Name: 마우스 췌도 세포의 하위 집단에 있는 화상 진찰 칼슘 역학 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-11-26T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: 학습하세요 마우스 췌도 세포 하위 집단의 화상 진찰 칼슘 역학 분석 방법을. 형광 신호 정량화와 실시간 모니터링으로 높은 통계적 검정력과 재현성을 확보할 수 있습니다.

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AH는 당뇨병 영국 박사 과정 학생의 수혜자, EV는 OXION-웰컴 신뢰 교육 프로그램에 의해 지원되었다, AIT는 옥스포드 생물 의학 연구 위원회 박사 후 펠로우십을 개최.

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저자는 이해 상충을 선언하지 않습니다.

프로토콜에는 전반적인 성공에 중요한 세 단계가 있습니다. 담관에 Liberase 효소를 성공적으로 주입하면 격리 절차의 양적 성공뿐만 아니라 고립 된 섬의 품질에도 영향을 미칩니다. 팽창되지 않은 췌장은 고립 된 섬에 있는 몇몇 중요한 신진 대사 반응의 부족 귀착될 수 있습니다. 둘째, 센서의 염료/표현의 로딩은 타임랩스 기록의 신호 대 잡음 비율을 정의합니다. 과부하된 섬에 신호가 없거나 감쇠됩니다. 마지막으로, 이미징 챔버 내부의 조직의 성공적이고 조밀한 위치는 의미 있고 분석 가능한 실험을 위한 결정적인 순간입니다. 제대로 배치되거나 조직을 이동하면 실험 시간 및/또는 불분명한 데이터가 낭비됩니다.
이 방법은 여러 신호(공초점 시스템 사용) 및 여러 아일렛 그룹(예를 들어, 다른 유전자형)을 고려하여 수정할 수 있습니다. 다중 신호의 이미징은 제2 센서를 본도의 각 셀내로 전달하는 것으로 가정하며,Ca2+ 리포터와 관발적으로 호환됩니다(예: pH 센서 S...

