Name: 분화를 촉진하기 위해 DMSO를 사용하여 인간 다능성 줄기 세포의 일시적인 치료 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-07-17T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 55 s
Description: 배우세요 DMSO를 이용한 인간 다능성 줄기세포 분화 촉진 방법. 1-2% DMSO 처리로 신경 전구체 및 과립아교세포 분화 효율을 높여 재생의학 및 세포 치료 연구에 활용할 수 있습니다.

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이 작품은 스탠포드 대학 의과 대학의 보조금과 S. C에 수여 시벨 펠로우십에 의해 지원되었다.

1. 줄기 세포 유지 보수
참고: 아래에 기술된 세포 유지 프로토콜은 부착단층에서 유지되는 pluipotent 줄기 세포(PSC)에 적용된다. DMSO 처리 전에 사용된 배지, 다른 시약 및 세포 배양 플레이트는 필요에 따라 조절될 수 있다. 이 원고의 모든 다음 프로토콜에 대해 세포는 생물학적 안전 캐비닛에서 처리되어야합니다.
<ol><li>코팅 멸균, 6 웰, 만능 줄기 세포 정규화 매트릭스 또는 기판을 가진 조직 배양 처리 플레이트는 제조자의 지시에 따라 제조되고CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 분위기)에서 적어도 1시간 동안 배양한다. 코팅된 플레이트는 최대 1주일 동안 4°C에서 필름을 감싸고 보관할 수 있다.</li>
	<li>37°C 수조에서 냉동 보존 된 PSC를 해동하십시오. 생물학적 안전 캐비닛에 도입하기 전에 에탄올로 바이알을 살균한 다음, 5-10권의 미리 온난한 줄기 세포 매체를 함유한 멸균 원엽 튜브로 피펫팅하여 세포를 즉시 이송합니다.</li>
	<li>실온(RT)에서 5분 동안 300 x g의 세포를 원심분리합니다.</li>
	<li>용지를 흡인하고 Y-27632와 같은 10 μM ROCK 억제제와 함께 보충된 줄기 세포 매체의 1 mL에서 세포 펠릿을 부드럽게 재중단시켰다.</li>
	<li>플레이트로부터 배양 매트릭스를 흡기하고 원하는 밀도로 세포를 종자, 전형적으로 0.5-1 x 106 세포당 적어도 2 mL의 줄기 세포 배지에서 웰당. 참고: 도금 밀도는 세포주마다 다를 수 있으며 클론은 그에 따라 최적화되어야 합니다.</li>
	<li>매일 미리 따뜻해진 줄기 세포 로 대체하여 세포를 유지합니다. 대략 70%-80% confluency에서 또는 세포 식민지가 접촉하기 시작할 때 세포를 분할합니다.</li>
	<li>세포를 분할하는 경우, 매체를 흡인하고 멸균 된 PBS로 세포를 한 번 씻어. 37°C에서 5-10분 동안 잘 당 1 mL의 해리 효소 용액으로 세포를 배양한다.</li>
	<li>미리 따뜻해진 줄기 세포 매체로 세포를 세척하고 다시 중단하고 5-10 권의 줄기 세포 매체가있는 멸균 원원관으로 옮김을 옮김. 1.3-1.7 단계를 수행하여 세포를 플레이트합니다.</li>
</ol>2. DMSO 전처리
참고: DMSO 전처리를 위한 세포를 분화하기 전에 도금할 때, 시작 도금 세포 밀도는 사용되는 분화 프로토콜뿐만 아니라 줄기 세포줄의 전형적인 성장 속도를 고려하여 최적화되어야 한다. 필요에 따라 기존의 마커를 사용하여 다능성을 검증합니다. 세포는 분화 하기 전에 초기 해동 후 적어도 1x-2x 통과 되어야 한다.
<ol><li>
2D 문화 차별화
	<ol>
<li>세포가 적절한 합의에 도달하면 코팅 된 플레이트를 준비하고 세포를 해리시키고 전술한 바와 같이 단일 세포 현탁액을 준비하십시오.</li>
		<li>트립판 블루 또는 다른 생존 능력 마커를 포함하는 혈세포계 또는 자동 세포 카운터를 사용하여 살아있는 세포를 계산한다.</li>
		<li>세포를 10 μM ROCK 억제제와 함께 줄기 세포 매체에서 잘 당 0.5-1 x 106 세포에서 코팅된 6 웰 플레이트 상에 플레이트. 참고: 우리의 실험실에서 시험된 세포주를 위해, 이 밀도는 전형적으로 24 시간 DMSO 전처리 내의 80%-90% confluent 세포 귀착되었습니다.</li>
		<li>세포가 CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 대기)에서 37°C에서 24시간 동안 배양되도록 한다.</li>
		<li>미리 온난화된 줄기 세포 매체에서 1%-2% DMSO를 준비합니다(예를 들어, 10 mL의 매체 = 1% DMSO 용액에서 DMSO의 100 μL, 또는 10 mL의 매체 = 2% DMSO 용액).</li>
		<li>24 시간 배양 후, 세포에서 매체를 흡인하고 DMSO 용액으로 대체하십시오.</li>
		<li>세포가 분화하기 전에 CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 대기)에서 37°C에서 24 시간 에서 48시간 동안 배양되도록 한다. 참고: 전형적으로, 24시간 DMSO 치료는 대부분의 인간 ESC 및 iPSC 라인에 걸쳐 충분하다. 매우 느린 성장 속도 (긴 두 배 시간)를 가진 세포주는 DMSO를 가진 48 시간 배양에서 유익할 수 있습니다. DMSO를 가진 48 시간 배양을 위해, 매체는 처리의 첫번째 24 시간 후에 1%-2% DMSO로 신선한 줄기 세포 매체로 대체될 수 있습니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
3D 문화 차별화:
	<ol>
<li>세포가 적절한 합류에 도달하면, 상기와 같이 세포 현탁액에서 세포를 해리하고 수집한다.</li>
		<li>생존 마커를 포함하는 혈세포계 또는 자동 세포 카운터를 사용하여 살아있는 세포를 계산한다.</li>
		<li>10 μM ROCK 억제제와 줄기 세포 매체에 잘 당 0.5-1 x 106 세포에서 코팅되지 않은, 낮은 부착 6 웰 플레이트에 세포를 플레이트. 참고: 우리의 실험실에서 시험된 세포주를 위해, 이 밀도는 전형적으로 설정 세포의 24 시간 안에 3D hPSC 구체 대형 귀착되었습니다.</li>
		<li>세포가 CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 대기)에서 37°C에서 24시간 동안 배양되도록 한다.</li>
		<li>미리 온난화된 줄기 세포 매체에서 1%-2% DMSO를 준비합니다(예를 들어, 10 mL의 매체 = 1% DMSO 용액에서 DMSO의 100 μL, 또는 10 mL의 매체 = 2% DMSO 용액).</li>
		<li>표준 절차에 따라 매체를 교체하십시오 (예 : 세포 구가 우물 의 바닥에 정착 할 수 있도록 30 ° - 45 ° 각도로 플레이트를 기울이십시오. 멸균 원음 튜브로 세포를 옮기고 세포 구가 튜브의 바닥에 정착하도록 허용하거나 부드럽게 세포를 수집하십시오 i n 서스펜션은 5 또는 10 mL 파이펫을 멸균 원점 튜브 및 원심 분리기 세포에 300 x g에서 RT에서 5 분 동안 사용한다).</li>
		<li>셀에서 미디어를 흡인하고 부드럽게 파이펫팅, DMSO 솔루션으로 교체합니다.</li>
