Name: 시간 경과 구조화 조명 현미경 검사법에 대한 미토콘드리아 핵의 특정 라벨링 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-06-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 53 s
Description: 배우세요 생세포에서 미토콘드리아 핵의 특이적 라벨링 및 고해상도 운동 정량 분석 방법을 SYBR Gold 염료와 SR-SIM 현미경을 활용하여. HeLa 세포에서 시간 경과 이미징으로 핵 역학을 추적합니다.

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저자는 아시파 아크타르와 안젤리카 람볼드 (면역 생물학 및 후성 유전학에 대한 막스 플랑크 연구소 모두) HeLa 세포를 제공하기위한 인정.

참고: 여기에서 언급된 모든 세포주들은 10% 태아 소 혈청(FBS), 글루타민, 페니실린/스트렙토마이신 및 피루바테로 보충된 고당포도도당 덜베코의 변형 된 독수리 배지 (DMEM)에서 배양되었습니다. 인큐베이터에서 최대 37°C까지 예열하여 라벨링 및 이미징 당일에 사용되는 모든 매체 및 보충제를 5%CO2로평형화한다. 라벨링을 포함한 모든 세포 배양 작업은 층류 후드 하에서 멸균 조건에서 일어난다.
1. 라이브 셀 라벨링
<ol><li>라벨링 절차 하루 전에, 배양 4 x 105 HeLa 세포를 35 mm 페트리 접시에 배지의 2 mL에서 #1.5 유리 바닥. 멀티 웰 챔버 슬라이드를 사용할 수 있지만, 볼륨은 웰의 볼륨에 비례하여 조정되어야한다. 세포 현탁액을 희석하여 약 50,000 개의 세포/mL및 종자 2 mL의 세포 현탁액을 35 mm 페트리 접시에 갖는다.</li>
	<li>SYBR 골드(SG) 상용 재고 솔루션의 다음 희석을 준비합니다: 1:5,000. 페놀 무첨가 배양 배지에서 미토트래커 딥 레드(원붉은 얼룩) 또는 미토트래커 CMXRos레드(적색 얼룩)(재료표;상업용 재고 희석 1:2,000)를 준비한다. SG와 동일한 피코그린 세트 희석을 준비합니다. 참고: 1.2단계에서 설명한 솔루션은 2x 라벨링 솔루션입니다. 형광 염료를 함유한 모든 용액을 가능한 한 빛으로부터 보호하십시오.</li>
	<li>부착 세포를 2 mL PBS로 한 번 씻으하십시오. 페놀 무방배 배지 1 ml를 35mm 페트리 접시에 넣습니다. 8웰 챔버 드 슬라이드의 경우 총 웰 용량의 1/2에 해당하는 부피를 사용합니다(예: 총 웰 용량이 250 μL인 경우 125 μL추가).</li>
	<li>1.2 ~ 35mm 페트리 접시에서 제조 된 2x 라벨링 용액 1 mLof를 추가하십시오. 8웰 챔버 슬라이드의 경우 총 웰 용량의 1/2에 해당하는 볼륨을 사용합니다. 5%CO2하에서 37°C에서 30분 동안 세포를 배양한다. 참고: 더 긴 배양이 핵 DNA의 표지를 일으키는 원인이 되기 때문에, 1 시간 이상 SG 표지 해결책으로 세포를 배양하지 마십시오.</li>
	<li>형광 염료를 함유하는 배지를 조심스럽게 흡인하고 PBS로 세포를 한 번 세척합니다.</li>
	<li>페놀 적색 무세포 배양 배지를 첨가하고CO2 인큐베이터에서 37°C에서 이미징까지 암흑에 세포를 유지한다.</li>
	<li>인큐베이션 유닛이 장착된 SR-SIM 현미경상 상빙 세포(아래 참조).</li>
</ol>2. SR-SIM 이미지 수집
<ol><li>현미경 단계에 스테이지 탑 인큐베이터를 설치합니다. 원하는 온도 및CO2 농도(예: 포유류 세포의 경우 37°C 및 5%)를 설정하고 이미지 수집을 시작하기 전에 적어도 1시간 동안 따뜻하게 유지합니다.</li>
	<li>레이저를 포함한 SR-SIM 현미경의 모든 구성 요소를 켜고 적어도 1 시간 동안 따뜻하게 하십시오.</li>
	<li>현미경 제조업체에서 SR-SIM에 권장하는 고배율, 높은 수치 조리개(NA) 침지 목표(예: 100x 1.46 NA 오일)를 선택하십시오.</li>
