Name: 단극성 미토틱 스핀들에서 디스크 현미경 검사법에 의한 미세소관 역학 측정 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-11-15T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 31 s
Description: 학습하세요 단극성 미토틱 스핀들에서 디스크 현미경 검사법과 MATLAB 기반 이미지 처리를 활용한 미세소관 역학 분석 방법을. HeLa 세포를 동기화하여 광독성을 줄이고 질병 메커니즘 연구에 활용할 수 있습니다.

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우리는 그들의 전문가 적인 조언 및 지원에 대한 빛 현미경 검사시설, 실험 의학의 막스 플랑크 연구소의 회원들에게 감사드립니다.

1. 헬라 세포의 파종
<ol><li>인산완식염수(PBS)에 5 μg/mL 섬유넥틴 용액 2mL를 준비하고 4개의 잘 챔버된 커버슬립(#1.5)의 각 우물에 450 μL을 추가합니다. 슬라이드를 37 °C 및 5 %CO2에서15 분 동안 배양합니다.</li>
	<li>덜베코의 인산완충식염수(DPBS)로 비동기적으로 성장하는 헬라 세포를 헹구고 트립신-EDTA(0.05%: 0.02%,w:v)로 배양하여 37°C에서 5분 동안 배양합니다. 로스웰 공원 기념 연구소의 추가에 의해 효소 반응을 중지 (RPMI) 1640 중간 보충 10% 열 불활성화 태아 송아지 혈 청 (FCS) 에 3:1 (v:v) 추가 트립신-EDTA의 비율. 참고: HeLa 세포는 37°C 및 5%CO2에서 10% 열 불활성화 FCS로 보충된 RPMI 1640 배지에서 유지되었고, 전술한 바와 같이 80-90% 합류에 도달한 후에 일상적으로 통과되었다.</li>
	<li>노이바우어 챔버를 사용하여 세포 농도를 결정합니다. 1:1(v:v) 비율로 트리판 블루와 셀 서스펜션의 50 μL aliquot를 혼합하고, 다시 중단하고, 챔버 내로 10 μL을 전달한다. 4개의 큰 사각형 안에 있는 트라이판 청음 세포만 카운트합니다(자세한 내용은 Phelan 등47참조). 다음 공식을 사용하여 계수 된 셀 번호에서 세포 농도를 유도하십시오. <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/60478/60478eq1.jpg">
</li>
	<li>300 x g에서 2 분 동안 원심 분리하여 세포를 펠렛. 신선한 RPMI 1640으로 다시 일시 중단하여 1 x 106 세포 / mL을 얻습니다.</li>
	<li>챔버 커버 슬립에서 섬유넥틴을 제거하고, DPBS로 우물을 두 번 씻고, 잘 당 50,000 세포를 시드하십시오.</li>
	<li>챔버된 커버슬립을 세포와 함께 인큐베이터로 되돌리고 37°C 및 5%CO2에서24시간 동안 성장시다.</li>
</ol>2. 헬라 세포에서 pEB3-tdTomato의 발현
<ol><li>1.5 mL 미세 원심 분리튜브를 준비합니다. 각 튜브에 대해, pEB3-tdTomato48의 2 μg를 형질전환 완충제(수성 용액의 합성 제품)로 396 μL의 최종 부피로 희석합니다.</li>
	<li>첫 번째 튜브에 4 μL의 형질 감염 시약 (비 지질, 폴리에틸렌민 함유)을 추가하고 정확히 10 초 동안 혼합물을 즉시 소용돌이치십시오.</li>
	<li>미세 원심 분리기로 튜브를 간단히 회전시키고 실온 (RT)에서 10 분 동안 배양하십시오.</li>
	<li>인큐베이터에서 HeLa 세포를 제거합니다. 드롭와이즈, 4 개의 잘 챔버 커버 슬립의 각 웰에 형질 감염 혼합물의 100 μL을 추가하고, 인큐베이터에 세포를 반환합니다.</li>
	<li>37°C 및 5%CO2에서4시간 배양한 후, 신선한 성장 배지로 세포를 보충하고 37°C 및 5%CO2에서적어도 24시간 동안 배양한다. 참고: 각 세포 유형에 대한 형질 감염 조건을 최적화 할 필요가있다. 단일 MT 성장 끝을 식별할 수 있을 만큼 표현 수준이 충분히 낮아야 합니다. 대안적으로, EB3-tdTomato를 안정적으로 발현하는 세포주가 실험에 사용될 수 있다; 이는 동일한 제제49에서제제 와 세포 들 사이의 EB3-tdTomato의 발현 수준에서 의 가변성을 감소시킬 것이다.</li>
