Name: 마우스에서 하복부 장기 및 뒷다리의 시투 폐쇄 회로 관류 에 설립 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-08-13T12:30:00.000+00:00
Duration: 5 min 27 s
Description: 학습하세요 마우스 하복부 장기의 시투 폐쇄 회로 관류 기법을 통해 약물 전달 및 면역 상호작용을 연구하는 방법을. 이 기술은 방광, 전립선, 생식기 등의 장기 관류가 가능합니다.

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연구 결과는 DS, 약학 ADR 종자 교부금 프로그램의 Skaggs 학교에 NIH 교부금 CA194058에 의해 지원되었습니다 (DS); 중국 국립자연과학재단(교부금 제31771093), 지린성 국제협력프로젝트(20180414085GH), 중앙대학의 기초연구기금, JLU 과학기술혁신연구팀 프로그램(2017TD-27, 2019TD-36).

여기에 설명 된 모든 방법은 콜로라도 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인되었습니다.
1. 관류 시스템을 예열
<ol><li>도 1A의맞춤형 구성에 도시된 바와 같이 모든 수자 성분(난투저수지, 습한 챔버 및 뚜껑)에 대해 37°C 순환 수조를 시작하여 수술 전에 관류 시스템을 준비한다. 튜브가 깨끗하고 필요한 경우 교체하십시오. 난투 부피를 제한하려면, 난투 저수지로 습한 챔버 내에서 버블 트랩을 사용(도 1B-6).</li>
</ol>2. 혈관 카테터라이제이시
<ol><li>이소플루란 수의 마취기를 사용하여 8-10주 된 BALB/c 마우스에서 마취를 유도하여 3-5%의 이소플루란 및 산소 유량0.3 L/min에서 방출을 유도한다. 대안으로, 케타민 /자일라진 또는 다른 유형의 관음증을 사용하십시오. 발가락 핀치와 각막 반사 : 2 가지 방법으로 마취의 깊이를 평가합니다.</li>
	<li>4-0 실크 봉합사를 바늘로 두 번 증류한 물에 미리 웨트합니다.</li>
	<li>마취 된 마우스를 스티로폼 보드에 척추 위치에 놓고 머리가 외과 의사를 마주하고 앞다리와 뒷다리를 테이프로 고정하십시오. 이소 프로필 알코올로 복부를 닦고 가위로 "T"모양의 중간선을 따라 복부를 잘라냅니다. 전기 응고 (소작)에 의해 절개 가장자리 주위에 출혈을 중지합니다.</li>
	<li>복부 대동맥, 베나 카바, 일반적인 일리악 및 일리오룸바 동맥과 정맥을 드러내기 위해 복부의 오른쪽으로 위, 제주넘 및 결장.</li>
	<li>해부 현미경하에서, 찾아서 4-0 실크 봉합사를 사용하여 여성의 난소 동맥/정맥 및 일리오룸바 동맥/정맥에서 일리오룸바 동맥/정맥을 찾아리게한다(그림 2 노란 선).</li>
	<li>해부 현미경하에서, 복부 대동맥 과 열등한 베나 카바 아래에 있는 2개의 4-0 실크 봉합사(일강 동맥 및 정맥 위 약 1cm, 1mm 간격, 도 2)를반복하고, 일악 혈관에 가장 가까운 봉합사에서 느슨한 매듭을 만듭니다(그림2,흰색 점선). 또는 이 매듭에 6-0 실크 봉합사를 사용할 수 있습니다.</li>
	<li>해부 현미경의 밑에, 수평으로 정렬하고 포르트 아이길레와 열등한 베나 카바와 복부 대동맥 둘 다 스트레칭합니다. 24G 날개 차폐 I.V. 카테터를 사용하여 복부 대어타에 구멍을 뚫고 버튼을 눌러 바늘 코어를 철회하고 카테터를 용기에 약 5mm 삽입하십시오.<ol>
<li>열등한 베나 카바를 가지고 동일한 절차를 반복하고 카테터화된 용기 주변에 두 봉합사의 매듭을 묶는다. 참고 : 바늘은 혈관을 통해 쉽게 구멍을 뚫을 수 있습니다. 따라서 혈관을 뻗어 있고 바늘을 용기와 평행하게 유지하십시오. 바늘이 혈관안으로 약 1mm 침투하자마자 바늘 코어를 철회합니다. 복부 대자는 열등한 정맥 카바 아래에 있으며 결합 조직에 둘러싸여 있기 때문에 훨씬 얇고 탄성이 있습니다. 따라서, 대르타는 카테터에 "붙들"수 있으며, 따라서 카테터가 미끄러질 가능성을 줄이기 위해 베나 카바 전에 카테터를 카테터화해야 한다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>즉시 접착제를 적용하여 카테터를 발기 척추에 고정시키고 복부 장기를 교체하고 마취를 유지하면서 수술을 종료합니다. 참고: 복강으로 완전히 대체될 수 없는 장기는 관류 과정에서 관류 배지로 주기적으로 적축되어야 합니다.</li>