		<li>세포가 분화하기 전에CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 대기)에서37°C에서 24 시간 에서 48시간 동안 배양되도록 한다. 참고: 전형적으로, 24시간 DMSO 치료는 대부분의 인간 ESC 및 iPSC 라인에 걸쳐 충분하다. 매우 느린 성장 속도 (긴 두 배 시간)를 가진 세포주는 DMSO를 가진 48 시간 배양에서 유익할 수 있습니다. DMSO를 가진 48 시간 배양을 위해, 매체는 처리의 첫번째 24 시간 후에 1%-2% DMSO로 신선한 줄기 세포 매체로 대체될 수 있습니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. 1차 세균층으로의 분화
참고: 다음은 이전에 6 개의 웰 플레이트에 단층에서 자란 PSC에 대한 실험실에서 효과적인 것으로 나타난 방법에 대해 설명합니다. 선택의 모든 분화 프로토콜은 원하는 계보로 의 분화를 촉진하기 위해 DMSO 처리 후 사용되어야한다. 24-48시간 처리 후 DMSO 용액을 제거하고 표준 프로토콜에 따라 분화를 진행합니다.
<ol><li>
내배 엽 분화 (크룬 외30에서적응)<ol>
<li>2D 배양에 대해 전술한 바와 같이 DMSO를 가진 플레트리트는 세포를 갖는다.</li>
		<li>Wnt3a 및 액티브 인 A 주식 솔루션을 준비합니다.</li>
		<li>Wnt3a를 최종 농도 20 ng/mL 및 액티빈 A에 추가하여 1일째 내피 분화 매체를 준비하여 미리 온난화된 RPMI 매체의 적절한 부피에 100 ng/mL의 최종 농도를 가한다.</li>
		<li>DMSO 전처리 후, 세포로부터 의 매질 은 1일차 매체로 대체한다(예를 들어, 6웰 플레이트의 웰당 2 mL).</li>
		<li>세포가 CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 대기)에서 37°C에서 24시간 동안 배양되도록 한다.</li>
		<li>100 ng/mL의 최종 농도에 액티빈 A를 첨가하여 일 2 및 3 내피 분화 매체를 준비하여 미리 온난화된 RPMI 매체의 적절한 부피에.</li>
		<li>세포로부터 의 매질 은 1일차(예를 들어, 6웰 플레이트의 웰당 2 mL)로 대체한다.</li>
		<li>세포가CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 대기)에서 37°C에서 24시간 동안 배양되도록 한다.</li>
		<li>세포로부터 의 매질 은 3일째 용지(예를 들어, 6웰 플레이트의 웰당 2 mL)로 대체한다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
중두면 차별화 (장 외31에서적응)<ol>
<li>2D 배양에 대해 전술한 바와 같이 DMSO를 가진 세포를 후퇴시.</li>
		<li>Wnt3a 및 액티브 인 A 주식 솔루션을 준비합니다.</li>
		<li>Wnt3a를 최종 농도 20 ng/mL 및 액티빈 A에 추가하여 중추 분화 매체를 미리 온화된 고급 RPMI 매체의 적절한 부피에 100 ng/mL의 최종 농도로 준비합니다.</li>
		<li>DMSO 전처리 후, 세포로부터 의 매질 및 분화 매체로 대체한다(예를 들어, 6웰 플레이트의 웰당 2 mL).</li>
		<li>세포가 CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 대기)에서 37°C에서 24시간 동안 배양되도록 한다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
이토더름 분화 (챔버 외 에서 적응32)<ol>
<li>2D 배양에 대해 전술한 바와 같이 DMSO를 가진 세포를 후퇴시.</li>
		<li>Noggin 및 SB431542 재고 솔루션을 준비합니다.</li>
		<li>녹아웃 혈청 교체(KOSR)를 녹아웃 DMEM에서 최종 농도 10%로 용해시킴으로써 외피 분화 염기를 준비한다. 참고: 미디어 변경 시 3~4일 동안 충분한 기본 미디어를 준비합니다.</li>
		<li>500 ng/mL 및 SB431542의 최종 농도에 Noggin을 추가하여 10 μM의 최종 농도를 미리 온난화된 KOSR/녹아웃 DMEM의 적절한 부피에 추가하여 외피 분화 매체를 준비합니다.</li>
		<li>DMSO 전처리 후, 세포로부터 의 매질 및 분화 매체로 대체한다(예를 들어, 6웰 플레이트의 웰당 2 mL).</li>
		<li>세포가CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 대기)에서 3-4일 동안 3-4일 동안 배양하고, 매일 미디어를 신선하게 첨가된 분화 인자로 대체합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 선조 세포 유형으로의 분화
다음은 이전에 2D 또는 3D 배양에서 자란 PSC에 대한 실험실에서 효과적인 것으로 나타난 방법에 대해 설명합니다. 선택의 모든 분화 프로토콜은 원하는 계보로 의 분화를 촉진하기 위해 DMSO 처리 후 사용되어야한다. 24-48시간 처리 후 DMSO 용액을 제거하고 표준 프로토콜에 따라 분화를 진행합니다.
<ol><li>신경 전구 세포 분화 (Tchieu 외33에서적응)<ol>
<li>CO2 인큐베이터(5% CO2, 습한 분위기)에서 적어도 1시간 동안 만능 줄기 세포-적격 감소 성장 인자 매트릭스또는 기판으로 코팅하여 6개의 웰 플레이트를 제조한다. 코팅된 플레이트는 최대 1주일 동안 4°C에서 필름을 감싸고 보관할 수 있다.</li>
		<li>상술한 바와 같은 플레이트 PSCs는 ROCK 억제제 함유 줄기 세포 매체에서 웰당 0.5-1 x 106 세포의 밀도로 한다.</li>
		<li>2D 배양에 대해 전술한 바와 같이 DMSO를 가진 플레트리트는 세포를 갖는다.</li>
		<li>LDN193189, SB431542 및 XAV939 재고 솔루션을 준비합니다.</li>
		<li>에센셜 6 미디어와 500 nM LDN193189, 10 μM SB431542 및 2 μM XAV939를 보충하여 1-3 일 신경 외분화 매체를 준비합니다.</li>
		<li>DMSO 전처리 후, 미디어를 흡인하고 Days 1-3 신경절제술 로 교체합니다(예를 들어, 6웰 플레이트의 웰당 2 mL). 미디어를 매일 변경합니다.</li>
		<li>에센셜 6 미디어를 500 nM LDN193189 및 10 μM SB431542로 보충하여 4-12일 신경외세포 분화 매체를 준비한다.</li>
		<li>분화의 4 일째에, 미디어를 흡인하고 일 4-12 신경 데토더미디어로 대체한다. 매일 미디어를 변경합니다.</li>
		<li>분화 12일 후, 분화된 세포는 신경 전구 세포(NPC)의 적절한 마커를 발현해야 한다. NPC는 DMEM/F-12, 2% B-27, 1% N-2를 함유하는 신경 매체에서 더 유지될 수 있으며, 10 μg/mL 기본 섬유아세포 성장 인자(bFGF)로 보충될 수 있다. NPC를 통과시 셀 분리 용액을 사용하여, 웰당 0.5-1 x 106 셀에서 NPC를 도금한다.</li>
	</ol></li>
	<li>올리고젠드로시테 전구 세포 분화 (두바라스와 포사티34에서적응)<ol>
<li>상기와 같은 PSC를 ROCK 억제제 함유 줄기세포 매체에 코팅된 6웰 플레이트상에 웰당 1 x 10 5의 밀도로 플레이트한다.</li>
		<li>2D 배양에 대해 전술한 바와 같이 DMSO를 가진 플레트리트는 세포를 갖는다.</li>
		<li>SB431542, LDN193189, 모든 트랜스 레티노산(RA) 및 매끄러운 작용제(SAG) 스톡 솔루션을 준비합니다.</li>
