Name: 조직학적 검사 및 면역 조직화학을 위한 통합 안구 표면 조직을 얻기 위한 손상되지 않은 안구의 분리 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-10-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 15 s
Description: 배우세요 손상되지 않은 마우스 안구를 분리하여 안구 표면 조직을 보존하는 방법을. 이 기법은 조직학적 검사와 면역 조직화학 분석에 활용되어 안과 질환 연구에 중요한 기여를 합니다.

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저자는 원고의 비판적 독서에 대한 룽 주 교수에게 감사하고, 기술 지원에 대한 모든 실험실 구성원. 이 작품은 중국의 국립 자연 과학 재단 (NSFC: 31571077)의 보조금에 의해 지원되었다; 중국 베이징, 광저우 시 과학 및 기술 혁신 프로젝트 (201707020009; 광저우, 광동성, 중국), "100 인 계획" 선 야센 대학에서 (8300-18821104; 광저우, 광동성, 중국), 중산 안과 센터에서 안과의 국가 핵심 연구소에서 연구 자금 (303060202400339; 광저우, 광동성, 중국).

마우스의 사용과 관련된 모든 절차는 동물 관리 및 사용위원회, 중산 안과 센터에 의해 승인되었으며, 안과 및 시력 연구에서 동물의 사용에 대한 ARVO 성명서를 준수했습니다.
1. 안구 표면과 눈꺼풀이 있는 안구 해부
<ol><li>머리를 해부하십시오.<ol>
<li>자궁 경부 탈구에 의해 산후 일 10 (P10) 및 P28 마우스 (마우스 균주에 대한 재료의 표 참조), 날카로운 가위 쌍에 의해 목에서 머리를 잘라.</li>
		<li>시상 중간선을 따라 직선 가위를 한 쌍의 이분 머리는 비강에 rostrally 에서 시작(그림 1A,B). 참고 : 두개골 뼈는 마우스 노화로 굳어지며 가위를 가능한 한 중간선을 따라 자르지 않도록주의하십시오.</li>
		<li>이등분된 머리의 각 절반을 깨끗한 페트리 접시에 놓고 날카로운 가위를 사용하여 턱과 혀를 먼저 잘라냅니다. 시신경을 시신경을 시신경이 시신경 위치 이전에 절단하여 제거하고 두개골 벽에 부착된 후각 전구를 포함한 모든 뇌 조직을 제거합니다.</li>
		<li>이제 나머지 조직은 안구와 관련된 모든 두개골 / 궤도 뼈를 가져야합니다(그림 1C,D). 혈액과 모발 파편을 청소하기 위해 PBS로 나머지 부분을 씻으하십시오.</li>
		<li>4% 파라포름알데히드(PFA, 인산완충식염수[PBS], pH 7.4)를 실온(RT)에서 50 mL 원엽튜브에 회전시키는 접두사. 대략적인 고정 시간은 다음과 같습니다: P0내지 P7에 대해 ~10분; ~20 P8에 대 한 분 P28; P29 이상 ~ 30 분. 참고 : 접두사는 조직 강성을 제공하여 후속 해부를 더 쉽게 만듭니다. 또한 접두사는 해부가 완료되기 전에 너무 오래 고정되지 않은 신선한 조직을 떠나는 것을 방지합니다. 주의: PFA는 위험하며 주의해서 취급해야 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>두개골/궤도 뼈를 제거합니다.<ol>
<li>접두사 후, 해부된 머리를 PBS에서 3회 빠르게 세척하여 부러진 모발과 고정제를 더 제거하여 추가 해부를 진행한다. 주의: 해부 중 고정제에 노출되면 건강에 해가 될 수 있습니다.</li>
		<li>10cm 페트리 접시에 조직을 놓고 그림 1D,E에표시된 평면을 따라 두개골을 세 부분으로 자른다. 소켓의 안구는 ethmoid, 정면 및 상악 골 아래 두개골의 중간 부분에 숨겨져 있습니다(그림 1D,E).</li>
		<li>4번 직선 집게 2쌍을 사용하여 전두엽과 상악골이 완전히 노출되기 위해 에트모이드 뼈를 벗겨냅니다(그림1F).</li>
		<li>지리적으로 두개골 표면(상악및 정면 뼈 포함)을 4개영역(그림 1F)으로나눕니다. 곡선 된 집게의 끝을 각 영역에 수평으로 삽입하여 상악골과 정면 골격을 순차적으로 제거합니다(그림1F). 참고: 상악골은 모두 한 번에 제거할 수 없습니다. 참을성 있게 조각으로 조각을 해부. 정면 뼈는 부드러운 결합 조직을 통해 안구에 직접 연결됩니다. 안구에서 제거할 때 안구를 스트레칭하고 결막에 손상을 입히는 것을 방지하기 위해 주의하십시오.</li>
		<li>부분 상악골과 모든 정면 뼈를 제거 한 후, 기본 물상 및 jugal 뼈가 노출 될 것이다(그림 1G). 안구를 둘러싼 두 개의 뼈와 관련 피하 근육과 지방을 제거하고, 부착된 눈꺼풀과 피부로 안구를 다듬어 조직 부피를 줄이고 포함 시 조직 방향을 조정하는 것을 용이하게합니다(그림 1) H)를 말합니다.</li>
		<li>안구 와 관련 조직을 다시 4 % PFA로 놓고 4 °C에서 하룻밤 동안 계속 수정하십시오. 고정 된 조직은 0.02 % NaN 3의 첨가와 함께 PBS에서 4 °C에서 적어도 한 달 동안 보존 될 수있습니다. 또는 조직학적 분석을 즉시 진행하십시오. 참고 : 조직을 더 오랜 기간 동안 보관해야하는 경우 70 % 에탄올에 쉽게 저장할 수 있습니다.</li>
	</ol></li>
</ol>2. 조직학적 분석
<ol><li>파라핀 섹션 및 헤마톡실린 및 에오신(H&E) 염색<ol>
<li>9다른 곳에 설명된 표준 프로토콜을 따라 파라핀 임베딩 및 단면화를 수행한다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>면역화학 (IHC)<ol>
<li>자일렌으로 파라핀 절편을 왁스하고 알코올 시리즈를 통해 섹션을 재수화 (100%, 95%, 80%) 증류수 (dH2O)에 넣습니다.</li>
		<li>0.01 M 구연산 완충액 (구연산 삼중 나트륨 3g, 이중 증류 H2O 당 0.4 g)의 조직 슬라이드의 마이크로 파 처리에 의한 항원 회수를 저전력 (120W)의 유리 슬라이드 항아리에 수행합니다. 에너지는 간헐적으로 총 5-10 분 동안 전달되어야하며 각 간격은 약 2 분 동안 지속됩니다. 참고 : 고전력 전자 레인지 또는 일관된 가열은 슬라이드에서 조직 섹션의 분리로 이어질 것입니다.</li>