이 방법의 목적은 췌도 세포의 작은 소집단에서 세포질 칼슘 농도 ([Ca2+]cyt)의실시간 변화를 이미지화하는 것입니다. 이것은 이 세포에 있는 호르몬 분비를 지배하는 기계장치를 폭로하는 것을 허용합니다, 다른 세포 모형 사이 상호 이야기에 관하여 세부사항을 드러내고, 잠재적으로, 작은 쪽지 신호의 더 큰 그림으로 인구 차원을 소개합니다.
작은 섬은 여러 세포 유형으로 구성되어 있습니다. 더 잘 알려진 인슐린 분비 β 세포 외에, 혈액 포도당 조절에 또한 중요한 적어도 2개의 소집단이있습니다 3. α-세포 (그 주위 구성 17% 작은 연세포의) 혈액 포도 당이 너무 낮아질 때 글루카곤을 분비, 이는 간에서 창고에서 혈류로 포도당의 방출을위한 신호. 과도 한 글루카곤 수준 (hyperglucagonemia) 및 글루카곤 방출의 장애인 제어 동반 (그리고, 기술적으로, 에 기여할 수 있습니다) 장애인인슐린 감수성의 당뇨병 상태4. δ-세포 (약 2%) 포도당 상승에 반응하여 소마토스타틴을 분비합니다. 이러한 유비쿼터스 펩티드 호르몬은 아일렛 내α 세포 및 β 세포 부근에서 고농도로 존재할 가능성이 높으며, 이는 글루카곤 및 인슐린 분비 모두에 강한 Gi 수용체 매개 감쇠 효과를 갖는다.
α-세포 및 δ 세포는 그들의 가까운 혈통 친척, β 세포와 포도당 감지 기계의 큰 부분을 공유합니다. 모든 3개의 세포 모형은 ATP 에 민감한 K+ 채널을, 이 흥분성 세포의 혈장 막 전위를 통제하는 정교한 신진 대사 센서5를 갖추고 있습니다. 동시에, 인슐린의 분 비, 소마토 스타 틴과 글루카곤포도당에 의해 다르게 조절됩니다. 따라서 작은 소집단인 작은 소집단에서 Ca2+ 역학의 이미징은 따라서 혈당과 아일레 분비 출력 사이의 교차 토크에 대한 통찰력을 제공할 수 있습니다.
패치 클램프 전기 생리학을 사용하여 α- 및 δ 세포의 흥분성을 모니터링하는 초기 시도는 곧 단일 α- 및 δ 세포에서Ca2+의 이미징이 뒤따랐다. 이러한 실험에서 세포의 동일성항글루카곤 또는 항소마토스타틴 항체로 염색된 후세를 통해 세포의 동일을 검증하였다. 이러한 노력은 종종 아일렛 세포가 아일렛 내에서 단일 세포로서 매우 다르게 행동한다는 발견에 의해 방해되었습니다. β 세포가 작은 살레기 배열의 주요 후원자인 것처럼 보일 수 있지만 (그들의 강한 전기 결합의 기초가 되는 그들의 압도적인 대다수 때문에), 주요 불일치는, 놀랍게도, α 세포에서 찾아냈습니다. 본래 본래 의 본체 내에서, 이 세포는 단 하나 분산된 α 세포의 약 7%에 대해서만 사실인 낮은 포도당에서 지속적으로 지속적으로 활성화됩니다6. 따라서 본래 섬 내에서 α- 및 δ-세포의 활성을 보고하는 것은 생체 내 상태의 근사치를 나타내는 것으로 여겨진다.
일반적으로 α 세포 또는 δ 세포 하위 집단으로부터Ca2+ 역학을 보고하는 두 가지 방법이 있습니다: (i) 조직 특이적 프로모터를 통해 유전자 로 코딩된Ca2+ 센서를 발현하거나 (ii) 마커 화합물을 사용하여. 더 우아한 전자 접근은 실제 3D 화상 진찰의 실질적인 이점을 추가하고 따라서 작은 쪽안에 세포 분포의 공부합니다. 그러나 그대로 인간 본도 재료에 적용 할 수 없습니다. 또 다른 잠재적관심사는 프로모터의 '누설'이며, 특히 β-/α 세포 분화 또는 높은 포도당에 대한 α 세포 반응이 제자리에 있을 때이다. 후자의 접근법은 인간 샘플 또는 배양된 섬을 포함하는 신선하게 단리된 조직과 함께 사용될 수 있다. 그러나 이 데이터는 아일렛 구조를 변경하지 않고 더 깊은 층으로 염료/마커 분자를 전달하는 것이 쉽지 않은 것처럼, 아일렛 세포의 주변 층에서만 수집됩니다. 후자의 접근 법의 예기치 않은 장점은 광시야 이미징 모드와의 호환성으로, 실험을 확장하여 수십 또는 수백 개의 섬(즉, 수천에서 수만 개의 셀)을 동시에 이미징할 수 있다는 것입니다.
칼슘은 유전자 부호인 GCaMP7(또는 페리캠8)패밀리 센서를 사용하여 생체 내에서 이미지화되며, 이는 칼슘 결합 단백질 칼모둘린과 그 표적 서열에 융합된 원형 변광녹색 형광 단백질(GFP)의 변이체인 미오신 경전사슬 키나아제 의 M13 단편7,9. GCaMP는 나노 몰 Ca2 + 농도및 높은 2 광자 단면 범위에서 뛰어난 신호 대 잡음 비율을 가지고 있어 생체 내 작업10,11에이상적인 선택입니다. 재조합 센서를 사용하는 도전적인 측면은 세포로의 전달입니다. 이종발현은 바이러스 벡터 및 다시간 생체배구를 사용하여 세포 기능의 잠재적 탈분화 또는 악화에 관한 우려를 자주 제기한다. GCaMP를 표현하기 위해 미리 설계된 마우스 모델은 이 문제를 해결하지만 리드 타임을 크게 늘리고 작업을 비인간 모델로 제한하여 새로운 과제를 추가합니다. 세포내 pH의 변화에 대한 매우 높은 민감도는 단백질 기반센서(12)의또 다른 불리한 측면이며, 이는Ca2+와같은 진동 신호를 감지하는 데 문제가 적다.