	<li>배양 된 현미경 단계에 라벨이 부착 된 세포 (단계 1.6에서)로 챔버 슬라이드 또는 35mm 접시를 설치하십시오.</li>
	<li>가급적 안구와 함께 샘플에 관심 영역을 찾습니다. 최상의 SR-SIM 이미징 품질을 얻으려면 유리에 잘 부착된 셀을 선택합니다.</li>
	<li>SR-SIM 이미지를 획득하기 위해 백 틴트 하이 엔드 전자 증식 충전 장치 (EM-CCD) 카메라를 사용합니다.</li>
	<li>이미지 수집 소프트웨어를 사용하여 사용되는 카메라(예: 300)에 권장되는 높은 EM 게인을 설정합니다.</li>
	<li>핵 추적을 위한 타임랩스 시리즈를 획득하기 전에 동일한 시야의 2색 SR-SIM 이미지를 획득합니다: 미토콘드리아 염색을 위한 채널 1개, SG용 채널 1개. 사용된 미토콘드리아 얼룩에 적합한 제1 색 채널을 설정합니다(예를 들어, 멀리 붉은 미토콘드리아 얼룩의 경우, 633 nm 이상및 650 nm 롱패스 방출 필터)에서 여기를 설정합니다. SG 신호의 경우 여기를 488 nm및 500-550 nm 대역 통과 방출 필터로 설정합니다.</li>
	<li>이 소프트웨어를 사용하여 488 nm 및 원거리 적색 얼룩 선 모두에서 가능한 가장 낮은 레이저 전력을 설정합니다. 참고: 일반적인 설정은 acousto 광학 튜닝 필터(AOTF)에 의해 조정된 1% 레이저 출력 전력입니다.</li>
	<li>SIM 현미경이 순차적으로(단일 카메라 설정) 채널만 획득하는 경우 원붉은 얼룩 감지 채널을 끕니다.</li>
	<li>소프트웨어의 Z 스택 상자를 선택 해제하여 Z 스택 수집을 끄고 단일 초점 평면의 획득을 설정합니다.</li>
	<li>가능한 한 짧은 EM-CCD 카메라 노출 시간을 설정합니다.</li>
	<li>다섯 번의 회전이 아닌 그리드의 세 회전을 설정합니다.</li>
	<li>프레임 속도를 높이려면 소프트웨어의 수집 탭에서"Full Chip"대신 카메라 센서의 중앙 영역에서만 데이터를 읽도록 카메라를 설정합니다. 참고: 예를 들어 1,000 x 1,000픽셀 전체 센서의 영역을 읽기에서 256 x 256 픽셀만 읽는 것으로 전환하면 카메라 노출 시간이 50ms에서 13.4ms로 감소하고 총 프레임 시간이 1.8초에서 1.2초로 줄어듭니다. 카메라 센서의 중앙 부분만 읽는 경우 일반적으로 SR-SIM에 사용되는 63x 또는 100x 대물렌즈의 시야는 매우 작습니다. 노출 시간이 짧을수록 이미지의 신호 대 잡음 비율이 줄어듭니다.</li>
	<li>레이저 전력 및 카메라 노출 시간 최적화: 여러 레이저 전력 값(예: 0.5%, 1%, 1.5%, 2%)에서 레이블이 부착된 셀의 SR-SIM 2차원(2D) 이미지 획득 및 여러 노출 시간 (예를 들어, 13.4 ms, 25 ms, 50 ms).</li>
	<li>원시 SIM 데이터 집합을 처리합니다(3.1 단계 참조).</li>
	<li>SIM 처리에 의해 생성된 아티팩트가 거의 또는 전혀 없는 미토콘드리아(즉, 핵형성)에서 밝은 반점이 있는 SIM 이미지를 생성하는 레이저 전력 및 카메라 노출 시간을 선택합니다. 미토콘드리아 외부 영역을 검사합니다(예: 488 nm 솔리드 스테이트 레이저의 1% 전력 및 EM-CCD 카메라의 25ms 노출).</li>
	<li>단계 2.15-2.17에 최적화된 설정을 사용하여 타임랩스 계열을 수집하기 시작합니다.</li>
</ol>3. 데이터 처리 및 분석
<ol><li>적합한 소프트웨어의 구조화 된 조명 모듈로 원시 SIM 데이터 세트를 처리하십시오(재료 표):SIM 처리 매개 변수에 대한 자동 확인란을 선택합니다. 여러 파일을 자동으로 처리하려면 일괄 처리 도구를 사용하고 일괄 처리에 대해 현재 사용을선택 취소하고 일괄 처리를 클릭하고 SIM 처리를 위해 여러 파일을 선택합니다.</li>
