Name: 줄기 세포 치료를위한 심근 경색 심부전의 돼지 모델 설립 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-25T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 24 s
Description: 학습하세요 심근 경색으로 유도된 돼지 심부전 모델에서 심근내 줄기세포 주사를 이용한 심장 재생 효과를 평가하는 방법을. 이 모델은 세포 기반 치료제의 효능과 안전성을 검증하는 안정적인 플랫폼을 제공합니다.

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저자는 동물 실험 중 뛰어난 기술 적 지원에 대한 알프레다와 쿵탁 정을 인정합니다.

모든 동물 실험은 홍콩 대학의 미국 국립 보건 및 규정에 의해 출판 된 실험실 동물의 관리 및 사용에 대한 가이드에 따라 수행되었으며, 이 프로토콜은 홍콩 대학의 교육 및 연구 (CULTAR)에서 살아있는 동물 사용위원회에 의해 승인되었습니다.
참고: 35-40kg(9-12개월)의 암컷 농장 돼지가 이 연구에 사용되었습니다. 이 실험의 순서도는 도 1에표시됩니다.
1. 외과 적 절차
<ol><li>동물의 마취 및 준비<ol>
<li>동물을 12시간 동안 빠르게 하고 실험 전에 4시간 동안 물 박탈을 받습니다.</li>
		<li>일반 식염수 20mL에서 제조된 타일타민+졸제팜(2-7 mg/kg)과 자일라진(0.5-1 mg/kg)의 근육 주사를 통해 돼지를 마취시킵니다. 동물의 팔페브랄 반사신경이 없을 때까지 모니터링합니다.</li>
		<li>돼지의 머리카락을 제거하고 목과 사타구니의 피부를 살균하여 1.3-1.5 섹션을 위해 합니다. 70%의 에탄올과 베타딘으로 작동 영역을 3배 소독합니다.</li>
		<li>7mm 내막튜브를 돼지 기관체에 넣고 22G 정맥을 귀 베나에 넣습니다.</li>
		<li>돼지를 수술대에 옮기고 척추 위치에 놓습니다. 내막튜브를 호흡보호구에 연결하고 기계적으로 환기(호흡/만료 시간 비율 1:2) 이소플루란(1.5%-2.0% 흡입)과 산소(0.5-1.5 L/min 흡입)를 가진 동물과 함께 한다.</li>
		<li>표면 심전도 및 혈압을 모니터링하고 전기 생리학 기록 시스템을 통해 심박수, 심장 리듬 및 동맥 혈압을 지속적으로 모니터링합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>에코카르디그래피<ol>
<li>돼지를 왼쪽 측면 탈구 위치로 이동하고 테이블에 고정합니다.</li>
		<li>심근 부위에 프로브를 배치하고 2D 및 M 모드 이미징을 포함한 직렬 에코카디오그래피를 수행하여 고해상도 심초음파 시스템과 기준선에서 3-9 MHz 트랜스듀서를 사용하여 세포 이식 전 및 세포 이식 후 8주(보충도 1)를수행한다.</li>
		<li>상용 소프트웨어를 사용하여 얻은 모든 이미지를 분석합니다. LV 종횡확장기치(LVEDD), LV 단변 수축기 치수(LVESD), LV 엔드-수축기 부피(LVEDV), LV 단변 수축부(LVESV), LV 배출 분획(LVEF), 표준 심전도 이미지 후 벽 두께를 계산하여 파라골 긴 축 뷰에서 얻을 수 있다. 참고: 모든 오프라인 분석은 컴퓨터 워크스테이션을 사용하여 다른 독립 작업자에 의해 수행되었습니다. 서로 다른 관찰자 간의 측정 의 가변성은 20 개의 반복된 임의 이미지를 기반으로 4 %였습니다. 모든 심초음파 측정은 미국 에코카르디그래피학 학회 권고에 따라 수행되었습니다.</li>
	</ol></li>
	<li>맥박 조정기 이식<ol>
<li>돼지를 척추 위치로 옮기고 테이블에 있는 돼지의 팔다리를 끈으로 고정합니다.</li>
		<li>경동맥 삼각형(sternocleidomastoid 뒤에 스티로하이드, 디거스근육, 오모효이드로 둘러싸인 후)에서 오른쪽 경동맥과 경정맥을 찾아멸조건하에서 혈전성힘으로 오른쪽 경동맥과 경정맥을분리한다(보충도 2). 오른쪽 경동맥과 경정맥의 말단끝을 리게이트한다. 2-0 비릴로 두 근육을 바느질. 
</li>
		<li>협심증으로 오른쪽 경정맥을 수선하고 X선안내(그림 2)에서오른쪽 심실로 이어지는 심박동기를 삽입한다.</li>
		<li>삼골류와 전방 스케일린 근육을 집게를 사용하여 분리합니다. 두 근육 사이에 맥박 조정기를 이식하고 2-0 실크로 두 근육을 바느질합니다. 페이스 메이커를 리드에 연결합니다.</li>
		<li>이식 후 심박동기 생성기로 VVI 모드(35bpm)를 백업하도록 심박동기를 다시 프로그래밍합니다.</li>
		<li>MI 유도 후 4주 후 심박조율기 발생기로 HF를 유도하기 위해 신속한 심실 진도(150비트/분)를 적용한다. 그런 다음 페이스 메이커를 다시 백업 VVI 모드로 8 주에 설정합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>침습압력볼륨 루프 분석 참고: 세포 이식 전, 세포 이식 후 8주 동안 기준선에서 침습적인 혈역학 적 평가를 수행하여 LV 기능의 변화를 평가합니다.<ol>
<li>대퇴 삼각형에서 올바른 대퇴 동맥과 대퇴 정맥을 분리합니다 (인기구 인대, 사르토리우스 근육 및 보조근에 둘러싸여 있음)(보충 도 2).</li>
		<li>앙고카와 오른쪽 대퇴 동맥을 수강하고 앙미오카트를 통해 동맥에 가이드 와이어를 배치합니다. 앙미카를 제거하고 가이드 와이어의 지도하에 동맥에 9F 칼집을 캐너레이. 가이드와이어를 제거합니다.</li>
		<li>1.4.2 단계에서 설명된 바와 같이 12F 칼집으로 올바른 대퇴정맥을 수분한다. 배치된 12F 칼집에서 열등한 베나 카바(IVC)에 X선 안내하에 풍선 카테터를 삽입합니다.</li>
		<li>PV 신호 프로세서를 사용하여 동위 원소식용염으로 7Fr 압력 볼륨(PV) 카테터를 교정합니다.</li>
		<li>X 선 지침하에 배치된 9F 칼집에서 PV 카테터를 LV 정점에 삽입합니다. 환기를 일시 중단하고 PV 신호 프로세서를 사용하여 좌심실 최대 양압 유도체(+dP/dt), 최종 수축기 압력(ESP), 최종 확장기 압력(EDP)을 측정합니다.</li>
		<li>IVC의 폐색 시 PV 신호 프로세서에 의해 최종 수축기 압력 볼륨 관계(ESPVR)를 측정합니다.</li>
		<li>절차가 완료되면 환기를 다시 시작합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>MI 의 유도<ol>
<li>심실 부정맥을 방지하기 위해 MI의 유도 전에 동물에게 아미오다론 (5 mg / kg 정맥 내 정맥 내) 및 리도카인 (1.5 mg / kg 정맥 볼루스)을 정맥 내 부정맥을 방지하기 위해 정맥 내 부정맥을 예방하기 위해 정맥 내 성비야를 투여합니다.</li>
		<li>1.4.3 단계에서 언급한 바와 같이 8F 칼집으로 올바른 경동맥을 캐너레이트한다.</li>
		<li>표준 C 암 형광술 장비에 의해 유도 배치 된 칼집을 통해 6F JR4 오버 더 와이어 안내 카테터를 통해 관상 동맥 혈관 조영술을 수행합니다.</li>
		<li>왼쪽 일류 관상 동맥(LCX)을 경피성 원형 관상 동맥(PTCA) 팽창 풍선 카테터 인플레이션을 X선지침(그림 2)으로분리하여 첫 번째 난관류 한계 지점에 탈구하였다.</li>
		<li>LCX를 차단하기 위해 풍선 카테터를 통해 10mL 주사기로 제조된 식염수 3mL과 혼합된 700 μm 스폰지 마이크로스피어 의 1mL을 주입한 다음 풍선을 수축시키고 폐색을 확인하기 위해 혈관그램을 수행합니다.</li>
		<li>성공적인 완전한 막힘을 달성하기 위해 주입 절차를 반복합니다.</li>
		<li>동물 심박수와 리듬을 모니터링하여 심장 부정맥을 감지합니다. 심실 세동이 발생하면 외부 의 쌍면 제세동기를 사용하여 150-300 J 충격을 사용하여 부비동 리듬을 재확립하십시오.</li>
	</ol></li>
	<li>줄기 세포 주입<ol>
<li>심장 기능의 주목할만한 손상을 가진 모든 동물을 무작위로 할당 (LVEF & 40% MI의 유도 후 8 주) 두 개의 다른 그룹에: 2 x 108 인간 유도 만능 줄기 세포 유래 메젠키말 줄기 세포의 내트라미니 심근 관리를받을 것이다 하나 (hiPSC-MSC), 그리고 다른 하나는 hiPSC-MSC를받지 않습니다.</li>
		<li>자궁 내 이식을위한 정상 식염수의 2 mL에서 hiPSC-MSC를 준비합니다. 자궁 내 hiPSC-MSC 이식 전에, 항 1.1에 언급 된 마취 및 동물 준비 단계를 반복, 이번에는 정점 비트 영역 주위에 10cm 살균. 4-5늑간 공간에서 레트랙터와 함께 왼쪽 토라코토미를 수행합니다. 경각심을 발휘하여 경각선 벽을 노출합니다. 참고: 절개 길이는 10-12cm였습니다.</li>
		<li>
5-8 개의 내트라미카르원 주사(주사당 ~0.3mL)를 사용하여 한Table of Materials 군또는 다른 그룹에 2 x 108 hiPSC-MSC를 투여하여 배양 배지(재료표)를 투여한다(도 3). 조심스럽게 any 출혈의 위험을 줄이기 위해 관상 동맥에 손상을 피하십시오.
</li>
		<li>철철철로 늑간 공간을 닫고 2-0 실크로 근육 층을 닫습니다. 피하 조직과 피부를 2-0 비릴로 바느질합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>심장 내 프로그래밍 전기 자극<ol>
<li>프로그램 가능한 자극기를 사용하여 프로그래밍된 전기 자극을 수행하여 세포 이식 요법 후 심실 타키야르리듬(VT)의 유도성을 평가합니다.</li>
		<li>모든 동물을 희생하기 전에 대퇴 정맥을 통해 오른쪽 심실 정점에 6F 전기 생리학적 카테터를 삽입합니다.</li>
		<li>표면 심전도 리드 I, II 및 III를 200mm/s의 속도로 전기 생리적 기록 시스템에 표시합니다. 자극기를 사용하여 확장기 임계값의 2배에서 2ms 펄스 폭을 전달합니다.</li>
		<li>두 드라이브 사이클 길이(200ms 및 300ms)에서 8개의 자극(S1)의 속도 열차를 전달한 다음 1개(S2) 또는 2개(S2 및 S3) 조기 추가 자극을 제공합니다.</li>
		<li>심실 유효 내화 기간 또는 부정맥이 유도될 때까지 커플링 간격을 순차적으로 단축한다. 유도 할 수없는 지속 VT (>10 s)의 존재를 유의하십시오.</li>
	</ol></li>
</ol>2. 수술 후 프로토콜
<ol><li>수술 후 의학<ol>
<li>HF에 대한 기존의 약리학적 치료를 수행합니다. 간단히 말해서, 경구로 메토프로롤 간결 (25 mg) 및 라미프릴 (2.5 mg)을 매일 모든 동물에게 투여하십시오.</li>
