식 방법으로는 마우스를 안락사. 개발 된 종양을 해 부. 다양 한 착 색 방법 (예: Hematoxylin과 오신 (H & E) 얼룩, Picro 시리우스 레드 얼룩, 및 von Kossa 각각 얼룩)으로 종양 급료와 차별화 인덱스, preosteoblasts, 및 성숙한 osteoblasts를 결정 합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Takahashi, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+mouse+embryonic+and+adult+fibroblast+cultures+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.</a> Cell. 126 (4), 663-676 (2006).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131 (5), 861-872 (2007).</li>
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<li>Zhou, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Li-Fraumeni+Syndrome+Disease+Model%3A+A+Platform+to+Develop+Precision+Cancer+Therapy+Targeting+Oncogenic+p53%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Pharmacol+Sci%22%5BJournal%5D)">Li-Fraumeni Syndrome Disease Model: A Platform to Develop Precision Cancer Therapy Targeting Oncogenic p53.</a> Trends Pharmacol Sci. 38 (10), 908-927 (2017).</li>
<li>Lian, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+clinically+compliant+MSCs+from+CD105%2B%2C+CD24-+differentiated+human+ESCs%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Derivation of clinically compliant MSCs from CD105+, CD24- differentiated human ESCs.</a> Stem Cells. 25 (2), 425-436 (2007).</li>
<li>Zhou, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+homozygous+p53+R282W+mutant+human+embryonic+stem+cell+line+generated+using+TALEN-mediated+precise+gene+editing%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">A homozygous p53 R282W mutant human embryonic stem cell line generated using TALEN-mediated precise gene editing.</a> Stem Cell Res. 27, 131-135 (2018).</li>
</ol>

저자는 공개 없다.

MSC 차별화 능률을 달성 하기 위해 여러 측면은 중요 합니다. 하나는 MSC 차별화를 시작 하기 전에 Ipsc의 문화 상태 이다. 원고에 제시 하는 프로토콜은 이전 연구 9,17를 기반으로 합니다. Ipsc는 적어도 2 주 동안 MEFs에 교양 있이 필요가 있다. 유지 좋은 Ipsc MEFs에 조건은 MSC 차별화 젤라틴 코팅 접시에 연결할 셀에 대 한 중요 한입니다. 또 다른 중요 한 측면은 차별 전에 MEFs에 Ipsc의 밀도. 80-Ipsc의 90% confluency MSC 차별화 시작 선호 된다. Ipsc의 자라 난 차별화 과정에서 세포 생존에 악영향을 줄 것 이다. MSC 차별화를 시작할 때 마지막 중요 한 포인트는 시드 밀도입니다. 우리의 손, 높은 세포 밀도 iPSC 젤라틴 코팅 접시에 첨부 파일을 촉진합니다. 한 100 mm 접시 Ipsc 6 잘 플레이트의 세 우물에 시드할 수 있습니다. 직접 resuspe...