</ol>3. pEB3-tdTomato의 동기화 및 라이브 셀 이미징 - 발현 HeLa 세포
<ol><li>페놀-레드 프리 덜베코의 변형 된 독수리 배지 (DMEM)에 디메틸레나스트론 (DME)의 2.5 μM 용액을 10 % FCS 및 2 mM L-글루타민 또는 대체 글루타민 공급으로 보충하십시오.</li>
	<li>챔버형 커버슬립의 성장 배지를 2.5 μM DME를 함유하는 성장 배지의 500 μL로 교체하고 37°C 및 5%CO2에서세포를 배양한다.</li>
	<li>DME로 3.5 시간 의 인큐베이션 후, 세포를 현미경으로 옮기고, 챔버형 커버슬립을 37°C 및 5%CO2에서이미징을 위한 어두운 패널이 있는 환경 챔버에 장착하고, 총 배양 시간이 4시간될 때까지 추가로 인큐베이션한다. 참고: 변동없이 37 °C에서 온도의 유지는 실험에 매우 중요합니다.</li>
	<li>100x 1.49 N.A. 오일 침지 목표, 이중 방적 디스크 공초점 시스템 및 초점 평면의 지속적인 유지 관리를 위한 신뢰할 수 있는 자동 초점 시스템이 장착된 반전 현미경으로 타임랩스 이미징을 수행합니다. 다음과 같이 이미징 매개 변수를 정의합니다. 참고: 우리는 전자 증식 충전 결합 장치 카메라 (EM-CCD)를 사용합니다.<ol>
<li>EB3-tdTomato 여기의 경우, 200 ms 노출 시간과 561 nm 레이저 라인을 사용합니다. 4중 대역통과(405, 488, 561, 640 nm) 이색 거울과 600/52 nm 방출 필터를 통해 방출된 빛을 수집합니다. 참고: 이미지 채도를 방지하기 위해 각 이미지 셀에 대해 레이저 전력을 조정할 수 있습니다. 여기에 주어진 모든 시간 경과 영화에서 레이저 전력은 5.3 mW로 설정되었습니다.</li>
		<li>단극 유사분열 스핀들의 중심에 해당하는 Z 평면에서 위상 및 초점에서 셀을 찾습니다. 노출 사이에 비닝과 조명없이 총 1 분 동안 0.5 초마다 이미지를 수집합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. U-트랙 v2.2.0을 이용한 MT 역학 분석
<ol><li>MT 역학을 분석하려면 수치 컴퓨팅 환경 소프트웨어가 필요합니다(예: MATLAB). 참고: 소프트웨어에 대한 기본적인 이해는 분석에 충분합니다. 포괄적인 도움말 자료및 자습서는 개발자 웹 사이트(https://uk.mathworks.com/products/matlab/getting-started.html)에서 확인할 수 있습니다.</li>
	<li>다운로드 (https://github.com/DanuserLab/u-track) 및 "Readme_u-track.pdf"파일50,51,52에주어진 자세한 지침에 따라 오픈 소스 U-트랙 v2.2.0 소프트웨어를 설치합니다.</li>
	<li>수치 분석 소프트웨어를 시작하고 소프트웨어 검색 경로에 하위 폴더가 있는 U-Track v2.2.0 폴더를 추가합니다.</li>
	<li>명령 창 에서 호출 "영화선택기". 이는 현미경에서 이미지 수집 소프트웨어에 의해 생성된 원시 파일을 가져올 수 있는 대화 창을 열어줍니다(보충도 1, 도 2, 도 3, 도 4). 참고: U-Track 소프트웨어는 다른 이미지 데이터 형식과 호환됩니다. 그것은 다른 생명 과학 데이터 형식을 인식 하는 바이오 형식을 사용 하 여53.</li>
	<li>각 이미지의 크기는 메타데이터에서 자동으로 읽습니다. 수동으로 영상에 사용되는 목표의 수치 조리개(이 경우 1.49)와 시간 간격(0.5s)을 입력합니다(보조도 1B). 또한, 여기 파장, 형광부 및 노출 시간에 대한 정보도 제공될 수 있지만 추가 분석을 위해 중요하지는 않습니다.</li>