		<li>근육질으로 엔로플로록사신(5 mg/kg)과 부프레노르핀(0.01 mg/kg)을 수술 후 1주일 동안 모든 동물에게 투여하여 감염을 예방하고 통증을 완화합니다.</li>
		<li>면역학적 거부를 최소화하기 위해, 구두로 스테로이드를 관리 (40 mg/day 구두로) 및 사이클로스 포린 (200 mg/day 구두로) 모든 동물에 3 세포 이식 전에 일 8 주 후.</li>
	</ol>
</li>
	<li>경색 크기 평가<ol>
<li>실험이 끝나면 도미날(펜토바르비탈 나트륨, 100 mg/kg, IV)을 과다 복용하여 동물을 안락사시하십시오.</li>
		<li>가슴을 열고 심장을 수집합니다. 0.9% 식염수로 심장을 헹도 헹도 됩니다.</li>
		<li>LV 횡방향에서 1cm 두께의 메스가 있는 LV 조직 샘플을 연속적으로 절개합니다.</li>
		<li>경색 심근을 포함하는 슬라이스의 일부를 선택하여 벽 두께와 경색 영역을 측정합니다.</li>
		<li>이러한 슬라이스의 이미지를 캡처하고 상업용 이미지 분석 소프트웨어를 사용하여 벽 두께와 경색 영역을 정량적으로 분석합니다.</li>
		<li>한 달 동안 4 °C에서 10 % 포르말린으로 조직을 고정하십시오. 파라핀의 경소 부위(~1cm 2개)에 인접한2 조직을 포함시합니다. 조직학적 검사를 위해 미세 토메를 사용하여 5 μm 슬라이스로 단면.</li>
	</ol>
</li>
	<li>세포 생존<ol>
<li>제조자가 제공하는 프로토콜에 따라 항인간 핵항원(HNA)을 사용하여 면역히스토케미칼 염색에 의해 이식된 세포의 이식을 검출한다.</li>
		<li>각 동물의 5개의 무작위 필드에서 3개의 다른 섹션으로 이미지를 캡처하고 peri-infarct 영역에서 양수 세포를 정량적으로 분석합니다. 참고: 이미지 캡처 시스템 및 이미지 분석 소프트웨어는 하트 섹션의 이미지를 캡처하고 분석하는 데 사용되었습니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Mozaffarian, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+disease+and+stroke+statistics-2015+update%3A+a+report+from+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart disease and stroke statistics-2015 update: a report from the American Heart Association.</a> Circulation. 131, e29(2015).</li>
<li>Hospital Authority. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Hospital+Authority+Statistical+Report+2013%22">Hospital Authority Statistical Report 2013</a>. , Hong Kong. (2013).</li>
<li>Cung, T. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclosporine+before+PCI+in+Patients+with+Acute+Myocardial+Infarction%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Cyclosporine before PCI in Patients with Acute Myocardial Infarction.</a> The New England Journal of Medicine. 373 (11), 1021-1031 (2015).</li>
<li>Liao, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proarrhythmic+risk+of+embryonic+stem+cell-derived+cardiomyocyte+transplantation+in+infarcted+myocardium%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Rhythm%22%5BJournal%5D)">Proarrhythmic risk of embryonic stem cell-derived cardiomyocyte transplantation in infarcted myocardium.</a> Heart Rhythm. 7, 1852-1859 (2010).</li>
<li>Liao, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overexpression+of+Kir2.1+channel+in+embryonic+stem+cell-derived+cardiomyocytes+attenuates+posttransplantation+proarrhythmic+risk+in+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Rhythm%22%5BJournal%5D)">Overexpression of Kir2.1 channel in embryonic stem cell-derived cardiomyocytes attenuates posttransplantation proarrhythmic risk in myocardial infarction.</a> Heart Rhythm. 10, 273-282 (2013).</li>
<li>Liu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thoracic+spinal+cord+stimulation+improves+cardiac+contractile+function+and+myocardial+oxygen+consumption+in+a+porcine+model+of+ischemic+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiovascular+Electrophysiology%22%5BJournal%5D)">Thoracic spinal cord stimulation improves cardiac contractile function and myocardial oxygen consumption in a porcine model of ischemic heart failure.</a> Journal of Cardiovascular Electrophysiology. 23, 534-540 (2012).</li>
<li>Liao, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+of+Myocardial+Function+Following+Catheter-Based+Renal+Denervation+in+Heart+Failure%5BTitle%5D)+AND+%22JACC%3A+Basic+to+Translational+Science%22%5BJournal%5D)">Improvement of Myocardial Function Following Catheter-Based Renal Denervation in Heart Failure.</a> JACC: Basic to Translational Science. 2 (3), 270-281 (2017).</li>
<li>Liao, S. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remodelling+of+cardiac+sympathetic+re-innervation+with+thoracic+spinal+cord+stimulation+improves+left+ventricular+function+in+a+porcine+model+of+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Europace%22%5BJournal%5D)">Remodelling of cardiac sympathetic re-innervation with thoracic spinal cord stimulation improves left ventricular function in a porcine model of heart failure.</a> Europace. 17 (12), 1875-1883 (2015).</li>
<li>Daehnert, I., Rotzsch, C., Wiener, M., Schneider, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+right+ventricular+pacing+is+an+alternative+to+adenosine+in+catheter+interventional+procedures+for+congenital+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Heart%22%5BJournal%5D)">Rapid right ventricular pacing is an alternative to adenosine in catheter interventional procedures for congenital heart disease.</a> Heart. 90 (9), 1047-1050 (2004).</li>
<li>Hála, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tachycardia-Induced+Cardiomyopathy+as+a+Chronic+Heart+Failure+Model+in+Swine%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Tachycardia-Induced Cardiomyopathy as a Chronic Heart Failure Model in Swine.</a> Journal of Visualized Experiments. (132), e57030(2018).</li>
<li>Santoso, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endomyocardial+implantation+of+autologous+bone+marrow+mononuclear+cells+in+advanced+ischemic+heart+failure%3A+a+randomized+placebo-controlled+trial+%28END-HF%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiovascular+Translational+Research%22%5BJournal%5D)">Endomyocardial implantation of autologous bone marrow mononuclear cells in advanced ischemic heart failure: a randomized placebo-controlled trial (END-HF).</a> Journal of Cardiovascular Translational Research. 7, 545-552 (2014).</li>