2006 년과 2007 년 사이 여러 획기적인 결과 박사 신 야 야 마나카와 제임스 A. 톰슨의 실험실에서 유도 만능 줄기 세포 (Ipsc)1,2,3의 개발을 주도. 양식 Ipsc에 정의 된 transcriptional 요인과 체세포 프로그래밍, 연구팀은 즉 주요 특성을 가진 세포를 생성할 수 있었다, pluripotency, 및 자기 갱신, 이전에 생각 되었다 인간 배아 줄기 세포에 존재 (hESCs)입니다. Ipsc 어떤 개인 이나 환자에서 생성 될 수 있는 고 배아, 광대 하 게 사용 가능한 질병 및 배경 연구에 대 한 레 퍼 토리를 확장에서 파생 될 필요가 없습니다. 이후로, 환자 파생 Ipsc Alzheimer의 질병4 와 루 경화 증5 긴 QT 증후군6,7, 에서 다양 한 인간 질병의 표현 형을 정리 하는 데 사용 되었습니다. 8.
IPSC 연구이 진보는 또한 암 연구를 위한 새로운 길을 열었습니다. 여러 그룹 최근 사용 환자 Ipsc는 취약 유전 배경9,,1011, 모델 암 개발에 다리9, 날짜에 성공적인 응용 프로그램 백혈병10,,1112, 그리고 대 장 암13. IPSC 파생 암 모델 그들의 초기에서 여전히 있지만, 그들은 phenocopying 질병 관련 된 악성 종양, 병 적인 메커니즘 elucidating 고 치료 화합물14를 식별에 큰 잠재력을 증명 하고있다.
Li Fraumeni 증후군 (LFS) TP53 생식 돌연변이15에 의해 발생 하는 상 염색체 지배적인 유전 암 질환 이다. LFS 환자는 악성 다리를 포함 하 여 다양 한 유형의 predisposed 이다 만들고 LFS Ipsc 그들의 파생된 셀이 종은16공부에 특히 적합. 중간 엽 줄기 세포 (MSCs)로 분화 이후 LFS 환자 파생 Ipsc9 를 사용 하 여 및 다음 osteoblasts, 원본 세포는 iPSC 기반 다리 모델 처음 2015 년에 설립 되었다 다리의. 이러한 LFS osteoblasts osteogenic 차별화 다리 관련 결함 및 종양 속성, "접시에 뼈 종양" 플랫폼으로 서 잠재적인 모델을 보여주는 정리. 흥미롭게도, 게놈 전체 transcriptome 분석 공개 LFS osteoblasts에 다리 유전자 서명의 측면 그리고 다리9, 빈약한 예 지와이 LFS 유전자 표현 프로필의 기능 상관 나타내는 임상 관련성의 기능을 LFS Ipsc 질병 모델의 가능성이 있습니다.
이 원고는 LFS 환자 파생 Ipsc 모델 다리를 사용 하는 방법에 대 한 자세한 설명을 제공 합니다. 그것은 LFS Ipsc, Ipsc MSCs 그리고 osteoblasts, 하의 그리고 vivo에서 이 종이 식 사용 하는 모델 LFS osteoblasts의 사용의 세대를 자세히 설명 합니다. LFS 질병 모델은 몇 가지 이점이, 특히 기계 연구, 바이오 마커 식별 및 약9,14, 심사에 대 한 다리 개발의 모든 단계에서 무제한 세포를 생성 하는 기능 16.
요약 하자면, LFS iPSC 기반 다리 모델 다리 연구 진행을 위한 매력적인 보완 시스템을 제공 합니다. 이 플랫폼은 또한 암 모델링 Ipsc 환자 파생을 사용 하 여-의 증거-개념을 제공 합니다. 아래에 설명 된이 전략 모델 악성 암 선천적인와 다른 유전 질환과 관련 된을 쉽게 확장할 수 있다.