</ol>3. 관류 시스템 설정
<ol><li>마우스를 실리콘 패드의 37°C로 예동된 워터 재킷 습한 챔버로 옮기고 19G 바늘로 카테터 날개를 패드로 고정시합니다.</li>
	<li>동맥 카테터의 끝(입구)을 예동 관류 버퍼(링거의 젖산 용액이 5% BSA로 보충됨)로 채운 다음, 나사 온커넥터(그림 1B,빨간 화살표)를 사용하여 카테터 끝을 입구 관류 튜브와 연결합니다. 참고: 카테터를 움직이지 않도록 커넥터를 용혈성 집게로 잡고 테이프로 튜브를 고정합니다.</li>
	<li>연동 유량을 0.6 mL/min으로 조정하고 관류유출(도 1B,파란색 화살표)을 5-10분 동안 열어 정맥 카테터를 통해 혈액을 씻어낸다. 콘센트 카테터에 혈전이 있을 것입니다. 관류 회로를 닫기 전에 응두부 버퍼로 혈전을 플러시합니다.</li>
	<li>정맥 카테터의 끝을 나사 온 커넥터를 사용하여 콘센트 튜브와 연결하여회로(그림 1B)를닫습니다. 이 시점에서CO2 가스 안락사를 수행하고 흉부 천자 또는 기타 방법으로 확인하십시오.</li>
	<li>촉촉한 챔버를 따뜻하게 한 뚜껑으로 덮습니다. 주기적으로 퍼퓸 수준을 확인하고 필요한 경우 더 추가합니다. 관류는 최대 2시간 동안 수행될 수 있습니다. 참고: 폐쇄된 관류 시스템을 설정하려면 5mL의 난투가 필요합니다. 누출이나 부종이 없는 경우, 난투의 부피가 1mL 미만으로 감소하고 추가 버퍼가 필요하지 않습니다. 말초 순환 혈전에 의해 유도된 부종을 피하기 위해, 0.002%의 헤파린을 함유한 관류 완충액은 관류의 처음 10분 동안 사용될 수 있지만, 절개 가장자리에서 누출을 피하기 위해 헤파린 없이 버퍼로 변경되어야 한다.</li>
	<li>필요한 경우, 언제든지 관류 저장소 또는 주입 포트에 선택의 시약을 추가(그림 1B-5). 예를 들어, 10 mg/mL Hoechst33342의 10 μL은 관류가 끝나기 전에 세포 핵 2h를 얼룩지게 하기 위해 난투에 첨가될 수 있으며, 또는 50 μL의 1 mg/mL DyLight 649-렉틴을 첨가하여 혈관 내피 세포를 30분 전에 염색할 수 있다. 참고: Hoechst 용액으로 골수를 더럽히기 위해 마우스를 수술 30분 전에 미리 주입해야 합니다.</li>
	<li>형광 시약이 풍부해진 후, 배경 형광을 최소화하기 위해 10 분 동안 관혈 버퍼로 씻어 내보도록하십시오.</li>
</ol>4. 인연기관의 분석
<ol><li>고환, 전립선, 방광, 대퇴골, 근육 및 피부 (예 : 발)를 포함한 장기를 수집합니다. 약 1mm3의 오르간 조각을 소비하고 두 개의 유리 슬라이드 사이에 평평하게합니다.<ol>
<li>DAPI/Cy5 여기 및 방출 필터를 사용하여 반전형 형광 공초점 현미경하에서 연구 (흥분 레이저 : DAPI, 405 nm; Cy5,640 nm). 0.45 숫자 조리개와 함께 최소 200배 배율 목표를 사용합니다.</li>
		<li>또는, 24시간 포름알데히드 용액4%로 장기를 수정하고 헤마톡시린-에신 염색19를수행한다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>그대로 골수 관찰을위한 뼈 창을 만들려면, 대퇴골 또는 경골의 양쪽 끝을 고정하고 19 G 바늘의 측면 가장자리로 피질 뼈를 긁어 내어 음경을 노출합니다. 잔류 뼈의 얇은 층을 유지하기 위해주의하십시오. 위에서 설명한 대로 DAPI 및 Cy5 채널을 사용하여 반전된 형광 공초점 현미경으로 유리와 이미지를 향한 창이 있는 덮개 슬립에 뼈를 놓습니다. 골수 구멍의 세포 및 혈관 망을 쉽게 관찰할 수 있다.</li>
</ol>