	<li>SIM 처리된 열계 데이터 세트를 Imaris 파일 변환기 소프트웨어(즉, Imaris 소프트웨어 버전에 해당하는 버전)를 사용하여 ims 형식으로 변환합니다.</li>
	<li>리니지(또는 트랙) 모듈에 대한 라이센스가 있는 소프트웨어(버전 8.4.1 이상)에서 변환된 파일을 엽니다.</li>
	<li>"스팟Spots만들기 마법사"를 시작하여 새 관광명소 추가 아이콘을 클릭합니다. 생성을 위한 마법사가 시작됩니다.</li>
	<li>마법사의 만들기 탭을 선택합니다.</li>
	<li>마법사의 첫 번째 단계에서 시간이 지남에 따라 지점 추적을 클릭하고 마법사의 두 번째 단계로 진행합니다.</li>
	<li>예상 XY 지름을 0.1-0.15 μm으로 설정하고 배경 빼기를 클릭하고 세 번째 단계로 진행합니다.</li>
	<li>히스토그램에서 수직 선을 드래그하여필터의임계값을 조정하여 대부분의 핵소식이 "반점"으로 감지되도록 하고 아티팩트는 감지되지 않습니다(즉, 감지된 반점은 이미지에 오버레이된 공으로 표시됩니다). 각 프레임의 경우인지 확인하고 필요한 경우 임계값을 다시 지정합니다. 네 번째 단계로 이동한 다음 마법사의 다섯 번째 단계로 이동합니다.</li>
	<li>자동 회귀 모션 알고리즘을 선택합니다. 최대 거리를 0.5μm로 설정합니다. 최대 간격 크기를 0으로 설정합니다.</li>
	<li>타임 시리즈의 각 프레임을 보고 잘못된 트랙이 그려져 있는지, 트랙 사이의 간격이 있는지 확인합니다(현재 설정이 있는 마법사가 빌드한 트랙은 이미지에 선으로 즉시 표시됩니다). 필요한 경우 "최대 거리"를 조정합니다. 마법사의 여섯 번째 단계로 진행합니다. 트랙 지속 시간 필터를 선택하고 3-5s의 임계값을 설정합니다.</li>
	<li>현재 검색된 스팟이나 트랙이 최적이 아닌 경우 스팟 또는 트랙 생성을 위한 매개 변수를 미세 조정하는 데 필요한 탐색 단추(마법사 창 아래)를 사용하여 마법사의 이전 단계로 돌아갑니다.</li>
	<li>미세 조정된 매개 변수를 통해 소프트웨어가 모든 스팟을 감지하고 트랙을 올바르게 빌드할 수 있는 경우 마법사의 녹색 화살표 탐색 단추를 클릭하여 트랙 생성을 확인합니다.</li>
	<li>통계 아이콘 창을 클릭하여 트랙의 통계를 추출합니다. 필요한 통계 매개 변수(통계아래의상세 값 및 평균 값 탭)를 선택하고 정량화 및 시각화를 위해 플로피 드라이브 아이콘을 클릭하여 값을 csv 파일로 내보냅니다. 참고: 최대 트랙 속도, 평균 트랙 속도, 트랙 길이 및 트랙 변위는 중요한 매개변수의 예입니다.</li>
	<li>이미지 데이터 집합을 표시하거나 게시해야 하는 경우 스냅샷 또는 애니메이션 도구를 사용하여 선택적으로 오버레이된 트랙이 있는 타임랩스 시리즈를 나타내는 스냅샷 및/또는 비디오 파일을 만듭니다.</li>
</ol>4. 공초점 이미지 획득
<ol><li>현미경 단계에 스테이지 탑 인큐베이터를 설치하고, 원하는 온도 및CO2 농도(즉, 포유류 세포의 경우 37°C 및 5%)를 설정하고 이미지 수집을 시작하기 전에 적어도 1시간 동안 따뜻하게 유지합니다.</li>
	<li>레이저를 포함한 공초점 레이저 스캐닝 현미경의 모든 구성 요소를 켜고 적어도 1 시간 동안 따뜻하게 하십시오.</li>
	<li>나이퀴스트 기준에 따라 원하는 중간에서 높은 배율 대및 공간 샘플링을 선택합니다.</li>
	<li>SG 채널의 경우 여기를 488 nm및 500-550 nm의 검출 범위를 설정합니다. 미토콘드리아 얼룩 채널의 경우, 적색 염료에 대해 561 nm 및 570-630 nm 방출, 또는 633 nm 여기 및 >650 nm 방출을 멀리 적색 염료에 대해 설정한다.</li>
	<li>PMT 검출기 이득이 700mV인 신호를 수집할 수 있는 가능한 최저 레이저 전력(일반적으로 1% 이하)을 설정합니다.</li>
	<li>"SG 채널"에서 미토콘드리아 핵이 검출되고 미토콘드리아가 "적색" 또는 "원적" 채널에서 검출되는 세포의 2색 공초점 이미지를 획득합니다.</li>
</ol>