<table><tbody><tr><td>플라스틱 제품</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>100 mm 디쉬</td><td>코닝</td><td>430107</td><td></td></tr><tr><td>60 mm 디쉬</td><td>코닝</td><td>430166</td><td></td></tr><tr><td>6웰 플레이트</td><td>Falcon</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>12웰 플레이트</td><td>Falcon</td><td>353043</td><td></td></tr><tr><td>48웰 플레이트</td><td>Falcon</td><td>353078</td><td></td></tr><tr><td>1 mL 피펫 팁</td><td>USA Scientific</td><td>1111-2721</td><td></td></tr><tr><td>200 &마이크로; L 피펫 팁</td><td>USA Scientific</td><td>1111-0706</td><td></td></tr><tr><td>10 &마이크로; L Pipet Tip</td><td>USA Scientific</td><td>1111-3700</td><td></td></tr><tr><td>5 mL 혈청학적 피펫</td><td>SARSTEDT</td><td>86.1253.001</td><td></td></tr><tr><td>10 mL 혈청학적 피펫</td><td>SARSTEDT</td><td>86.1254.001</td><td></td></tr><tr><td>25 mL 혈청학적 피</td>펫 <td>SARSTEDT</td><td>86.1685.001</td><td></td></tr><tr><td>50 mL 튜브, PP</td><td>SARSTEDT</td><td>62.547.100</td><td></td></tr><tr><td>15 mL 튜브, PP</td><td>SARSTEDT</td><td>62.554.100</td><td></td></tr><tr><td>Culture materials and Reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CytoTune- iPS 2.0 Sendai Reprogramming Kit</td><td>Invitrogen</td><td>A16517</td><td>상업용 센다이 바이러스 재프로그래밍 키트</td></tr><tr><td>Corning hESC 인증 매트릭스</td><td>Corning</td><td>354277</td><td>Basement membrane matrix</td></tr><tr><td>CF1 MEFs, 방사선 처리</td><td>ThermoFisher</td><td>A34180</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>시그마-알드리치</td><td>D5671</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>코닝</td><td>10-090-CV&</td><td></td></tr><tr><td>알파; MEM</td><td>Corning</td><td>10-022-CV</td><td></td></tr><tr><td>StemMACS iPS-Brew XF</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-104-368</td><td>상업용 iPSC 매체</td></tr><tr><td>녹아웃 DMEM/F-12</td><td>ThermoFisher</td><td>12660012</td><td></td></tr><tr><td>FBS Opti-Gold</td><td>GenDEPOT</td><td>F0900-050</td><td></td></tr><tr><td>녹아웃 혈청 대체품</td><td>ThermoFisher</td><td>A3181502</td><td></td></tr><tr><td>페니실린-스트렙토마이신</td><td>시그마-알드리치</td><td>P4333</td><td></td></tr><tr><td>MEM 비필수 아미노산</td><td>코닝</td><td>25-025-CI</td><td></td></tr><tr><td>L-글루타민 용액</td><td>시그마-알드리치</td><td>G7513</td><td></td></tr><tr><td>2-메르캅토에탄올</td><td>시그마-알드리치</td><td>M3148</td><td></td></tr><tr><td>인간 FGF-basic (bFGF)</td><td>PEPROTECH</td><td>100-18B</td><td></td></tr><tr><td>재조합 인간 PDGF-AB</td><td>PEPROTECH</td><td>100-00AB</td><td></td></tr><tr><td>&beta;-글리세로인산</td>염, <td>시그마-알드리치</td>, <td>G9422,</td><td></td></tr><tr><td>덱사메타손</td><td>, 시그마-알드리치</td>, <td>A4902</td><td></td></tr>, <tr><td>아스코르브산</td>, <td>시그마-알드리치</td>, <td>A5960</td><td></td></tr>, <tr><td>둘베코의 인산염 완충 식염수, 1x (DPBS)</td><td>Corning</td><td>21-031-CV</td><td></td></tr>, <tr><td>StemMACS 패스에이징 솔루션, XF</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-104-688</td><td>상업용 패시에이징 솔루션</td></tr><tr><td>Accutatse 세포 분리 솔루션</td><td>Corning</td><td>25-058-CI</td><td>세포 분리 솔루션</td></tr><tr><td>Thiazovivin (ROCK 억제제)</td><td>Calbiochem</td><td>420220</td><td></td></tr><tr><td>0.25% Trypsin-EDTA 솔루션</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T4049</td><td></td></tr><tr><td>콜라겐분해효소, Type II&nbsp; &nbsp;</td><td>ThermoFisher</td><td>17101015</td><td></td></tr><tr><td>Human NANOG 항체</td><td>R& D System</td><td>AF1997</td><td></td></tr><tr><td>OCT4 항체 (H-134)</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-9081</td><td></td></tr><tr><td>Human/Mouse SSEA-4 PE-conjugated 항체</td><td>R& D 시스템</td><td>FAB1435P</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 555 마우스 Anti-Human TRA-1-81 Antigen</td><td>DB Biosciences</td><td>560123</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 당나귀 Anti-Goat IgG (H+L)</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>705-545-003</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 Goat Anti-Rabbit IgG (H+L)</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>111-545-144</td><td></td></tr><tr><td>PE 마우스 Anti-Human CD105</td><td>eBioscience</td><td>12-1057-42</td><td></td></tr><tr><td>FITC 마우스 안티휴먼 CD44</td><td>DB 바이오사이언스</td><td>555478</td><td></td></tr><tr><td>PE 마우스 안티휴먼 CD73</td><td>DB 바이오사이언스</td><td>550257</td><td></td></tr><tr><td>PE마우스 안티휴먼 CD166</td><td>DB 바이오사이언스</td><td>560903</td><td></td></tr><tr><td>FITC 마우스 안티휴먼 CD24</td><td>DB 바이오사이언스</td><td>555427</td><td></td></tr><tr><td>동키세럼</td><td>잭슨 면역연구</td><td>017-000-121</td><td></td></tr><tr><td>염소 혈청</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>005-000-121</td><td></td></tr><tr><td>알칼리 포스파타제 염색 키트 II</td><td>Stemgent</td><td>00-0055</td><td></td></tr><tr><td>Alizarin Red S</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5533</td><td></td></tr><tr><td>TRIzol 시약</td><td>ThermoFisher</td><td>15596018</td><td></td></tr><tr><td>클로로포름</td><td>ThermoFisher</td><td>C298-500</td><td></td></tr><tr><td>2-프로판올</td><td>ThermoFisher</td><td>A416-4</td><td></td></tr><tr><td>에탄올, 절대, 분자 생물학 등급</td><td>ThermoFisher</td><td>BP28184</td><td></td></tr><tr><td>DNase I, RNase-free(1 U/&micro; L)</td><td>ThermoFisher</td><td>EN0521</td><td></td></tr><tr><td>iScript cDNA 합성 키트</td><td>BioRad</td><td>1708891BUN</td><td></td></tr><tr><td>iQ SYBR Green Supermix</td><td>BioRad</td><td>1708884</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel Matrix 고농도(HC), 페놀-레드 프리</td><td>코닝</td><td>354262</td><td></td></tr><tr><td>1mL 슬립 팁 주사기, 26 게이지 x 5/8인치</td><td>DB Biosciences</td><td>309597</td><td></td></tr></tbody></table>

