Name: 성인 마우스및 쥐 심근세포의 격리, 트랜스페션 및 장기 문화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-10-10T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 17 s
Description: 배우세요 성인 마우스 및 쥐 심근세포의 격리, 트랜스펙션 및 장기 문화 기법을. Langendorff 관류법과 RNAiMAX를 활용하여 20일 이상 생존율 80-90%를 달성하는 최적화된 프로토콜입니다.

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이 작품은 병리학 및 실험실 의학의 학과에서 자금 지원, 신시내티 대학, 의과 대학, 박사 오누르 카니시카크; 국립 보건원(R01HL148598)에서 오누르 카니시카크 박사에게 교부금. 오누르 카니시카크 박사는 미국 심장 협회 경력 개발 상(18CDA34111117)의 지원을 받고 있습니다. 퍼웨즈 알람 박사는 미국 심장 협회 박사 후 보조금(AHA_20POST35200267)의 지원을 받고 있습니다. 말리나 J. 아이비 박사는 NIH T32 교부금(HL 125204-06A1)의 지원을 받고 있습니다.

모든 실험은 미국 국립 보건원(NIH)에 의해 간행된 실험실 동물의 관리 및 사용을 위한 지침에 따라 수행되어야 합니다. 비디오에 표시된 모든 프로토콜은 신시내티 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인되었습니다.
1. 성인 마우스 (및 쥐)에서 심장 추출 전에 준비
<ol><li>표 1 및 표 2에주어진 조리법에 따라 해당 관류, 효소 및 정지 용액을 각각 쥐와 마우스 절연을 준비합니다. 0.22 μm 필터를 통해 솔루션을 필터링하여 오염 또는 용해되지 않은 입자를 제거합니다.</li>
	<li>수술기구를 70% 알코올로 15분 동안 담그고 두 번 증류수로 세척하여 세척합니다. 깨끗한 종이 타월에 공구를 말리십시오.</li>
	<li>수조를 37ºC로 예열하십시오. 수조의 수위를 확인하여 시술 중에 관류 장치를 통해 따뜻한 물의 중단없이 순환되도록 하십시오.</li>
	<li>5 분 동안 70 % 알코올로 실행하여 관혈 장치를 청소하십시오. 참고: 튜브를 청소하는 데 도움이 되는 유량을 증가시면 됩니다.</li>
	<li>알코올 이 흘러 후, 10 분 동안 이중 증류수를 실행하여 알코올의 잔해를 청소합니다.</li>
	<li>절제 후 심장을 청소하기 위해 중간 크기의 일회용 폴리스티렌 계량 접시 3개를 설정합니다. 20mL의 심근세포 버퍼로 접시를 채웁니다.</li>
	<li>파스퇴르 파이펫의 도움으로 각 접시에 헤파린 2-3 방울을 넣고 여러 번 파이펫을 섞어 잘 섞습니다.</li>
	<li>무딘 바늘 캐뉼라와 함께 10mL 주사기를 가져 가라. 참고 : 무딘 바늘 캐뉼라는 깨끗하고 멸균 된 바늘의 끝을 절단하여 제조 할 수 있습니다. 21G 바늘과 14G 바늘은 각각 마우스와 쥐에 대한 캐뉼라를 만드는 데 사용되었다.</li>
	<li>주사기를 관류 완충액(표1)으로채웁니다. 주사기에서 기포를 제거하고 각진 위치에 세 번째 접시에 놓습니다. 테이프로 고정하십시오. 참고: 쥐의 경우, 솔루션A(표 2)는심근세포 관류 버퍼 대신 사용하였다.</li>
	<li>수술 봉합사로 느슨한 매듭을 준비하고 바늘 주위에 놓습니다.</li>
	<li>헤파린 (100 USP 단위/마우스)으로 마우스를 주입하여 관면 주사로, 마취 주사 20 분 전에.</li>
	<li>심구세포 관류버퍼(표 1)를관류 장치를 통해 순환한다. 유량을 3mL/분으로 줄입니다. 참고: 쥐의 경우, 솔루션A(표 2)는심근세포 관류 버퍼 대신 사용하였다.</li>
	<li>5 분 후, 관혈 완충을 효소 용액(표 1)으로교체하십시오. 공정 중에 효소 용액을 산소로 포화시합니다. 3 mL/분의 유량을 사용합니다. 참고: 쥐 CM 격리의 경우 솔루션E(표 2)를대신 사용합니다.</li>
