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해리 된 기본 해 마 문화에서 조미료 수용 체 인신 매매를 연구 하는 항 체 먹이 접근
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JoVE Journal Neuroscience
An Antibody Feeding Approach to Study Glutamate Receptor Trafficking in Dissociated Primary Hippocampal Cultures

해리 된 기본 해 마 문화에서 조미료 수용 체 인신 매매를 연구 하는 항 체 먹이 접근

Full Text
6,197 Views
08:13 min
August 2, 2019

DOI: 10.3791/59982-v

Andrew M. Chiu1, Levi Barse1, Pavla Hubalkova1,2, Antonio Sanz-Clemente1

1Department of Pharmacology, Feinberg School of Medicine,Northwestern University, 2Department of Cellular Neurophysiology,Institute of Physiology CAS

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a method for studying glutamate receptor (GluR) trafficking in dissociated primary hippocampal cultures. By utilizing an antibody-feeding technique alongside pharmacological approaches, researchers can identify the molecular mechanisms that regulate GluR surface expression through modulation of internalization or recycling processes.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cell Biology
  • Synaptic Plasticity

Background

  • Cellular responses to stimuli depend on proteins expressed on the cell surface.
  • The dynamic control of protein localization and composition influences neuronal signaling.
  • The method employs antibody feeding for quantifying surface expressed receptors.
  • This protocol can be adapted for various proteins with an extracellular epitope.

Purpose of Study

  • To develop a protocol for analyzing the trafficking of glutamate receptors.
  • To investigate the underlying mechanisms of receptor surface expression.
  • To evaluate the internalization and recycling of receptors in primary hippocampal neurons.

Methods Used

  • The primary model used was dissociated hippocampal cultures.
  • Key biological components included glutamate receptors like GluA1 and GluN2B.
  • Steps included antibody incubation, washing, fixation with paraformaldehyde, and use of fluorescently tagged secondary antibodies.
  • Internalization processes were monitored through a series of incubations and washes at specified temperatures.
  • Confocal microscopy was employed for imaging and quantifying fluorescent signals.

Main Results

  • The protocol enabled the differentiation between surface expressed and internalized GluR receptors.
  • Findings indicated GluN2B phosphorylation at S1480 enhances receptor internalization.
  • Evaluated recycling ratios demonstrated minimal changes in NMDAR recycling.
  • Blocking experiments confirmed the specificity of antibody labeling for surface receptors.

Conclusions

  • This study defines a method for investigating receptor trafficking, invaluable for understanding synaptic plasticity.
  • Key insights contribute to the broader knowledge of receptor regulation in neuronal contexts.
  • The findings could have implications in elucidating mechanisms underlying various neurological conditions.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using dissociated hippocampal cultures for this study?
Dissociated hippocampal cultures provide a controlled environment to study neuronal processes, allowing precise manipulation and observation of glutamate receptors in a relevant biological context.
How is the antibody feeding approach implemented in this protocol?
Cells are incubated with primary antibodies diluted in conditioned media to label surface receptors, followed by extensive washing to remove unbound antibodies.
What type of data is obtained from this method?
The method yields data on receptor surface expression levels, internalization rates, and recycling efficiency through quantitative imaging analysis.
Can this method be adapted for other proteins?
Yes, the protocol is versatile and can be adapted for any protein with an appropriate extracellular epitope, including those tagged with fluorescent markers.
What are some limitations of this protocol?
The use of paraformaldehyde as a fixative raises safety concerns, and the protocol may not capture rapid dynamics of receptor trafficking in live cells.
How does the study contribute to understanding synaptic plasticity?
By elucidating the mechanisms of receptor trafficking, this study enhances our understanding of how synaptic strength and plasticity are regulated at the molecular level.

이 문서는 조미료 수용 체를 연구 하는 방법을 제시 (GluR) 해리 된 기본 해 마 문화에서 인신 매매. 약리학적 접근법과 함께 내인성 또는 과발현 수용체를 라벨링하는 항체 공급 접근법을 사용하여, 이 방법은 조절하여 GluR 표면 발현을 조절하는 분자 메커니즘의 식별을 허용합니다. 내재화 또는 재활용 프로세스.

외부 자극에 대한 세포 반응은 주어진 순간에 세포 표면에 발현되는 단백질 세트에 크게 의존합니다. 따라서, 이들 단백질의 수, 서브세포 국소화 및 서브유닛 조성물은 동적으로 조절된다. 여기서, 우리는 내재화 및 재활용이 재개되는 한, 세포 배양에서 표면 발현 수용체의 수준을 정량화하기 위해 항체 공급 접근법을 사용할 것입니다.

이것은 표면 표현 단백질의 규칙의 기계론적인 정보를 제공하는 매우 다재다능한 프로토콜입니다. 우리의 예에서, 우리는 1 차적인 해마 뉴런에 있는 글루타민 수용체를 공부할 것입니다. 이 프로토콜은 항문 외 세포 외 에피토프를 소유하는 모든 단백질에 적응할 수 있고, 항체를 사용할 수 없는 경우에, 태그된 구조물의 transvection는 특정 돌연변이를 표지하고 공부하는 둘 다유용할 수 있습니다.

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