Name: 기관 절제술을 통해 동맥 내 혈압 모니터링 및 환기를 사용하여 마우스에서 뇌 사멸 유도 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-04-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 3 s
Description: 학습하세요 마우스 뇌사 유도 모델을 통해 장기 이식에서 면역 반응과 병태생리학적 변화를 분석하는 방법을. 동맥 카테터 삽입과 기관 절개술을 활용하여 혈압을 모니터링하고 뇌사 후 면역 마커 상향 조절을 연구합니다.

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동물 실험은 국립 의학 아카데미에서 준비하고 국립 보건원에 의해 출판 된 실험실 동물의 치료 및 사용을위한 국립 의학 연구 학회및 가이드에 의해 공식화 된 실험실 동물 관리의 원칙에 따라 수행되었다 (NIH 간행물 No. 86-23, 개정 1985). 모든 실험은 오스트리아 교육과학문화부(BMWF-66.011/0071-II/3b/2012)의 승인을 받았습니다.
1. 동맥 카테터화
<ol><li>케타민과자일라진(10)의 복강 내 주사와 국소 실습에 따른 진통제(예: 부프레노르핀)로 마우스를 마취시다.  뒷다리를 집게로 꼬집어 마취의 정확한 깊이를 확인합니다. 참고: 본 연구에서는 8-12주 미만의 남성 C57BL/6N 마우스를 사용하였다(체중 20-25 g). 저자는 같은 나이의 남성 BALB / C를 성공적으로 테스트했지만 다른 균주를 시도하지 않았습니다 (토론 참조).</li>
	<li>전기 면도기로 관심 부위(머리, 목)에서 머리카락을 제거합니다. 상처 오염을 방지하기 위해 느슨한 머리카락이 남아 있지 않은지 확인하십시오. 그 후 70 % 에탄올 / 클로르헨시딘 / 베타 딘으로 수술 부위를 소독하고 외과 의사를 향한 머리와 마우스 척추를 놓습니다.</li>
	<li>해부 가위로 자궁 경부 중간 선 절개를합니다.</li>
	<li>일반적인 경동맥을 노출시키기 위하여 하악골과 목 근육 조직을 해부하고 그(것)들을 분리합니다. 집게를 통해 주로 무딘 해부를 사용합니다.</li>
	<li>세 개의 8-0 배치 오른쪽 공통 경동맥 아래 실크 합자.</li>
	<li>근위 합자에 클램프를 놓고 동맥에 긴장을 가져 와서 흐름이 중단되도록하십시오.</li>
	<li>가장 말단 합자를 닫습니다.</li>
	<li>절개의 두개골 측면에 작고 미리 형성 된 피부 구멍을 통해 동맥 카테터를 삽입하십시오. 카테터가 너무 커서 혈액 역류를 줄이지 못하면 카테터의 내강을 짜고 변형시. 세 합자 모두 고정합니다.</li>
	<li>탈구를 피하기 위해 카테터를 피부에 고정시하십시오. 카테터를 미리 형성된 피부 구멍 부위의 피부에 연결하는 봉합사(예를 들어, 5-0 모노필라멘트, 비흡수성)를 사용하여 이 작업을 수행합니다.</li>
</ol>2. 기관 절제술
<ol><li>집게를 사용하여 기관 전 근육을 무뚝뚝하게 해부하십시오.</li>
	<li>배치 8-0 실크 합자 아래 기관 아래.</li>
	<li>일방적인 환기를 피하기 위해 가능한 한 근접적으로 마이크로 가위를 사용하여 자양화하십시오. 두 개의 기관 연골 사이의 수평 절단 라인을 사용합니다.</li>