		<li>유리 항아리에서 슬라이드를 골라 얼굴 조직을 사용하여 각 섹션을 둘러싼 잔류 액체를 조심스럽게 닦아내고 조직학 상자의 슬라이드 랙에 놓습니다. 방수 조직학 펜으로 각 섹션 주위에 사각형을 그립니다. 블로킹 버퍼 100 μL(0.1% 트리톤 X-100 및 10% 당나귀 혈청을 1x PBS에) 각 사각형에 놓고 RT에서 30분 동안 배양합니다.</li>
		<li>조심스럽게 진공으로 차단 용액을 제거하고, 차단 버퍼에서 원하는 희석으로 1 차 항체 (재료 표참조)를 추가하고 24 시간 이상 동안 4 °C에서 슬라이드를 계속 배양하십시오. 참고: IHC에 사용되는 각 1차 항체의 농도는 다양하며 파일럿 실험에서 테스트해야 합니다.</li>
		<li>PBST (PBS에서 0.1 % 트리톤)로 조직 슬라이드를 3 회, 각각 10 분 동안 씻으십시오. 2.2.4 단계는 이차 항체를 사용하여 (재료표참조) 4', 6-디아미디노-2-페닐린들레(DAPI)와 함께 차단 완충액을 대체한다. 실온(RT)에서 적어도 4시간 이상 배양하십시오.</li>
		<li>이차 항체를 제거하고 PBST 용액으로 조직 섹션을 세 번, 각각 10 분 동안 씻은 다음 깨끗한 PBS로 다시 5 분 동안 씻으하십시오.</li>
		<li>잔여 PBS 주변 조직 섹션을 닦아내고 장착 매체가있는 섹션에 덮개를 장착하십시오. 형광 현미경 검사를 수행하여 이미지를 얻습니다(재료 표참조).</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Swamynathan, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ocular+surface+development+and+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Ocular surface development and gene expression.</a> Journal of Ophthalmology. 2013, (2013).</li>
<li>Arita, R., Fukuoka, S., Morishige, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+Morphology+of+the+Lipid+Layer+of+the+Tear+Film%5BTitle%5D)+AND+%22Cornea%22%5BJournal%5D)">Functional Morphology of the Lipid Layer of the Tear Film.</a> Cornea. 36 Suppl 1, S60-S66 (2017).</li>
<li>Guo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ocular+surface+pathogenesis+associated+with+precocious+eyelid+opening+and+necrotic+autologous+tissue+in+mouse+with+disruption+of+Prickle+1+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Eye+Research%22%5BJournal%5D)">Ocular surface pathogenesis associated with precocious eyelid opening and necrotic autologous tissue in mouse with disruption of Prickle 1 gene.</a> Experimental Eye Research. 180, 208-225 (2018).</li>
<li>Knop, E., Knop, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomy+and+immunology+of+the+ocular+surface%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Immunology+and+Allergy%22%5BJournal%5D)">Anatomy and immunology of the ocular surface.</a> Chemical Immunology and Allergy. 92, 36-49 (2007).</li>
<li>Mizoguchi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ocular+surface+alkali+injury+damages+meibomian+glands+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22The+Ocular+Surface%22%5BJournal%5D)">Ocular surface alkali injury damages meibomian glands in mice.</a> The Ocular Surface. 15 (4), 713-722 (2017).</li>
<li>Gipson, I. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Goblet+cells+of+the+conjunctiva%3A+A+review+of+recent+findings%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Retinal+and+Eye+Research%22%5BJournal%5D)">Goblet cells of the conjunctiva: A review of recent findings.</a> Progress in Retinal and Eye Research. 54, 49-63 (2016).</li>
<li>Nowell, C. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+inflammation+imposes+aberrant+cell+fate+in+regenerating+epithelia+through+mechanotransduction%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Chronic inflammation imposes aberrant cell fate in regenerating epithelia through mechanotransduction.</a> Nature Cell Biology. 18 (2), 168-180 (2016).</li>