		<li>DMEM/F-12를 10 μM SB431542, 250 nM LDN193189 및 100 nM RA로 보충하여 일 0-8 분화 매체를 준비합니다.</li>
		<li>DMSO 전처리 후, 8일 동안 분화 매체를 가진 세포를 배양하고, 신선하게 첨가된 분화 인자(예를 들어, 6웰 플레이트의 웰당 2 mL)로 매일 매체를 변화시다.</li>
		<li>8일째에, 1x MEM 비필수 아미노산(NEAA) 용액, 1X L-글루타민, 2-메르카프토에탄올, 페니실린/스트렙토마이신, 1x N-2 보충제 100 nM RA 및 1 μM SAG를 함유한 DMEM/F-12로 미디어를 교체하십시오. 매일 미디어를 변경합니다.</li>
		<li>분화 12일 후, 분화세포는 올리고젠드로시테 전구세포(OPCs)의 적절한 마커를 발현한다.</li>
	</ol></li>
	<li>내분비 전구 세포 분화 (파글리우카 외35에서적응)<ol>
<li>줄기 세포 매체에서 6 x 105 세포 /mL에서 종자 PSCs 플러스 500 mL 스피너 플라스크에 10 μM ROCK 억제제는 37 °C 인큐베이터, 5 % CO2, 및 100 % 습도에서 70 rpm의 회전 속도로 설정된 9 위치 교반 플레이트에 놓였다.</li>
		<li>클러스터가 플라스크 의 맨 아래에 정착하고 미디어를 흡인한 다음 1%-2% DMSO로 후퇴하도록 합니다.</li>
		<li>액티브 에이, Chir99021, KGF, 산트1, 모든 트랜스 레티노산 (RA), LDN193189, PdBU, XXI, Alk51, T3 및 베타 셀루인 주식 솔루션을 준비합니다.</li>
		<li>제형에 기초하여 분화 베이스 매체를 준비하는 표3.</li>
		<li>DMSO 전처리 후, 흡인 매체를 S1 매체로 교체하고 100 ng/mL 액티브 A 및 3 mM Chir99021(예를 들어, 플라스크당 500 mL)으로 보충하였다. 24 시간 동안 배양하십시오.</li>
		<li>2일째에는 미디어를 100 ng/mL 액티빈 A. 2일 간 인큐베이션을 허용하는 S1 용지로 교체합니다.</li>
		<li>4일째에는 미디어를 50ng/mL KGF로 보충한 S2 미디어로 교체합니다. 3일 동안 배양을 허용하고, 처음 2일(6일째) 후에 미디어를 변경한다.</li>
		<li>7일째에는 미디어를 50ng/mL KGF, 0.25 mM Sant1, 2mM RA 및 200 nM LDN193189로 보충한 S3 용지로 교체합니다. 24 시간 동안 배양하십시오.</li>
		<li>8일째에는 미디어를 50 ng/mL KGF, 0.25 mM Sant1, 2mM RA, 200 nM LDN193189 및 500 nM PdBU로 보충한 S3 용지로 교체합니다. 24 시간 동안 배양하십시오.</li>
		<li>9일째에는 미디어를 50 ng/mL KGF, 0.25 mM Sant1 및 100 nM RA로 보충한 S3 용지로 교체합니다. 5일 동안 배양을 허용하고 2일마다(11일 및 13일) 미디어를 변경합니다.</li>
		<li>14일과 16일에는 0.25 mM Sant1, 100 nM RA, 1 mM XXI, 10 mM Alk5i II, 1 mM T3 및 20 ng/mL 베타셀룰린(총 4일 총 인큐베이션)으로 보충된 S5 매체로 미디어를 교체한다.</li>
		<li>18일과 20일에는 25 nM RA, 1 mM XXI, 10 mM Alk5i II, 1 mM T3 및 20 ng/mL 베타셀룰린으로 보충된 S5 미디어로 미디어를 교체합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>5. 분화의 면역 세포화학 적 검증
참고: 다음 방법은 필요에 따라 조정할 수 있는 일반적인 면역세포화학 프로토콜을 기술한다. 1 차적인 항체는 우리의 실험실에서 이전에 검증된 그들의 입니다. 분화의 검증을 위한 다른 기술도 사용될 수 있다(예를 들어, 유세포분석, qPCR, RNA 염기서열 분석, 웨스턴 블로팅, 기능성 분석법 등).
<ol><li>
면역 표지 세포
	<ol>
<li>현탁액의 3D 배양체의 경우, 고정 전에 18-24시간 동안 단일 셀 현탁액상에 분산된 플레이트 전체 세포 클러스터 또는 클러스터를 코팅합니다.</li>
		<li>부착 된 세포에서 미디어를 흡인하고 셰이커에 RT에서 PBS로 간략하게 씻어.</li>
		<li>세포 고정을 위해, PBS를 흡인하고 4% 파라포름알데히드(PFA)를 PBS에서 20분 동안 RT온 셰이커에서 배양한다. 주의 사항: PFA 주식은 독성으로 인해 연기 후드 아래에 준비해야합니다. 적절한 개인 보호 장비를 흡입하고 착용하지 마십시오.</li>
		<li>PFA를 제거하고 적절한 화학 폐기물 용기에 버리십시오.</li>
		<li>쉐이커에서 RT에서 세척당 최소 5분 동안 PBS로 세포를 3x 세척합니다.</li>
		<li>세포 투과 및 차단을 위해, 5% 당나귀 혈청을 가진 세포를 교양 세포는 쉐이커상에서 RT에서 1시간 동안 0.3% 트리톤-x 100/PBS로 제조하였다.</li>
		<li>투압/차단에 사용되는 동일한 용액에 1차 항체 용액을 준비합니다.</li>
		<li>셰이커상에서 4°C에서 1차 항체 용액으로 밤새 배양한다.</li>
		<li>하룻밤 배양 후, 쉐이커에서 RT에서 1회 이상 5분 동안 PBS로 세포를 3x 세척합니다.</li>
		<li>투압/차단 용액에서 이차 항체 용액을 준비합니다.</li>
		<li>셰이커에서 RT에서 1시간 동안 이차 항체 용액으로 배양할 수 있습니다.</li>
		<li>이차 항체 용액을 흡인하고 쉐이커상에서 RT에서 세척당 적어도 5분 동안 PBS로 세포를 3x 세척한다.</li>
		<li>적절한 인큐베이션 시간에 대한 DAPI 또는 다른 바람직한 마커로 세포를 배양하고, PBS에서 헹구는다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
이미지 정량화
	<ol>
<li>형광 현미경 및/또는 높은 함량의 스크리닝 플랫폼을 통해 조건당 최소 3개의 이미지를 수집합니다.</li>
		<li>편견없는 이미징 소프트웨어 (예를 들어, ImageJ) 또는 자동 스크리닝 플랫폼을 사용하여 항체 염색 세포 및 총 세포 수 (DAPI / Hoechst nuclei 염색 기준)의 총 수를 계산하여 각 마커에 대한 양성 세포의 백분율을 정량화합니다. 분석.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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<li>Tabar, V., Studer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pluripotent+stem+cells+in+regenerative+medicine%3A+challenges+and+recent+progress%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Review+Genetics%22%5BJournal%5D)">Pluripotent stem cells in regenerative medicine: challenges and recent progress.</a> Nature Review Genetics. 15 (2), 82-92 (2014).</li>
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</ol>