	<li>환기 튜브를 삽입하고 준비된 합자 모두로 고정하십시오. 참고: 기관의 근위 쪽 끝을 결찰할 필요가 없습니다.</li>
	<li>달리는 봉합사 (예 : 6-0 모노 필라멘트, 비 흡수성)로 피부를 닫습니다.</li>
	<li>150/min의 주파수와 200 μL의 조수 부피로 마우스를 환기시다.</li>
</ol>3. 뇌 사멸 유도
<ol><li>마우스를 취약한 위치로 정렬합니다.</li>
	<li>외과 용 가위와 집게를 사용하여 두개골에서 피부를 제거하여 피부를 유지합니다.</li>
	<li>왼쪽 정수리 피질 위에 1mm 구경 시추공을 마비시음질로 드릴링합니다. 내부 컴팩트 뼈와 경막 미더를 위반하기 전에 드릴링을 중지합니다.</li>
	<li>무딘 집게를 사용하여 두개골의 최종 조직 다리를 관통하여 날카로운 모서리를 제거합니다.</li>
	<li>풍선 카테터를 삽입하여 두개골 구멍 내에 완전히 넣습니다. 풍선이 식염수로 미리 채워져 있고 모든 공기가 배출되었는지 확인하십시오.</li>
	<li>주사기 펌프의 도움으로 10-15 분 (총 부피 0.8-1.2 mL)의 기간 동안 ~ 0.1 mL / min에서 인플레이션을 시작합니다. 참고 : 마우스는 근진근, 근막증, 추가 발작 활동 및 고뇌 가스를 나타낼 것입니다.</li>
	<li>마우스의 꼬리가 뻣뻣해지고 세워진 후 마우스 뇌가 죽은 것으로 발음합니다. 참고 : BD는 특징적인 초기 혈압 피크 (쿠싱 반사), 뇌간 반사 및 자발적 호흡의 부재에 의해 확인됩니다. 쥐는 산소의 부족으로 인해 순환 불안정이 될 수 있기 때문에 정기적 인 무호흡증 테스트는 실험 중에 피해야한다.</li>
	<li>풍선 카테터의 인플레이션을 중지합니다.</li>
	<li>저체온증을 피하기 위해 마우스 위에 난방 담요를 놓습니다.</li>
</ol>4. BD 기간 중
<ol><li>정기적으로 혈압을 모니터링하고 문서화하십시오. 장기간 저혈압 단계(평균 동맥 압력 [MAP] & 50 mmHg >30 분)를 가진 마우스를 제외하십시오.</li>
	<li>마우스의 혈압을 안정시키기 위해 30분마다 0.1 mL의 식염수를 주입합니다. 참고: 이 연구에서 는 총 0.8 mL의 식염수를 각 마우스에 투여하였습니다.</li>
	<li>BD 지속 시간 4 시간 후, 마우스 장기 /조직을 수확. 실험이 끝날 때 마우스의 심장이 박동하지 않는 경우 실험에서 마우스를 제외합니다.</li>
</ol>5. 샴 절차
<ol><li>1.1-3.3 단계를 수행합니다. 참고: 내부 컴팩트 골격을 열지 마십시오. 풍선 카테터를 삽입하거나 팽창시키지 마십시오.</li>
	<li>마우스 가까이에 머무르고 동물을 지속적으로 관찰하십시오. 반복적으로 마취의 정확한 깊이를 확인하기 위해 집게와 뒷다리를 꼬집는. 마우스가 각성의 징후를 보여주는 경우 피하 (시작 복용량의 약 1/2)를 피하 추가 마취를 적용, 이는, 우리의 경험에, 약 후 발생 2−3 마취 후 시간.</li>
	<li>BD 마우스와 동일한 양의 정맥 식염수를 적용합니다. 참고 : 샴 마우스는 환기의 중단 후 자발적인 호흡을 회복한다. BD 마우스는 그렇지 않습니다. 무호흡증 테스트는 모델을 설정하는 동안 수행해야하지만, 실험 중에 불필요한 생리 적 스트레스로 인해 피해야한다.</li>
</ol>