<li>Nagata, M., Ohashi, Y., Ozawa, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+histochemical+study+of+the+development+of+premaxilla+and+maxilla+during+secondary+palate+formation+in+the+mouse+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Histology+and+Cytology%22%5BJournal%5D)">A histochemical study of the development of premaxilla and maxilla during secondary palate formation in the mouse embryo.</a> Archives of Histology and Cytology. 54 (3), 267-278 (1991).</li>
<li>Zhang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+role+for+MEK+kinase+1+in+TGF-beta%2Factivin-induced+epithelium+movement+and+embryonic+eyelid+closure%5BTitle%5D)+AND+%22The+Embo+Journal%22%5BJournal%5D)">A role for MEK kinase 1 in TGF-beta/activin-induced epithelium movement and embryonic eyelid closure.</a> The Embo Journal. 22 (17), 4443-4454 (2003).</li>
<li>Sharov, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noggin+overexpression+inhibits+eyelid+opening+by+altering+epidermal+apoptosis+and+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Embo+Journal%22%5BJournal%5D)">Noggin overexpression inhibits eyelid opening by altering epidermal apoptosis and differentiation.</a> The Embo Journal. 22 (12), 2992-3003 (2003).</li>
<li>Setala, N. L., Metso, J., Jauhiainen, M., Sajantila, A., Holopainen, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dry+eye+symptoms+are+increased+in+mice+deficient+in+phospholipid+transfer+protein+%28PLTP%29%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Dry eye symptoms are increased in mice deficient in phospholipid transfer protein (PLTP).</a> The American Journal of Pathology. 178 (5), 2058-2065 (2011).</li>
<li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mastermind-like+transcriptional+co-activator-mediated+Notch+signaling+is+indispensable+for+maintaining+conjunctival+epithelial+identity%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Mastermind-like transcriptional co-activator-mediated Notch signaling is indispensable for maintaining conjunctival epithelial identity.</a> Development. 140 (3), 594-605 (2013).</li>
<li>McCauley, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TGFbeta+signaling+inhibits+goblet+cell+differentiation+via+SPDEF+in+conjunctival+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">TGFbeta signaling inhibits goblet cell differentiation via SPDEF in conjunctival epithelium.</a> Development. 141 (23), 4628-4639 (2014).</li>
<li>Guo, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ocular+surface+pathogenesis+associated+with+precocious+eyelid+opening+and+necrotic+autologous+tissue+in+mouse+with+disruption+of+Prickle+1+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Eye+Research%22%5BJournal%5D)">Ocular surface pathogenesis associated with precocious eyelid opening and necrotic autologous tissue in mouse with disruption of Prickle 1 gene.</a> Experimental Eye Research. 180, 208-225 (2019).</li>
</ol>