	<li>모든 이미지가 로드되면"영화 목록으로 저장"을선택하여 입력한 타임랩스 시리즈를 동영상 목록으로 저장합니다. 대화 창의 오른쪽에있는"U-트랙" 옵션을 선택하고"계속"(보충 그림 1C)를누릅니다. 참고: 이 값은 HeLa 셀에 최적화되어 있습니다. 다른 세포줄로 전환하는 경우 값을 다시 정의해야 합니다. 또는 소프트웨어 개발자가 권장하는 설정을 사용합니다. 각 매개 변수에 대한 자세한 설명과 매개 변수를 정의해야하는 방법은 소프트웨어의 이전 버전과 함께 제공되는 기술 보고서에서 찾을 수 있습니다, 플러스팁 Tracker50.</li>
	<li>팝업 창에서"마이크로스터플러스-엔드"를선택하고 "확인"(보조 그림 1C)를누릅니다. 새 대화 창을 사용하면 검색, 추적 및 추적 분석인 분석의 세단계(추가 그림 1D)에대한 매개 변수를 결정할 수 있습니다.</li>
	<li>1단계에서는 "설정"을 선택하고 드롭다운 메뉴에서 "혜성 감지"를 감지 방법으로 선택합니다(보조그림 2B).<ol>
<li>새 대화 창으로부터 가우시안 필터와 유역 세분화의 차이에 대한 파라미터를 다음과 같이 정의한다(보조도 2C):검출에 사용할 마스크 공정 =없음; 로우 패스 가우시안 표준 편차 = 1 픽셀; 하이 패스 가우시안 표준 편차 = 3 픽셀; 최소 임계값 = 3개의 표준 편차; 임계값 단계 크기 = 0.25 표준 편차입니다. "모든동영상에 설정 적용"및"적용"을선택합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>2단계에서는 연결, 간격 닫기, 병합 및 분할 및 Kalman 필터 함수에 대한 매개 변수가 분홍색, 녹색 및 파란색으로 강조 표시된 대로 세 단계로 정의됩니다(추가그림 3B). 이러한 단계의 경우 "마이크로스터울 플러스 엔드 다이내믹스"를 선택하고 "설정" 옵션에서 각각 추가 그림 3C-E에표시된 값을 정의합니다.<ol>
<li>차원에 문제가 있는 경우 드롭다운 메뉴에서 "2"를 선택합니다. 최대 간격을 사용하여 닫으려면 = 5프레임; 첫 번째 단계의 최소 트랙 세그먼트 길이 = 3프레임입니다. 이전과 마찬가지로 "모든 동영상에 설정 적용"을선택하고"적용"을클릭합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>분석의 3단계에서, 검출된 MT 트랙은분류된다(보충 도 4). 트랙 분석 방법으로 ,"미세 관 역학 분류"를 선택하고 보충 그림 4B, C에표시된 대로"설정"버튼을 통해 매개 변수를 정의합니다. 그런 다음 "모든 동영상에 설정 적용" 상자를 선택하고"적용"을클릭합니다.</li>
	<li>모든 매개 변수가 정의되면,"제어판 - U-트랙" 창(보충 그림 1D)에서"모든 동영상에 선택 / 선택 취소적용 "을 선택하고 " 모든 영화를실행" 상자를 실행하고 "실행 "를누릅니다. 이렇게 하면 타임랩스 계열의 MT 분석이 시작됩니다.</li>
	<li>동영상 처리가 완료되면 "동영상이 성공적으로 처리되었습니다"라는 메시지가 표시됩니다. "확인"을누르면 "저장".</li>
	<li>이제 수치 분석 소프트웨어를 종료하는 것이 안전합니다. 동영상 처리 의 결과는 원시 파일이 저장되는 폴더의 m 파일로 하위 폴더 구조에 저장됩니다.</li>
</ol>5. MT 역학의 통계 분석
<ol><li>m-파일을 기본 통계 분석 프로그램으로 가져옵니다. 참고: 이 경우 먼저 표준 스프레드시트에서 파일을 가져와 읽을 수 있도록 합니다. m-files에는 다양한 매개 변수(예: 성장 속도, MT 동태도)에 대한 통계 정보(중앙값, 평균 및 표준 편차)가 포함되어 있습니다. 매개 변수의 자세한 목록은 소프트웨어의 이전 버전과 함께 제공되는 기술 보고서에 제공되며, plusTipTracker50,52. 생성된 m-파일은 다른 데이터 처리 소프트웨어로 가져올 수도 있습니다.</li>
	<li>"성장 속도 평균" 매개변수를 선택하고 통계 및 표시를 위해 테이블로 가져옵니다. 새 테이블이나 동일한 그룹화 된 테이블 및 플롯의 새 열에 다른 매개 변수(예: "dynamicity")에 대한 정보를 입력합니다.</li>
</ol>