공개할 것이 없는 저자.

요약하면, 이 프로토콜은 모든 1차 생식층, 다양한 유형의 전문 전구 세포, 심지어 기능적이고 성숙한 세포 유형인 시험관 내 다능성 줄기 세포(PSC)의 분화 능력을 향상시키는 간단하고 저렴한 도구를 설명합니다. 및 생체 내 설정. 그림형은 당사의 실험실뿐만 아니라 다른 실험실에서 효과적으로 재현된 특정 분화 프로토콜이지만, 선택의 임의의 분화 프로토콜은 DMSO 처리 후 사용될 수 있다. 표1에 나타낸 바와 같이, 다수의 실험실은 또한 다양한 다른 말단 세포 유형을 생성하기 위해 상이한 패러다임을 이용한 과도 DMSO 처리 후 PSC 분화의 향상을 입증했다. 더욱이, 여기서 의 방법은 인간 PSCs의 사용을 기술하지만, DMSO 전처리는 종에 걸쳐 이용될 수 있고 마우스, 토끼 및 영장류 PSCs에 효과적인 것으로 나타났다.
DMSO의 더 높은 복용량은 세포 독성 것으로 알려져 있지만, 이 방법에 사용되는 낮은 복용량 (1%-2%) 일시적인 기간 동안 최소한의 세포 사멸을 초래합니다. DMSO 처리 직후 전체 세포 수는 세포 주기의 G1 단계에서 세포 주기 체포의 DMSO 승진으로 인해 감소할 수 있는 반면, 이전 연구는 세포가 제거 후 대조군 배양물과 동일한 수준의 합류에 도달할 수 있음을 보여줍니다. DMSO3.
DMSO 전처리의 백분율 및 지속 시간은 세포주당 최적화되어야 합니다. 치료 시간은 세포의 사이클링 / 두 배 시간을 고려하여 조정해야합니다. 예를 들어, 마우스 PSC는 전형적으로 약 15 시간의 훨씬 더 짧은 사이클링 시간을 가지며; 따라서, 이들 세포에 대한 15시간 동안의 DMSO 처리는 충분하다. 일부 실험실은 또한 DMSO 치료가 분화 프로토콜 동안 또는 더 낮은 농도에서 계속될 때 유익하다는 것을 발견하였다(표 1참조). 일부 PSC 라인은 특정 계보에 대한 차별화를 보다 수정할 수 있다는 점에 유의해야 합니다. 예를 들어, HUES6 세포는 분화에 덜 허용되는 것으로 나타났으며, 따라서 DMSO치료로 개선을 표시하였다(도 2). 대안적으로, 도 4 및 도 5에 사용된 HUES8 세포는 내피 분화쪽으로 더 높은 성향을 보이는 것으로 나타났다; 따라서, 최종 내배엽을 향한 초기 단계에서 분화를 위한 제어와 DMSO 사이에 더 적은 차이가 나타났다. 그럼에도 불구하고, DMSO 전처리의 향상은 이러한 세포주에서의 분화의 후기 단계에서 관찰된다(도4B). DMSO 처리는 또한 2D 및 3D 세포 배양 시스템 모두에서 효과적이며, 세포 배양 판에 다양한 유형의 코팅 물질과 함께 사용할 수 있으며, 성장과 확장을 촉진하는 다양한 유형의 유지 보수 매체에서 작동한다는 점에서 다재다능합니다. hPSCs(예: mTeSR, E8, MEF 컨디셔닝 미디어 등)
보다 일반적으로, 이러한 결과는 다능성 줄기 세포의 시작 상태가 기능성 세포 유형으로의 말단 분화뿐만 아니라 초기 분화성향에 강한 영향을 미친다는 것을 시사한다. 우리는 이전에 hPSCs3,5에서Rb를 통해 DMSO 처리 기능이 있음을 보여주었습니다. Rb는 세포의 말단 분화, 세포 생존 및 유전적 안정성을 촉진하는 데 중요한 역할을하며,따라서세포에 대한 지속적인 효과를 설명할 수 있습니다. DMSO 처리 hPSCs와 차별화됩니다. 규제의 이 초기 모드를 표적으로 하는 것은 분화를 위한 더 나은 궤도에 hPSCs를 두어 궁극적으로 재생 의학을 위한 그들의 유용성을 향상할 수 있습니다.