<li>Traverse, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+Cell+Therapy+Research+Network.+Effect+of+intracoronary+delivery+of+autologous+bone+marrow+mononuclear+cells+2+to+3+weeks+following+acute+myocardial+infarction+on+left+ventricular+function%3A+the+LateTIME+randomized+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular Cell Therapy Research Network. Effect of intracoronary delivery of autologous bone marrow mononuclear cells 2 to 3 weeks following acute myocardial infarction on left ventricular function: the LateTIME randomized trial.</a> Journal of the American Medical Association. 306, 2110-2119 (2011).</li>
<li>Traverse, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+Cell+Therapy+Research+Network+%28CCTRN%29.+Effect+of+the+use+and+timing+of+bone+marrow+mononuclear+cell+delivery+on+left+ventricular+function+after+acute+myocardial+infarction%3A+the+TIME+randomized+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Medical+Association%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular Cell Therapy Research Network (CCTRN). Effect of the use and timing of bone marrow mononuclear cell delivery on left ventricular function after acute myocardial infarction: the TIME randomized trial.</a> Journal of the American Medical Association. 308, 2380-2389 (2012).</li>
<li>de Jong, R., Houtgraaf, J. H., Samiei, S., Boersma, E., Duckers, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracoronary+stem+cell+infusion+after+myocardial+infarction.+A+meta-analysis+and+update+on+clinical+trials%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%3A+Cardiovascular+Interventions%22%5BJournal%5D)">Intracoronary stem cell infusion after myocardial infarction. A meta-analysis and update on clinical trials.</a> Circulation: Cardiovascular Interventions. 7, 156-167 (2014).</li>
<li>Nowbar, A. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DAMASCENE+writing+group.+Discrepancies+in+autologous+bone+marrow+stem+cell+trials+and+enhancement+of+ejection+fraction+%28DAMASCENE%29%3A+weighted+regression+and+meta-analysis%5BTitle%5D)+AND+%22British+Medical+Journal%22%5BJournal%5D)">DAMASCENE writing group. Discrepancies in autologous bone marrow stem cell trials and enhancement of ejection fraction (DAMASCENE): weighted regression and meta-analysis.</a> British Medical Journal. 348, g2688(2014).</li>
<li>Kanelidis, A. J., Premer, C., Lopez, J., Balkan, W., Hare, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Route+of+Delivery+Modulates+the+Efficacy+of+Mesenchymal+Stem+Cell+Therapy+for+Myocardial+Infarction%3A+A+Meta-Analysis+of+Preclinical+Studies+and+Clinical+Trials%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Route of Delivery Modulates the Efficacy of Mesenchymal Stem Cell Therapy for Myocardial Infarction: A Meta-Analysis of Preclinical Studies and Clinical Trials.</a> Circulation Research. 120 (7), 1139-1150 (2017).</li>
<li>Hou, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Radiolabeled+cell+distribution+after+intramyocardial%2C+intracoronary%2C+and+interstitial+retrograde+coronary+venous+delivery%3A+implications+for+current+clinical+trials%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Radiolabeled cell distribution after intramyocardial, intracoronary, and interstitial retrograde coronary venous delivery: implications for current clinical trials.</a> Circulation. 112 (9 Suppl), I150-I156 (2005).</li>
<li>Hu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Large-Scale+Investigation+of+Hypoxia-Preconditioned+Allogeneic+Mesenchymal+Stem+Cells+for+Myocardial+Repair+in+Nonhuman+Primates%3A+Paracrine+Activity+Without+Remuscularization%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">A Large-Scale Investigation of Hypoxia-Preconditioned Allogeneic Mesenchymal Stem Cells for Myocardial Repair in Nonhuman Primates: Paracrine Activity Without Remuscularization.</a> Circulation Research. 118, 970-983 (2016).</li>
<li>Chong, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+embryonic-stem-cell-derived+cardiomyocytes+regenerate+non-human+primate+hearts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Human embryonic-stem-cell-derived cardiomyocytes regenerate non-human primate hearts.</a> Nature. 510, 273-277 (2014).</li>
<li>Martens, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Substantial+early+loss+of+induced+pluripotent+stem+cells+following+transplantation+in+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Artificial+Organs%22%5BJournal%5D)">Substantial early loss of induced pluripotent stem cells following transplantation in myocardial infarction.</a> Artificial Organs. 38, 978-984 (2014).</li>
<li>Shiba, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allogeneic+transplantation+of+iPS+cell-derived+cardiomyocytes+regenerates+primate+hearts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Allogeneic transplantation of iPS cell-derived cardiomyocytes regenerates primate hearts.</a> Nature. 538, 388-391 (2016).</li>
</ol>