저자는 공개 할 것이 없다.

여기서, 우리는 Ertych 등44에의해 처음 설립 된 방법의 수정을 설명합니다. 몇 가지 다른 수정과 함께, 우리는 이중 회전 디스크 공초점 이미징MT 역학 분석의이 기술을 결합합니다. 듀얼 스피닝 디스크를 사용하면 증가하는 MT의 해상도를 향상시키는 동시에 광독성36을줄입니다. 우리는 더 긴 파장 형광 리포터로 전환하여 광 표백 및 레이저 광 유도 세포의 손상을 감소시다. tdTomato 형광 단백질은 EGFP46에비해 광안정성및 밝기계수가 더 높습니다. 마지막으로, MT 역학의 측정은 U-Track을 사용하여 후속 분석의 한계로 인해 하나의 Z 평면으로 제한됩니다. U-Track 소프트웨어는 XYZ 축50,51에서형광 라벨이 붙은 MT 팁을 감지하도록 설계되었습니다. 따라서 Z 스택 타임랩스 ...

미세소관 (MTs)은 거의 모든 진핵 세포와 일부 박테리아1에서발견되는 매우 역동적 인 구조입니다. 액틴 및 중간 필라멘트와 함께 세포 골격2,3을조각합니다. 세포 분열4,분자 수송5,6을치는 편모, 1 차 실륨7,청각 (kinocilium)8,9,배아 발생10,11,12,침략 및 전이13,14,심지어 기억 형성15,16,17,18, 그리고 다른 많은 프로세스는 주로 MTs에 의존. 이러한 모든 이벤트에 있는 MTs의 참여는 급속하게 성장 (중합) 및 수축 (탈중합) 사이를 전환하는 그들의 놀라운 능력 없이는 불가능할 것입니다. 이 속성은 동적불안정성 19로설명됩니다. MT 역학은 많은 병리학 적 조건20,21,22에서변경됩니다. 따라서이 속성의 특성을 결정하는 것은 질병 메커니즘과 그 후의 치료를 이해하는 데 도움이 될 수 있습니다.
MT 역학 분석을 위한 방법의 긴 목록은, 대부분은 화상 진찰 기술23에근거를 둔 개발되었습니다. 초기에, 넓은 필드 광 현미경은 시험관 내 의 tubulin 중합체의 형성을 관찰하기 위해 사용되었다24. MT 플러스 엔드에서 수집되는 단자 결합(EB)-단백질의 발견과 형광성 단백질을 표지하는 방법의 개발은 넓은 필드 및 공초점 형광 현미경25,26,27를가진 살아있는 세포에서 직접 MT의 거동을 관찰할 수 있게 하였다. EB-단백질 1개(EB3)는 말단결합 단백질 3(EB3)28; 형광 단백질에 융합된 EB3를 과발현 및 추적함으로써, MT 플러스 엔드 조립속도는 29,30으로결정될 수 있다.
공초점 레이저 스캐닝 형광 현미경 검사법(CLSM)은 MT 역학을 따르기 위해 자주 사용됩니다. 그러나, 이 화상 진찰 기술은 광독성 및 광표백의 고위험, 살아있는 세포 및 희미한 견본 화상 진찰을 위한 2개의 바람직하지 않은 프로세스를 포즈31. 더 나은 신호 대 잡음 비를 얻으려면 레이저 전력과 노출 기간이 충분히 높아야하며 샘플을 손상시키지 않아야하며 속도를 대가로 해상도를 희생해야합니다. CLSM에 적합한 대안은 디스크현미경(32)을회전하는 것입니다. 이 이미징 양식은 핀홀배열을 포함하는 움직이는 디스크로 구성된 Nipkow디스크(33)의사용을 기반으로 하며, 동일한 샘플을 동시에34개시료를 이미징하는 많은 CLS 현미경과 동등하게 작동한다. 따라서 레이저의 빛은 시료의 여러 영역을 동시에 비추지만 공초점 특성을 유지합니다. 따라서 Nipkow 디스크를 사용하면 CLSM과 유사하지만 더 빠르고 레이저 전력을 적게 사용하여 이미지를 얻을 수 있습니다. Nipkow 디스크는 요코가와 일렉트릭에 의해 더욱 개선되었으며, 각 핀홀에 개별적으로 빛을 직접 전달하는 마이크로 렌즈 배열이있는 두 번째 디스크를 도입하여 광독성및 광 표백35를더욱 감소시켰습니다. 따라서, 회전 디스크 레이저 스캐닝 현미경 은 라이브 셀 이미징을위한 선택의 방법이되었고, 고속31,36에서높은 신호 대 잡음 비로 이미지를 얻을 수있게하며, 이는 빠르게 성장하는 MT 끝에서와 같은 신호를 해결하는 데 중요합니다.
MT 역학은 일시적으로 다릅니다. 예를 들어, 유사분열 MT는37,38. 유사하게, 유사하게, 유사하게, 유사하게, 유사하게, 유사하게 증가율 및 수축의 차이는 유사분열39,40과같은 동일한 세포 주기 단계 내에서도 관찰되었다. 따라서 잘못된 데이터 수집을 방지하기 위해 MT 역학의 측정은 셀 주기 동안 좁은 시간 창으로 제한되어야 합니다. 예를 들어, 프로메타상에서의 MT 역학의 측정은 모터 키네신 Eg541을 억제하고 양극성 유사분열스핀들(42)의형성을 방지하는 모나스트랄 유사체인 디메틸레나스트론(DME)으로 세포를 처리함으로써 달성될 수 있다. Eg5 억제제 DME 및 다른 모나스트랄 유도체와 함께 프로메타상에서 세포의 억제는 MT 역학43,44,45에영향을 미치지 않으며, 이는 DME를 고정 및 살아있는 세포 모두에서 MT 역학을 연구하는 데 유용한도구(44)로만든다.
여기에서 우리는 Ertych 등44에 의해 기술된 prometaphase 세포에 있는 MT 역학 분석의 방법을 이중 회전 디스크 화상 진찰을 결합합니다. 이 방법을 사용하면 광표백과 최소한의 광독성 없이 단일 초점 평면에서 수집된 전미상 세포에서 MT 역학을 측정할 수 있습니다. 또한, 형광 리포터로서, 녹색 형광 단백질(EGFP)에 비해 밝기와 광안정성을 향상시키고 저에너지라이트(46)로흥분하는 탠덤 디머 토마토 형광 단백질(tdTomato)을 사용합니다. 따라서 tdTomato는 여기를 위해 레이저 전력을 덜 필요로하며 광독성이 적습니다. MT 역학 분석에 필요한 광독성을 줄이고 분해능 및 후처리를 개선하여 방법을 더욱 개선합니다. 또한 다른 동기화 기술과 결합하여 메서드를 향후 수정할 수 있는 기반을 만듭니다.