다능성 줄기 세포의 사용은 재생 의학 및 줄기 세포 기반 치료, 질병 모델링 및 약물 스크리닝의 분야를 포함하여 생물 의학 연구에서 수많은 발전을 이끌었습니다. 그것은 또한 더 번역 가능한 연구 및 개인화 한 의학의 전반적인 전망으로 이끌어 냈습니다. 20 년 전 유도 만능 줄기 세포 (iPSC) 기술의 출현은 연구원이 체세포조직에서 다능성 줄기 세포를 개발하고 기능성 세포 유형으로 분화하여 다양한 병리를 연구할 수 있게 했습니다. 심혈관, 신경학상 및 면역 학적 질환. 줄기 세포 분화 기술에서 중요한 진전이 있었지만, 인간 배아 줄기 세포 (hESCs)와 iPSCs를 효과적으로 분화시키는 과제는 여전히 지속되어 줄기 세포 기술의 광범위한 사용을 제한합니다. 연구 프로그램을 제공합니다. 상이한 세포주 및 클론에 대한 고유의 가변성은 줄기 세포주를원하는 보리 1로 분화시키는 데 걸림돌이 되고 있습니다. 또한 hPSC에서 성숙하고 말단으로 분화된 기능성 세포를 도출하는 것은 많은 계보에 걸쳐 지루하고 비효율적인 과정으로 남아 있습니다. 사실, hPSCs에서 분화된 세포는 종종 기능적세포 2로 말단으로 분화하지 못합니다. 환자에서 사용하는 줄기 세포 기반 치료법을 이동시키는 데있어, hPSCs에서 생성되는 세포의 효능을 개선하고 보장할 필요가 있다.
우리의 실험실은 iPSCs와 ESC를 성숙한 세포 유형으로 차별화하는 효율성을 크게 향상시키기 위해 빠르고 저렴한 도구를 설립했습니다. 우리는 일반적으로 사용되는 시약 디메틸 설폭사이드(DMSO)를 이용한 hiPSCs 및 hESCs의 전처리가 지시된 분화 이전에 24 시간 에서 48시간 동안 줄기 세포 분화 능력의 현저한 개선을 초래한다는 것을 발견하였다. DMSO를 이의로 한 치료는 세포 주기의 초기 G1 단계에서 hiPSCs 및 hESCs의 비율을 증가시키고 망막모세포종 단백질(Rb)3,세포 증식, 생존 및 분화의 중요한 조절제인4를활성화시킨다. 최근 작업에서 Rb와 그 가족 구성원이 DMSO의 비례 화 효과에 필요한 것으로 나타났습니다. DMSO의 효과5. 배아 발달 동안세포주기와 유사하게, ESCs 및 iPSCs의 세포 주기는 자가 재생을 촉진하는 축약된 G1 상을 특징으로 하며,7,8. 이 축약된 G1 단계는 더 무제한 확산을 허용하지만분화 4,9. G1에서 성장 체포를 촉진하고 hESCs 및 iPSCs의 세포 주기에서 체크포인트 제어를 활성화함으로써, DMSO 치료는 지시된 분화에 따른 세포 운명 변화에 대한 세포를 소수로 한다.
현재까지, DMSO 전처리는 30개 이상의 대조군 및 질병 특이적 인간 ESC 및 iPSC 세포주3,5뿐만 아니라 줄기세포 및 기타의 분화에서 3개의 배아층 모두에 대한 분화 능력을 향상시키는 것으로 나타났다. 후속 연구에서 다른 성숙한 세포 유형의 다양한 세포주10,11,12,13,14,15,16, 17세 , 18세 , 19세 , 20개 , 21세 , 22세 , 23세 , 24세 , 25개 , 26세 , 27세 , 28 (표1). 더욱이, DMSO 치료는 비인간 1차세포(21,23)의 분화를 향상시키는 데 효과적인 것으로 나타났다(예를 들어, 마우스, 영장류, 토끼), 종에 걸쳐 공유 된 메커니즘을 제안. 마지막으로, DMSO 전처리는 또한 유전자 편집 기술로 확장되었습니다, hESCs /iPSCs의 24 시간 DMSO 전처리가 크게 클러스터 된 정기적으로 간격 짧은 Palindromic 반복의 능력을 증가 것을 보여주는 한 특정 연구와 (CRISPR) /CRISPR-관련 단백질-9(Cas9)-의도하지 않은 돌연변이를 통합하지 않고 비코딩DNA의 편집 효율(29). 여기에 제공된 줄기 세포 생물학 및 지시된 분화에 있는 응용을 위한 hESCs 및 iPSCs의 DMSO 전처리의 상세한 방법론이다.