저자는 공개 할 것이 없다.

온전한 안구의 준비를 위한 중요한 알림은 모든 궤도 뼈, 특히 작은 눈 소켓의 바닥 근처에 있는 juga 및 상구 뼈를 완전히 제거해야 한다는 것입니다. 남은 뼈는 계속되는 역학을 복잡하게 할 수 있습니다. 뼈의 작은 조각이 우연히 해부에서 완전히 제거되지 않은 경우, 그것은 샤프 트위즈 의 쌍을 사용하여 포함 파라핀 블록에서 선택 될 수있다. 남은 구멍은 이 수술 후 녹은 파라핀으로 채워져야 합니다.
렌즈를 다룰 때는 추가주의를 기울여야 합니다. 깨진 렌즈 조각은 일반적으로 전체 섹션을 통해 흩어져 있습니다. 이것은 현미경 검사 및 심상 분석에 상당히 영향을 미칠 것입니다. 렌즈를 제거하려고 하면 안구 표면(안면 쪽에서 수술이 수행된 경우) 또는 망막(수술이 망막의 광학 디스크 측에서 나온 경우)이 손상될 수 있습니다. 해부없이 렌즈 조직의 존재의 부정적인 영향을 감소시키는 또 다른 방법은 단면 방향을 변경하는 것입니다. 예를 들어, 안구 표면 형태를 저장하려면 파라핀 블록의 ...