<table><tbody><tr><td>Dimethylenastron</td><td>Merck</td><td>324622</td><td></td></tr><tr><td>DMEM w/o 페놀 레드</td><td>Gibco</td><td>31053-28</td><td></td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Gibco</td><td>14190-094</td><td></td></tr><tr><td>소 태아 혈청</td><td>Biochrom</td><td>S0415</td><td></td></tr><tr><td>Fibronectin 소 플라즈마</td><td>Merck</td><td>F4759</td><td>멸균 분말</td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Gibco</td><td>35050-038</td><td>안정 글루타민 치환</td></tr><tr><td>jetPRIME</td><td>Polyplus</td><td>114-15</td><td></td></tr><tr><td>EB3-TdTomato</td><td>Addgene</td><td>plasmid #50708</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640</td><td>Gibco</td><td>61870-010</td><td></td></tr><tr><td>Trypan Blue</td><td>Merck</td><td>T8154-20ML</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin/EDTA solution</td><td>Biochrom</td><td>L2143</td><td>0.05%/0.02 % w/o 칼슘 및 마그네슘</td></tr><tr><td>&micro;- 슬라이드</td><td>Ibidi</td><td>80426</td><td>#1.5 커버슬립이 있는 4웰 슬라이드</td></tr><tr><td>Eclipse Ti 도립 현미경</td><td>Nikon</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>대물렌즈</td><td>Nikon</td><td>MRD01991</td><td>CFI Apo TIRF 100xC 오일</td></tr><tr><td>ACAL 레이저 Excahnger</td><td>Nikon</td><td></td><td>레이저 상자.405, 458, 488, 514, 561 및 647nm</td></tr><tr><td>회전 디스크 모듈</td><td>Andor</td><td>CSU-W</td><td></td></tr><tr><td>카메라</td><td>Andor</td><td>iXon Ultra 888</td><td></td></tr><tr><td>환경 챔버</td><td>Okolab</td><td></td><td>CO2 공급, 온도 제어 및 가습기가 장착된 암실</td></tr><tr><td>HeLa Cells</td><td>DSMZ</td><td>ACC-57</td><td></td></tr><tr><td>NIS Elements v4</td><td>Nikon</td><td></td><td>회전 디스크 현미경. 수집 소프트웨어</td></tr><tr><td>MATLAB</td><td>Mathworks</td><td></td><td>컴퓨팅 환경</td></tr><tr><td>Prism 8</td><td>GraphPad</td><td></td><td>통계 분석 및 표시 소프트웨어</td></tr></tbody></table>

단극성 미토틱 스핀들에서 디스크 현미경 검사법에 의한 미세소관 역학 측정

Measurement of Microtubule Dynamics by Spinning Disk Microscopy in Monopolar Mitotic Spindles

우리는 살아있는 세포에 있는 microtubule 역학을 결정하기 위하여 확립된 방법의 수정을 기술합니다. 이 프로토콜은 마이크로소관(tdTomato 형광 단백질로 표시된 EB3)의 양성 말단과 회전 디스크 공초점 현미경을 사용하여 고속, 고해상도, 라이브 셀 이미징에 대한 유전자 부호 인코딩 된 마커의 발현을 기반으로합니다. 세포 주기 동기화 및 미세소관의 증가 된 밀도는 유사분열 세포에서 중추 분리를 억제함으로써 달성되며, 성장 분석은 오픈 소스 U-Track 소프트웨어를 사용하여 수행됩니다. 밝고 적색 이동형 형광 단백질을 사용하여 낮은 레이저 파워와 함께 디스크 현미경 검사법에 필요한 노출 시간을 줄여 광독성과 빛으로 인한 유물의 확률을 감소시입니다. 이것은 표준 배양 조건의 성장 배지에서 세포를 유지하면서 동일한 제제에서 더 많은 수의 세포를 이미징할 수 있게 한다. 분석은 감독된 자동 방식으로 수행되므로 통계적으로 강력하고 재현 가능한 결과를 제공합니다.