<ol><li>Ghaidan, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ten+year+follow-up+of+lung+transplantations+using+initially+rejected+donor+lungs+after+reconditioning+using+ex+vivo+lung+perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiothoracic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Ten year follow-up of lung transplantations using initially rejected donor lungs after reconditioning using ex vivo lung perfusion.</a> Journal of Cardiothoracic Surgery. 14 (1), 125(2019).</li>
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</ol>

저자는 공개 할 것이 없습니다.

설명된 회로는 각종 연구 질문, 예를 들어 약물 전달에 있는 상이한 혈청 성분 및 조직 장벽의 역할, 또는 면역 및 줄기 세포 밀매를 탐구하기 위하여 이용될 수 있다. 상이한 약물 전달 시스템(예를 들어, 리포솜 및 나노입자)은 전달에서 생리학적 및 생화학적 인자의 역할을 이해하기 위해 서두자에 첨가될 수 있다. 관류의 지속 기간은 연구 된 조직, 과학적 목표 및 perfusate의 구성에 따라 다를 수 있습니다. 우리는 여기에 젖산과 알부민링의 용액으로 구성된 기본 관류 매체를 사용하여 2 h까지 관류의 결과를 제시합니다. 본 작업의 목적은 최적의 기관/조직 기능 및 산소화를 지원하기 위해 관류 배지 및 조건을 개발하고 최적화하는 대신 관류 회로를 확립하는 것이었다는 점에 유의해야 한다. 영양소, 비타민, 호르몬 및 혈액세포의 첨가는 이전 문헌에서 광범위하게 조사되었으며, 수많은 관류 미디어 및 산소화 프로토콜은 인간 및 동물조직에서수십 건의 연구 간행물에서 기술되어7,</s...