안구 표면은 팔모골 결막, 구근 결막 및 각막1을포함한 국부상피의 연속 시트로 구성됩니다. 많은 선 구조는 안구 표면 상피와 연관되어 있으며 함께 건조 및 환경 침입으로부터 각막 표면을 보호하는 눈물 막층을 생성한다2. OS의 중단은 각막염, 결막염 또는 둘 다 (각막결막염)로 이끌어 낼 것입니다. 유전 적 요인과 환경 자극제 또는 그 상호 작용모두 OS3,4의병리학적 변경에 기여합니다. 따라서, 다양한 유전자 조작 및 물리적 또는 화학적 유도 동물 모델이 인간 OS의 질병 과정을 연구하는 데 사용되어 왔다.
마우스 OS의 구조와 기능은 여러 면에서 인간의 구조와 기능과 유사합니다. 안구 땀샘에 의해 분비되는 눈물 막 성분은 또한 마우스와 인간 사이에서 유사합니다. 인간의 OS 질환의 해명 기전을 위해 마우스 모델을 사용하여 많은 연구가 수행되었습니다5,6,7. 많은 경우에, 동일한 실험 적인 처리의 밑에 포괄적인 정보를 얻기 위하여 OS의 현지 분자 변경 대신 글로벌분석하는 것이 중요합니다. 따라서 OS의 각 부분을 동시에 분석하려면 무결성이 좋은 샘플 준비가 필요합니다.
마우스 OS는 눈 소켓/궤도에 내장된 안구와 단단히 연관되어 있으며(여러 개의 다른 두개골 뼈로 만든 뼈 컵) 얇은 결합 조직을 통해 그것에 연결합니다. palpebral 또는 구근 결막을 손상시키지 않고 전체 안구 표면을 해부하기위한 엄청난 도전이 존재한다. 이러한 과제는 다음과 같은 경우: (i) OS는 부드럽고 얇으며 물리적으로 분리되어 있지만 움직일 수 있는 눈꺼풀과 안구에 부착되어 왜곡 및 손상에 취약합니다. (ii) 궤도 뼈와 안구 사이의 제한된 공간은 해부 작업을 제한합니다. 문제는 성인 마우스에 대 한 훨씬 더 큰. 배아 마우스에서, 궤도 뼈 골화가 완전하지 않고 주변 조직은 상대적 느슨한8. 헤드를 제거하고 이분할 수 있으며, 이어서 직접 파라포름알데히드(PFA) 고정 및 임베딩9를실시한다. 대조적으로, 산후 및 성인 마우스 궤도 뼈는 두꺼운 주변 조직으로 완전히 골화되어 고정제의 침투효율을 낮게 만듭니다. 또한, 궤도 /두개골 뼈는 단단하고 부서지기 쉽고 파라핀과 같은 부드러운 임베딩 화합물에서 절편 할 때 쉽게 부서질 수 있습니다. 뼈의 깨진 조각은 만장일치로 열등한 조직 형태로 인해 인근 조직을 찢어 버릴 것입니다.
많은 출판 된 연구는 종종 부분 안구 표면을 보였다, 이는 자신의 특정 연구 목적을 위해 충분 할 수있다10,11. 문헌의 총 검사는 해부 프로토콜12,13에대한 상세한 설명없이 입증되고 전체 그대로 안구 표면을 보여주는 몇 가지 연구를 발견했다. 이 프로토콜에서는 궤도 및 두개골 뼈가 질서 정연하게 제거되어 안구 표면과 눈꺼풀을 함께 남기고 물리적 인 손상을 최소화하는 통합 산후 눈 표면을 얻기위한 해부 방법을 자세히 설명했습니다. 우리는 OS 조직학을 추가로 검토하고 이 프로토콜로 준비된 조직 단면도를 사용하여 면역조직 화학을 수행했습니다.

<table><tbody><tr><td>1&시간; 인산염 완충 식염수(PBS)</td><td>Transgen Biotech</td><td>FG701-01</td><td></td></tr><tr><td>50ml 원심분리기 튜브</td><td>Corning</td><td>430829</td><td></td></tr><tr><td>접착 현미경 슬라이드</td><td>다양한</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 Phalloidin</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>A12379</td><td>권장 농도 1:500 - 1,000</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 568 Phalloidin</td><td>Invitrogen/Life Technologies</td><td>A12380</td><td>권장 농도 1:500 - 1,000</td></tr><tr><td>항-K12 항체</td><td>Abcam</td><td>ab124975</td><td>권장 농도 1:1,000</td></tr><tr><td>항-K14 항체</td><td>Abcam</td><td>ab7800</td><td>권장 농도 1:800</td></tr><tr><td>구연산</td><td>다양한</td><td></td><td></td></tr><tr><td>커버 슬라이드</td><td>다양한</td><td></td><td></td></tr><tr><td>곡선 겸자</td><td>세계 정밀 기기</td><td>14127</td><td></td></tr><tr><td>해부 현미경.</td><td>Olmpus</td><td>SZ61</td><td></td></tr><tr><td>에틸 알코올</td><td>다양한</td><td></td><td></td></tr><tr><td>형광 현미경</td><td>Zeiss</td><td>AxioImager.Z2</td><td></td></tr><tr><td>Fluoromount-G 장착 매체</td><td>SouthernBiotech</td><td>0100-01</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 해부 가위 - 스트레이트 블레이드</td><td>세계 정밀 기기</td><td>503242</td><td></td></tr><tr><td>전자 레인지</td><td>Galanz</td><td>P70D20TL-D4</td><td></td></tr><tr><td>마우스 균주</td><td>C57 / BL6 및 Sv129 혼합</td><td></td><td></td></tr><tr><td>No.4 스트레이트 집게</td><td>세계 정밀 기기</td><td>501978-6</td><td></td></tr><tr><td>일반 염소 혈청</td><td>다양한</td><td></td><td></td></tr><tr><td>파라 포름 알데히드 (PFA)</td> <td>다양</td><td></td><td>한 4 % 용액을 1 회 준비; PBS 및 0.45&mu로 필터링; m 여과기 막</td></tr><tr><td>조직 배양 접시</td><td>각종</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Trisodium 구연산염</td><td>각종</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>시그마 Aldrich</td><td>SLBW6818</td><td></td></tr></tbody></table>

