August 8th, 2018
여기는 자동된 광학 카메라 현미경으로는 셀 마이그레이션에서 생체 외에서 테스트 하는 절차에 설명 합니다. 스크래치 분석 결과 널리 사용 되었습니다 어디 스크래치의 폐쇄는 세트 기간에 대 한 다음. 광학 현미경 세포 이동의 신뢰할만 하 고 저렴 한 감지 수 있습니다.
이 기술의 가장 큰 장점은 자동 광학 현미경에서 실시간으로 세포를 볼 수 있다는 것입니다. 이 치료법의 의미는 이주가 이러한 질병에서 중요한 역할을 하는 만성 상처 또는 암 치료로 확장됩니다. 먼저 HaCaT 세포의 융합 배양액을 5ml의 멸균 마그네슘 및 무칼슘 PBS로 두 번 세척합니다.
다음으로, 섭씨 37도의 인큐베이터에서 5-8분 동안 1ml의 트립신으로 세포를 배양합니다. 광학 현미경으로 박리를 확인한 후 FBS가 보충된 9ml의 배양 배지로 효소 반응을 중지합니다. 그리고 세포를 7.5 곱하기 10 내지 250 마이크로리터당 4번째 세포로 희석하여 매체 플러스 FBS 농도를 첨가한다.
다음으로, 바닥이 둥근 48웰 조직 배양 플레이트의 각 웰에 250마이크로리터의 세포를 파딩하고 플레이트를 좌우로 부드럽게 밀어 세포가 웰 바닥에 고르게 분포되도록 합니다. 그런 다음 플레이트를 세포 배양 인큐베이터로 옮깁니다. 배양물이 90-95% 포화도에 도달하면 각 웰의 상층액을 밀리리터당 10마이크로그램의 미토마이신 C가 보충된 250마이크로리터의 새로 준비된 배지로 교체하고 플레이트를 다시 2시간 동안 인큐베이터에 다시 넣습니다.
배양이 끝나면 250마이크로리터의 PBS로 세포를 세척하고 각 웰에 250마이크로리터의 새 PBS를 추가합니다. 그런 다음 200마이크로리터 마이크로피펫 팁을 사용하여 각 셀 단층에 하나의 수직 스크래치를 만듭니다. 모든 단층이 긁히면 각 웰의 PBS를 관심 펩타이드 자극이 있는 250마이크로리터로 교체하고 뚜껑이 손상되지 않은 상태로 플레이트를 광학 카메라 시스템에 장착합니다.
광학 카메라를 설정하려면 획득 창을 열고 wound healing(상처 치유)을 선택합니다. 플레이트 유형을 선택하고 사용하지 않는 웰을 선택 취소합니다. 그런 다음 enable을 클릭하고 웰 중 하나를 마우스 오른쪽 버튼으로 클릭하여 세포의 위치에 맞게 초점을 조정합니다.
사진 간격에서 이미지의 기간을 설정하고 원하는 기간에 맞게 반복 횟수를 설정합니다. 그런 다음 적절한 분석 유형을 선택합니다. 그런 다음 시작을 클릭하여 세포 이미징을 시작합니다.
상처가 생기면 피부 세포가 증식하기 시작하고 상처 부위를 가로질러 이동하여 상처를 봉합하는데, 이 과정을 광학 카메라를 통해 관찰할 수 있습니다. 48시간 배양 후 내피 성장 인자 치료는 상처의 거의 95% 봉합을 유도하는 반면, 처리되지 않은 대조군 우물에서는 38%, 락토페린 및 락토페리신 배양에서는 각각 33% 및 62% 봉합을 유도합니다. 초기 긁힘에서 갭 너비의 변화로 결정된 상처 봉합의 비율도 각 성장 자극에 대해 표시할 수 있습니다.
이 비디오는 건강한 세포의 단일층에서 만들어진 스크래치를 가로질러 각질 세포의 이동을 연구하기 위한 간단하고 효율적인 프로토콜을 설명합니다. 이 분석에 사용된 세포는 HaCaT 세포이지만, 마이크로타이터 플레이트의 바닥에 부착되어 있는 한 다른 세포주, 곰팡이 또는 박테리아에도 적용할 수 있습니다.
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이 기사는 자동화된 광학 카메라 현미경을 사용하여 세포 이동을 시험하는 절차를 설명합니다. 스크래치 분석법은 시간 경과에 따른 세포 이동을 관찰하는 신뢰할 수 있는 방법으로 강조됩니다.
Cell migration assays are critical for evaluating therapeutic candidates in wound healing and oncology, yet traditional scratch assays suffer from edge artifacts and manual analysis bottlenecks. This optimized protocol addresses reproducibility challenges by eliminating cation-mediated cell accumulation and integrating automated imaging, enabling consistent, quantitative migration readouts. The approach supports early-stage target validation and mechanistic de-risking by providing reliable, real-time data on pro- and anti-migratory compounds.
The method fits within the discovery continuum, supporting hypothesis testing in early discovery and enabling quantitative lead identification through measurable migration inhibition or stimulation.