<ol><li>Hart, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((OPTN%2FSRTR+2017+Annual+Data+Report%3A+Kidney%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">OPTN/SRTR 2017 Annual Data Report: Kidney.</a> American Journal of Transplantation. 19 (Suppl 2), 19(2019).</li>
<li>The Quality Standards Subcommittee of the American Academy of Neurology. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Practice+parameters+for+determining+brain+death+in+adults+%28summary+statement%29%5BTitle%5D)+AND+%22Neurology%22%5BJournal%5D)">Practice parameters for determining brain death in adults (summary statement).</a> Neurology. 45 (5), 1012-1014 (1995).</li>
<li>Terasaki, P. I., Cecka, J. M., Gjertson, D. W., Takemoto, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+survival+rates+of+kidney+transplants+from+spousal+and+living+unrelated+donors%5BTitle%5D)+AND+%22New+England+Journal+Medicine%22%5BJournal%5D)">High survival rates of kidney transplants from spousal and living unrelated donors.</a> New England Journal Medicine. 333 (6), 333-336 (1995).</li>
<li>Pratschke, J., Neuhaus, P., Tullius, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+can+be+learned+from+brain-death+models%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+International%22%5BJournal%5D)">What can be learned from brain-death models?</a> Transplant International. 18 (1), 15-21 (2005).</li>
<li>Wilhelm, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+of+the+heart+by+donor+brain+death+accelerates+acute+rejection+after+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Activation of the heart by donor brain death accelerates acute rejection after transplantation.</a> Circulation. 102 (19), 2426-2433 (2000).</li>
<li>Pomper, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introducing+a+mouse+model+of+brain+death%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">Introducing a mouse model of brain death.</a> Journal of Neuroscience Methods. 192 (1), 70-74 (2010).</li>
<li>Ritschl, P. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Donor+brain+death+leads+to+differential+immune+activation+in+solid+organs+but+does+not+accelerate+ischaemia-reperfusion+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Donor brain death leads to differential immune activation in solid organs but does not accelerate ischaemia-reperfusion injury.</a> Journal of Pathology. 239 (1), 84-96 (2016).</li>
<li>Atkinson, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Donor+brain+death+exacerbates+complement-dependent+ischemia%2Freperfusion+injury+in+transplanted+hearts%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Donor brain death exacerbates complement-dependent ischemia/reperfusion injury in transplanted hearts.</a> Circulation. 127 (12), 1290-1299 (2013).</li>
<li>Oberhuber, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treatment+with+tetrahydrobiopterin+overcomes+brain+death-associated+injury+in+a+murine+model+of+pancreas+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Treatment with tetrahydrobiopterin overcomes brain death-associated injury in a murine model of pancreas transplantation.</a> American Journal of Transplantation. 15 (11), 2865-2876 (2015).</li>
<li>Floerchinger, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+immune+responses+in+a+reproducible+mouse+brain+death+model%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Immunology%22%5BJournal%5D)">Inflammatory immune responses in a reproducible mouse brain death model.</a> Transplant Immunology. 27 (1), 25-29 (2012).</li>
<li>Steen, P. A., Milde, J. H., Michenfelder, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((No+barbiturate+protection+in+a+dog+model+of+complete+cerebral+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Neurology%22%5BJournal%5D)">No barbiturate protection in a dog model of complete cerebral ischemia.</a> Annals of Neurology. 5 (4), 343-349 (1979).</li>
<li>Cooper, D. K., Novitzky, D., Wicomb, W. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathophysiological+effects+of+brain+death+on+potential+donor+organs%2C+with+particular+reference+to+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+the+Royal+College+of+Surgeons+of+England%22%5BJournal%5D)">The pathophysiological effects of brain death on potential donor organs, with particular reference to the heart.</a> Annals of the Royal College of Surgeons of England. 71 (4), 261-266 (1989).</li>
<li>Herijgers, P., Leunens, V., Tjandra-Maga, T. B., Mubagwa, K., Flameng, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+organ+perfusion+after+brain+death+in+the+rat+and+its+relation+to+circulating+catecholamines%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Changes in organ perfusion after brain death in the rat and its relation to circulating catecholamines.</a> Transplantation. 62 (3), 330-335 (1996).</li>
</ol>

저자는 공개 할 것이 없다.