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</ol>

저자는 공개 할 것이 없다.

프로토콜에는 몇 가지 중요한 구성 요소가 있습니다 : 미토콘드리아 DNA의 우선 라벨링을 얻으려면 배양 중에 DNA 결합 염료의 농도가 매우 낮게 유지되어야합니다 (예 : 일반적인 상용 재고의 1 :10,000 희석), 인큐베이션 시간은 30 분이어야합니다. 인큐베이션 시간은 1 h를 초과해서는 안됩니다. 다른 DNA 결합 염료는 낮은 농도에서 라벨링시 강한 신호를 생성할 만큼 충분히 밝지 않습니다.
우리의 프로토콜의 한계는 염료가 투과 단계 동안 미토콘드리아 핵형성으로부터 세척된다는 것입니다. 따라서, 기재된 절차는 통상적인 면역형광 프로토콜에 적합하지 않다. 이 경우 고정 된 세포의 핵형성은 DNA 또는 미토콘드리아 전사 인자 (TFAM)에 대한 항체와 같은 다른 기술로 효율적으로 표지 될 수 있습니다.
DNA 결합 유기 염료를 가진 미토콘드리아 핵세포의 직접 표지는 형광 성 단백질 표지에 비해 장점이 있습니다: 모든 유형의 ...

원형 16.5 kbp DNA 분자는 미토콘드리아의 유전 물질을 구성하며, 미토콘드리아 산화 인산화 복합체에 필요한 22 tRNAs, 2 rRNAs 및 13개의 폴리펩티드를 인코딩합니다. 미토콘드리아 DNA는 미토콘드리아 전사 인자 a(TFAM) 및 여러 다른 단백질에 결합하여 미토콘드리아 핵형성1,,2,,3,,4. 미토콘드리아 핵형성은 세포 주기 상, 스트레스 및 기타 요인에 따라 형태학적리모델링,핵분열 또는 융합동안 미토콘드리아네트워크의성분 들 간에 이동 및 재분배(Pernas et al.7). 또한, 미토콘드리아 핵소자의 움직임은, 전신 성 홍반성 루푸스 질환8에 연루되어 다른 질병에 역할을 할 수 있다. 형광 현미경 검사법은 세포기관의 살아있는 세포 연구를 위한 간단한 기술입니다, 그러나 기술은 미토콘드리아 핵형성의 크기보다는 더 큰 >200 nm의 해결책을 가지고 있습니다 (~100,nm9,,10,,12).12 이러한 한계는 자극방출고갈(STED) 및 단일 분자 국소화 현미경(SMLM)13,,14와같은 소위 "초고해상도" 기술에 의해 회피되었다. 지금까지, 미토콘드리아 핵소자 및 기타 DNA는 직접 적인 현미경(dSTORM)15에의해 살아있는 세포에서 영상화되었다. mtDNA와 상관관계가 있는 위치를 가진 미세한 서브-미토콘드리아 구조는 살아있는세포(16)에서STED에 의해 관찰되었다. 그러나, 이러한 초고해상도 기술은 살아있는 세포에 광독성 효과를 일으키는 높은 발광 강도를 필요로17. 따라서 회절 한계를 초과하는 해상도를 가진 미토콘드리아 핵종의 시간 경과 이미징은 어렵습니다. 이 문제를 해결하기 위해 초해상도 구조조명 현미경(SR-SIM)18을사용했습니다. SIM은 STED 및 SMLM19보다훨씬 낮은 조명 전력 용량을 필요로합니다. 더욱이, STED 및 SMLM 기술과는 달리, SIM은 간단한 다색 3차원(3D) 이미징을 허용하며, 형광단 또는 이미징 버퍼조성물(19)의특정 광물리적 특성을 필요로 하지 않는다.
살아있는 세포에서 미토콘드리아 핵을 표지하기 위한 종래의 전략은 TFAM20과같은 미토콘드리아 핵형 단백질의 형광 태깅이다. 그러나 대부분의 경우 이 전략은 적합하지 않습니다. 더욱이, 형광 단백질 태그가 붙은 TFAM의 과발현은 심각한아티팩트(21)를생성한다. 유기 염료로 DNA를 표지하는 것은 형광 단백질 (FP) 기반 전략에 비해 장점이 있습니다. 유기 염료는 FP 태깅과 관련된 제한이 없습니다 : 그들은 세포 또는 조직의 모든 유형에 사용할 수 있으며 실험의 모든 시점에서 적용 할 수 있습니다. 미토콘드리아 핵소자의 살아있는 세포 이미징은 여러 DNA 결합 염료로 보고되었다: DAPI22,SYBR 그린23,비브란트 염료사이클24,및 피코그린15,,25,,26. 핵염균 표지를 위한 대부분의 DNA 결합 염료의 실질적인 결점은 세포 내의 모든 DNA를 얼룩지게 한다는 것입니다. 미토콘드리아 DNA에전적으로 염료를 표적으로 하는 것은 매우 바람직합니다. 이를 달성하기 위해서는 적절한 물리 화학 적 특성을 지닌 염료를 신중하게 선택해야합니다. 로다민(123)과 같은 국소화된 양성전하를 보유한 친유성 염료는 살아있는 미토콘드리아에 축적되어 부정적인 막 전위를 보존하는 것으로 알려져 있다. 또한, 미토콘드리아 핵소자의 특정 라벨링을 위한 이상적인 염료는 높은 친화력으로 DNA를 결합하고 DNA 결합시 밝은 형광을 방출해야 한다. 이러한 요구 사항을 고려할 때, 특정 시아닌은 유망하지만(예를 들어, 피코그린), 핵 DNA는 미토콘드리아 DNA15,,25,,26과동시에 이들 염료에 의해 풍부하게 염색된다. 본 프로토콜은 다른 시아닌 염료, SYBR 골드 (SG) 및 시간 경과 슈퍼 해상도 SIM 비디오에서 핵의 추적과 라이브 세포에서 미토콘드리아 핵의 특정 라벨을 설명합니다. 더욱이, SG 염색된 살아있는 세포는 살아있는 세포에 적합한 모든 유형의 반전형광 현미경(공초점, 회전 디스크, 에피네시 등)에 의해 이미지화될 수 있으며 488 nm 광원을 갖추고 있다.