도 1A에설명된 주어진 프로토콜에 따라, pEB3-tdTomato 플라스미드는 비동기적으로 성장하는 HeLa 세포에서 일시적으로 발현되었다. 세포는 DME 처리를 통해 프로메타상에서 형질전환 후 48시간 동기화되었다(도1B). 이 단계는 MT 역학의 측정이 항상 세포 주기의 동일한 단계에서 수행되었다는 것을 보장했습니다. 타임랩스 동영상은 보충 문서50, 51,52에설명된 대로 U-Track v2.2.0으로 추가로 처리 및 분석되었습니다. 플러스 엔드 결합 단백질은 MT 성장 단계만을 추적하지만, U-Track v2.2.0은 순차적 성장 단계를 연결하고 전체 궤적26,<sup class="xref...

여기에서 우리는 살아있는 세포 회전 디스크 공초점 현미경 검사법 및 MATLAB 기지를 둔 심상 처리를 사용하여 prometaphase에서 동기화된 세포에 있는 microtubule 역학 분석의 강력하고 상세한 방법을 제시합니다.

We describe a modification of an established method to determine microtubule dynamics in living cells. The protocol is based on the expression of a ...

여기서 제시하는 것은 프로메타단계에서 동기화된 세포에서 라이브 셀 방적 디스크 공초점 이미징을 사용하여 미세tubule 역학을 분석하는 강력하고 간단한 방법이며, 이후 MATLAB 기반 플랫폼에서 이미지를 분석합니다. 회전 디스크 현미경 검사법과 함께 적변형 단백질을 사용하면 광독성이 줄어듭니다. 따라서, 더 많은 수의 셀이 동일한 준비 내에서 이미지화될 수 있다.미세 투골 역학은 많은 수의 병리학 적 조건에서 변경됩니다. 따라서, 그 프로세스에 있는 microtubule 역학의 규정 그리고 행동을 이해하는 것은 우리가 질병의 기계장치를 이해하는 것을 도울 수 있고, 결국, 그(것)들을 보상하기 위하여 치료를 개발하는 것을 도울 수 있습니다. 그리고 이 방법은 또한 확장가능하므로 잠재적으로 약물 발견 노력에 적용될 수 있습니다.이 방법은 형광 비동기화 프로토콜을 변경하고 세포 주기의 상이한 단계에서 세포를 획득하여 변형될 수 있다. 이것은 microtubules에 대하여 약을 검열하고 분할 및 비 분할 세포에 결함을 확인할 때 유용할 수 있습니다. 각 셀 유형에 대한 전환 프로토콜 및 시드 밀도를 최적화할 필요가 있습니다.EB3의 발현 수준은 단일 성장하는 마이크로투블러를 검출하기 위해 낮어야 합니다. DPBS에서 비동기적으로 성장하는 HeLa 세포를 헹구는 것으로 시작한 다음 섭씨 37도에서 트립신-EDTA로 5분 동안 배양합니다. 3 대 1 비율로 10 %의 열 비활성화 FCS로 보충 RPMI-1640 매체를 추가하여 트립시니화를 중지, 추가 트립신-EDTA.원고 방향에 따라 세포의 농도를 계산하고, 50, 000 세포를 준비된 챔버 커버슬립의 각 웰에 계산한다. 커버슬립을 인큐베이터에 반환하고, 섭씨 37도, 이산화탄소 5%에서 24시간 동안 세포를 성장시다. 다음 날, 인큐베이터에서 세포를 제거하고, 드롭 와이즈는 각 우물에 100 마이크로 리터의 형질 혼합물을 추가합니다.세포를 인큐베이터로 되돌리고 4시간 동안 배양한 후 세포를 신선한 배지로 보충하고 20시간 동안 추가로 배양합니다. 10%FCS와 2밀리몰러 L-글루타민으로 보충된 페놀 레드 프리 DMEM에서 디메틸렌스트론(dimethylenastron) 또는 DME의 2.5 마이크로몰라 용액을 준비합니다. 챔버 커버슬립의 성장 배지를 DME 성장 배지로 대체하고 세포를 인큐베이터로 되돌려 보입니다.3.5시간의 배양 후 챔버 커버슬립을 섭씨 37도, 이산화탄소 5%로 설정하여 현미경으로 세포를 옮기고, 이미징을 위한 어두운 패널을 장착한다. 