li fraumeni 증후군 환자에서 파생 된 유도 만능 줄기 세포를 사용 하 여 다리를 모델링

Modeling Osteosarcoma Using Li-Fraumeni Syndrome Patient-derived Induced Pluripotent Stem Cells

Li Fraumeni 증후군 (LFS)는 상 염색체 지배적인 유전 암 질환 이다. LFS 환자는 종양, 다리-유년기와 청소년 기에 가장 빈번한 기본 비 혈액 악성 종양 중 하나를 포함 하 여 다양 한 유형의 predisposed 이다. 따라서, LFS이이 악성을 공부 하는 이상적인 모델을 제공 합니다. IPSC 방법론의 활용 LFS 연결 다리 LFS 환자 Ipsc 중간 엽 줄기 세포 (MSCs), 그리고 osteoblasts-osteosarcomas에 대 한 원래 셀을 차별화 하 여 성공적으로 모델링할 수 있다. 이러한 LFS osteoblasts 다리, 다리의 병 인을 묘사 하는 매력적인 모델 시스템 제공의 종양 속성 정리. 이 원고는 LFS 환자 fibroblasts, MSCs osteoblasts을 vivo에서 tumorigenesis LFS osteoblasts를 사용 하 여 MSCs의 차별화를 Ipsc의 차별화에서에서 Ipsc의 세대에 대 한 프로토콜을 보여 줍니다. 잠재적인 생체 또는 LFS 연결 다리에 대 한 치료 목표를 식별 하이 iPSC 질병 모델을 확장할 수 있습니다.

이 프로토콜 등 LFS iPSC 세대, MSC 차별화, osteoblast 차별화, vivo에서 tumorigenesis 분석 결과 osteoblasts LFS MSC 파생을 사용 하 여 절차를 제공 합니다.
LFS Ipsc 키트 프로그래밍 상용 센다이 바이러스를 사용 하 여 섬유 아 세포에서의 세대에 대 한 스키마는 그림 1A에 표시 됩니다. 야 마나카 4 요인의 센다이 바이러스 기반 배달 비 통합 재활 방법입니다. 따라서, 안정적인 LFS iPSC 클론 센다이 바이러스 게놈 및 외 인 OCT4, SOX2, KLF4, 및 특정 뇌관 (그림 1B)를 사용 하 여 RT-PCR에 의해 시험 될 수 있는 c-MYC transgenes의 손실의 무료...

여기, 우리 제시 프로토콜 유도 만능 줄기 세포 (Ipsc)의 세대에 대 한 Li Fraumeni 증후군 (LFS) 환자 파생된 섬유 아 세포, 중간 엽 줄기 세포 (MSCs)를 통해 Ipsc의 차별화에서에서 osteoblasts, 및 모델링 비보 tumorigenesis LFS 환자 파생 osteoblasts를 사용 하 여입니다.