<table><tbody><tr><td>Elyra PS1</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td>다중 모드 초고해상도 현미경 초고해상도 구조 조명 현미경(SR-SIM)용 모듈</td></tr>, <tr><td>고포도당 DMEM</td><td>GIBCO/ThermoFisher</td><td>31966021</td><td></td></tr><tr><td>ibidi 35mm 접시, 유리 바닥</td><td>Ibidi Gmbh</td><td>81158</td><td></td></tr>, <tr><td>ibidi 8웰 마이크로슬라이드, 유리 바닥</td><td>Ibidi Gmbh</td><td>80827</td><td></td></tr><tr><td>Imaris 8.4.1</td><td>Bitplane/Oxford Instruments</td><td></td><td>이미지 처리 및 시각화 소프트웨어 패키지</td></tr><tr><td>iXon 885</td><td>Andor Technologies</td><td></td><td>EMCCD 카메라(이면조사형 센서 포함</td></tr>) <tr><td>LSM880 Airyscan</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td>어레이 검출기가 있는 레이저 스캐닝 컨포칼 현미경</td></tr><tr><td>Mitotracker CMXRos Red</td><td>ThermoFischer</td><td>M7512</td><td>빨간색 라이브 셀 미토콘드리아 stain</td></tr><tr><td>Mitotracker Deep Red FM</td><td>ThermoFischer</td><td>M22426</td><td>원적외선 미토콘드리아 염색</td></tr><tr><td>picoGreen</td><td>ThermoFischer</td><td>P7581</td><td>세포 투과 DNA 염색</td></tr><tr><td>Plan Apochromat 100x/1.46 오일 대물</td>렌즈 <td>Carl Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SYBR Gold</td><td>ThermoFischer</td><td>S11494</td><td>cell permeant DNA stain</td></tr><tr><td>Zen Black 2012 software</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td>이미지 획득 및 처리 소프트웨어</td></tr></tbody></table>

시간 경과 구조화 조명 현미경 검사법에 대한 미토콘드리아 핵의 특정 라벨링

Specific Labeling of Mitochondrial Nucleoids for Time-lapse Structured Illumination Microscopy

미토콘드리아 핵형성은 단백질로 코팅된 미토콘드리아 DNA 분자에 의해 형성된 소형 입자입니다. 미토콘드리아 DNA는 tRNA, rRNAs 및 몇몇 필수 미토콘드리아 폴리펩티드를 인코딩합니다. 미토콘드리아 핵형성은 핵분열/융합 및 기타 형태학적 변화를 겪는 동적 미토콘드리아 네트워크 내에서 분열및 분배됩니다. 고해상도 라이브 형광 현미경 검사법은 핵신의 위치와 움직임을 특성화하는 간단한 기술입니다. 이 기술을 위해, 핵형성은 그들의 단백질 분대, 즉 전사 인자 a (TFAM)의 형광 태그를 통해 일반적으로 표지됩니다. 그러나 이 전략은 아티팩트(TFAM에 대해 보고됨)를 유발할 수 있는 형광 단백질 태그가 지정된 구성물의 과발현이 필요하며 많은 경우에 실현 가능하지 않습니다. 유기 DNA 결합 염료는 이러한 단점을 가지고 있지 않습니다. 그러나, 그(것)들은 항상 핵과 미토콘드리아 DNA 둘 다의 얼룩을 보여주기, 따라서 미토콘드리아 핵형성에 특이성이 결여됩니다. 이러한 염료의 물리 화학적 특성을 고려하여 핵산 젤 얼룩(SYBR Gold)을 선택하고 살아있는 세포에서 미토콘드리아 핵세포의 우대 라벨링을 달성했습니다. 염료의 특성, 특히 DNA에 결합시 높은 밝기는 초고해상도 구조 조명 이미지의 타임 시리즈를 사용하여 미토콘드리아 핵운동의 후속 정량화를 허용합니다.