그런 다음 총 4 시간 동안 인큐베이션을 계속하십시오. 100X, 1.49 숫자 조리개, 오일 침수 목표, 듀얼 디스크 공초점 시스템 및 신뢰할 수 있는 자동 초점 시스템으로 반전된 현미경으로 시간 경과 이미징을 수행합니다.텍스트 원고에 설명된 대로 이미징 매개 변수를 정의합니다. 단극성 미토틱 스핀들의 중심에 대응하는 Z 평면에 세포를 찾아서 초점을 맞춥니다. 그런 다음 총 1분 동안 5초마다 이미지를 획득하고, 비닝이 없고 노출 사이에 조명이 없습니다.먼저 수치 분석 소프트웨어를 로드하고 명령 창에서 영화 선택기 GUI라고 하는 소프트웨어 검색 경로에 u-track V2.0 폴더를 추가합니다. 그런 다음 이미지 수집 소프트웨어에 의해 생성된 원시 파일을 가져옵니다. 수동으로 목표의 숫자 조리개와 이미징에 사용되는 시간 간격을 입력합니다.모든 이미지가 로드되면 동영상 목록으로 저장하고 대화 창 오른쪽에 있는 U-track 옵션을 선택하여 입력된 타임랩스 시리즈를 영화로 저장합니다. 팝업 메뉴에서 microtubule 플러스 끝을 선택하고 새 대화 창을 열어 분석의 세 단계의 매개 변수를 결정하는 확인을 클릭합니다. 1단계의 경우 설정을 클릭하고 드롭다운 메뉴에서 혜성 탐지를 선택합니다.원고에 설명된 대로 가우시안 필터와 분수령 분할의 차이에 대한 매개변수를 정의합니다. 그런 다음 모든 동영상에 적용 설정을 선택하고 적용을 클릭합니다. 2단계의 경우 마이크로튜브 플러스 엔드 역학을 선택하고 텍스트 원고에 따라 설정 옵션을 사용하여 연결, 갭 클로징, 병합 및 분할 및 Kalman 필터 함수의 값을 정의합니다.치수 문제의 경우 드롭다운 메뉴에서 2개를 선택하고 최대 간격을 닫을 수 있도록 5프레임을 사용하고 첫 번째 단계에서 최소 트랙 세그먼트 길이에 3프레임을 사용합니다. 이전과 마찬가지로 모든 동영상에 설정 적용을 선택하고 적용을 클릭합니다. 3단계의 경우 마이크로튜블러 역학 분류를 트랙 분석 방법으로 선택하고 설정 단추를 통해 매개변수를 정의합니다.영화의 시작과 끝에 트랙을 제거하고 통계 히스토그램을 만들기 위해 상자를 선택합니다. 드롭다운 목록에서 전방 간격 전에 2~3프레임, 전방 갭 속도 분포의 95번째 백분위수를 사용하여 앞뒤로 재분류할 수 있습니다. 모든 매개 변수가 정의되면 모든 동영상에 확인/선택 취소를 선택하고 컨트롤 창 U-track 창에서 모든 동영상 상자를 실행한 다음 실행을 누릅니다.동영상 처리가 완료되면 메시지가 표시됩니다. pEB3-tdTomato 플라스미드는 HeLa 세포에서 일시적으로 발현되었다. 세포는 DME 처리와 동기화되었습니다.미세수염 성장의 시간 경과 영화를 분석하고, 결과 성장 속도와 역학을 플롯했다. 최대 갭 길이 및 최대 수축 계수와 같은 분석에 영향을 미치는 매개 변수는 동일한 시간 경과 동영상 집합에 대해 수정되었습니다. 성장 속도와 역학의 해당 값을 계산했습니다.결과 성장 속도는 크게 영향을 받지 는 않았지만 최대 갭 길이가 수정되었을 때 역학이 달랐습니다. 세 가지 경우 모두, 마이크로튜블러 서브트랙의 검출은 유사했지만, 최대 갭 길이가 15로 설정되었을 때 전체 MT 궤적의 재구성은 대부분 영향을 받았다. 이미징 조건이 미세투하 거동을 방해했는지 여부를 평가하기 위해 타임랩스 시리즈의 첫 번째 및 두 번째 반쪽을 별도로 분석하고 해당 성장 속도 및 역학을 비교했습니다.예상대로, 중요한 차이점이 감지되지 않았습니다. 세포가 프로메타단계에서 동기화되기 때문에 미세 투덜의 밀도가 매우 높다는 것을 명심하는 것이 중요합니다. 따라서 다른 마이크로튜블러를 잘못 식별하지 말고 분석의 매개 변수를 매우 신중하게 설정해야 합니다.이 방법을 사용한 미세 tubule 역학의 측정은 마이크로 튜블러를 직접, 간접적으로 조절하는 다른 생물학적 표적의 연구와 비교할 수 있습니다.