다기관 기증자의 동종 이식 품질에 대한 위험 인자인 BD는 생체 내 모델을 사용하여 충분히 평가할 수 있는 병리생리학적 변화의 과다를 수반합니다. 혈역학적 변화, 사이토카인 폭풍, 호르몬 변화 및 장기 이식의 질과 생존에 대한 궁극적인 영향은 시험관 내에서 분석될 수 없다4. 면역학적 연구뿐만 아니라 기본적인 이식의 대다수는 마우스 모형에서만 널리 이용가능한 정교한 진단 공구에 달려 있습니다. 마우스 모델은 이미 BD 관련 연구7,,8,,9에서다양한 새로운 통찰력을 이끌어 냈습니다.
반면 20세기에 BD 연구를 위한 첫 번째 모델은 개코원숭이, 개 및 돼지11,,12에서</sup...

이식은 현재 말기 장기 부전을 위한 유일한 치료 처리입니다. 지금까지 뇌사(BD) 환자는 장기 기증의 주요 원천이었지만, 순환사 후 의기양양한 기증과 기증은 귀중한대안1. BD는 돌이킬 수없는 혼수 상태에 의해 정의된다 (알려진 원인), 뇌 줄기 반사 및 무호흡증의 부재2. 불행히도, BD 기관은 인간 백혈구 항원(HLA)과 무관하게 장기간 이식 생존에서 열등한 결과를 보여준다-불일치 및 감기 허혈시간3. 한편, 이 항원 독립적 인 위험 인자에 대한 집중적 인 연구는 BD의 결과로 매개 된 병리 생리학적 변화의 세 가지 주요 측면인 혈역학, 호르몬 및 염증성4의결과로 수행되었습니다.
현재까지 설치류의 실험BD 모델은 주로 쥐를 사용하여 수행되었습니다. BD 다음 고체 기관에 대한 면역학적 결과에 대한 더 큰 통찰력을 얻기 위해, 우리는 현재 마우스 모델만이 유전 적 또는 면역 학적 인자에 대한 포괄적 인 조사를 허용하기 때문에 BD의 뮤린 모델을 확립하는 것을 목표로했습니다. 이러한 맥락에서 마우스 시스템은 더 다양한 분석 도구를 제공합니다.
여기에 설명된 바와 같이 BD 유도의 원리는 두개골 아래에 삽입된 풍선 카테터의 인플레이션에 의해 유도된 두개내 압력의 증가에 기초한다. 증가된 두개내 압력은 뇌의 관류를 차단함으로써 BD의 생리적 기전을 모방, 소뇌, 뇌줄기5,,6. 말초 장기의 충분한 관류를 보장하기 위해, 혈압 측정은 절차 중에 의무적이다. 이러한 목적을 위해 동시에 사용되는 카테터는 유체 치환에 의해 혈압을 안정시키기 위해 식염수 투여를 위한 역할을 한다. BD는 자발적인 호흡의 중단을 동반하기 때문에, 충분한 환기가 보장되어야 합니다. 전기 담요는 생리적 코어 체온을 유지합니다.
요약하면, 이 모델은 BD 유도 상해의 영향에 대한 심층적 인 연구를 가능하게 할 것이다, 백혈구 이동에7,칭찬 활성화8,허혈성 재관류 부상9,및 기타 요인.

<table><tbody><tr><td>동맥 카테터 (BD Neoflon 26G)</td><td>BD</td><td>391349</td><td></td></tr><tr><td>혈압 변환기 (APT300)</td><td>Harvard Apparatus Inc.</td><td>73-3862</td><td></td></tr><tr><td>Fogarty 동맥 색전 절제술 카테터 N&deg; 3</td><td>Edwards Lifesciences Corporation</td><td>120403F</td><td></td></tr><tr><td>집게</td><td>FST</td><td>11271-30</td><td></td></tr><tr><td>유연한 프로브가 있는 동종 담요 시스템</td><td>Harvard Apparatus Inc.</td><td>55-7020</td><td></td></tr><tr><td>Ketansol</td><td>Graeub</td><td>6680110</td><td></td></tr><tr><td>마이크로 가위</td><td>FST</td><td>15018-10</td><td></td></tr><tr><td>바늘 홀더</td><td>FST</td><td>12060-02</td><td></td></tr><tr><td>Prolene 5-0</td><td>Ethicon</td><td>8698H</td><td></td></tr><tr><td>펌프 11 Elite 주입 전용 단일</td><td>Harvard Apparatus Inc.</td><td>70-4500</td><td></td></tr><tr><td>가위</td><td>FST</td><td>14075-11</td><td></td></tr><tr><td>입체 현미경</td><td>Olympus</td><td>SZX7</td><td></td></tr><tr><td>Transpore Tape</td><td>3M</td><td>1527-1</td><td></td></tr><tr><td>Underpads</td><td>Molinea.A</td><td>274301</td><td></td></tr><tr><td>마우스 용 인공 호흡기 (MiniVent 모델 845)</td><td>Harvard Apparatus Inc.</td><td>73-0043</td><td></td></tr><tr><td>자일라솔</td><td>그라릉</td><td>7630109</td><td></td></tr></tbody></table>