조직학적 검사 및 면역 조직화학을 위한 통합 안구 표면 조직을 얻기 위한 손상되지 않은 안구의 분리

Isolation of Intact Eyeball to Obtain Integral Ocular Surface Tissue for Histological Examination and Immunohistochemistry

안구 표면 (OS)는 세 개의 연결된 부분으로 상피 시트로 구성되어 있습니다 : 팔피 결막, 구근 결막 및 각막 상피. OS의 중단은 각막염, 결막염 또는 둘 다 (각막결막염)로 이끌어 낼 것입니다. 특정 유전자 변형 또는 인공 수술을 가진 실험 동물 모델에서, OS 상피 시트의 모든 부분을 검사하여 각 부분의 상대적인 병리학적 변화를 병렬로 평가하는 것이 유용하다. 그러나, 왜곡이나 손상없이 전체적으로 OS 조직의 해부는 물리적으로 분리아직 이동 눈꺼풀과 안구에 부착 된 OS의 부드러움과 얇음으로 인해, 도전하고있다. 또한, 단단한 두개골 /궤도 뼈에 의해 형성 된 깊은 눈 소켓은 완전히 해부를 작동하기위한 제한된 공간을 떠나 안구에 의해 점유된다. 그 결과, 안구를 얼굴 측에서 연관된 OS 조직과 직접 해부하면 종종 조직 손상, 특히 팔근과 구근 결막으로 이어질 수 있습니다. 이 프로토콜에서는 이등분 마우스 머리에서 두개골과 궤도 뼈를 순차적으로 제거하고 눈꺼풀, 안구 표면, 렌즈 및 망막을 한 조각으로 모두 남기는 방법을 설명했습니다. OS 시트의 무결성은 잘 보존되었고 단일 섹션에서 역사학 또는 면스테인에 의해 검사 될 수 있었습니다.

다른 관점에서 본 주요 두개골 뼈는 그림 1A-E에설명되어 있으며 색상은 서로 다른 골격을 나타내고 있습니다. 우리는 해부 과정의 데모를 위해 4 주 된 동물을 사용했습니다. 해부 단계 1.1.1-1.1.3 및 짧은 접두사(단계 1.1.4)에 이어, 관련 안면 골격을 가진 안구는 도 1E에서입증된다. 전방(비강 및 상전)과 후방(예를 들어, 정수리)뿐만 아니라 안구 위에 주로 상악골과 정면 뼈를 가진 조직 블록을 생성한 에스모이드 뼈를 제거하기 위한 트리밍(도1F). 도 1F에서 지정된 부위에 따라 이러한 뼈를 순차적으로 제거하여 하데린 선...

이 프로토콜은 상대적으로 손상되지 않은 위치에서 눈꺼풀, 안구 표면, 전방 및 후방 세그먼트로 마우스 안구를 분리하는 방법을 설명합니다.

Ocular surface (OS) consists of an epithelial sheet with three connected parts: palpebral conjunctiva, bulbar conjunctiva and corneal epithelium. ...