트랩형 염료(예: 녹색 형광 Fluo4)의 장점은 약 1시간 이내에 새로 단리된 조직으로 적재할 수 있다는 것입니다. 예측할 수 있듯이, 트랩형 염료는 신호 대 잡음 비가 낮고 재조합 에 비해 광안정성이 훨씬 낮습니다. 13의 염료의 독성보고는 확인할 수없지만,염료 과부하가 빈번한 문제점이 있다.
원형 순열에 기초한 적색 재조합 Ca2+ 센서는 2011년15년이후 급속히 진화해 왔으며, 가장 최근의 발전은 적색광의 침투 깊이가 높은 조직 이미징을 위한 GCaMP16에 대한 강력한 경쟁을 제시합니다. 시판되는 적색 트랩포블 염료는 단세포 이미징에 안정적으로 사용될 수 있지만 조직 수준에서는 녹색 유사체와 잘 경쟁할 수 없습니다.
초점이 다른 빛이 중요한 문제가되는 조직에서 실험을위한 이미징 기술의 선택은 거의 없습니다. 공초점 시스템은 0.3(GCaMP6의 경우) 또는 0.8(트랩 가능한 염료)의 경우 NA에서 임의의 목표와 함께 초점이 벗어난 빛을 취소하여 허용 가능한 단일 셀 분해능을 제공한다. 기술적 의미에서, 기존의 공초점 현미경은 수백 (GCaMP) 또는 수십 개의 섬 (트랩 가능한 염료)에서[Ca2+]방사체의 동시 이미징에 사용될 수 있습니다. 조직에서 센서를 3D 로 표현하는 경우 공초점 모드에 대한 유일한 현실적인 대안은 아마도 가벼운 시트 현미경 검사법일 것입니다.
센서가 아일렛 조직 내의 세포의 주변 층에서 발현되는 경우 상황은 약간 다릅니다. 생생한 세포내 발현 패턴을 가진 밝은 재조합 센서의 경우, 낮은 NA 목표를 가진 광시야 이미징 모드를 사용하면 충분한 품질을 제공하고 시야영역이 크게 증가하여 연구자가 보상을 할 수 있습니다. 처리량. 광시야 시스템은 초점이 벗어난 조명이 취소되지 않기 때문에 더 낮은 공간 해상도를 제공합니다. 따라서, 높은 NA (낮은 피사계 심도) 목표를 가진 화상 진찰 조직은 단세포 신호가 이웃 세포에 의해 엄청나게 오염하기 때문에, 보다 적게 유익합니다. 저NA(높은 피사계 심도) 목표에 대해서는 오염이 훨씬 작습니다.
그러나 높은 처리량 및/또는 샘플링 속도가 중요한 이점이 되는 작업이 있습니다. α- 및 δ 세포는 상당한 이질성을 나타내며, 이는 하위 집단의 기여도를 밝히기 위해 높은 샘플 크기에 대한 수요를 생성합니다. 광시야 이미징은 10개 또는 단일 섬에 대한 공초점 실험과 동일한 신호 대 잡음 비로 수백(GCaMP) 또는 수십(Fluo4) 규모의 대규모 시야 시스템 이미징을 통해 빠르고 민감합니다. 처리량의 이러한 차이는 단일 셀 해상도를 가진 인구 이미징에 대한 광시야 시스템을 유리하게 만들며, 이는 δ 셀 과 같은 작은 하위 집단에 특히 중요할 수 있습니다. 마찬가지로 Ca2+ 스파이크17에서 전기 활동을 재구성하려는 시도는 광시야 이미징 모드에서 제공하는 더 높은 샘플링 속도의 이점을 누릴 수 있습니다. 동시에, 지배적인 β 세포 소집단의 자극시 췌장 α 세포의 활성과 같은 몇몇 "틈새" 문제는 공초점 시스템의 사용을 필요로 한다. 공초점 모드로의 결정에 영향을 미치는 요인은 β 세포 하위 집단으로부터 실질적인 오염 신호의 존재이다.
이미징 실험 후 세포의 정체성을 확인하기 위해 호르몬 특이적 항체 염색을 사용하더라도, 작은 세포 소집단은 α-18 및 δ-세포19,20에서Ca2+ 역학을 선택적으로 자극하는 것으로 나타난 아드레날린 및 그렐린과 같은 기능적 마커 화합물을 사용하여 식별될 수 있다.
타임랩스 이미징 데이터의 분석은 인구 이질성, 상관 관계 및 다른 신호의 상호 작용과 같은 사소한 약리학 을 넘어서는 정보를 제공하는 것을 목표로합니다. 종래, 이미징 데이터는 강도 대 시간으로 분석되고 초기 형광(F/F0)으로정규화된다. 기저선 보정은 자가형광 또는 pH의 변화에 의한 형광포 신호의 표백 또는 오염으로 인해 빈번하게 필요하다(전형적으로 포도당12의밀리몰 수준에 의해 유도된다). Ca2+ 데이터는 여러 가지 방법으로 분석할 수 있지만, 세 가지 주요 추세는 스파이크 주파수, 고원 분획 또는 곡선 아래의 영역의 변화를 측정하여 계산된 시간대 계산하는 것입니다. 특히 샘플링이 부족한 공초점 데이터에 대한 응용 분야에서 후자의 접근 방식이 유리하다는 것을 발견했습니다. pAUC 메트릭의 장점은 신호 주파수와 진폭의 변화에 대한 민감도이며, 주파수를 계산하려면 상당한 수의진동(21)이필요하며, 이는 기존의 이미징을 사용하여 달성하기 어렵다는 것입니다. pAUC 분석의 제한 요인은 기준선 변화에 대한 높은 민감도입니다.