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표준 동물 모델은 질병의 병리학 및 메커니즘을 이해하고 새로운 치료법을 테스트하는 것이 가장 중요합니다. 우리의 프로토콜은 왼쪽 경부 동맥 막힘과 빠른 속도에 의해 유도 된 HF의 돼지 모델을 설정합니다. MI의 유도 후 8 주, 동물은 LVEF의 상당한 손상을 개발, LVEDD, LVESD, +dP / dt, 그리고 ESPVR. 이 프로토콜은 또한 심혼 주사에 의하여 심혼 재생을 위한 줄기 세포 치료의 관리 방법을 시험합니다. 경색 크기, 심장 수축기 및 확장기 기능이 평가됩니다. 이 연구는 임상 사례와 유사한 줄기 세포 치료를위한 안정적이고 재현 가능한 전임상 대형 동물 HF 모델을 확립하는 데 도움이됩니다.
LCX 막힘과 급속한 속도는 이전 연구에서 HF의 동물 모델을 만들기 위해 광범위하게 사용되어 왔다7,,8. LCX는 첫 번째 obtuse 한계 지점에 대한 단면이 ...

심혈관 질환, 관상 동맥 질환 (CAD) 특히 홍콩및 전 세계1에서이환율과 사망률의 주요 원인으로 남아 있습니다. 홍콩에서는 2012년부터 2017년까지 병원 당국에 따라 치료된 CAD 환자 수의 26% 증가를예상했습니다. 모든 CAD 중, 급성 심근 경색 (MI)은 심장 마비 (HF)와 같은 사망 및 후속 합병증의 주요 원인입니다. 이들은 중요한 의학, 사회적, 재정적 인 부담에 기여합니다. MI를 가진 환자에서, 혈전 성 요법 또는 1 차적인 경피 관상 동맥 내정간섭 (PCI)는 생명을 보존에 있는 효과적인 치료입니다, 그러나 이 치료는 MI 도중 심근세포 (CM) 손실을 감소시킬 수 있습니다. 유효한 처리는 심장 섬유증, 심근 리모델링, 심장 부정맥 및 결국 심부전으로 이끌어 내는 CMs의 영원한 손실을 보충할 수 없습니다. 1년 후 MI의 사망률은 약 7%이며 20% 이상의 환자가 HF3을개발하고 있다. 말기 HF 환자에서 심장 이식은 유일하게 유효한 치료법이지만 사용 가능한 장기의 부족에 의해 제한됩니다. 새로운 치료법은 MI 이후 HF의 개발을 되돌리기 위해 필요합니다. 그 결과, 세포 기반 치료는 MI 다음 HF에서 손상된 CM을 복구하고 왼쪽 심실(LV) 기능을 개량하는 매력적인 접근법으로 간주됩니다. 우리의 이전 연구는 MI4의작은 동물 모델에서 직접 내트라미니카원 이식 후 심장 기능 개선에 도움이 되는 줄기 세포이식을 발견,5. 표준화된 전임상 대형 동물 HF 프로토콜은 임상 사용 전에 줄기 세포 이식의 효능및 안전성 을 추가로 테스트하는 데 필요합니다.
최근 수십 년 줄기 세포 치료에 대 한 심장 혈관 연구에서 돼지의 광범위 한 사용을 목격 했다. HF 돼지는 심장 크기, 체중, 리듬, 기능 및 관상 동맥 해부학의 관점에서 인간과 유사하기 때문에 번역 연구의 유망한 모델입니다. 더욱이, 돼지 HF 모델은 CM 대사, 전기생리학적 특성 및 허혈성 조건 하에서 신경 내분비 변화의 관점에서 MI 후 HF 환자를 모방할 수 있다6. 여기에 제시된 프로토콜은 이러한 표준화된 돼지 HF 모델을 사용하며, 좌측 순환동맥(LCX)의 폐쇄형 관상 동맥 열구를 사용하고, 이어서 심박동기 이식에 의해 유도된 신속한 속도를 채용한다. 연구 결과는 또한 포스트 MI HF의 처리를 위한 줄기 세포의 심근 관리의 경로를 낙관합니다. 목적은 심각한 CAD를 가진 환자를 위해 임상적으로 관련있는 처리를 개발하기 위하여 이용될 수 있는 만성 심근 경색의 돼지 동물 모형을 생성하는 것입니다.