	<li>마취의 관면 주사에 의해 마우스를 마취. 말기 수술에 대한 IACUC에 의해 권장 마취의 적절한 복용량을 사용합니다.</li>
	<li>발가락 핀치에 대한 응답의 부족으로 마취의 충분한 깊이를 확인합니다. 그런 다음, 수술 플랫폼에 마우스를 넣어.</li>
</ol>2. 성인 마우스 (및 쥐)에서 심장 추출
<ol><li>70%의 알코올로 닦아 피부를 살균합니다.</li>
	<li>조심스럽게 가슴을 엽니 다.</li>
	<li>마음을 흥분시다. 절제 하는 동안 비 심장 조직을 피하십시오.</li>
	<li>관류 완충(표 1)으로채워진 첫 번째 접시에 하트를 넣습니다. 참고: 쥐용 솔루션A(표 2)를사용합니다.</li>
	<li>부드럽게 압박하여 심장에서 피를 치웁울 수 있습니다.</li>
	<li>하트를 두 번째 요리로 옮기습니다.</li>
	<li>심장에서 혈액을 청소하 고 비 심장 조직을 제거 합니다. 그 후, 세 번째 접시에 마음을 전송합니다.</li>
	<li>폐 및 기타 주변 조직을 손질하고 오름차순 대오르타를 통해 캐너레이. 이 절차는 CM 품질과 수량을 향상시키기 위해 가능한 한 빨리 수행되어야합니다 (&5 분).</li>
</ol>3. 심장의 소화
<ol><li>마우스 심장의 소화 참고: 마우스 심장을 통해 순환하는 모든 솔루션/버퍼는 시술 내내 산소처리되어야 합니다.<ol>
<li>주사기에서 캐뉼링 바늘을 조심스럽게 제거하고 랑엔도르프 관류 장치에 연결하십시오.</li>
		<li>효소 용액과 소화의 흐름에 영향을 미칠 수있는 심장으로 가는 기포를 피하십시오.</li>
		<li>워터 재킷을 위로 이동하여 심장에 균일한 환경을 제공합니다. 효소 용액이 2-3 mL/분의 속도로 심장을 통해 흐르도록 허용하십시오. 참고: 통과 솔루션의 속도는 매우 중요하며 CM 수량 및 품질 의 결과에 큰 영향을 미칩니다.</li>
		<li>효소 용액이 심장을 통해 2 분 동안 흐르게하십시오.</li>
		<li>2분 후 효소 용액에 100 μM CaCl2 용액의 40 μL을 넣고 섞는다. 효소 용액이 심장을 통과하여 10-15분 간 더 지나도록 하십시오. 참고: 흐름이 부드러워지면 심장이 갈색이 되고 부드러워져 콜라게나제 효소의 균일한 분포와 심장의 적절한 소화를 나타냅니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>쥐 심장의 소화 참고: 쥐 심장을 통해 순환하는 모든 솔루션/버퍼는 시술 내내 산소처리되어야 합니다.<ol>
<li>주사기에서 캐뉼링 바늘을 조심스럽게 제거하고 랑엔도르프 관류 장치에 연결하십시오.</li>
		<li>효소 용액과 소화의 흐름에 영향을 미칠 수있는 심장으로 가는 기포를 피하십시오.</li>
		<li>워터 재킷을 위로 이동하여 심장에 균일한 환경을 제공합니다.</li>
		<li>3-5 분 동안 2-3 mL /min의 속도로 솔루션 A의 흐름을 시작하여 심장에서 혈액을 제거하십시오. 참고: 전달 솔루션의 속도는 매우 중요하며 CM 품질 결과에 큰 영향을 미칩니다.</li>
		<li>혈액이 심장에서 제거되면 용액 A에서 용액 E(표 2)로전환하십시오. 솔루션에서 0.1 mMM의 최종 농도에 대해 아래와 같이 CaCl2를 가진 Titrate 솔루션 E:<ol>
<li>관류 10분 후 0.1 M CaCl2의12.5 μL을 추가하십시오.</li>
			<li>관류 15분 후 0.1 M CaCl2의25 μL을 추가하십시오.</li>
		</ol>
</li>
		<li>효소 용액이 흐름이 급속해지고 심장이 유연해질 때까지 30-40분 동안 심장을 통과하게 하십시오.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. CM 단세포 서스펜션 준비
<ol><li>CM 단세포 서스펜션(마우스) 제제<ol>
<li>랑엔도르프 관류 시스템에서 심장을 제거합니다. 5mL의 효소 용액으로 채워진 60mm 페트리 접시로 옮기고 접시를 생물 안전 후드로 옮기습니다. 참고: 랑엔도르프 관류 시스템에서 심장을 제거하기 전에 충분한 심장 소화를 보장하십시오. 소화 시간은 효소 활성, 용액의 흐름 및 심장 크기에 따라 달라집니다.</li>