<table><tbody><tr><td>40x/1.3 대물렌즈</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Axiovert 200 현미경</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>방출</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>여기</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>태아 소 혈청</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F7524-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Fluo4</td><td>Thermo Fisher (Life Technologies)</td><td>F14201</td><td></td></tr><tr><td>GCaMP6f, in (human type 5) 아데노바이러스 벡터</td><td>Vector Biolabs</td><td>1910</td><td></td></tr><tr><td>Hanks' solution</td><td>Thermo Fisher (GibCo, Life Technologies)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Liberase</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>5401020001</td><td></td></tr><tr><td>penicillin/streptomycin</td><td>Thermo Fisher (GibCo, Life Technologies)</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 배지</td><td>Thermo Fisher (GibCo, Life Technologies)</td><td>61870044</td><td></td></tr><tr><td>Zeiss LSM510-META 컨포칼 시스템</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

마우스 췌도 세포의 하위 집단에 있는 화상 진찰 칼슘 역학

Imaging Calcium Dynamics in Subpopulations of Mouse Pancreatic Islet Cells

췌도 호르몬은 혈당 항상성을 조절합니다. 혈당의 변화는 세 가지 주요 호르몬의 분비를 유발하는 췌도 세포에서 세포칼슘의 진동을 유도합니다: 인슐린 (β 세포에서), 글루카곤 (α 세포) 및 소마토스타틴 (δ 세포). β 세포는 대부분의 아일렛 세포를 구성하고 전기적으로 서로 결합되어 하나의 단일 개체로서 포도당 자극에 반응합니다. 사소한 소집단, α 세포 및 δ 세포의 흥분성 (약 20 % (30 %)을 구성 4% (10%) 총 설치류1 (인간2)아일렛 세포 번호각각 예측하기 어렵고 따라서 특별한 관심사입니다.
칼슘 센서는 분리된 아일렛 내의 세포의 주변 층으로 전달됩니다. 섬 또는 작은 섬의 그룹은 그 때 형광 현미경을 사용하여 고정되고 화상화됩니다. 이미징 모드의 선택은 더 높은 처리량(광시야)과 더 나은 공간 해상도(공초점) 사이에서 선택됩니다. 종래, 레이저 스캐닝 공초점 현미경은 이미징 조직에 사용되며, 이는 인접한 세포 들 사이의 신호를 가장 잘 분리하는 것을 제공하기 때문에. β 세포의 지배적인 집단으로부터의 오염 신호가 최소화되는 경우, 광시야 시스템도 활용할 수 있다.
특정 자극에 반응하는 칼슘 역학이 기록되면, 데이터는 형광 강도 대 시간으로 수치 형태로 표현되고, 초기 형광및 기준선 보정으로 정규화되어, 표백에 연결된 효과를 제거하기 위해, 형광소. 곡선(pAUC) 아래의 스파이크 주파수 또는 부분 영역의 변화는 관찰된 효과를 정량화하기 위해 시간 대비 계산됩니다. pAUC는 더 민감하고 매우 강력한 반면 급증 주파수는 칼슘 증가의 메커니즘에 대한 자세한 정보를 제공합니다.
작은 세포 소집단은 아일렛 세포의 특정 집단에서 세포질 칼슘의 변화를 유도하는 아드레날린과 그렐린과 같은 마커 화합물에 대한 기능적 반응을 사용하여 식별될 수 있습니다.