<table><tbody><tr><td>Amiodarone</td><td>Mylan</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>마취기 및 호흡기</td><td>Dräger</td><td>Fabius plus</td><td></td></tr> <tr><td>XL-Angiocath</td><td>Becton Dickinson</td><td></td> <td>381147-Anti-human</td></tr> <tr><td>nuclear antigen</td><td>abcam ab-ab19118-Axio</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Plus 이미지 캡처 시스템</td><td>Zeiss</td><td>Axioskop 2 PLUS</td><td>Axioskop 2 plus</td></tr><tr><td>AxioVision Rel. 4.5 소프트웨어</td><td>Zeiss</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>-Baytril</td><td></td> Bayer-enrofloxacin <td></td><td></td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Mundipharma</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>CardioLab 전기생리학 기록 시스템</td><td>GE Healthcare</td><td>G220f-Culture</td><td></td></tr> <tr><td>media</td><td>MesenCult</td><td>05420-Cyclosporine</td><td></td></tr> <tr><td></td><td>Novartis</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>제세동기</td><td>GE Healthcare</td><td>CardioServ-Dorminal</td><td></td></tr> <tr><td></td><td>TEVA-</td><td></td><td>-</td></tr><tr><td>심초음파 시스템</td><td>GE Vingmed</td><td>Vivid i-EchoPac</td><td></td></tr> <tr><td>소프트웨어</td><td>GE Vingmed</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>-전기생리학 카테터</td><td>Cordis Corp-</td><td></td><td>-</td></tr><tr><td>Embozene Microsphere</td><td>Boston Scientific</td><td>17020-S1</td><td>700 &뮤; m</td></tr><tr><td>기관내관</td><td>수의사 케어</td><td>VCPET70PCW</td><td>크기 7</td></tr><tr><td>에탄올</td><td>VWR 화학 물질</td><td>20821.33</td><td>-</td></tr><tr><td>포르말린</td><td>시그마</td><td>HT501320</td><td>10%</td></tr><tr><td>IVC 풍선 확장 카테터</td><td>보스턴 사이언티픽</td><td>3917112041</td><td>머스탱</td></tr><tr><td>JR4 안내 카테터</td><td>Cordis Corp</td><td>67208200</td><td>6F</td></tr><tr><td>리도카인</td><td>Quala</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>Mersilk</td><td>Ethicon</td><td>W584</td><td>2-0</td></tr><tr><td>Metoprolol 숙시네이</td>트 <td>Wockhardt</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>Microtome</td><td>Leica</td> <td>RM2125RT-Mobile</td><td></td></tr> <tr><td>C 암 형광 투시 장비</td><td>GE Healthcare</td><td>OEC 9900 Elite-Pacemaker</td><td></td></tr> <tr><td></td><td>St Jude Medical</td><td>PM1272</td><td>Assurity MRI 심박 조율기</td></tr><tr><td>심장박동기 생성기</td><td>St Jude Medical</td><td>Merlln 모델 3330</td><td>-</td></tr><tr><td>압력-볼륨 카테터</td><td>CD Leycom</td><td>CA-71103-PL</td><td>7F</td></tr><tr><td>압력&ndash; 볼륨 신호 프로세서</td><td>CD</td><td>Leycom SIGMA-M-Programmable</td><td></td></tr> <tr><td>Stimulator</td><td>Medtronic Inc</td><td>5328-PTCA</td><td></td></tr> <tr><td>팽창 풍선 카테터</td><td>Boston Scientific</td><td></td><td>H7493919120250 MAVERICK over the wire</td></tr><tr><td>Ramipril</td><td>TEVA-</td><td></td><td></td></tr><tr><td>-Sheath introducer</td><td>Cordis Corp</td><td>504608X</td><td>8F, 9F, 12F</td></tr><tr><td>스테로이드</td><td>대 관절염</td> <td>-</td><td></td></tr> <tr><td>Temgesic</td><td>Nindivior</td> <td>-</td> <td>부프레 노르핀</td></tr><tr><td>정맥 내주 바늘</td><td>TERUMO</td><td>SR + OX2225C</td><td>22G</td></tr><tr><td>Vicryl</td><td>Ethicon</td><td>VCP320H</td><td>2-0</td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Alfasan International BV</td><td>-</td><td>-</td></tr><tr><td>Zoletil</td><td>Virbac 뉴질랜드 제한</td> <td>-</td> <td>tiletamine + zolezepam</td></tr></tbody></table>