Li Fraumeni 증후군 환자에서 파생 된 유도 만능 줄기 세포를 사용 하 여 다리를 모델링

Li-Fraumeni syndrome (LFS) is an autosomal dominant hereditary cancer disorder. Patients with LFS are predisposed to a various type of tumors, including ...

이 Li-Fraumeni 증후군 iPSC 기반 골육종 모델은 암 모델링에서 환자 iP 세포를 사용하는 것에 대한 골육종 연구 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 모델의 주요 장점은 기계론적 연구, 바이오마커 식별 및 약물 스크리닝을 위해 골육종 발달의 모든 단계에서 세포를 무제한으로 생성할 수 있다는 것입니다. Ruoji는 세포 배양 절차를 시연하고 저는 동물 절차를 시연할 것입니다.마우스 배아 섬유아세포(MEF)를 2주 동안 배양한 후, 80-90% 융합 iPS 세포 배양을 5ml의 DPBS로 공동 배양한 후 1ml의 세포 분리 용액을 세포에 첨가하여 실온에서 3분 동안 배양합니다. MEF에서 iPS 세포를 최소 14일 동안 양호한 상태로 유지하는 것이 중요하며, 세포가 중간엽 줄기 세포로 분화하기 위해 젤라틴 코팅된 플레이트에 부착할 수 있도록 해야 합니다. 세포가 플레이트 바닥에서 분리되면 세포에 9ml의 MEF/MSC 배양 배지를 추가하여 세포 분리 용액을 중화하고 세포 현탁액을 코팅되지 않은 100mm 조직 배양 플레이트로 옮깁니다.MEF가 플레이트에 부착될 수 있도록 실온에서 30분 동안 세포를 배양하고 부착되지 않은 iPS 세포 함유 상층액을 조심스럽게 수집합니다. iPS 세포 용액을 원심분리하고 펠릿을 6ml의 MSE 분화 배지에 재현탁합니다. 그런 다음 6웰 배양 플레이트의 0.1% 젤라틴으로 코팅된 웰 3개 각각에 2밀리리터의 세포를 파종하고 플레이트를 세포 배양 인큐베이터에 28일 동안 배치하고 2일마다 세포에 새로운 배지를 공급하여 부착되지 않았거나 죽은 세포를 제거합니다.28일째에는 분화된 세포의 큰 덩어리가 보이며 클러스터의 가장자리에서 섬유아세포와 같은 MSC가 관찰됩니다. 웰당 1ml의 DPBS로 세포 배양물을 세척한 후 실온에서 웰당 0.5ml의 0.25% 트립신-EDTA로 세포 배양물을 분리합니다. 3분 후 웰당 1.5ml의 MEF/MSE 배양 배지로 Tyrypsin을 중화하고 분리된 MSE를 원심분리를 위해 단일 15ml 원뿔형 튜브에 모읍니다.펠릿을 3ml의 MEF/MSE 배양 배지에 재현탁시키고 세포를 0.1% 젤라틴으로 코팅된 60mm 플레이트에 시딩하고 세포가 100% 합류점에 도달할 때까지 2일마다 배지를 교체합니다. 100% 융합 배양을 1:3 비율로 분할한 후 MSC는 빠르게 증식하여 섬유아세포와 같은 형태를 보여주고 배양이 고밀도에 도달하면 소용돌이와 같은 배양 패턴을 형성합니다. iPS 세포 유래 MSC는 분화 중 어느 시점에서든 중간엽 줄기 세포 마커에 대한 면역형광 염색으로 검사할 수도 있습니다.MSE를 조골세포로 구별하기 위해 95% confluent 세포 배양에서 적절한 수의 MSE를 적절한 부피의 MEF/MSC 배양 배지에 24시간 동안 플레이트화합니다. 그런 다음 다음 날과 그 후 배양 기간이 끝날 때까지 2일에 한 번씩 상층액을 적절한 양의 조골세포 분화 배지로 교체하기 시작합니다. 