고립 된 기관 관류는 원래 이식에대한 장기 생리학을 연구하기 위해 개발되었다1,2,,3,다른 신체 시스템에서 간섭없이 장기의 기능에 대한 이해를 가능하게. 예를 들어, 고립 된 신장과 심장 관류는 혈역학의 기본 원리와 혈관 활성제의 효과를 이해하는 데 대단히 유용했지만, 간 관류는 건강하고 병은 조직4,,5,,6,,7에서약물 대사를 포함한 대사 기능을 이해하는 데 중요했다. 또한, 관류 연구는 이식을 위한 장기의 생존력과 기능을 이해하는 데 중요했습니다. 암 연구에서, 고립 된 종양 관류는 마우스, 쥐 및 갓 절제 된 인간 조직을 사용하여 여러 그룹에 의해 설명되었다8,,9. 일부 고립된 종양 관류에서, 종양은 난소 지방 패드에 이식되어 간질동맥(10)으로부터혈관을 공급하는 종양의 성장을 강요했다. Jain 그룹은 종양 혈역학 및 전이를 이해하기 위해 결장 아데노시스종의 고립 된 관류를8사용하여 선구적인 연구를 수행8,11,,12,,13. 다른 혁신적인 엔지니어링 된 ex vivo 설정은 주요 인간 다발성 골수종 세포(14)를 배양하는 96 웰 플레이트 기반 관류 장치와 골수 아키텍처 및 기능 연구를 엔지니어링하기위한 모듈식 유동챔버를 포함한다.
생리학 및 병리학 연구 이외에, 기관 관류는 약 납품의 기본 원리를 공부하기 위하여 이용되었습니다. 따라서, 한 그룹은 이식된육종16에서분리된 쥐 사지 관류를 설명하고 리포솜의 축적을 연구한 반면, 다른 그룹은나노입자(17)의내피 표적을 연구하기 위해 해부된 인간 신장 관류를 수행하였다. Ternullo 외. 가까운 생체 내 피부 약물 침투 모델로 고립 된 인체 피부 플랩을 사용 하 여18.
큰 장기와 조직의 관류에 있는 이 발전에도 불구하고, 마우스에 있는 situ perfusion 모형에 에 아무 보고도 없었습니다: a) 간, 비장 및 신장과 같은 통관 기관을 우회합니다; b) 골반 장기를 포함, 피부, 근육, 생식 기관 (남성), 방광, 전립선과 골수. 이러한 장기의 작은 크기와 공급 혈관으로 인해, 전 생체 캐닝 및 관류 회로의 설립은 실현 가능하지 않았습니다. 마우스는 암 과 면역학 연구, 및 약물 전달에서 가장 중요한 동물 모델입니다. 작은 마우스 기관을 인퍼퓨즈하는 능력은 골반 (방광, 전립선, 난소, 골수)에 이식 된 종양을 포함하여 이러한 장기에 대한 약물 전달에 관한 흥미로운 질문뿐만 아니라 이러한 장기의 질병의 기본 생리학 및 면역학에 대한 연구를 허용합니다. 이 결핍을 해결하기 위하여는, 우리는 잠재적으로 조직 상해를 피할 수 있고 고립된 기관 관류 보다는 기능적인 연구에 훨씬 더 적합한 마우스에 있는 시투 관혈 회로를 개발했습니다.