		<li>멸균을 보장하고 오염을 방지하기 위해 생물 안전 후드에서 더 이상의 기계적 분리를 수행하십시오.</li>
		<li>조심스럽게 아리아 (기저 심장 부분의 1/4일) 및 여분의 지방 조직을 제거합니다.</li>
		<li>집게로 하트를 미세한 조각으로 다진다.</li>
		<li>멸균 파스퇴르 파이펫을 넣고 45º 각도로 팁을 잘라냅니다.</li>
		<li>이 파스퇴르 파이펫을 사용하여 부드러운 파이펫팅으로 심장 조직을 단일 세포 서스펜션에 분배하십시오. 최적의 소화는 단세포 심근세포의 현탁액을 제공합니다. 참고: 기계식 타선으로 인한 CM 손상을 줄이기 위해 이송 파이프의 좁은 하단 부분을 제거합니다.</li>
		<li>그런 다음, 과다 소화의 가능성을 방지 효소 활성을 중지하는 정지 용액의 5 mL을 추가합니다.</li>
		<li>신선한 50mL 원식을 가지고 멸균 100 μm 세포 여과기를 놓습니다.</li>
		<li>세포 스트레이너를 통해 심근세포 현탁액을 전달하여 조직 덩어리를 제거합니다. 페트리 접시와 스트레이너를 또 다른 5mL스톱 용액(표1)으로세척하여 여과기에 부착된 심근구를 수집합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>CM 단세포 서스펜션(rat)의 준비<ol>
<li>랑엔도르프 관류 시스템에서 심장을 제거합니다. 5mL의 솔루션 A로 채워진 100mm 페트리 접시로 하트를 이동하고 접시를 생물 안전 후드로 옮습니다. 참고: 랑엔도르프 관류 시스템에서 심장을 제거하기 전에 충분한 심장 소화를 보장하십시오. 소화 시간은 효소 활성, 용액의 흐름 및 심장 크기에 따라 달라집니다.</li>
		<li>멸균을 보장하고 오염을 방지하기 위해 생물 안전 후드에서 더 이상의 기계적 분리를 수행하십시오.</li>
		<li>조심스럽게 아리아 (기저 심장 부분의 1/4)와 여분의 지방 조직을 제거합니다.</li>
		<li>집게로 하트를 미세한 조각으로 다진다.</li>
		<li>멸균 파스퇴르 파이펫을 넣고 45º 각도로 팁을 잘라냅니다.</li>
		<li>이 파스퇴르 파이펫을 사용하여 부드러운 파이펫팅으로 심장 조직을 단일 세포 서스펜션에 분배하십시오. 최적의 소화는 단세포 심근세포의 현탁액을 제공합니다. 참고: 기계식 타선으로 인한 CM 손상을 줄이기 위해 이송 파이프의 좁은 하단 부분을 제거합니다.</li>
		<li>5mL의 용액B(표 2)를CM 서스펜션에 넣고 100 μm 세포 여과기를 통과하여 남은 지방 또는 기타 비소화 조직을 제거합니다.</li>
		<li>신선한 50mL 원물 유리병에 여과물을 수집합니다.</li>
		<li>또 다른 5mL의 용액 B를 사용하여 페트리 접시와 나머지 CM을 세포 여과기를 통해 세척하십시오.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. 비 CM 의 제거
<ol><li>성인 단일 셀 서스펜션(마우스)에서 비-CM 제거<ol>
<li>3 분 동안 20 x g에서 세포 현탁액을 원심 분리합니다.</li>
		<li>상체를 버리고 정지 용액의 10mL에서 셀을 다시 일시 중지합니다(표1). 참고: 정지 솔루션에서 BSA의 농도를 늘리면 점도가 증가하고 비 CM의 퇴적율을 줄입니다.</li>
		<li>튜브의 부드러운 반전으로 3-5 번 PM을 다시 중단하십시오.</li>
		<li>3분 간격으로 100 μM CaCl2 용액의 10 μL을 추가하고 혼합합니다. 세 번 반복합니다.</li>
		<li>네 번째 첨가 후 심근세포 현탁액을 20 x g에서 3 분 동안 원심 분리합니다.</li>
		<li>상부체를 폐기합니다.</li>
		<li>미리 따뜻하게 된 (37 ºC), 성인 마우스 CM 도금 매체(표 3)에서CM을 다시 중단합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>성인 단일 세포 서스펜션(rat)에서 비-CM 제거<ol>