조골세포에 의해 생성된 뼈 관련 알칼리 인산가수분해효소와 성숙한 조골세포에 의해 생성된 미네랄 침착을 검출하기 위해 적절한 실험 시점에서 제조업체의 프로토콜에 따라 각각 알칼리 인산가수분해효소 및 Alizarin Red S 염색을 수행합니다.분화된 조골세포를 사용하여 생체 내 종양 형성 모델을 설정하기 위해 적절한 수의 MSC를 5개의 100mm 접시에 파종하여 조골세포 분화를 시작합니다. 조골세포 분화 14일째에 5ml의 DPBS로 조골세포의 배양판 5개를 세척하고 접시당 1.5ml의 조골세포 박리 용액으로 세포를 처리합니다. 섭씨 37도에서 30분 배양 후 광학 현미경으로 세포의 박리를 확인하고 새로운 조골세포 분화 배지로 박리 용액을 중화합니다.원심분리를 위해 50ml 원뿔형 튜브에 세포를 모으고 펠릿을 25ml의 새로운 조골세포 분화 배지에 재현탁합니다. 70미크론 스트레이너를 통해 세포 용액을 여과하여 계수하기 전에 응집된 세포를 제거하고 피하 주사당 1 X 10에서 7 세포를 따로 보관합니다. 원심분리를 통해 세포를 펠렛화하고 얼음처럼 차가운 DPBS 농도 50마이크로리터당 1 X 10에서 7개의 조골세포로 세포를 재구성합니다.조골세포를 동일한 부피의 페놀-적색 유리 기저막 매트릭스와 혼합하고 주입할 때까지 세포를 얼음 위에 놓습니다. 생후 8주 된 암컷 면역력이 저하된 나체의 쥐에서 발가락 꼬집음에 대한 반응이 없음을 확인한 후, 27 게이지 바늘이 장착된 1밀리리터 주사기에 세포를 넣고 100마이크로리터의 세포를 소독된 동물의 옆구리에 피하주사합니다. 그런 다음 주사 부위에서 매주 심계항진으로 마우스의 피하 결절 밀도가 성장하는지 모니터링합니다.종양 형성은 주사 후 6주에서 10주 사이에 관찰해야 합니다. 확립된 LFS iPS 세포 클론은 전형적인 인간 배아 줄기세포 형태를 나타내야 하며 양성 알칼리성 인산가수분해효소 활성을 나타내야 합니다. LFS iPS 세포는 또한 인간 배아 줄기 세포주와 유사하며 부모 섬유아세포에서 관찰된 수준보다 훨씬 높은 다능성 인자 mRNA를 발현합니다.성공적으로 분화된 LFS MSC는 면역형광 염색으로 평가된 CD44, CD73, CD105 및 CD166을 포함한 일반적인 MSC 마커도 발현합니다. MSC가 골형성 분화 신호에 노출되면 분화된 세포는 9일째까지 양성 알칼리 인산가수분해효소 활성을 나타내기 시작하고 21일째에는 미네랄 침착을 나타내기 시작합니다. 분화하는 조골세포는 또한 분화 과정 전반에 걸쳐 조골세포 전단계(pre-osteoblast) 및 성숙한 조골세포(mature osteoblast) 유전자의 상향 조절된 발현을 보여줍니다.조골세포 주사 후 6-10주 후 LFS 조골세포 유래 종양은 양성 알칼리 포스파타제 활성, 양성 콜라겐 기질 침착 및 음성 광물화를 포함한 미성숙 조골세포 특성을 나타냅니다. 이 동영상을 시청한 후에는 Li-Fraumeni Syndrome iPS 세포를 조골세포로 구별하고 환자 유래 조골세포를 사용하여 생체 내 골육종 모델을 생성하는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다. 골육종 외에도 이 Li-Fraumeni Syndrome iPS 세포 기반 질병 모델은 연조직 육종, 유방암 및 뇌종양과 같은 다른 Li-Fraumeni 증후군 관련 악성 종양에도 적용할 수 있습니다.