<table><tbody><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3.5x-90x 스테레오 줌 현미경 붐 스탠드에 LED 조명</td><td>Amscope</td><td>SKU: SM-3BZ-80S</td><td></td></tr><tr><td>이산화탄소, USP</td><td>Airgas 헬스케어</td><td>19087-5283</td><td></td></tr><tr><td>컨포칼 현미경</td><td>NIKON</td><td>ECLIPSE Ti2</td><td></td></tr><tr><td>일회용 멸균 소추 펜, 고온</td><td>FIAB</td> <td>포함F7244</td><td></td></tr><tr><td>습한 챔버 버블 트랩 (그림 1의 6 부)</td> <td>Harvard Apparatus</td><td>733692</td><td>perfisate 용기로 사용자 정의; 또한 일정한 압력 관류 가능</td></tr><tr><td>석영 창이있는 습한 챔버 커버 (그림 1의 3 부)</td> <td>챔버의 온도를 유지</td><td>733524하기위한</td> <td>Harvard Apparatus</td></tr><tr><td>금속 튜브 열교환 기가있는 습한 챔버</td><td>Harvard Apparatus</td><td>732901</td><td>관류액과 마우스 온도를 유지하기 위한 뚜껑이 있는 워터 재킷 습식 챔버</td></tr><tr><td>봉합사 절단기가 있는 Olsen-Hegar 바늘 홀더</td><td>FST(Fine Science Tools)</td><td>125014</td><td></td></tr><tr><td>산소 압축, USP</td><td>Airgas 헬스케어</td><td>C2649150AE06</td><td></td></tr><tr><td>롤러 펌프(그림 4의 파트 1)</td><td>Harvard Apparatus</td><td>730113</td><td>습한 챔버</td></tr><tr><td>의 캐뉼라에 관류액을 전달합니다.SCP plugsys 서보 제어 F/관류(그림 1의 파트 1)</td><td>Purfusion 속도를 제어하는</td> <td>Harvard</td><td>732806</td> Apparatus</tr><tr><td>실리콘 패드</td><td>Harvard Apparatus</td><td></td><td></td></tr><tr><td>실리콘 튜빙 세트(그림 1의 화살표)</td><td>Harvard Apparatus(TYGON)</td><td>733456</td><td></td></tr><tr><td>학생 표준 패턴 집게</td><td>Fine Science Tools(FST)</td><td>91100-12</td><td></td></tr><tr><td>수술용 가위</td><td>Fine Science Tools (FST)</td><td>14001-14</td><td></td></tr><tr><td>습윤 챔버용 표</td><td>Harvard Apparatus</td><td>734198</td><td></td></tr><tr><td>Thermocirculator(그림 1의 파트 2)</td><td>Harvard Apparatus</td><td>724927</td><td>모든 워터 재킷 구성 요소에 대한 순환 수조</td></tr><tr><td>3방향 마개(그림 1의 5부)</td><td>Cole-Palmer</td><td>30600-02</td><td></td></tr><tr><td>수의학 마취기</td><td>Highland</td><td>HME109</td><td></td></tr><tr><td>Materials</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>19-G BD PrecisionGlide 바늘</td><td>BD</td><td>305186</td><td>Insyte Autoguard 날개 바늘을 고정시키고 피질 뼈를 긁는 데 사용됩니다</td></tr><tr><td>4-0 실크 봉합</td>사 <td>Keebomed-Hopemedical</td><td>427411</td><td></td></tr><tr><td>6-0 실크 봉합</td>사 <td>Keebomed-Hopemedical</td><td>427401</td><td></td></tr><tr><td>필터 ( 0.2 & 마이크로; m)</td> <td>ThermoFisher</td><td>42225-CA</td><td>필터 5% BSA-RINGER' S</td></tr><tr><td>영구 마커</td><td>Staedtler</td><td>342-9</td><td></td></tr><tr><td>주사기 (10 mL)</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-823-2E</td><td></td></tr><tr><td>주사기 (60 mL)</td><td>5</td><td></td><td>% BSA-RINGER용 BD 309653 필터 S</td></tr><tr><td>시약</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1% 인산염 완충 식염수(PBS, pH 7.5)에 Evans 블루(w/v) 시</td><td>그마</td><td>314-13-6</td><td></td></tr><tr><td>10% 완충 포르말린</td><td>velleyvet</td><td>36692</td><td></td></tr><tr><td>BALB/c 마우스(8-10주령)</td> <td>Charles River</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Baxter Viaflex lactate Ringer's solution</td><td>EMRN Medical Supplies Inc.</td><td>JB2324</td><td></td></tr><tr><td>소 혈청 알부민</td><td>Thermo Fisher</td><td>11021-037</td><td></td></tr><tr><td>시아노아크릴레이트 접착제</td><td>크레이지 접착제</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DyLight-649-lectin</td><td>Vector Laboratories, Inc.</td><td>ZB1214</td><td></td></tr><tr><td>에탄올 (70% (vol/vol))</td><td>Pharmco</td><td>111000190</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst33342</td><td>Life Technologies</td><td>H3570</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Piramal Enterprises Limited</td><td>66794-017-25</td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수</td><td>Gibco</td><td>10010023</td><td></td></tr></tbody></table>