아일렛은 막의 지질 조성이 영향을 받지 않는 한(예: 지방산에 대한 만성 노출에 의해) 트랩 가능한 염료(그림1A)와상당히 잘 로드됩니다. 인간 아데노바이러스 타입-5(Ad5) 벡터는 또한 모든 섬 세포를 표적으로한다(도 1B). 하나 이상의 재조합 센서가 동일한 셀에서 발현될 때 문제가 발생할 수 있습니다. 또한, 섬은 일반적으로 매우 잘 뛰어난 안정성과 솔루션 액세스를 제공하는 위에서 설명한 기술을 사용하여 고정된다.
α 세포에서의Ca2+ 스파이크는 낮은 포도당 수준에서 쉽게 검출될 수있다(그림 2). 낮은 포도당에서활동과 아드레날린과 글루타민산염에 대한 반응 사이의 높은 세포별 상관관계가 있다. 그렐린은 낮은 포도당에서 아드레날린 반응 ...

여기에서, 우리는 췌도 세포와 같은 이기종 세포 집단에 있는 칼슘 역학을 화상 진찰 그리고 정량화하기 위한 프로토콜을 제시합니다. 형광 기자는 그 때 고정화되고 심상되는, 그리고 형광 강렬의 역학의 세포 당 분석이 수행되는 작은 틀 내의 세포의 말초 층으로 전달됩니다.

Pancreatic islet hormones regulate blood glucose homeostasis. Changes in blood glucose induce oscillations of cytosolic calcium in pancreatic islet cells ...