<table><tbody><tr><td>2-메르캅토에탄올</td><td>Gibco</td><td>21985023</td><td></td></tr><tr><td>6-웰 클리어 플랫 바텀 TC-처리 멀티웰 세포 배양 플레이트</td><td>코닝</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>9-위치 스티어 플레이트&nbsp;</td><td>Chemglass</td><td>CLS-4100</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>Gibco</td><td>11105-01</td><td></td></tr><tr><td>액티브 A</td><td>R & D Systems</td><td>338-AC</td><td></td></tr><tr><td>고급 RPMI</td><td>Gibco</td><td>12633012</td><td></td></tr><tr><td>Alk5i II</td><td>Axxora</td><td>ALX-270-445</td><td></td></tr><tr><td>All-trans 레티노산&nbsp;</td><td>시그마-알드리치</td><td>R2625</td><td></td></tr><tr><td>안티 브라크리</td><td>R& D Systems</td><td>AF2085</td><td>서로 다른 로트 번호에서 관찰된 변동성 없음</td></tr><tr><td>anti-C-peptide</td><td>Developmental Studies Hybridoma Bank</td><td>GN-ID4</td><td>다른 로트 번호에서 관찰된 변동성</td></tr><tr><td>없음 anti-FoxA2</td><td>Millipore</td><td>07-633</td><td>다른 로트 번호에서 관찰된 다양성</td></tr><tr><td>없음 anti-Nkx2.2</td><td>University of Iowa, Developmental Hybridoma Bank</td><td>74.5A5</td><td>서로 다른 로트 번호에서 관찰된 다양성 없음</td></tr><tr><td>anti-Nkx6.1</td><td>University of Iowa, Developmental Hybridoma Bank; &nbsp;</td><td>F55A12-상등액</td> 다른 <td>로트 번호에서 관찰된 변동</td></tr>성 <tr><td>없음 anti-Olig2</td><td>EMD Millipore</td><td>MABN50</td><td>다른 로트 번호에서 관찰된 변동성</td></tr><tr><td>없음 anti-Pax-6</td><td>Biolegend</td><td>901301</td><td>다른 로트 번호에서 관찰된 변동성</td></tr><tr><td>없음 anti-Pdx1</td><td>R& D Systems</td><td>AF2419 anti-SOX1</td>&nbsp<td>; 서로 다른 로트 번호에서 관찰된 변동성</td></tr><tr><td>없음&nbsp;</td><td>R& D Systems</td><td>AF3369</td><td>다른 로트 번호에서 관찰된 변동성</td></tr><tr><td>없음 anti-SOX17</td><td>R& D Systems</td><td>AF1924</td><td>다른 로트 번호에서 변동성이 관찰되지 않음</td></tr><tr><td>B-27 보충제, 비타민 A</td><td>뺀 Gibco 12587010</td><td></td><td></td></tr><tr><td>기본 섬유아세포 성장 인자</td><td>Gibco</td><td>PHG0264</td><td></td></tr><tr><td>Betacellulin</td><td>Thermo Fisher Scientific&nbsp;</td><td></td><td></td>50932345</tr><tr><td>Chir99021</td><td>Stemgent</td><td>04-000-10</td><td></td></tr><tr><td>CMRL 1066</td><td>Corning</td><td>99-603-CV</td><td></td></tr><tr><td>Countess II FL 자동 세포 계수기</td><td>Thermo Fisher Scientific&nbsp;</td><td></td><td></td>AMQAF1000</tr><tr><td>D-(+)-포도당</td><td>시그마&nbsp;</td><td>G7528&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>인비트로젠&nbsp;</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>일회용 스피너 플라스크</td><td>Corning, VWR</td><td>89089-814</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F-12</td><td>Gibco</td><td>11320033</td><td></td></tr><tr><td>DMSO&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>필수 6 미디어</td><td>Gibco</td><td>A1516501</td><td></td></tr><tr><td>FAF-BSA</td><td>Proliant&nbsp;</td><td>68700</td><td></td></tr><tr><td>FGF7</td><td>PeproTech</td><td>100-19</td><td></td></tr><tr><td>Geltrex</td><td>Gibco</td><td>A1413202</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>35050061</td><td></td></tr><tr><td>헤파린&nbsp;</td><td>시그마&nbsp;</td><td>H3149&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>인간 초민감성 인슐린 ELISA</td><td>ALPCO 진단</td><td>80-INSHUU-E01.1</td><td></td></tr><tr><td>ITS-X</td><td>인비트로겐&nbsp;</td><td></td><td></td>51500056</tr><tr><td>KGF</td><td>Peprotech</td><td>AF-100-19</td><td></td></tr><tr><td>녹아웃 DMEM</td><td>Gibco</td><td>10829018</td><td></td></tr><tr><td>녹아웃 세럼 교체</td><td>Gibco</td><td>10828028</td><td></td></tr><tr><td>L-3,3&prime;,5-트리요오드티로닌 (T3)</td><td>EMD 밀리포어</td><td>642245</td><td></td></tr><tr><td>LDN193189</td><td>스템젠</td>트 <td>04-0074</td><td></td></tr><tr><td>마트리겔 매트릭스</td><td>코닝</td><td>354277</td><td></td></tr><tr><td>MCDB-131&nbsp;</td><td>셀그로&nbsp;</td><td>15-100-이력서&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>MEM NEAA</td><td>Gibco</td><td>11140050</td><td></td></tr><tr><td>mTeSR 1</td><td>StemCell Technologies</td><td>5850</td><td></td></tr><tr><td>N2 Supplement</td><td>Life Technologies</td><td>17502048</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma&nbsp;</td><td>S3817&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Noggin Fc 키메라 단백질</td><td>R & D 시스템</td><td>3344-NG-050</td><td></td></tr><tr><td>PdBU</td><td>EMD 밀리포어</td><td>524390</td><td></td></tr><tr><td>페니실린/스트렙토마이신&nbsp;</td><td>미디어 기술&nbsp;</td><td>30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Gibco</td><td>11875-093</td><td></td></tr><tr><td>Sant1</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S4572</td><td></td></tr><tr><td></td><td>SB431542 Stemgent</td><td>04-0010</td><td></td></tr><tr><td>평활화 작용제, SAG</td><td>EMD Millipore</td><td>566660</td><td></td></tr><tr><td>StemPro Accutase</td><td>Gibco</td><td>A1110501&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>TrypLE</td><td>Gibco</td><td>12604013</td><td></td></tr><tr><td>초저 부착 마이크로플레이트</td><td>Corning</td><td>3471</td><td></td></tr><tr><td>비타민 C</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4544&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Wnt3a</td><td>R& D 시스템</td><td>5036-WN</td><td></td></tr><tr><td>XAV 939</td><td>토크리스</td><td>3748</td><td></td></tr><tr><td>XXI</td><td>EMD 밀리포어</td><td>565790</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632</td><td>스템셀 기술</td><td>72302</td><td></td></tr></tbody></table>

분화를 촉진하기 위해 dmso를 사용하여 인간 다능성 줄기 세포의 일시적인 치료

Transient Treatment of Human Pluripotent Stem Cells with DMSO to Promote Differentiation

다능성 줄기 세포 (PSCs)의 증가 사용에도 불구하고, 다양한 계보에 걸쳐 배아 및 유도 만능 줄기 세포 (ESCs 및 iPSCs)를 효율적으로 분화시키는 도전이 남아 있습니다. 수많은 분화 프로토콜이 개발되었지만 세포주 전반에 걸친 가변성과 분화율이 낮기 때문에 이러한 프로토콜을 성공적으로 구현하는 데 어려움을 겪습니다. 여기서 설명한 것은 PSC의 분화 능력을 향상시키기 위한 쉽고 저렴한 수단이다. 이전에는 디메틸 설폭사이드(DMSO)의 낮은 농도를 가진 줄기 세포를 치료하면 지시된 분화에 따라 상이한 세포 유형으로 분화하는 다양한 PSCs의 성향이 현저히 증가하는 것으로 나타났다. 이 기술은 지금 다른 종에 걸쳐 효과적인 것으로 나타났습니다 (예를 들어, 마우스, 영장류, 그리고 인간) 여러 계보로, 신경 및 피질 구형에서 평활근 세포와 간세포에 이르기까지. DMSO 전처리는 세포 주기를 조절하고 줄기 세포를 차별화 신호에 보다 민감하게 반응하도록 프라이밍하여 PSC 분화를 향상시킵니다. 여기에 제공된 이 간단한 도구를 재현 가능하고 널리 적용할 수 있는 수단으로 사용하여 PSC를 선택한 모든 계보와 보다 효율적으로 차별화하는 방법에 대한 자세한 방법론이 제공됩니다.

인간 다능성 줄기 세포 (hPSCs)에서 분화 된 세포 유형을 생성하는 것은 훌륭한 치료 약속을 보유하고 있지만 여전히 도전적입니다. PSC는 종종 적절한 신호 세트로 자극된 경우에도 차별화할 수 없는 고유한 무능력을 나타냅니다. 여기에 설명된 간단한 도구는 다양한 PSC 라인에서 다중 라인 차별화를 향상시키는 간단한 도구입니다.