마우스에서 하복부 장기 및 뒷다리의 시투 폐쇄 회로 관류 에 설립

Establishing In Situ Closed Circuit Perfusion of Lower Abdominal Organs and Hind Limbs in Mice

Ex 생체 내 관류는 고립 된 장기 (예 : 간, 신장)의 기능을 연구하는 중요한 생리적 도구입니다. 동시에, 마우스 장기의 작은 크기로 인해 뼈, 방광, 피부, 전립선 및 생식 기관의 전 생체 풍부는 도전적이거나 불가능합니다. 여기서, 우리는 상기 조직을 포함하는 마우스에 있는 시투 하체 관류 회로에서 처음으로 보고합니다, 그러나 주요 정리 기관 (신장, 간 및 비장)를 우회합니다. 회로는 상복부 대동맥과 정맥 위에 복부 대동맥과 열등한 베나 카바를 캔터링하고 말초 혈관을 소작함으로써 확립된다. 관류는 최대 2시간 동안 유지되는 난투류 흐름을 가진 연동 펌프를 통해 수행됩니다. 형광 렉틴 과 Hoechst 용액으로 시투 염색에서 마이크로 혈관이 성공적으로 침투된 것을 확인했습니다. 이 마우스 모형은 병리학적인 프로세스뿐만 아니라 약물 전달의 기계장치, 종양에서 종양 세포를 순환하는 이동/전이, 그리고 관전된 기관 및 조직과의 면역 계통의 상호 작용을 연구하기 위한 아주 유용한 공구일 수 있습니다.

우리는 10mL 미만의 관류 완충제의 양을 유지하면서 8-10 주 된 마우스의 복부 대자와 열등한 정맥 카바의 캔레이션을 통해 폐쇄 회로 관류 시스템을 설정합니다. 그림 3A는 Hoechst 33342 및 DyLight 649-lectin을 포함하는 링거의 솔루션으로 조직을 인응한 후 공초점 이미지를 보여줍니다. 근육, 골수, 고환, 방광, 전립선 및 발 피부는 효율적인 핵 및 혈관 염색을 보여줍니다. 도 3B는 3시간의 규범 관류 후 장기의 헤마톡시린-에오신 염색을 나타낸다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/60847/60847fig1.jpg"> 그림 1. 단순화된 관류 설정. (A)</str...

프로토콜은 방광, 전립선, 성기관, 뼈, 근육 및 발 피부를 포함한 마우스 하반신의 시상 수혈에 대해 설명된다.

Ex vivo perfusion is an important physiological tool to study the function of isolated organs (e.g. liver, kidneys). At the same time, due to the small ...