줄기 세포 치료를위한 심근 경색 심부전의 돼지 모델 설립

Establishing a Swine Model of Post-myocardial Infarction Heart Failure for Stem Cell Treatment

심근 경색 (MI)에 따라 심부전 (HF)의 치료에 발전이 달성되었지만 MI에 이어 HF는 전 세계적으로 사망률과 이환율의 주요 원인 중 하나입니다. MI 후 심장 수리 및 왼쪽 심실 기능의 개선을 위한 세포 기반 치료는 상당한 관심을 끌고 있다. 따라서, 이러한 세포 이식의 안전성과 효능은 임상 사용 전에 HF의 전임상 대형 동물 모델에서 시험되어야 한다. 돼지는 심장 크기와 관상 동맥 해부학의 관점에서 인간에 그들의 유사성 때문에 심장 혈관 질병 연구에 널리 사용 됩니다. 따라서, 좌측 일경동맥(LCX)의 폐쇄형 관상동맥 폐색을 이용하여 돼지 만성 HF 모델의 확립을 위한 효과적인 프로토콜을 제시하고, 그 다음으로 심박동기 이식으로 유도된 급속한 심실 조도를 제시했다. 8 주 후, 줄기 세포는 peri-infarct 영역에서 내심 내 주분에 의해 관리되었다. 그런 다음 경색 크기, 세포 생존 및 좌심실 기능(에코카피오그래피, 혈역학 파라미터 및 전기 생리학 포함)을 평가하였다. 이 연구는 줄기 세포 치료를위한 안정적인 전임상 대형 동물 HF 모델을 확립하는 데 도움이됩니다.

사망률 총 24마리의 돼지가 이 연구에서 사용되었습니다. 그 중 3명은 지속적인 VT 로 인해 MI 유도 중에 사망했습니다. 한 동물은 상처 출혈로 인해 세포 주입을 위한 개방 심장 수술에서 사망했습니다. 심각한 감염으로 인해 두 마리의 동물이 사망했습니다. 두 마리의 동물은 약간의 EF 감소(LVEF 감소 &gt; 기준선 40%)로 인해 제외되었습니다. 그 결과, 16마리의 동물이 전체 연구 프로토콜을 완료했습니다.
심장 기능 및 리모델링 연쇄 심초음파 검사결과 LVEF는 기준선에서 68.23 ±3.52%에서 39.37 ±3.22%로 크게 감소한 것으로 나타났다. LVEDD는 MI 유도 후 8주 만에 3.6±0.5에서 4.8±0.4로 크게 증가했으며, LVESD는 2.5±0.3에서 3.9±0...

우리는 좌측 경부 동맥 막힘과 세포 기반 치료를 위한 줄기 세포의 심혈 투여의 효과 및 안전성 을 테스트하기 위해 신속한 속도에 의해 유도된 심부전의 돼지 모델을 확립하고자 했습니다.

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major ...