SG를 통해 라이브 셀 라벨링의 특성화 먼저, 다양한 희석제에서 염료를 배양시 세포내SG의 분포는 공초점 현미경으로 특징지어졌다. SG 또는 피코그린의 고농도로 배양한 후, 둘 다 염료는 대부분 핵에 표지하고 세포질에서 반점 염색을 나타내었다(도1),유사하게 다른 양전하파된 사이아닌 염료(즉, 피코그린)에 대한 출판된 데이터와 유사하게15. 그러나, 1:10,000 희석에서 SG로 배양시, 희미한 염색이 핵에 나타났고, 세포질에서는 밝은 반점의 패턴을관찰하였다(도 1). 한편, 피코그린 염료를 1:10,000으로 배양하여 대부분 핵 염색을 산출했다. SG 신호는 동일한 농도에서 피코그린보다 훨씬 밝습니다. 데이터는 SG가 그밖 유사한 DNA 결합 염료 보다는 화상 진찰 미토콘드리아 DNA...

이 프로토콜은 시판되는 DNA 젤 얼룩이 있는 미토콘드리아 핵종의 특정 라벨링, 초고해상도 구조조명 현미경(SR-SIM)에 의한 라이브 라벨링 세포의 타임랩스 시리즈 획득, 핵운동의 자동 추적을 설명합니다.

Mitochondrial nucleoids are compact particles formed by mitochondrial DNA molecules coated with proteins. Mitochondrial DNA encodes tRNAs, rRNAs, and ...