modeling-osteosarcoma-using-li-fraumeni-syndrome-patient-derived

Research

연구

JoVE Journal

Cancer Research

암 연구

뼈 육종 암 줄기 세포의 존재 (CSC 추가)는 최근에 발병에 연결되어있다. 이 글에서, 우리는 비 접착 조건에서 성장하는 암줄 기세포의 능력을 사용하여 기존의 골육종 (OS)의 인간 생체 검사에서 얻은 기본 세포 배양에서 암줄 기세포의 분리를 제시한다.

암의 설립은 인간 기존의 골육종에서 세포 배양 줄기

골 종양 진행; 지원의 프로그래밍 이끌어 낸다 암 파생 extracellular 소포 (EVs)의 직접 분사 그러나, 셀 중재이 효과가 명확 하지 않습니다. 여기, 우리 EV 교육 MSCs 전이에 대 한 중요 한 역할을 드러내는 EV 중재 종양 mesenchymal 줄기 세포 (MSC) 상호 작용에서 vivo에서, 조사 하는 단계별 프로토콜을 설명 합니다.

종양 및 중간 엽 줄기 세포 사이의 세포 외 기 중재 통신을 정의 하는 다리의 전 임상 마우스 모델

우리는 형광 활성화 세포 선별에 의한 인간 육종 환자 유래 이종이식에서 종양 을 자극하는 세포의 분리를 위한 상세한 프로토콜을 설명하고, 인간 백혈구 항원-1(HLA-1)을 음성 마커로 사용하고, 추가검증및 이러한 HLA-1 음성 종양 을 자극 하는 세포의 특성.

육종 환자 유래 이종이식에서 종양 을 발하는 세포의 격리 및 특성화

다리 (OS)의 뼈 기질 (괜 찮) 모델은 잘 설립 하 고 그림 여기. 그것은 기본 종양 성장에서 생체 외에서 흉내 낸 및 OS의 조직학 및 cytogenic이 공부에 대 한 이상적인 모델을 제공 하는 적당 한 발판으로 사용할 수 있습니다.

다리에 대 한 3 차원 뼈 세포 외 매트릭스 모델

이 프로토콜은 마우스 횡문근 육종 1차 세포의 분리, 종양구 형성 및 치료, 및 종양구배양으로부터 시작되는 동종 이식이식에 대한 재현가능한 방법을 설명한다.

마우스 횡문근에서 분리 된 원발성 종양 세포에서 종양 구체 유도 및 치료

뼈 전이 모델은 균일하게 또는 100% 발생률로 전이가 발생하지 않습니다. 직접 골내 종양 세포 주사는 폐 색전술을 초래할 수 있습니다. 우리는 고형 종양 이식편을 뼈에 이식하여 원발성 뼈 종양 및 뼈 전이를 모델링하여 재현 가능한 생착 및 성장을 유도하는 기술을 제시합니다.

원발성 뼈 종양 및 뼈에 이식된 고형 종양을 통한 뼈 전이 모델링

여기서, 전이 생물학의 전임상 조사에 사용될 수 있는 자발적인 폐 전이와 함께 골육종의 절단 절차를 따르는 회제 성 직소 이식이 기술되고 새로운 치료법의 개발이 설명된다.

전이율을 제어하는 절단을 가진 신제닉 직소 성 골육종 스프라그 Dawley 쥐 모델

본 프로토콜은 동위원소 골육종 및 폐 전이 병변을 지닌 마우스 모델을 생성하기 위해 경막내 골육종 세포 주사를 기술한다.

경골 내 골육종 세포 주사 동위원소 골육종 및 폐 전이 마우스 모델 생성

본 프로토콜은 인간 골육종 조직을 이용하여 환자 유래 이종이식(PDX) 마우스 모델을 확립하는 방법을 설명한다.

인간 골육종 조직을 이용한 환자 유래 이종이식 마우스 모델 구축

우리는 cytometry에 의해 동시 표현의 기본 급성 골수성 백혈병 세포에 백혈병 줄기 세포 마커를 감지 하는 프로토콜 개요. 우리 3 조상 인구와 성숙의 정도 증가 함께 상 상속 LSC 인구를 측정 하는 방법을 보여 줍니다. 우리는 이러한 인구에 해당 환자-파생-xenografts의 존재를 확인 했다.

Flow Cytometry 최대 백혈병 줄기 세포 주 급성 골수성 백혈병 및 환자-파생-xenografts, 진단에 따라 추정 하

배우세요 Li Fraumeni 증후군 환자 유래 섬유아세포에서 유도 만능 줄기 세포를 생성하고 조골세포로 분화시키는 방법을. 이 모델은 골육종 연구와 약물 선별에 활용됩니다.

Li Fraumeni 증후군 환자에서 파생 된 유도 만능 줄기 세포를 사용 하 여 다리를 모델링

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