왼쪽 경피 동맥 막힘과 급속한 속도에 의해 유도된 이 돼지 심부전 모델은 심장 재생에 대한 직접적인 내트라미카르디줄기 줄기 세포 주입의 효과를 평가하는 데 사용될 수 있다. 우리의 돼지 식민지 심부전 모델은 매우 안정적입니다. 이 모델의 새로운 경색 크기는 좌심실의 약 16%이며 좌심실 주입 경색은 기준선에서 적어도 40% 감소합니다.실험돼지가 척추 위치에 고정되어 있어 경동맥삼각형에 오른쪽 경동맥과 저글러 정맥을 찾아, 혈전성 집게와 무균 기술을 사용하여 올바른 경동맥과 경정맥을 분리한다. 오른쪽 경동맥과 저글러 정맥의 말단 끝을 리게이트하고 오른쪽 저글러 정맥을 수선하는 앙고카를 사용합니다. 엑스레이 지침에서 오른쪽 심실로 심박동기 리드를 삽입한 후 집계를 사용하여 흉골균증 및 전방 스케일렌 근육을 분리하고 심박조율기를 리드에 연결합니다.그런 다음 두 근육 사이에 맥박 조정기를 이식합니다. 그런 다음 2-0 실크로 두 근육을 닫습니다. 좌심실 기능의 변화를 평가하기 위해, 대퇴 삼각형에서 오른쪽 대퇴동맥과 대퇴정맥을 분리하고, 앙고카와 오른쪽 대퇴동맥을 계산한다.앙고카를 통해 대퇴 정맥에 가이드 와이어를 넣고 안미차제거합니다. 가이드 와이어의 지도하에 대퇴 정맥에 12 개의 프랑스 칼집을 칸테레이트와 가이드 와이어를 제거하십시오. 방금 입증 된 바와 같이 아홉 프랑스 칼집으로 오른쪽 대퇴 동맥을 수있습니다.그리고 X 선 지침에 따라 내부 베나 카바에 12 프랑스어 칼집을 통해 풍선 카테터를 삽입합니다. 압력 볼륨 신호 프로세서로 동위 원소식용염으로 7개의 프랑스 압력 볼륨 카테터를 보정하고 x-ray 지침하에 9개의 프렌치 칼집을 통해 카테터를 왼쪽 심실 정점에 삽입합니다. 환기를 중단하고 압력 볼륨 신호 프로세서를 사용하여 좌심실 최대 및 음압 유도체, 수축기 압력 및 엔드 확장기 압력을 측정합니다.그런 다음 환기를 다시 시작합니다. 심근 경색 유도의 경우, 킬로그램 아미오다론 당 5 밀리그램과 킬로그램 당 1.5 밀리그램의 리도카인 볼루스를 정맥 내 1시간 동안 투여하여 8개의 프렌치 칼집으로 올바른 경동맥을 계산하기 전에 정맥 내 부정맥을 예방합니다. 표준 C 암 형광술에 의해 유도 배치 된 칼집을 통해 여섯 프랑스 칼집 오버 더 와이어 안내 카테터를 통해 관상 동맥 혈관 조영술을 수행합니다.왼쪽 할례 관상 동맥에 폐색은 경피 성 원형 관상 동맥 혈관 성형술 팽창 풍선 팽창 팽창 x 선 지침에서 첫 번째 obtuse 한계 지점에 탈구. 700 마이크로미터 스폰지 마이크로스피어의 1밀리리터를 10밀리리터 주사기에 7밀리리터의 요오헥솔과 혼합하고 풍선 카테터를 통해 혼합물을 주입하여 왼쪽 서쿰플렉스 관상 동맥을 차단합니다. 그런 다음 풍선을 수축시키고 혈관 검사를 수행하여 폐색을 확인합니다.경색 유도 부하 후 8주 후 8번 인간 유도만능 줄기 세포 유래 중간엽 줄기 세포는 정상 식염수 2밀리리터에서 5밀리리터 주사기로 살균하고 마취된 실험 동물의 정점 주위 10cm를 살균한다. 리트랙터를 사용하여 4개 또는 5개의 늑간 간 공간에서 왼쪽 흉부 절제술을 수행하고 심근을 수행하여 경각선 측벽을 노출시합니다. 경색 부위가 보이면, 철철선으로 늑간 공간을 닫고 2-0 비릴 봉합사를 가진 피하 조직 및 피부 층으로 근육 층을 닫기 전에 주입 당 약 300 마이크로 리터의 5 - 8 내 심근 주사를 수행하십시오.세포 치료 후 심실 타키야르 리듬의 유도성을 평가하기 위해, 대퇴 정맥을 통해 오른쪽 심실 정점에 6 개의 프랑스 전기 생리학적 카테터를 삽입하고 표면 심전도 leas I, II 및 III를 초당 200 밀리미터의 속도로 전기 생리 적 기록 시스템에 표시하십시오. 자극기를 사용하여 확장기 임계값의 2배에 달하는 2밀리초 펄스 폭을 전달하고 120밀리초와 300밀리초 구동 사이클 길이 1~2회 조기 자극으로 8개의 자극의 속도 열차를 제공합니다. 이어서 부정맥의 심실 유효 난치성 기간이 유도될 때까지 커플링 간격을 순차적으로 단축하여 유도할 수 없는 지속적인 심실 타키야스맥심피아의 존재를 지적한다.본 대표적인 실험에서, 직렬 심초음파 검사는 좌심실 종횡확장기치와 종단 수축기 치수가 심근 경색 유도 후 8주에서 크게 증가하는 동안 기준선에서 좌심실 배출 분수가 현저히 감소하는 것으로 나타났다. 대조적으로, 좌심실 배출 분수는 현저하게 증가하고 투여 후 8주 후에 세포 이식 군에서 종자 수축기 치수가 현저하게 감소하였다. 음압 유도체 및 종단 수축기 압력 부피 관계는 심근 경색의 유도 후 8주에서 기준선에서 현저히 감소하면서 중간엽 줄기 세포의 심근 투여는 이러한 기능의 증가를 초래하였다.각 동물로부터 5~7개의 직렬 1센티미터 두께의 좌심실 경색을 측정한 결과, 이식 후 8주 동안 광원 부위 주변에 세포 생존이 없었다. 그러나 살아남은 주입 된 줄기 세포의 적은 수는 periinfarct 지역에서 볼 수 있었다. 유도 가능한 지속적인 심실 타키야르 리듬의 사건은 심부전을 가진 동물에서 쉽게 증가할 수 있었습니다.참고로, 줄기 세포 이식은 심실 타키야르 리듬에 대한 감수성을 줄이기 위해 근본적인 심근 기판을 크게 수정하지 않았다. 좌측 정관동맥 막힘으로 부정맥을 유발할 수 있다. ECG를 모니터링하고 즉시 외부 쌍면 제세동기를 사용하여 필요에 따라 부비동을 다시 설정해야 합니다.이 방법은 줄기 세포 기반 치료의 효능을 테스트하기 위한 심부전의 안정적이고 재현 가능한 임상 관련 대형 동물 모델을 제공합니다.