이 프로토콜은 살아있는 세포에 있는 미토콘드리아 핵의 특정 표시및 고해상도에 그들의 운동의 정량적인 연구를 허용합니다. 형광염으로 배양하는 것은 형광성 단백질의 필요성을 우회하여 관련 유물및 한계를 피하고 우리의 프로토콜이 비트랜스펙트 세포에 적용될 수 있도록 합니다. 우대 핵 염색을 달성하기 위해, 하나는 우리가 최적화 한 조건하에서 SYBR 골드와 다른 아무것도 사용해야합니다.그렇지 않으면, 총 세포 DNA는 얼룩질 수 있습니다. 라벨링 시술 하루 전에, 35mm 페트리 접시에 있는 매체의 2밀리리터에서 다섯 번째 HeLa 세포에 4 번 10배 배양합니다. 다음 아침, 페놀 레드 프리 배양 배지 의 1 밀리리터와 적절한 2X 라벨링 용액의 1 밀리리터를 추가하기 전에 PBS의 2 밀리리터로 세포를 세척합니다.섭씨 37도, 이산화탄소 5%에서 30분 후, 각 35mm 페트리 접시에서 슈퍼티티가 함유된 염료를 조심스럽게 흡인시키고 PBS 2밀리리터로 세포를 씻어내세요. 그런 다음 신선한 페놀 적색 세포 배양 배지로 세포를 공급하고 살아있는 이미징까지 빛으로부터 보호되는 세포 배양 인큐베이터로 배양을 반환한다. 라이브 세포 이미징의 경우, 이미징 세션 1시간 전, 스테이지 탑 인큐베이터를 초해상도 구조조명 현미경 단계에 배치하고 온도를 섭씨 37도로 설정하고 이산화탄소 농도는 레이저를 포함한 현미경의 모든 구성 요소에 5%로 설정하고 고배율, 고숫자 조리개 침전을 선택하여 미세한 분해능을 권장하는 미세한 구조로 제조하였다.레이저가 워밍업되면 35mm 페트리 접시를 현미경 단계에 설치하고 안구를 사용하여 접시 바닥에 부착된 세포와 관심 있는 영역을 찾습니다. 초해상도 구조화 조명 현미경 이미지를 획득하려면 백 엔드 하이 엔드 전자곱 커플링 장치 카메라를 사용하십시오. 이미지 수집 소프트웨어에서 카메라에 권장되는 대로 높은 전자 곱을 곱한 게인을 설정합니다.핵 추적을 위한 타임랩스 시리즈를 획득하기 전에, 미토콘드리아 염색을 위한 한 채널에서 동일한 시야의 2색 초해상도 구조화 조명 현미경 이미지를 획득하고 SYBR 골드에 대한 또 다른 것을 획득한다. 미토콘드리아 이미지 컬러 채널을 사용 하 여 미토콘드리아 얼룩에 대 한 적절 한 여기 및 방출에 설정 하 고 SYBR 금 염료에 대 한 적절 한 여기 및 뱅 패스 방출 필터를 설정 합니다. 두 채널 모두에서 가능한 가장 낮은 레이저 전원을 설정합니다.현미경이 순차적으로만 채널을 획득하는 경우 미토콘드리아 얼룩 검출을 위해 채널을 끕니다. 소프트웨어의 Z 스택 상자를 선택 해제하여 Z 스택 인수를 해제하여 단일 초점 평면의 인수를 설정하고 가능한 카메라 노출 시간을 가장 짧게 설정합니다. 그리드의 3회전을 설정하고 여러 레이저 전력 값과 여러 노출 시간에 표지된 셀의 2차원 이미지를 획득하여 카메라 노출 시간에 레이저 전력을 최적화합니다.미토콘드리아의 밝은 반점이 있는 구조화 조명 현미경 이미지를 거의 또는 전혀 아티팩트없이 산출하고 최적화된 설정을 사용하여 타임랩스 시리즈의 획득을 시작하는 레이저 출력 및 카메라 노출 시간을 선택합니다. 시간 경과 이미지의 분석을 위해 변환된 구조화 조명 현미경 이미지와 스팟 추적 모듈이 있는 적절한 이미지 분석 소프트웨어를 열고 새로운 스팟을 클릭하여 스팟 생성 마법사를 시작합니다. 만들기 탭에서 시간이 지남에 따라 트랙 스팟을 클릭하고 마법사의 두 번째 단계로 진행합니다.추정 된 x-y 직경을 0.1 ~ 0.15 마이크로미터로 설정합니다. 배경 빼기를 클릭하고 마법사의 세 번째 단계로 진행합니다. 히스토그램내의 수직선을 드래그하여 대부분의 뉴클레오티드가 검출될 때까지 품질 필터의 임계값을 조정하여 각 프레임 내에서 검출되지 않는 유물의 반점으로 검출된다.마법사의 네 번째 및 다섯 번째 단계로 이동하여 자동 회귀 모션 알고리즘을 선택합니다. 최대 거리를 0.5 마이크로미터로 설정하고 최대 간격 크기를 0으로 설정합니다. 미세 조정된 매개 변수를 통해 소프트웨어가 모든 반점을 감지하고 트랙을 올바르게 빌드할 수 있게 되면 화살표 를 클릭하여 트랙 생성을 확인하고 통계 아이콘을 클릭하여 트랙 통계를 추출합니다.그런 다음 필요한 통계 매개 변수를 선택하고 저장 As를 클릭하여 값을 정량화 및 시각화를 위해 점 CSV 파일로 내보냅니다. SYBR 금 또는 PicoGreen의 고농도로 라벨링하면 핵이 풍부하게 염색되고 세포질 내에서 얼룩지게 됩니다. 낮은 농도에서, 희미한 SYBR 금 신호는 세포질 내에서 관찰되는 밝은 반점의 패턴에서 핵 내에 나타납니다.낮은 농도에서 PicoGreen 라벨은 주로 핵 염색을 산출합니다. 먼 붉은 미토콘드리아 염료에서 SYBR 금의 낮은 농도와 동시에 염색하면 거의 모든 SYBR 금 얼룩이 미토콘드리아 내에서 발생하며 고농도로 라벨을 부착하면 핵과 세포질이 유의하게 염색되는 결과를 낳는다. 시간 경과 이미징은 45 분 후에 핵염 염색이 포화에 가깝다는 것을 밝힙니다.고정은 핵에 염료의 약간의 재분배를 일으키는 원인이 되고, 고정된 세포의 투과화는 미토콘드리아의 점선 염색 패턴을 제거하고 핵 염색을 향상시킵니다. SYBR 금이 고정 및 투과화 후 세포에 첨가되면 염료가 세포질과 핵을 균일하게 분산시켜 염색 특이성을 상실하게 됩니다. 슈퍼 분해능 구조화 조명 현미경에 의한 살아있는 세포 3D 화상 진찰은 미토콘드리아 내의 밝은 반점으로 미토콘드리아 핵로이드를 드러낸다.회절 한계를 초과하는 해상도에서 핵의 위치를 추적하는 것은 대부분의 핵이 미토콘드리아 네트워크에 국한된 짧은 거리 무작위 운동을 나타낸다는 것을 보여줍니다. 이 프로토콜은 샘플의 고정과 호환되지 않는다는 점에 유의해야 합니다. 그러나, 우리의 프로토콜은 분자와 세포기관의 형태학, 역학 및 활동의 연구를 위한 살아있는 세포 화상 진찰 기지를 둔 분석의 넓은 범위와 호환되어야 합니다.우리의 연구는 세포 기지를 둔 기술에 대한 비 유기 염료를 리타게팅의 장점을 보여줍니다. 그것은 세포 연구에서 그들의 응용 프로그램에 대 한 다른 형광 염료의 탐구영감을 수 있습니다.

specific-labeling-mitochondrial-nucleoids-for-time-lapse-structured

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

출처: Kennedy, L. H., et. al. 아데노 관련 바이러스 및 컨포칼 현미경을 사용한 유기형 뇌 절편에서 희소돌기아교세포 소기관의 시각화 및 라이브 이미징. J. Vis. Exp. (2017)이 비디오는 유기형 마우스 뇌 절편에서 희소돌기아교세포 미토콘드리아의 이미징을 보여줍니다. 슬라이스는 지속적인 유체 순환과 온도 조절이 가능한 수조 챔버 내부에 배치됩니다. 컨포칼 현미경의 다양한 매개변수를 설정한 후 적색 형광을 가진 미토콘드리아의 타임 랩스 이미지를 캡처한 다음 녹색 형광을 가진 희소돌기아교세포의 Z 스택 이미지를 캡처합니다.