기관 절제술을 통해 동맥 내 혈압 모니터링 및 환기를 사용하여 마우스에서 뇌 사멸 유도

Brain Death Induction in Mice Using Intra-Arterial Blood Pressure Monitoring and Ventilation via Tracheostomy

순환기 죽음 후에 살아있는 기증 및 기증둘 다 기관 이식을 위한 대체 기회를 제공하는 동안, 기증자 뇌사 후에 기부 (BD) 아직도 고체 이식을 위한 중요한 근원을 나타냅니다. 불행히도, 뇌 기능의 돌이킬 수없는 손실은 혈역학뿐만 아니라 호르몬 변형을 포함한 여러 병리생리학적 변화를 유도하는 것으로 알려져 있으며, 마침내 전신 염증 반응으로 이어진다. 생체 내에서 이러한 효과의 체계적인 조사를 허용 하는 모델은 부족. 우리는 동종 이식 품질에 BD의 파괴적인 효력에 조사를 도울 수 있던 BD 유도의 murine 모형을 제시합니다. 일반적인 경동맥을 통한 동맥 내 혈압 측정을 구현하고 기관 절제술을 통해 신뢰할 수 있는 환기를 실시한 후, BD는 풍선 카테터를 사용하여 두개내 압력을 꾸준히 증가시킴으로써 유도된다. BD 유도 후 4 시간, 장기 분석 또는 추가 이식 절차에 대 한 수확 될 수 있습니다. 우리의 전략은 뮤린 모델에서 기증자 BD의 포괄적 인 분석을 가능하게, 따라서 고체 장기 이식에 BD 관련 효과의 심층적 인 이해를 허용하고 잠재적으로 최적화 된 장기 사전 컨디셔닝에 길을 포장.

뮤린 BD 모델은 90% 이상의 성공률로 100회 이상 성공적으로 수행되었습니다. 추가적으로, 심장과 신장의 사후 내정간섭 기관 이식은 안전하게7을수행되었습니다.
BD는 이 모형을 사용하여 추가조사될 수 있는 다양한 병리생리학적 변화를 유도한다. 그림 1에도시된 바와 같이, 혈압은 초기 고혈압 피크를 나타내고 그 뒤에 장기간 의 저혈압 단계를 나타낸다. 저혈압의 해로운 생리적 효과를 피하기 위해, 장기간 불충분 한 혈압을 가진 마우스 (MAP &lt; 50 mmHg 이상 30 분) 제외 되었다.
또 다른 잘 확립 된 관찰은 BD 유도 면역 체계의 활성화에 이르게...

우리는 고체 기관 이식의 맥락에서 기관뿐만 아니라 연속적인 이식에 대한 병리 생리적 영향의 영향을 평가하기 위해 뇌 사멸 유도의 뮤린 모델을 제시합니다.

While both living donation and donation after circulatory death provide alternative opportunities for organ transplantation, donation after donor brain ...