이 프로토콜은 랑거한스의 췌장 섬 내의 작은 하위 집단의 급속한 격리된 기능을 허용합니다. 이 기술의 장점은 실시간 특성과 높은 통계적 능력, 따라서 획득 된 데이터의 높은 재현성을 포함한다. 이미징을 위한 섬을 고정하려면 반전된 현미경을 위해 이미징 챔버를 조립하고 챔버 내부에 유리 커버 슬립을 놓습니다.유리 챔버 인터페이스가 방수되어 있는지 확인하고 커버 슬립이 현미경 목표의 범위 내에 있는지 확인하십시오. 다음으로, 20mm의 미세하고 거친 메쉬를 20mm 로 자르고 45 ~ 50 마이크로 미터의 두꺼운 끈적 끈적한 테이프를 사용하여 미세 한 메쉬 조각에 두 개의 스페이서 벽을 만듭니다. 거친 메쉬와 무게를 35mm 페트리 의 이미징 용액에 담그고 미세 메쉬를 해부 현미경 아래에 놓습니다.스페이서 벽을 거꾸로 놓고 스페이서가 위쪽으로 향하는 미세한 메시를 켭니다. 그리고 p20 파이펫을 사용하여 두 스페이서 사이에 여러 개의 섬을 전송합니다. 워치메이커의 집게를 사용하여, 반전된 현미경의 이미징 챔버 내부에 메쉬를 거꾸로 놓고 스페이서가 챔버 커버 슬립에 직접 앉도록 하여 커버 슬립의 중간에 있는 스페이서와 메쉬 사이의 섬을 트래핑합니다.메쉬가 샘플의 측면 움직임을 유발하는 과도한 양의 용액을 포함하지 않고 잘 수화된다는 것을 주의하십시오. 그런 다음 거친 메쉬와 체밀을 챔버의 미세 메시 위에 놓고 이미징 솔루션을 챔버에 추가합니다. 섬이 고정되면 반전 된 현미경에서 이미징 모드와 목표를 선택하고 현미경의 온도 제어 단계에 섬이있는 챔버를 배치하십시오.관류를 설정한 후, 챔버 내의 유출보다 유입흐름을 낮게 배치하고 유출 흐름이 유입 유동성보다 더 큰 것으로 설정한다. 유출이 솔루션과 최소한의 접촉을 가지고 있는지 확인하여 여러 순차적 작은 물방울로 솔루션을 제거하여 연속 솔루션 제거의 긴 간격을 피하십시오. 다음으로, 3개의 밀리몰라 포도당을 포함하는 화상 진찰 용액으로 관류를 시작하고, 화상 진찰 녹색 형광을 위한 광 경로 및 필터를 선택합니다.그런 다음 라이브 이미징을 실행하여 이미징 매개 변수를 설정하고 뷰를 조정하여 관심 있는 섬을 캡처합니다. 이미지의 신호 대 잡음 비율을 최적화하려면 흥분 광 강도, 노출 시간 및 비닝을 조정하여 설정이 가능한 최소 광 강도 및 노출로 섬 내각 셀의 고유한 시각화를 허용하도록 합니다. 그런 다음 섬을 0.1에서 5 헤르츠로 이미지하여 캡처할 때 획득된 데이터의 품질을 확인합니다.알파 셀 활성이 감지가능한 경우, 획득 소프트웨어 내에서 신호 역학의 온라인 차트를 사용하고 2~5분 동안 어드렌랄린 또는 글루타메이트를 목욕 용액에 추가한다. 칼슘의 급속한 점프는 알파 세포 진동의 둔화 또는 취소에 선행될 것입니다. 다음으로, 최근에 델타 세포를 선택적으로 활성화시키는 것으로 보고된 ghrelin을 추가합니다.칼슘의 급속한 가역적 증가는 작은 아혈구 세포에서 관찰될 것이다. 그런 다음 10 밀리몰러 포도당을 추가합니다. 베타 세포 하위 집단에서 조정된 진동 반응이 관찰될 것이다.또한 이전에 아드레날린이나 글루타민산염 및 그렐린에 의해 활성화된 세포의 반응에 유의하십시오. 이미지를 저장한 후 데이터를 적절한 데이터 분석 소프트웨어 프로그램으로 가져오고 원시 형광 강도 데이터를 형광의 초기 값으로 정규화합니다. 셀에서 세포형광 강도 데이터 세트가 여전히 상당한 경우 제어 솔루션이 적용된 시간 범위에 대한 제어 영역을 정의합니다.제어 영역에 명확한 비 진동 신호가 있는 경우, 제어 솔루션의 각 적용 후 형광 강도가 기준선으로 반환된다고 가정한다. 각 셀의 시간 경과 데이터를 수정하려면 제어 솔루션이 추가된 점으로 분리된 세그먼트로 데이터를 분할하고 각 세그먼트에 선형 보정을 적용합니다. 제어 범위에 명확한 진동이 있거나 추가 요인이 있는 경우 스파이크 감지 알고리즘을 사용합니다.칼슘 스파이크의 빈도와 작용제 및 길항제의 첨가에 대한 반응을 측정하기 위해, 기록을 동일한 시간 간격으로 나누고, 간격 내에서 스파이크를 계산하고, 간격 으로 정규화하여 부분 주파수의 시간 과정을 계산합니다. 또는 임계값을 설정하고 각 간격에 대해 고원 분획을 계산합니다. 분획은 셀이 흥분된 상태에서 소비한 간격 내의 시간 백분율을 나타냅니다.또는 각 간격에 대해 곡선 아래의 부분 영역을 계산합니다. 멤브레인의 지질 조성이 영향을받지 않는 한, 섬은 열대 염료와 상당히 잘 로드됩니다. 인간 아데노바이러스 형 5 벡터는 또한 성공적으로 섬 세포를 대상으로합니다.알파 세포에서 칼슘 스파이크는 낮은 포도당 수준에서 쉽게 검출될 수 있고, 낮은 포도당에서 활동과 아드레날린과 글루타민에 대한 반응 사이에 높은 세포별 상관관계가 있다. Ghrelin은 낮은 포도당에서 몇몇 아드레날린 반응성 세포를 활성화합니다 그러나 낮은 포도당에 의해 활성화되는 세포의 대부분에 있는 칼슘 역학에 영향을 미치지 않습니다. 부분 주파수의 관점에서 분석할 때, 아드레날린 또는 그렐린 자극 세포는 기저 스파이크와 아드레날린 효과 사이의 전반적인 변화가 미묘하지만, 전부 또는 전혀 조건하에서 상당한 증가를 표시합니다.대조적으로, 곡선 아래의 부분 영역은 기저 활동이 높은 경우에도 모든 세포에서 아드레날린에 의해 도입된 변화에 민감하다. 모든 메쉬가 이미징 솔루션과 접촉하고 기포를 피하기 위해 조직을 합리적으로 조밀하게 배치하도록 주의하십시오. 상기 방법은 세포 유형 간의 분화를 위한 인공 지능을 포함하도록 확장될 수 있다.약리학적 마커는 패턴 인식 기술로 대체되어 기록 시간을 줄일 수 있다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

다음 프로토콜은 가상 슬라이스 이미지에 대한 췌장 해부 과정을 설명하고, 전체 췌장에있는 모든 GFP - 태그 베타 세포의 후속 부량.