이 프로토콜은 우리의 회로에 포함된 기관 내의 약물 전달 및 면역 상호 작용에 대한 질문에 대답하는 데 사용할 수 있습니다. 이 기술은 주요 클리어런스 장기를 피하면서 전통적인 전 생체 내 방법에 의해 퍼퓨즈할 수 없는 장기의 관류를 허용합니다. 수술을 시작하기 전에 순환 하는 수조와 모든 물 자켓 구성 요소를 설정 하 고 37 섭씨.튜브가 세척되어 있는지 확인하고, 난투부부로 습한 챔버 내에서 버블 트랩을 사용하여 난파부 부피를 제한한다. 카테터화 절차를 수행하려면 8~10주 된 남성 마취 전구에서 페달 반사에 대한 반응부족을 확인하여 마우스를 참조하십시오. 그리고 6시에 머리를 가진 스티로폼 보드에 마우스를 배치합니다.동물의 팔다리를 테이프로 고정시키고 이소프로필 알코올로 복부를 닦아냅니다. 절개 가장자리 주위에 출혈을 중지 전기 응고를 사용하여 복부에 T 모양의 절개를합니다. 복부 대동맥, 베나 카바 및 일반적인 일리악 및 일리오룸바 동맥과 정맥을 드러내기 위해 복부, 제주넘 및 결장들을 복부의 오른쪽으로 밀어 넣습니다.해부 현미경에서 난소와 일리오룸바 동맥과 정맥을 4-O 실크 봉합사로 찾아 리디게이트합니다. 복부 대동맥 아래 의 4-O 실크 봉합사 2개와 열등한 베나 카바(1mm 이상) 1mm 떨어져 있습니다. 그런 다음 일강 혈관에 가장 가까운 봉합사에서 느슨한 고개를 끄덕이십시오.바늘 홀더를 사용하여 열등한 베나 카바와 복부 대어타를 수평으로 정렬하고 스트레칭하십시오. 그리고, 혈관을 뻗어 유지, 복부 대어를 펑크 24 게이지 날개 방패 IV 카테터를 사용합니다. 바늘이 용기에 약 1밀리미터 침투하자마자 버튼을 눌러 바늘 코어를 철회하고 카테터를 용기에 약 5밀리미터 삽입합니다.카테터를 5밀리미터의 베나카카바에 같은 방식으로 삽입합니다. 그리고 카테터로 된 용기 주위에 두 봉합사를 묶는다. 그런 다음 즉시 접착제를 적용하여 카테터를 발기스핀에 고정시키고 복부 장기를 교체하십시오.관류 시스템을 설정하려면 마우스를 워터 재킷 습한 챔버의 실리콘 패드에 놓고 카테터 날개를 19 게이지 바늘로 패드에 고정시하십시오. 동맥 카테터 입구를 미리 데워진 관류 버퍼로 채웁니다. 혈전성 집게와 나사 온 커넥터를 사용하여 카테터 입구를 튜브에 부착하고 테이프로 유입 구류 튜브를 고정합니다.연동 유량을 분당 0.6 밀리리터로 조정하고, 관류 유출을 5~10분 동안 열어 두고 정맥 카테터를 통해 혈액을 씻어낸다. 일부 혈전은 콘센트 카테터에 존재하고, 난투 버퍼로 혈전을 플러시하고, 커넥터에 나사를 사용하여 정맥 카테터의 끝에 부착하여 회로를 닫습니다. 그런 다음 습한 챔버를 최대 2시간 동안 미리 데워진 뚜껑으로 덮고 정기적으로 후두기 수준을 확인합니다.여기서, Hoechst 33342 및 DyLight-649 렉틴을 포함하는 링거 용액을 관성한 후 공초점 이미지가 표시됩니다. 근육, 골수, 고환, 방광, 전립선 및 발 피부는 일반적으로 효율적인 핵 및 혈관 염색을 보여줍니다. 헤마톡시린과 유신은 정상적인 조직 관류 3시간 후에 이 조직의 염색을 통해 명백한 조직 손상 없이 장기의 성공적인 홍조를 드러낸다.이 모델은 생리적으로 관련이 없는 환경에서 약물 섭취 경로를 이해하는 데 사용할 수 있습니다. 예를 들어, 약물 축적에서 혈청 성분의 역할을 이해한다. 우리는 피부를 심혈성 축적 메커니즘을 이해하기 위해 시스템을 사용하고 있습니다.

establishing-situ-closed-circuit-perfusion-lower-abdominal-organs

Research

연구

JoVE Journal

Medicine

의학

일방적 hindlimb의 국소 빈혈의 유도에 대한 수술은 레이저 도플러 재관류 이미징에 의해 국소 빈혈의 확인과 증명합니다.

Hindlimb 국소 빈혈의 Murine 모델

과학에 국내 및 미니어처 돼지의 사용은 최근 몇 년 동안 크게 증가하고 있습니다. 삽관법, transurethral 방광 catheterization, 대퇴 동맥 및 정맥 catheterization뿐만 아니라 transcardial 재관류를 수행하는 방법을 시연함으로써, 우리는 더 이상 생명 의학 연구에 괴팅겐 minipigs의 가치를 높이는 것을 목표로하고 있습니다.