<li>25 ºC에서 3 분 동안 20 x g의 펠릿 셀.</li>
		<li>상체를 버리고 세포를 용액B(표 2)의25mL로 재연한다.</li>
		<li>부드러운 반전으로 세포를 혼합하고 CM이 중력 아래에 정착 할 수 있도록 튜브 스탠드에 배치합니다.</li>
		<li>상체를 조심스럽게 폐기하십시오.</li>
		<li>용액 B의 신선한 25mL에서 세포를 다시 중단하고 3-5 분 간격으로 50 μL, 75 μL 및 100 μL의 100 μL을 단계적으로 추가하여 1.0 mM CaCl2로 적시한다.2 참고: 솔루션 B의 BSA 농도가 높을수록 이 단계에서 사용할 수 있습니다. 용액 B에서 BSA의 농도를 증가시켜 점도가 증가하여 비-CM의 침전율을 감소시킨다.</li>
		<li>펠릿 세포는 25 ºC에서 3분 동안 20 x g로, 수퍼내탄을 흡인하고, 성인 쥐 세포 배양 배지의 원하는 부피를 추가한다(표4).</li>
		<li>라미닌 코팅 플레이트에 씨앗 CM. 참고: 비 코팅 된 배양 판에 있는 CM의 사전 도금은 비 CM 세포의 오염을 최소화하기 위하여 이용될 수 있습니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. 성인 CM 도금
<ol><li>사전 도금<ol>
<li>심근세포를 문화 매체로 다시 중단합니다.</li>
		<li>각각 마우스 또는 쥐 CM에 대한 60mm 또는 100mm 접시에 세포를 사전 플레이트.</li>
		<li>인큐베이터에서 2h에 대한 인큐베이션 CM을 37 ºC에서 5% CO2로 보충합니다.</li>
		<li>프리 플레이트 인큐베이션 동안, 장기 CM 배양에 대한 라미닌 (PBS에서 10 μg /mL)으로 세포 배양 판을 코팅합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>2 시간 전 도금 후 50 mL 원내 유리병에서 CM을 수집합니다.</li>
	<li>접시에서 세포를 수집하고 전환 실험을 위해 코팅 된 24 개의 잘 배양 판으로 다시 접시를 놓습니다.</li>
	<li>37 ºC에서 인큐베이터의 배양 세포는 CO2로5%로 보충하였다. 4-6시간은 표면을 가진 심근구를 부착하기에 충분하므로, 따라서, 트랜스퍼트는 6시간 후 도금을 수행할 수 있다. 참고: FBS를 함유하는 도금 매체는 일반적으로 사용되며 증식 연구와 더 나은 호환성을 보여줍니다. 그러나, 혈청 없는 매체는 분비 요인이 분석되고 있는 실험에 사용될 수 있다.</li>
</ol>7. 트랜스페션
<ol><li>4-6 시간 동안 라미닌으로 코팅 된 세포 배양 판에 CM을 배양한다.</li>
	<li>제조업체의 프로토콜에 따라 혈중 플레이트에 CM 파종 후 4시간, siRNAs(50nM)를 이용한 트랜스펙트 세포(예를 들어, 리포펙타민 RNAiMAX)를 이용하여 관심 있는 세포.</li>
	<li>트랜지션 후 24시간, 그 후 24시간마다 미디어를 최대 20일 동안 변경합니다.</li>
	<li>20일 후, 살아있는 심근세포가 성공적으로 배양되었는지 확인하기 위해 트로노닌과 같은 심장 특정 마커에 대한 면역 세포화학을 포함하여 다운스트림 애플리케이션을 위해 PBS에서 4% PFA를 가진 세포를 수정하였다.</li>
</ol>

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</ol>

세포 특정 기계학 연구를 수행하기 위해 성인 심근 세포 격리 및 장기 배양을위한 프로토콜을 수립해야 하는 중요한 필요가 있습니다. 성인 CM 격리 프로토콜에 대해 논의하는 보고서는 몇 가지뿐이며, 그 중 더 적은 수의 성인 마우스 CM15,,16,,17의장기 배양에 사용된다. 성인 쥐 CM은 성인 마우스 CM10,,11,,12보다체외 배양에 더 높은 내성을 갖는다는 것을 보여 주었다. 이 보고서에서, 우리는 정기적으로 사용되는 프로토콜에 최소한의 수정과 함께 성인 쥐와 마우스 CM 격리, siRNA 트랜스포션, 장기 배양 및 유도 된 확산의 다운스트림 분석을위한 프로토콜을 수립합니다.