분화를 촉진하기 위해 DMSO를 사용하여 인간 다능성 줄기 세포의 일시적인 치료

Despite the growing use of pluripotent stem cells (PSCs), challenges in efficiently differentiating embryonic and induced pluripotent stem cells (ESCs and ...

분화를 위해 주요 세포에 대한 모든 줄기 세포주 또는 분화 프로토콜에 적용될 수 있는 간단한 치료법이다. 모든 것은 세포 배양 유지 배지에 1-2%에서 DMSO를 추가하는 것입니다. 이 기술의 주요 장점은 분화를 위해 세포를 프라이밍하여 선택되는 모든 계보로 다능성 줄기 세포의 분화 잠재력을 크게 증가시킬 수 있다는 것입니다.DMSO 치료는 세포가 세포 대체 요법, 질병 모델링 및 약물 스크리닝에 사용될 수 있도록 환자 유래 iPSC와 분화할 가능성을 증가시킵니다. 배아 발달 중 하위 증식, 분화 및 사양을 제어하는 규제의 초기 발병을 야기할 수 있습니다. 우리는 DMSO 처리가 거의 50명의 인간 적인 배아 및 유도된 다능성 줄기 세포주에서 분화를 향상시킨다는 것을 보여주었습니다.그밖 실험실은 마우스와 영장류와 같은 그밖 종의 줄기 세포에 유익하다는 것을 보여주었습니다 동안. 차별화가 시작되기 하루 전, 일반적인 유지 보수 매체에 24시간 동안 1~2%의 농도로 DMSO를 추가합니다. DMSO 치료 후 24시간 후, 매체를 교체하고 일반적인 분화 프로토콜을 진행합니다.원고 의 지시에 따라 세포를 성장. 세포가 적절한 연결성에 도달하면 이를 분리하고 단일 세포 현탁액을 준비합니다. 트라이팬 블루와 같은 생존 가능성 마커를 사용하여 혈전계 또는 자동 셀 카운터로 라이브 셀을 계산합니다.24시간 DMSO 전처리 내에서 80-90%의 인플루언서를 달성하기 위해, 잘 100만 개의 세포의 밀도로 코팅된 6웰 플레이트에 세포를 플레이트한다. 이산화탄소 인큐베이터에서 섭씨 37도에서 24시간 동안 세포를 배양합니다. 그런 다음 미디어를 흡인하고 1-2% DMSO 솔루션으로 대체합니다.세포가 분화 하기 전에 24-28 시간 동안 배양 할 수 있도록합니다. 48시간 동안 인큐베이팅하는 경우 24시간 후에 미디어를 신선한 DMSO 솔루션으로 교체하십시오. 3D 배양 분화를 달성하기 위해 세포 현탁액에서 세포를 성장시키고 수집합니다.살아있는 세포를 계산하고 ROCK 억제제가있는 줄기 세포 매체에서 코팅되지 않은 저부착 6 웰 플레이트에 접시를 놓습니다. 전형적으로, 3D 인간 만능 줄기 세포 구체는 24 시간 안에 형성될 것입니다. 세포가 이산화탄소 인큐베이터에서 섭씨 37도에서 24시간 동안 배양하도록 허용합니다.원고 방향에 따라 미리 따뜻워진 줄기 세포 매체에서 1-2%DMSO를 준비합니다. 인큐베이션 후 미디어를 교체하려면 플레이트를 30도에서 45도 각도로 기울여 세포 구가 우물 바닥에 정착할 수 있도록 합니다. 세포에서 미디어를 흡인하고 DMSO 용액에서 부드럽게 다시 일시 중단합니다.이산화탄소 인큐베이터에서 세포가 섭씨 37도에서 24-48시간 동안 배양하도록 허용합니다. 2D 배양에 대해 설명된 바와 같이 DMSO로 세포를 사전 처리하고, 노긴 및 SB431542 스톡 솔루션을 준비한다. 미디어 변경 3~4일 동안 DMEM에서 충분한 10%의 녹아웃 세럼 교체 또는 KOSR을 준비합니다.원고에 설명된 바와 같이 사전 따뜻하게 된 KOSR 녹아웃 DMEM에 노긴및 SB431542를 추가하여 자궁 분화 매체를 준비한다. DMSO 전처리 후, 세포에서 미디어를 흡인하고 각 웰에 분화 매체의 2 밀리리터를 추가합니다. 세포가 이산화탄소 인큐베이터에서 섭씨 37도에서 3~4일 동안 배양하여 매일 미디어를 신선한 분화 요인으로 대체하도록 허용합니다.DMSO 전처리는 비처리된 세포에 비해 세포 성장속도에서 일시적이고 용량 의존적인 감소를 초래한다. 이 감소 증식은 세포 대 세포 접촉의 증가와 연관됩니다, 이는 2% DMSO 처리된 세포에서 특히 발음됩니다. 세포가 각 세균층의 발대마커에 대해 고정및 염색될 때, 2%DMSO 전처리가 분화 배아층 세포의 증가된 비율로 초래된다는 것을 알 수 있다.예를 들어, SOX17은 엔도름 세포를 시각화하기 위해 염색되었다. 중추 신경계 전구 세포 유형으로의 분화에 대한 DMSO의 효과를 조사하기 위해 인간 유발 만능 줄기 세포는 신경 전구 세포 또는 올리고드렌드로키테 전구 세포로 분화될 수 있다. 대조군 세포에 비해, 2%DMSO 전처리는 신경 전구 세포 마커 Pax6의 발현을 증가시킨다.유사하게, 전처리는 올리고드렌드로시테 전구 세포 마커 Olig2를 발현하는 세포의 비율을 증가시킨다. 더욱이, 초기 DMSO 치료는 생체 내 이식에 이어 인간 배아 줄기 세포 유래 세포 기능을 향상시킨다. 분화된 췌장 전구 세포가 면역 결핍 마우스로 이식될 때, 그들의 기능은 포도당 도전 또는 KCl 자극에 응하여 시험될 수 있습니다.세포 기능에 있는 개선은 2 주에서 16 주 이식 후 분명합니다. 고려해야 할 가장 중요한 고려 사항은 줄기 세포의 사이클링 또는 두 배로 증가하는 시간입니다. DMSO 치료의 길이는 세포의 사이클링 시간과 동일해야합니다.초기 DMSO 치료에 이어, 세포 증식과 세포 주기가 줄기 세포에서 어떻게 조절되는지 이해할 수 있으며, 이는 치료가 세포 주기의 G1 단계에서 성장 체포를 촉진하는 데 도움이 되기 때문이다. 분화된 세포는 질병 관련 메커니즘을 이해하고, 다른 세포 유형과 공동 배양하기 위해, 종양성 작용제에서, 및 기능성 작용또는 이식 연구에서 분화된 세포가 질병 표현형을 구출할 수 있는지 를 결정하는 데 사용될 수 있다.