우리의 실험실은 안구 발달과 질병에 초점을 맞추고 있습니다. 이 프로토콜은 해부된 마우스 헤드에서 두개골과 궤도 뼈를 순차적으로 제거하는 방법을 설명합니다. 눈꺼풀, 안구 표면, 렌즈 및 망막을 한 조각으로 모두 남깁니다. 이 프로토콜은 안구 표면 교훈에 관심이있는 안과 의사에게 도움이 될 것입니다. 나는 Dianlel Guo, 얼굴 뼈를 해부하면서 안구의 손상을 피하기 위해 시도 할 때 가능성이 투쟁기술을 말하는 것입니다. 이 해부 물질의 주요 장점은 안구 표면 상피 시트의 무결성이 잘 보존되고 안구 표면의 다른 부분은 하나의 단면도에서 조직학 또는 면역학에 의해 검사 될 수 있다는 것입니다. 연조직의 모든 작은 뼈와 파편을 잘라야 합니다. 이유, 그것은 그렇지 않으면 조직 섹션에 흉터 마크를 일으킬 것입니다. 마우스를 안락사한 후, 직선 가위를 사용하여 머리를 잘라 내고 비강뼈에서 시작되는 처산 중간선을 따라 양분합니다. 양분 된 머리의 각 절반을 깨끗한 페트리 접시에 넣고 날카로운 가위를 사용하여 턱과 혀를 잘라냅니다. 시광학 치아즘 위치 전에 뇌를 절단하여 시신경을 해제하십시오. 그리고 두개골 벽에 부착 된 후각 전구를 포함한 모든 뇌 조직을 제거합니다. 이제 나머지 모든 조직은 안구와 관련된 모든 두개골과 궤도 뼈를 가져야합니다. 나머지 부품을 PBS로 씻어 혈액과 모발 이물질을 청소하십시오. 4%파라포름알데히드를 함유한 50밀리리터 튜브에 배치하여 조직을 선불로 수정하여 실온에서 회전합니다. 접두사가 완료되면 PBS에서 해부된 머리를 세 번 빠르게 씻어 부러진 머리카락과 고정제를 더 제거하십시오. 조직을 10센티미터 페트리 접시에 넣고 두개골을 텍스트 프로토콜 중 하나에 표시된 평면을 따라 세 부분으로 자른다. 안구와 소켓은 두개골의 중간 부분에 민족, 정면 및 상악 뼈 아래에 숨겨져 있습니다. 4번 직선 집게 2쌍을 사용하여 ethmoid 골격을 벗겨내고 전두엽 및 상악 뼈를 완전히 노출시하십시오. 그런 다음 두개골 표면을 지리적으로 네 영역으로 나눕니다. 곡선 된 집게의 끝을 각 영역에 수평으로 삽입하여 상악 및 정면 골격을 순차적으로 제거합니다. 그 후, 근본적인 홍추와 주갈 뼈가 노출됩니다. 안구를 둘러싼 두 개의 뼈와 관련 피하 근육과 지방을 제거합니다. 눈꺼풀과 피부가 부착된 안구를 작은 사각형 모양의 블록으로 트리밍하여 조직 볼륨을 줄이고 포함시 조직을 방향을 지정합니다. 안구와 관련 조

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

이 비디오에서는, 우리는 마우스 눈 ciliary 상피에서 망막 줄기 세포를 분리하고 clonal 망막 분야를 형성하는 문화에서 그들을 성장하는 방법을 보여줍니다 것입니다. 절연되는 분야는 줄기 세포의 추기경 속성을 가지고 : 자기 갱신과 multipotentiality.

마우스 아이의 망막 줄기 세포의 분리

신문은 인간의 시체 같은 기증자의 안구 세계에서 망막 조직을 내장을 들어낸하는 간단한 소비세 각막에 대한 기술과 설명합니다. 기술은 안구 세계의 다른 조직을 손상시키지 않고 이식, 수술이나 연구 목적을 위해 사용되는 소비세 양질의 조직에 도움이됩니다 여기서 설명했다.