measurement-microtubule-dynamics-spinning-disk-microscopy-monopolar

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

이 비디오에서는 적절한 완충액이 있는 커버슬립 표면에서 자라는 미세소관을 시각화하기 위한 간섭 반사 현미경(IRM) 기술에 대해 설명합니다. 입사광을 이용한 조명 시, 커버슬립-버퍼 인터페이스와 버퍼-미세소관 인터페이스는 빛을 반사하며, 이 두 인터페이스가 결합되어 간섭 패턴을 생성함으로써 미세소관을 밝은 배경에 대한 고대비 이미지로 시각화할 수 있습니다.

미세소관 역학의 Label-free 시각화를 위한 간섭 반사 현미경 검사

미세 소관은 본질적으로 불안정 폴리머, 그리고 성장과 단축 사이에 자신의 전환 확률 통제하기가 어렵습니다. 여기에서 우리는 photoablatable 안정 캡으로 분할 미세 소관을 사용하여 프로토콜을 설명합니다. 분할 된 미세 소관 해중합함으로써 분해 미세 소관의 끝 동작의 분석을 지원, 높은 공간적 해상도로 트리거 될 수 있습니다.

분해 미세 소관 엔드에 힘 입어 모션을 연구하기 위해 분단 미세 소관의 준비

HUVEC(Human Umbilical Vein Endothelial Cell) 배양을 위한 프로토콜, 형광 표지된 미세소관 성장 마커의 일시적 형질주입, 생세포 이미징 및 간기 미세소관 성장 역학의 자동 분석에 대해 자세히 설명합니다.

고해상도 시간 경과 이미징 및 생활 인간 제대 정맥 내피 세포의 미세 소관 역학의 자동 분석

유사분열 방추체의 조립 및 위치는 미세소관 역학, 운동 단백질 및 가교제에 의해 생성된 결합된 힘에 따라 달라집니다. 여기에서 우리는 구형 에멀젼 방울의 기하학적 구속이 기본 유사 분열 방추체의 상향식 재구성에 사용되는 최근에 개발 된 방법을 제시합니다.

구형 에멀젼 방울의 기본 유사 분열 스핀들의 재구성

효모 신진 인해 강력한 유전학과 미세 소관 세포 골격의 단순함에 생체 내 미세 소관 역학 연구를위한 유리한 모델입니다. 다음 프로토콜 변환 및 문화 효모 세포, 공 초점 현미경 이미지를 수집하고, 정량적으로 효모 살아있는 세포에서 미세 소관 역학을 분석하는 방법에 대해 설명합니다.

고해상도 이미징 및 개인 별이 미세 소관 역학의 분석 신진 효모에서

이 프로토콜은 시험관 내 표면 분석법을 사용하여 미세 소관의 무, 고대비, 고속 이미징을 위한 표준 형광 현미경에 간섭 반사 현미경 을 구현하기 위한 가이드입니다.

마이크로소관의 라벨이 없는 고속 이미징을 위한 간섭 반사 현미경 검사법 구현

여기에서 우리는 스핀들 형성 및 유사분열 진행의 역학을 평가하기 위한 프로토콜을 제시합니다. 타임랩스 이미징을 적용하면 사용자가 유사분열의 다양한 단계에서 세포를 식별하고, 유사분열 결함을 추적 및 식별하며, 항 유사분열 약물에 노출될 때 스핀들 역학 및 유사분열 세포 운명을 분석할 수 있습니다.

미토틱 스핀들 교란에 따른 메타페이즈 타이밍 및 세포 운명의 역학을 평가하기 위한 라이브 셀 이미징

이 프로토콜은 EB3 단백질 트랜스퍼션에 의한 마이크로튜블러 플러스 엔드 시각화에 전념하여 1차 세포 배양에서 그들의 역동적인 특성을 연구합니다. 이 프로토콜은 헌팅턴병 환자로부터 얻은 인간 1차 피부 섬유아세포에 구현되었다.

인간 1차 피부 섬유아세포를 기반으로 한 헌팅턴 병 모델의 마이크로튜블러 플러스 엔드 다이내믹스 시각화

여기서, TIRF 현미경 기반 시험관내 재구성 분석법이 제시되어 두 미세소관 집단의 역학을 동시에 정량화하고 비교한다. 가교된 미세소관 다발 및 단일 미세소관 상에서 다수의 미세소관-관련 단백질의 집단 활성을 동시에 보는 방법이 기술된다.

TIRF 현미경에 의한 시험관 내에서 가교 및 단일 미세 소 관 의 역학의 동시 시각화

여기에서는 시험관 내에서 미세소관 다발을 재구성하고 동시 광학 트래핑 및 전반사 형광 현미경을 사용하여 그 안에 가해지는 힘을 직접 정량화하는 프로토콜을 제시합니다. 이 분석은 활성 미세소관 네트워크 내에서 단백질 앙상블에 의해 생성된 힘과 변위의 나노스케일 수준 측정을 허용합니다.

재구성된 활성 미세소관 다발 내의 힘을 직접 측정

차동 동적 현미경 (DDM)은 동적 광산란과 현미경의 기능을 결합합니다. 여기서, DDM을 사용하여 비멘틴 네트워크에서 입자의 서브확산 및 케이징된 역학을 정량화함으로써 재구성된 세포골격 네트워크를 특성화하는 과정과 활성 미오신 구동 액틴-미세소관 복합체의 탄도 운동이 제시된다.

차등 동적 현미경을 사용하여 세포 골격 역학 정량화

학습하세요 단극성 미토틱 스핀들에서 디스크 현미경 검사법과 MATLAB 기반 이미지 처리를 활용한 미세소관 역학 분석 방법을. HeLa 세포를 동기화하여 광독성을 줄이고 질병 메커니즘 연구에 활용할 수 있습니다.

단극성 미토틱 스핀들에서 디스크 현미경 검사법에 의한 미세소관 역학 측정

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