마우스의 췌장 베타 세포 질량의 원위치 부량에서

immunohistochemically 스테인드 췌장 표본의 대규모 조달 및 분석의 새로운 컴퓨터를 이용한 방법에 설명되어 있습니다 : 전체 섹션 (1) 가상 슬라이스 캡처를, 대규모 데이터 (2) 질량 분석, 2D 가상 조각 (3) 재건 (4) 3D 아일릿 매핑, 그리고 (5) 수학 분석.

컴퓨터를 이용한 대규모 시각화 및 췌장 아일릿 질량, 크기 유통과 건축의 부량

이 비디오는 췌장섬 세포의 작은 하위 집단에서 세포질 칼슘 농도의 변화를 연구하기 위해 섬 세포를 실시간으로 이미징하는 기술을 설명합니다. 소세포 하위집단은 아드레날린(adrenaline) 및 그렐린(ghrelin)과 같은 마커 화합물에 대한 기능적 반응을 사용하여 확인할 수 있으며, 이는 섬세포의 특정 집단에서 세포질 칼슘의 변화를 유도합니다. 이것은 혈당과 섬 분비 출력 사이의 교차 담화에 대한 통찰력을 제공할 수 있습니다.

췌장 세포의 칼슘 역학 이미징: 췌장 섬의 세포질 칼슘 농도의 실시간 변화를 연구하는 기술

랑게르한스의 고립 된 마우스 독도를 이용하여 체외 β-세포 기능을 시금 당뇨병의 병태 생리 및 치료의 연구에 중요한 구성 요소입니다. 많은 다운 스트림 응용 프로그램을 사용할 수 있지만,이 프로토콜은 특히 β-세포의 기능을 결정하는 중요한 매개 변수로 세포 내 순환 아데노신 monophosphate (캠프)의 측정에 대해 설명합니다.

마우스 췌장 섬의 분리 및 세포 내 cAMP를 결정하는 방법

우리는 여기에서 제2형 당뇨병의 마우스 모델, Leprdb에서 섬을 분리하기 위한 프로토콜과 2개의 광자 현미경을 사용하는 온전한 섬에서 인슐린 분비를 측정하기 위한 라이브 셀 분석의 세부 정보를 제시합니다.

Lepr<sup&gt; DB</sup&gt; 2 형 당뇨병의 마우스 모델 : 본래 독도 췌장 섬 세포의 분리 및 라이브 셀 2 광자 이미징

베타 세포 기능 혈액 포도 당 항상성, 칼슘 유입에 대 한 유전자 인코딩된 기자를 사용 하 여 단일 셀 해상도에서 계산 되는 중요 하다.

Zebrafish 독도에서 단일 셀 해상도 칼슘 이미징 사용 하 여 베타 세포 기능 분석

이 연구는 암소 생리학 및 아슬레 면역 세포 상호 작용의 연구에 살아있는 췌장 조직 조각의 응용 프로그램을 제시한다.

살아있는 췌장 조직 조각에서 아일렛 기능 및 아슬레 면역 세포 상호 작용을 관찰

우리는 급성 췌장 조직 조각의 준비와 공초점 레이저 스캐닝 현미경 검사에서의 사용을 제시하여 많은 수의 살아있는 세포, 오랜 기간 동안 그리고 높은 시공간 분해능으로 칼슘 역학을 동시에 연구합니다.

급성 마우스 췌장 조직 조각에서 칼슘 역학의 공초점 레이저 스캐닝 현미경 검사

췌장의 생체 내 고해상도 이미징은 췌장 내 생체 내 이미징 창으로 촉진되었다.

췌장 인트라바이탈 이미징 창이 있는 뮤린 모델에서 췌장의 생체 내 세포 수준 시각화안정화

이 프로토콜은 거의 생리학적 조건에서 세포 기능을 연구하기 위해 사망한 장기 기증자로부터 인간 췌장 절편을 생성하는 방법을 설명합니다. 이 혁신적인 접근법은 정상 및 구조적으로 손상된 섬과 내분비 구획 간의 복잡한 상호 작용을 조사할 수 있게 합니다.

내분비 및 외분비 췌장 생리학을 연구하기 위해 인간 췌장 조직 절편 생성

학습하세요 마우스 췌도 세포 하위 집단의 화상 진찰 칼슘 역학 분석 방법을. 형광 신호 정량화와 실시간 모니터링으로 높은 통계적 검정력과 재현성을 확보할 수 있습니다.

마우스 췌도 세포의 하위 집단에 있는 화상 진찰 칼슘 역학

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