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Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

이 동영상은 G1기에서 세포를 정지시키는 일시적인 DMSO 처리로 줄기세포 분화를 향상시키는 방법을 보여줍니다. 처리 후, BMP 및 TGF-β 억제제와 함께 외배엽 분화 배지를 첨가하여 신경 전구체 형성을 촉진합니다.

Transient DMSO Treatment를 통한 줄기세포 분화 강화

이 비디오는 인간 유도 만능 줄기 세포(hiPSC)를 신경 전구 세포(NPC)로 구별하는 기술을 보여줍니다. 초기에 hiPSC는 마우스 배아 섬유아세포(MEF)의 피더층(feeder layer)에서 배양됩니다. 그 후, 세포를 분리하여 생체 고분자로 코팅된 플레이트로 옮겨 MEF가 hiPSC에 부착되고 분리될 수 있도록 합니다. 그런 다음 부유 hiPSC를 V-바닥 플레이트로 옮기고 원심분리하여 응집체를 형성합니다. 마지막으로, 분화 배지를 추가하면 응집체 내의 hiPSC가 NPC로 분화됩니다.

유도 만능 줄기 세포를 신경 전구 세포로 분화(Differentiation of Induced Pluripotent Stem Cells into Neural Progenitor Cells)

우리는 발달 생물학의 지식과 발표된 연구를 바탕으로 인간 배아 줄기 세포와 인간 유도 만능 줄기 세포 모두에서 A9 중뇌 도파민 뉴런을 효율적으로 생성할 수 있는 최적화된 프로토콜을 개발했으며, 이는 파킨슨병에 대한 질병 모델링 및 세포 대체 요법에 유용할 것입니다.

인간의 다 능성 줄기 세포에서 도파민 신경 세포의 분화를 감독

이 작품은 신경 능선을 통해 인간 만능 줄기 세포에서 색소, 성숙한 멜라닌 세포를 생산하고 공급이없는 25 일간의 프로토콜을 사용하여 중간 단계 멜라닌하는 체외 분화 프로토콜을 설명합니다.

인간 다 능성 줄기 세포에서 멜라닌 세포의 공급이없는 유도

우리는 마우스 배아 줄기 세포 배양에 대 한 두 개의 화학 기반 프로토콜 자세히 설명 합니다. 이 새로운 메서드 (비타민 C)에 의해 Tet 중재 산화를 촉진 하 고 DNA hypomethylation 마우스 배아 줄기 세포의 pluripotency를 유지 하기 위해 5-methylcytosine (PD0325901)에 의해의 de novo 종합 억압의 시너지 메커니즘을 활용 합니다.

MEK 억제제 PD0325901와 비타민 C를 사용 하 여 마우스 배아 줄기 세포의 게놈 Hypomethylation 유지 하는 대안 문화 방법

여기에 제시 된 프로토콜 간 질환의 치료에 대 한 작은 분자를 식별 하기 위한 플랫폼을 설명 합니다. 단계별 설명 Ipsc 96 잘 접시에서 hepatocyte 특성을 가진 세포로 분화 하 고 작은 분자에 대 한 잠재적인 치료 활동 화면 셀을 사용 하는 방법을 자세히 제시 합니다.

약물 발견에 대 한 만능 줄기 세포 유래 Hepatocyte 같은 세포를 유도 하는 인간을 사용 하 여

선물이 epigenomically 안정 순 preimplantation epiblast 같은 만능 상태로, 대량, 효율적이 고 신속한 화학 귀선 기존의 혈통 액 인간 만능 줄기 세포 (hPSC)의 대 한 프로토콜. 이 방법은 기존의 hPSC 라인의 광범위 한 레 퍼 토리에 걸쳐 감소 혈통 액 유전자 발현과 감독된 multilineage 차별화에 표시 되어 있는 개선에 발생합니다.

향상 된 Multilineage 차별화 힘으로 순진한 같은 상태로 기존의 인간의 Pluripotent 줄기 세포의 화학 귀선

이 프로토콜은 18일 만에 인간 만능 줄기 세포(hPSCs)로부터 간세포 유사 세포를 효율적으로 생성하는 단층, 무혈청 방법을 상세히 기술한다. 이것은 hPSCs가 간세포 같이 세포를 형성하기 전에 원시적인 선미, 결정적인 내배엽, 후방 포인및 간 싹 선조와 같은 중간 세포 모형으로 순차적으로 분화하는 것과 같이 6단계를 수반합니다.

인간 다능성 줄기 세포를 간 세포로 효율적으로 분화

이 연구는 미토콘드리아 부피, 미토콘드리아 막 전위, 활성 산소 종 수준, 미토콘드리아 호흡 사슬 조성 및 미토콘드리아 DNA의 변화를 감지하기 위해 두 개의 형광 리포터 또는 항체를 사용한 유세포 분석 및 이중 염색을 기반으로 여러 미토콘드리아 기능 매개 변수를 측정하는 새로운 접근 방식을보고합니다.

인간 유도 만능 줄기 세포와 그 신경 및 신경교 유도체에서 여러 미토콘드리아 파라미터의 유세포 분석

여기서는 자동화된 세포 배양 시스템을 위한 프로토콜을 제시합니다. 이 자동 배양 시스템은 iPS 세포의 유지에서 다양한 유형의 세포로의 분화에 이르기까지 유도만능줄기세포(iPS) 세포 취급에 익숙하지 않은 연구자를 포함하여 노동력을 줄이고 사용자에게 이점을 제공합니다.

인간 유도 만능 줄기 세포의 유지 및 분화를 위한 자동 배양 시스템

이 프로토콜은 hiPSC를 중간엽 기질 세포(MSC)로 분화하기 위한 두 가지 대표적인 방법을 설명하고 비교합니다. 단층 방법은 비용이 저렴하고 작동이 간단하며 골형성 분화가 더 쉬운 것이 특징입니다. 배아체(EB) 방법은 시간 소비가 적은 것이 특징입니다.

인간 유도만능줄기세포(Human Induced Pluripotent Stem Cells)를 중간엽 기질세포(Mesenchymal Stromal Cell)로 분화하기 위한 두 가지 대표적인 방법의 비교

배우세요 DMSO를 이용한 인간 다능성 줄기세포 분화 촉진 방법. 1-2% DMSO 처리로 신경 전구체 및 과립아교세포 분화 효율을 높여 재생의학 및 세포 치료 연구에 활용할 수 있습니다.

분화를 촉진하기 위해 DMSO를 사용하여 인간 다능성 줄기 세포의 일시적인 치료

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