기증자 두뇌 죽음 후에 기증은 고체 기관 이식을 위한 주요 근원이더라도, 두뇌 기능의 돌이킬 수 없는 손실은 전신 선동적인 반응으로 이끌어 내는 병리생리학적 인 변경을 유도합니다. 뇌 사멸 유도의이 뮤린 모델은 뇌 죽음 조절의 경로를 연구하기 위해 분석 도구와 녹아웃 모델의 큰 다양성을 사용할 수 있습니다. 페달 반사에 대한 반응의 부족을 확인하고 상복부 모발을 제거 한 후 동맥 카테터화의 경우, 70 %에탄올로 노출 된 피부를 소독하고 해부 가위를 사용하여 피부에 중간 선 개개를 만듭니다.집게를 사용하여, 무딘 하복부 땀샘과 목 근육 조직을 해부하고 일반적인 경동맥을 드러내기 위하여 조직을 분리합니다. 세 가지 8-0 배치 오른쪽 일반적인 경동맥 아래에 실크 합자 및 근위 합자에 클램프를 배치합니다. 흐름이 일시 중단되도록 동맥에 긴장을 가져와 서 가장 단면 합자 닫습니다.절개의 두개골 측면에 작은 미리 형성 된 피부 구멍을 통해 26 게이지 동맥 카테터를 삽입합니다. 루멘이 너무 커서 역류를 줄이고 세 봉합사로 카테터를 고정한 다음, 흡수할 수 없는 5-0 모노필라멘트를 사용하여 미리 형성된 피부 구멍 근처의 피부에 카테터를 고정시십시오. 기관 절제술을 수행하려면 집게를 사용하여 정차 성 근육을 무디게하고 두 개의 8-0을 배치합니다. 기관 아래에 실크 합자.두 기관 연골 사이에 환기 튜브를 삽입하여 일방적인 환기를 피하고 준비된 합자 로 튜브를 고정한 다음 6-0 monofilament 비흡수성 달리기 봉합사로 피부를 닫고 분당 150개의 주파수와 200 마이크로리터의 조력 부피로 마우스를 환기시하십시오. 실험동물에서 뇌사를 유도하기 위해 마우스를 경향이 있는 자세로 배열하고, 포셉으로 피부를 잡고, 외과 가위를 사용하여 두개골에서 피부를 제거합니다. 1밀리미터 의 캘리퍼 시추공을 왼쪽 정수리 피질 위로 심하게 뚫고 무딘 집게를 사용하여 두개골의 최종 조직 다리를 관통합니다.날카로운 가장자리를 제거한 후, 모든 공기가 대피한 식염수로 미리 채워진 풍선 카테터를 삽입합니다. 카테터가 완전히 두개골 구멍 내에 있는 경우 주사기 펌프를 사용하여 10~15분 동안 분당 약 0.1밀리미터로 카테터를 팽창시 시작합니다. 뇌사가 발생하면 풍선 카테터의 인플레이션을 멈추고 저체온증을 피하기 위해 마우스 위에 가열 담요를 놓습니다.뇌 사망이 확인된 후, 정기적으로 혈압을 모니터링하고 문서화하여 30분마다 100마이크로리터의 식염수를 주입하여 동물의 혈압을 안정시합니다. 뇌 사멸 4 시간 후, 심장을 구타하지 않고 동물을 배제하고 표준 프로토콜에 따라 마우스 장기와 관심의 조직을 수확. 뇌-죽음 유도 후, 혈압은 장기간 된 저혈압 단계에 선행된 초기 고혈압 피크를 전시합니다.또 다른 잘 확립 된 관찰은 뇌 죽음 유도 면역 체계의 활성화로 이어진다는 것입니다. 실제로, 이 모형에 있는 두뇌 죽음의 4 시간 후에, 면역 마커의 기관 특정 업 규제는 mRNA 수준에서 관찰됩니다. 뇌 사멸의 미리 정의된 기간 후에, 기관은 그들의 직접적인 분석 또는 후속 기관 이식을 위해 수확될 수 있습니다.이 모델은 뇌 사멸 유발 부상의 영향에 대한 심층 연구를 가능하게하고 이미 활성화 및 백혈구 이동을 보완하기 위한 새로운 통찰력을 밝혔습니다.

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Research

연구

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Neuroscience

신경과학

환풍기 유도 폐 손상에 대한 murine 모델은 급성 폐 손상을 연구하는 중요한...

마우스의 급성 폐 상해를 유발하는 압력 제어 환기

심근 국소 빈혈 및 허혈성 preconditioning에 대한 murine 모델은 중요한 도구 연구 cardioprotective...