위한 간편한 기법<em&gt; 현장에서</em인간 안구 글로브에서 각막 및 망막 조직의 내장 적출의&gt; 절단

이 비디오는 쥐 모델에서 안구 표면 염증 및 마이봄샘 기능 장애를 유도하는 방법을 보여줍니다. 면역원을 사용하여 마우스의 면역 체계를 자극한 후 동일한 면역원으로 재자극하면 안구 표면 염증이 촉진되어 호중구에서 생성된 응집체를 통한 마이봄샘 분비물이 막히고 안구건조증을 유발합니다.

쥐 모델에서 안구 표면 염증을 유도하는 방법

이 프로토콜의 목표는 사후 적출된 돼지 눈에서 온전한 유리체핵과 피질을 전체적으로 분리하는 효과적인 기술을 보여주는 것입니다.

Vitreodynamic 분석을위한 항목의 유리체 유머 해부

노출 된 정상적인 안구 표면은 각막과 결막으로 이루어져 있습니다. 상피 세포, 배 세포 및 면역 세포가 결막에 존재한다. 여기, 노출 세포학의 비 침습적 기술은 인상 세포학 장치 및 결막의 면역 세포를 분석하는 유동 세포 계측법을 사용하여 설명합니다.

결막에서 세포를 분리하고 표현하기위한 비 침습적 방법

이 프로토콜의 목표는 아급성 안구 고혈압을 유발하는 변연 혈관 신경총의 360° 열 소작을 기반으로 하는 녹내장 신경 퇴행의 새로운 모델을 특성화하는 것입니다.

설치류의 외과적으로 유도된 녹내장에 대한 Limbal Vascular Plexus의 전체 원형 소작

이 논문은 설치류의 안구 미세 해부에 대한 프로토콜을 제시합니다. 이 과정에는 니티팅 멤브레인(즉, 세 번째 눈꺼풀)과 함께 안구의 적출술이 포함됩니다. 그런 다음 후방 안구 컵과 전방 안구 컵을 분리합니다.

설치류 눈의 미세 해부

이 프로토콜은 국소에서 공급된 돼지 눈에서 원발성 망막 색소 상피(RPE) 세포를 얻고 배양하는 절차를 간략하게 설명합니다. 이 세포는 줄기 세포의 고품질 대안 역할을 하며 체외 망막 연구에 적합합니다.

In vitro 모델링을 위한 Primary Porcine Retinal Pigment Epithelial Cells의 분리

이 원고는 쥐의 눈에서 망막 신경교세포(retinal glial Müller cell)를 분리하기 위한 자세한 프로토콜을 설명합니다. 프로토콜은 쥐 눈의 적출 및 절개로 시작하여 Müller 세포의 분리, 파종 및 배양으로 이어집니다.

Primary Mouse Retinal Glial Müller 세포의 분리

비종양성 지구본의 철저한 그로잉 및 표준화된 절편은 고품질의 재현 가능한 조직병리학적 절편을 얻는 데 중요합니다. 성인 및 태아의 비종양 지구본의 표준화된 매출에 대한 지침이 여기에 제공됩니다. 사례 기반 의사 결정에 대한 기준을 포함하여 구체 절편에 대한 다양한 옵션을 시연하고 논의합니다.

태아의 눈을 포함한 비종양성 지구의 그로잉(Grossing of non-neoplastic globes, including petal eyes)

이 연구는 성체 쥐의 망막과 시신경에 치료제를 전달하는 방법론을 제시합니다. 또한, 성체 쥐의 시신경과 망막을 하향식으로 일괄적으로 수집하기 위해 독특한 조직 회수 방법이 도입되었습니다.

성체 쥐의 안구 치료 전달 및 고급 조직 회수(Ocular Therapeutic Delivery and Advanced Tissue Retrieval in adult rats)

배우세요 손상되지 않은 마우스 안구를 분리하여 안구 표면 조직을 보존하는 방법을. 이 기법은 조직학적 검사와 면역 조직화학 분석에 활용되어 안과 질환 연구에 중요한 기여를 합니다.

조직학적 검사 및 면역 조직화학을 위한 통합 안구 표면 조직을 얻기 위한 손상되지 않은 안구의 분리

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