establishing-swine-model-post-myocardial-infarction-heart-failure-for

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

허혈성 심장 마비의 치료를위한 유전자 전달의 방법은 심근 경색의 돼지 모델을 사용하여 설명합니다. 우리 간단하고 재현성 방법은 우리가 쉽게 매우 간단하고 재현성 방법으로 다양한 유전자 전송의 효능을 평가할 수 있습니다.

잠복기 모델에서 허혈성 심장 마비에 대한 유전자 전송

이 프로토콜은 재관류 다음 좌전 하행 동맥 (LAD)의 90 분 폐쇄 가슴 관상 동맥 풍선 폐쇄를 사용하여 돼지의 심근 경색 (MI) 모델에 대해 설명합니다. 또한, 이러한 심장 기능, 혈류 역학, 미세 혈관 저항 및 경색 크기 등 여러 가지 결과 매개 변수에 대한 프로토콜도 제공됩니다.

돼지의 심근 경색 및 기능적 결과의 평가

설치류 모델에서 LAD 결찰에 의한 심근 경색을 치료하는 biograft의 주입은 통상적으로 두 개의 심장 절개 수술을 요구하고있다. 사망률 감소 및 세포와 연관된 고체 및 젤라틴 biomatrices의 정착을위한 최적의 조건을 제공하기 위해, 최소 침습 절차가 개발되었다.

쥐에서 심장 마비에 대한 세포 기반 치료 : 심근 경색에 대한 두 개흉술 및 세포 및 Biomatrix의 심 외막 이식

우리는 심근 세포, 내피 세포, 평활근 세포 및 패치 - 매개 사이토 카인 배달 세포 주입을 조합함으로써 이식 된 세포의 생착을 향상 배송 방법으로 인간 유도 만능 줄기 세포를 구별하기위한 세 가지 신규하고보다 효율적인 프로토콜을 제안한다.

다 능성 줄기 세포는 심근 수리를위한 심장 세포를 유도

이 프로토콜은 지역 이상에서 발생 하지만 이라고 동 면 심근 경색을 생성 하지 않는 만성, 단일 혈관 허 혈의 수술 큰 동물 모델을 선물 한다. 만성 허 혈의 설립, 다음 동물 revascularize 허 혈 성 조직에 펌프에서 리마 젊은이 관상 동맥 바이패스 이식 수술으로 처리 됩니다.

떨어져 펌프 관상동맥 바이패스 접목 수술에 의해 치료 만성 심장 허 혈의 수술 돼지 모델

여기 우리 현재 인간 iPS 세포 cardiomyocytes 기니 돼지 모델에서에서 파생 된 심장 근육 패치 이식 뒤 왼쪽된 심 실 cryoinjury의 유도 대 한 프로토콜.

기니 돼지 모델에서 심근 손상 후 심장 근육 패치 hiPSC 파생의 이식

이 프로토콜은 심부전 모델링하는 경질 마우스의 에피카듐에 3D 생체 인쇄 패치를 이식하는 것을 목표로합니다. 그것은 마취에 관한 세부 사항을 포함, 수술 가슴 개폐, 왼쪽 전방 내림차순 (LAD) 관상 동맥의 영구 결찰 및 심장의 경각진 영역에 생체 인쇄 패치의 적용.

심근 경색의 뮤린 모델에서 3D 생체 인쇄 패치의 이식

현재 연구의 전반적인 목표는 심근 경색 (MI) 및 심근 경색 심부전 (MI 후 HF)의 유도 기술을 폐쇄 가슴, 성인 괴팅겐 미니 피그 및 괴팅겐 미니 피그에서 MI 후 HF 모델의 특성화를 육지 돼지에 비해 제시하는 것입니다.

괴팅겐 미니피그와 랜드레이스 돼지의 폐쇄 가슴 관상 동맥 폐색/재관류 모델의 심근 경색 심부전

허혈성 심장 질환에 대한 심근 유전자 치료는 미래 치료법에 대한 큰 가능성을 가지고 있습니다. 여기에서는 허혈성 심장에서 유전자 치료의 효능을 평가하기 위한 거대 동물 모델을 소개합니다.

허혈성 심장에서 유전자 치료의 효능을 평가하기 위한 거대 동물 모델

생쥐의 심근 경색 부위 주변의 초음파 유도 세포 전달은 안전하고 효과적이며 편리한 세포 이식 방법입니다.

심근 경색 마우스에서 초음파 유도 유도 만능 줄기 세포 유래 심근 세포 이식

본 프로토콜은 돼지 모델에서 심장 활성 치료제를 투여하는 세 가지 방법을 설명합니다. 암컷 재래종 돼지는 (1) 개흉술 및 경심막 주사, (2) 카테터 기반 경심 주사 또는 (3) 경정맥 삼투압 미니 펌프 를 통한 정맥 주입을 통해 치료를 받았습니다.

돼지 심근 경색 모델에서 심장 활성 치료제 전달

학습하세요 심근 경색으로 유도된 돼지 심부전 모델에서 심근내 줄기세포 주사를 이용한 심장 재생 효과를 평가하는 방법을. 이 모델은 세포 기반 치료제의 효능과 안전성을 검증하는 안정적인 플랫폼을 제공합니다.

줄기 세포 치료를위한 심근 경색 심부전의 돼지 모델 설립

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