마우스의 관상 동맥 폐색에 대한 한깅 무게 시스템의 사용

perioperative 그리고 중요한 치료 관련 급성 신장 손상에 대한 강력한 모델이 제공됩니다. 그것이 거의 임상 아키의 histologic 및 기능 변경 내용을 복제할 수 있습니다 심장 마비에 의해 유도 온 몸이 hypoperfusion을 사용합니다.

Normothermic 심장 마비와 심폐 소생술의 : 국소 빈혈 - Reperfusion 상해의 마우스 모델

이 비디오는 자연 뇌사를 모방하여 풍선 카테터를 통해 제어된 두개내압을 증가시켜 마우스 모델에서 뇌사를 유도하는 절차를 보여줍니다.

풍선 카테터를 사용한 마우스 모델에서 뇌사 유도

이 비디오는 마우스 모델에서 오른쪽 총경동맥을 차단하고 마우스를 저산소 환경에 노출시켜 혈전성 뇌졸중을 복제하는 절차를 보여줍니다. 이 과정은 뇌로 가는 혈액과 산소의 흐름을 감소시켜 혈전 형성과 뇌 손상을 유발합니다.

마우스 모델에서 저산소증 및 허혈을 통한 혈전성 뇌졸중 유도

윌리스 천공의 관내 서클 지주막 하 출혈의 표준화 된 마우스 모델을 설명한다. 선박 천공 및 지주막 하 출혈은 두개 내 압력 모니터링에 의해 모니터링된다. 또 각종 중요한 파라미터는 기록 및 생리적 조건을 유지하도록 제어된다.

지주막 하 출혈의 생쥐 모델

이 문서에서는 마우스에 심폐 바이패스를 수행 하는 방법을 설명 합니다. 이 새로운 모델은 장기 손상에 관여 하는 분자 메커니즘의 조사를 촉진할 것 이다.

마우스 모델에서 심폐 바이패스: 새로운 접근

여기에 제시된 프로토콜은 폐쇄형 흉부 카테터 삽입을 사용하여 동일한 동물의 우심실과 좌심실에서 압력-부피(PV) 루프를 생성하여 마우스의 뇌실 심장 기능을 평가하는 프로토콜입니다. 초점은 수술 및 데이터 수집의 기술적 측면에 있습니다.

생쥐의 폐쇄 흉부 카테터 삽입에 의한 심장 기능 및 압력-부피 루프의 양심실 평가

본 연구는 세 가지 다른 폐 기증 모델(뇌사 후 기증, 순환 후 사망 기증, 출혈 후 쇼크 기증)의 확립을 보여줍니다. 이러한 사건과 관련된 염증 과정과 병리학적 장애를 비교합니다.

폐이식을 위한 실험적 장기기증 모델 연구

이 프로토콜은 소생을 위해 흉부 압박이 필요하지 않은 질식 심정지의 고유한 마우스 모델을 보여줍니다. 이 모델은 심정지 및 소생술 중 뇌 생리학의 역학을 모니터링하고 이미징하는 데 유용합니다.

허혈 및 소생술 중 뇌 영상 및 뇌 생리학 모니터링을 위한 마우스 심정지 모델

제안된 설정은 쥐와 쥐의 3D 흉부 움직임에 대한 제어된 기계적 환기 및 자기 공명 영상을 허용합니다. 우리는 이 설정을 사용하여 기계적 환기로 인한 호흡근 기능 장애의 기저에 있는 병태생리학을 연구했습니다.

기계 환기된 마우스와 쥐의 호흡 운동에 대한 3D Cine 자기 공명 영상

학습하세요 마우스 뇌사 유도 모델을 통해 장기 이식에서 면역 반응과 병태생리학적 변화를 분석하는 방법을. 동맥 카테터 삽입과 기관 절개술을 활용하여 혈압을 모니터링하고 뇌사 후 면역 마커 상향 조절을 연구합니다.

기관 절제술을 통해 동맥 내 혈압 모니터링 및 환기를 사용하여 마우스에서 뇌 사멸 유도

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