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심장 질환은 전 세계적으로 사망의 주요 원인 중 하나입니다. 심장 상해의 거의 모든 모형은 성인 심근세포 (CMs)의 중요한 손실 귀착됩니다. 성인 포유류 심장은 성인 CM1의노화 특성으로 인해 심장 손상을 복구 할 수 없습니다. 따라서, 성인 포유류 심장에 어떤 모욕은 감소 심장 기능 및 심부전으로 이끌어 내는, CMs의 영원한 손실 결과로 초래됩니다. 성인 포유동물과 달리, 제브라피쉬와 새로운 심장과 같은 작은 동물은 기존의 CM 증식2,,3,,4를통해 심장 손상을 재생할 수 있다. 전 세계적으로 확산 및 비 증식 접근 방식을 통해 심장 부상에 대한 새로운 치료 개입을 찾기 위한 노력이 진행중입니다. 지난 수십 년 동안, 유전 마우스 모델의 다양한 유형은 심장 부상과 수리를 연구하기 위해 개발되었습니다. 그러나 생체 내 동물 모델을 사용하는 것은 이차 효과로부터 세포 자율 메커니즘을 해독하기 위한 추가적인 복잡성으로 고가의 접근법이 계속되고 있다. 게다가, 생체 내 시스템은 CM에서 심장 보호 신호를 유도하는 약리학적 개입의 CM 특이적 효과를 분석하기 가 어렵습니다.
또한 CM 증식 분석을 수행하기 위해서는 성인 CM의 장기적인 문화가 필요합니다. CM 증식 분석법은 세포가 세포 주기로 유도되고 그 후에 정확한 데이터를 얻기 위하여 세포에 대한 최소 4-5 일이 필요합니다. 또한, 전기생리학 연구를 위해 고립된 CM을 활용하는 연구, 약물 스크리닝, 독성 연구, Ca++ 항상성 연구는 모두 개선된 배양 시스템5,,6,,7이필요하다. 더욱이, 최근 연구는 CM (심장 카인)8,,9에서분비 된 사이토카인의 심장 보호 의의를 보여줍니다. 심장 수리 및 재생 중에 이러한 심장 키인의 치료 역할 및 분자 메커니즘을 조사하기 위해서는 장기간 문화가 필요합니다.
성인,쥐 CM은 체외시스템(10,11,12)에서단세포 절연 및 장기 배양을 충분히 견고하다., 그러나, 성인용 마우스 CM은 쥐 CM13로는불가능한 다양한 혁신적인 분석의 설계 및 실행을 허용하는 다양한 유전자 변형 마우스 모델의 가용성으로 인해 체외 분석에 큰 관심을 갖는다. 성인 쥐 CM 격리와는 달리, 성인 마우스 심혼에게서 단세포 정지를 얻는 것은 아주 도전적이고, 문화에서 성인 마우스 CMs의 장기 문화는 더욱 도전적입니다.
랑엔도르프 시스템을 이용한 마우스및 쥐 심혼으로부터의 성인 CM 절연은 이전에 CM 기능5,,14,,15를연구하기 위해 설립되었다. 여기서, 우리는 쥐와 마우스 둘 다에서 성인 CM 절연을 위한 프로토콜뿐만 아니라, 격리된 세포의 수정된 장기 배양, 형질, CM 증식을 상세히 기술했습니다.