Organotypic Brain Slice Cultures에서 희소돌기아교세포 내 미토콘드리아 운동의 공초점 이미징

여기, 우리 살아있는 세포의 세포에 단일 막 단백질의 다 색 지역화에 대 한 프로토콜을 제시. Fluorophores 연결할 자체 라벨 단백질 사용 됩니다. 단백질, 세포 기관이 동일한의 다른 막 구획에 있는 ~ 18의 정밀도로 지역화할 수 nm.

살아있는 포유류 세포의 세포에서 단일 막 단백질의 다 색 지역화 현미경

우리는 아스코르바테 과산화수역 2 및 고추냉이 과산화증 염색을 포함하는 상관경 및 부피 전자 현미경을 사용하여 유전자 변형 후 전체 세포에서 미토콘드리아 및 호반 망상염식의 분포를 연구하는 프로토콜을 제시하고, 동일한 섹션에 있는 표적 유전자의 유무에 관계없이 세포의 직렬 단면도, 및 전자 현미경 검사법을 통해 직렬 화상 진찰.

미토콘드리아 및 코피포지티컬 라이트 및 부피 전자 현미경에 의한 산후성 망상 이미징

베이커의 효모 미토콘드리아 게놈은 8개의 폴리펩티드를 인코딩합니다. 현재 프로토콜의 목표는 모든 프로토콜에 레이블을 지정한 다음 별도의 대역으로 시각화하는 것입니다.

베이커효모사카로미세스 세레비시아에 미토콘드리아 게놈 발현 제품의 라벨링 및 시각화

mtDNA 합성 및 분포를 검출하고 정량화하기 위해 다중 웰 플레이트 형식 및 자동화된 면역형광 이미징을 사용하여 세포에서 미토콘드리아 DNA(mtDNA) 대사의 역학을 연구하는 절차가 설명되어 있습니다. 이것은 mtDNA 대사에 대한 다양한 억제제, 세포 스트레스 및 유전자 침묵의 효과를 조사하는 데 추가로 사용될 수 있습니다.

미토콘드리아 DNA 합성 및 분포의 고처리량 이미지 기반 정량화

이 프로토콜은 STED(Stimulated Emission Depletion) 현미경을 사용한 미토콘드리아 초미세 구조 시각화 및 분석을 위해 배양된 SH-SY5Y 세포 및 일차 쥐 해마 뉴런의 증식, 분화 및 염색을 위한 워크플로우를 제시합니다.

신경 세포 모델에서 미토콘드리아 내막 초세구조를 시각화하기 위한 라이브 셀 STED 이미징 사용

이 연구에서는 단계별 프로토콜을 설명하고 샘플 준비, 이미지 획득 및 데이터 분석을 포함하여 살아있는 세포에서 미토콘드리아의 형태학적 특성을 결정하기 위한 주요 세부 사항을 강조합니다. 이 방법은 다양한 조건을 연구하기 위해 미토콘드리아 형태를 검사하는 데 일반적으로 사용됩니다.

컨포칼 현미경을 사용한 살아있는 세포의 미토콘드리아 형태 측정

여기에서는 시간 경과에 따른 미토콘드리아 분열 및 융합 활동의 3차원 변화를 정량화하는 데 유용한 ImageJ 플러그인인 미토콘드리아 이벤트 로컬라이저(MEL)를 설명합니다. 또한 ImageJ에서 분석하기 전에 현미경 사진을 정리하는 데 유용한 이미지 처리 파이프라인에 대해서도 설명합니다.

동적 및 3차원 형광 현미경 사진을 통한 미토콘드리아 형태의 변화 이해

우리는 유크로마틴, 헤테로크로마틴, RNAP II의 재현 가능한 지도화를 가능하게 하는 3색 염색질 단분자 위치 현미경(SMLM) 염색 및 분석 프로토콜을 제시합니다. 이 프로토콜은 크로마틴 관련 표적을 포함한 고밀도 핵 환경에서 효율적인 다색 라벨링을 가능하게 하여 신뢰할 수 있는 동시 검출을 가능하게 합니다.

밀집된 핵 환경에서 크로마틴 연구를 위한 다중 표지 단일 분자 위치 현미경 프로토콜

시간 경과 현미경과 분해 굴지 모니터링

배우세요 생세포에서 미토콘드리아 핵의 특이적 라벨링 및 고해상도 운동 정량 분석 방법을 SYBR Gold 염료와 SR-SIM 현미경을 활용하여. HeLa 세포에서 시간 경과 이미징으로 핵 역학을 추적합니다.

시간 경과 구조화 조명 현미경 검사법에 대한 미토콘드리아 핵의 특정 라벨링

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