괴팅겐 Minipig의 기본 외과 기술 : 삽관법, 방광의 Catheterization, 대퇴 선박 Catheterization, 그리고 Transcardial 재관류

마우스에서 뒷다리 허혈의 외과적 유도는 혈관 신생을 검사하는 데 유용하지만, 현저한 허혈 유발 조직 괴사를 나타내는 특정 근친 마우스 균주에서는 손상됩니다. 점진적인 동맥 폐색의 유도를 통해 이 문제를 회피하기 위해 아메로이드 수축기를 사용하여 아급성 사지 허혈을 유도하는 방법이 설명되어 있습니다.

급성 및 아 급성 쥐 뒷다리 국소 빈혈하는 방법

마우스 절연 신장 관류 (MIPK)를 관류하고 1 시간 동안 기능성 생체 조건 마우스 신장을 유지하기위한 기술이다. 버퍼 수술 기법은 상세하게 설명된다.

마우스입니다 관류 신장 기법

여기에서, 우리는 마우스 뒷다리에 있는 혈류를 측정하기 위하여 레이저 도플러 관류 화상 진찰을 위한 기술 그리고 필요한 통제를 보여주는 프로토콜을 제시합니다.

마우스 힌드림에 있는 레이저 도플러 관류 화상 진찰

이 프로토콜은 포털 정맥 관류를 통한 대사 연구를 위해 손상되지 않은 마우스 간을 절제하는 간단한 방법을 설명합니다.

Ex Vivo 마우스의 포털 정맥을 통한 간 관류

본 논문은 업데이트된 무균 기술, 진통 및 마취를 사용하여 이종 혈관 심장 이식을 위한 수정된 기술을 설명합니다.

무균 기술, 마취 및 진통의 현대 표준과 일치하는 수정된 쥐 이종 심장 이식 프로토콜

여기에서 우리는 쥐 모델에서 정상 체온 상피 보존 후 이종 국소 이식된 심장의 평가 프로토콜을 제시합니다.

Normothermic Ex-Situ 관류 이종 심장 이식의 쥐 모델

정상 체온 생체 외 간 관류(NEVLP) 시스템이 마우스 간을 위해 만들어졌습니다. 이 시스템은 미세 수술에 대한 경험이 필요하지만 재현 가능한 관류 결과를 허용합니다. 마우스 간을 활용하는 능력은 새로운 관류액 첨가제를 식별하기 위한 분자 경로의 조사를 용이하게 하고 장기 복구에 중점을 둔 실험의 실행을 가능하게 합니다.

마우스의 Normothermic Ex Vivo 간 기계 관류

여기에서, 우리는 간 구조를 방해하지 않으면서 간 외 요인이 없는 상태에서 간 대사의 급성 및 직접적인 조절을 연구하기 위해 쥐 간의 현장 관류를 위한 강력한 방법을 제시합니다.

간 포도당 생산, 요소 형성 및 지방 분해는 관류 마우스 간 모델을 사용하여 정량화되었습니다.

간 인슐린 청소는 포도당 항상성을 조절하는 데 중요합니다. 이 기사는 마우스의 현장 간 인슐린 제거율을 직접 평가하기 위한 사용자 친화적인 간 관류 절차에 대해 설명합니다.

In Situ Liver Perfusion을 통한 마우스의 인슐린 제거율 평가

학습하세요 마우스 하복부 장기의 시투 폐쇄 회로 관류 기법을 통해 약물 전달 및 면역 상호작용을 연구하는 방법을. 이 기술은 방광, 전립선, 생식기 등의 장기 관류가 가능합니다.

마우스에서 하복부 장기 및 뒷다리의 시투 폐쇄 회로 관류 에 설립

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