<table><tbody><tr><td>2,3-부탄 디온 모노심</td><td>시그마-알드리치</td><td>B-0753</td><td></td></tr><tr><td>블레비스타틴</td><td>APExBIO</td><td>B1387</td><td></td></tr><tr><td>소 혈청 알부민</td><td>시그마-알드리치</td><td>A3059</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>449709</td><td></td></tr><tr><td>세포 배양 플레이트</td><td>Corning Costar</td><td>3526</td><td></td></tr><tr><td>세포 여과기</td><td>BD Biosciences</td><td>352360</td><td></td></tr><tr><td>Cel-miR-67</td><td>Dharmacon</td><td>CN-001000-01-50</td><td></td></tr><tr><td>콜라겐 분해 효소 유형 2</td><td>Worthington</td><td>LS004177</td><td></td></tr><tr><td>일회용 졸업 전사 피펫</td><td>Fisherbrand</td><td>13-711-20</td><td></td></tr><tr><td>일회용 폴리스티렌 계량 접시</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z154881-500EA</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco의 수정 된 독수리's 매체</td><td>Thermo Scientific</td><td>SH30022.01</td><td></td></tr><tr><td>EdU</td><td>Life Technologies</td><td>C10337</td><td></td></tr><tr><td>태아 소 혈청</td><td>Corning</td><td>35-015-CV</td><td></td></tr><tr><td>Fine Point 고정밀 겸자</td><td>Fisherbrand</td><td>22-327379</td><td></td></tr><tr><td>포도</td>당 <td>Sigma-Aldrich</td><td>G-5400</td><td></td></tr><tr><td>혈구계</td><td>Hausser Scientific</td><td>1483</td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>Sagent Pharmaceuticals</td><td>PSLAB-018285-02</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H3375</td><td></td></tr><tr><td>고정밀 스트레이트 브로드 스트롱 핀셋 / 집게</td><td>Fisherbrand</td><td>12-000-128</td><td></td></tr><tr><td>Hyaluronidase</td><td>Sigma</td><td>H3506</td><td></td></tr><tr><td>인슐린</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>I0516-5ML</td><td></td></tr><tr><td>K2HPO4</td> <td>Sigma-Aldrich</td><td>P-8281</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>746436</td><td></td></tr><tr><td>광 현미경</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine RNAiMAX</td><td>Life Technologies</td><td>13778-150</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M-2643</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Fisher Scientific</td><td>S318-500</td><td></td></tr><tr><td>천연 마우스 라미닌</td><td>인비트로겐</td><td>23017-015</td><td></td></tr><tr><td>페니실린/스트렙토마이신</td><td>코닝</td><td>30-002-CI</td><td></td></tr><tr><td>펜토바르비탈</td><td>Henry Schein</td><td>24352</td><td></td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수</td><td>Life Technologies</td><td>20012-027</td><td></td></tr><tr><td>프로테아제 XIV</td><td>시그마-알드리치</td><td>P5147-1G</td><td></td></tr><tr><td>셀레늄</td><td>시그마-알드리치</td><td>229865+5G</td><td></td></tr><tr><td>siMeis2</td><td>Dharmacon</td><td>s161030</td><td></td></tr><tr><td>siRb1</td><td>Dharmacon</td><td>s128325</td><td></td></tr><tr><td>스트레이트 블런트/샤프 해부 가위</td><td>Fisher Scientific</td><td>28252</td><td></td></tr><tr><td>스트레이트 매우 미세한 정밀 팁 집게</td><td>Fisherbrand</td><td>16-100-120</td><td></td></tr><tr><td>타우린</td><td>시그마-알드리치</td><td>T0625</td><td></td></tr><tr><td>트랜스페린</td><td>시그마-알드리치</td><td>T8158-100MG</td><td></td></tr><tr><td>초매끄럽고 비스듬한 가장자리 마감 가위</td><td>Fisherbrand</td><td>22-079-747</td><td></td></tr><tr><td>수조</td><td>Fisher Scientific</td><td>3006S</td><td></td></tr></tbody></table>

성인 마우스및 쥐 심근세포의 격리, 트랜스페션 및 장기 문화

Isolation, Transfection, and Long-Term Culture of Adult Mouse and Rat Cardiomyocytes

성인 포유류 심근세포(CM)의 전 생체 배양은 심장 생물학의 체외 연구를 위한 가장 관련성이 있는 실험 시스템을 제시합니다. 성인 포유류 CM은 최소한의 증식 능력을 가진 말기 분화 세포입니다. 성인 CM의 미토틱 후 상태는 심근세포 세포 주기 진행을 제한할 뿐만 아니라 CM의 효율적인 배양을 제한합니다. 더욱이, 성인 CM의 장기 배양은 CM 증식 및 유전자 발현의 분석과 같은 많은 연구 결과에 필요합니다.
마우스와 쥐는 심근세포 분리에 사용되는 두 가지 가장 바람직한 실험실 동물이다. 쥐 CM의 장기 문화가 가능하지만 성인 마우스 CM은 사망에 취약하며 정상적인 조건에서 5 일 이상 배양 할 수 없습니다. 따라서 성인 뮤린 CM에 대한 세포 격리 및 장기 배양 프로토콜을 최적화해야 하는 중요한 필요성이 있습니다. 이 수정된 프로토콜을 사용하면 성인 마우스와 쥐 CM을 20일 이상 성공적으로 분리하고 배양할 수 있습니다. 더욱이, 고립된 CM의 siRNA 경질 효율은 이전 보고에 비해 현저히 증가된다. 성인 마우스 CM 절연의 경우, 랑엔도르프 관류 방법은 최적의 효소 용액과 완전한 세포 외 매트릭스 해리를위한 충분한 시간으로 활용됩니다. 순수한 심실 CM을 얻기 위해, 모두 분리 및 도금을 진행하기 전에 해부 및 폐기되었다. 세포는 효율적이고 신속한 부착을 허용 라미닌 코팅 플레이트에 분산되었다. CM은 siRNA 경질 전에 4-6 h에 정착할 수 있었습니다. 배양 매체는 20일마다 24시간마다 리프레시되었고, 그 후, CM은 KI67과 같은 세포 주기의 트로포닌 및 마커와 같은 심장 특정 마커에 대해 고정및 염색되었다.

현재 수정된 프로토콜은 시험관내에서 쥐와 마우스 CM의 효율적인 격리 와 배양을 허용한다. 쥐 CM 격리의 경우, 총 3 명의 성인 (12 주 된) 남성 피셔 344 랫트가 이 시술에 사용되었습니다. 도 1은 수술에 필요한 수술 장치 및 격리 설정을 나타낸다; 각 부품이 그림 범례에 표시되고 설명되었습니다. 콜라게나아제 타입 2는 소화에 사용되었으며, 이는 성공적인 절연으로부터 고품질 의 CM의 높은 양을 산출한다(그림2A). 24시간 후 격리, 이들 세포는 Rb1 및 Meis2에대한 특정 siRNA를 유도하는 세포 주기로 전염된 반면, cel-miR-67은실험(11)에서경질 제어로 사용되었다. CM은 형태학적 변화를 관찰하기 위해 7일(도2B)또는 최대 20일(도<strong class="xfi...

여기서, 우리는 성인 마우스와 쥐 심근세포의 격리, 형질 전환 및 장기 문화에 대한 프로토콜을 제시합니다.

Ex vivo culture of the adult mammalian cardiomyocytes (CMs) presents the most relevant experimental system for the in vitro study of cardiac biology. ...

이 비디오의 목적은 성인 심근 세포 격리, 장기 문화 및 경질에 대한 표준화 된 프로토콜을 시연하는 것입니다. 마우스 또는 쥐에서 심근세포를 분리하고 배양하는 것은 건강하고 질병 심혼 내의 심근세포의 세포 자율 생물학을 조사하는 필수적인 방법이 계속되고 있습니다. 우리가 고립 된 심근 세포를 사용 하 여 대답할 수 있는 몇 가지 질문이 있다.증식 가능성과 같은. 상해 반응시 유전자 발현 변화 또는 특정 사이토카인 발현이 있습니다. 불행히도, 마우스 심근세포는 정상적인 문화 조건에서 1 주일 지난 생존하지 않습니다.따라서,이 비디오에서는 성인 마우스 심근 세포를 분리하고, 이를 고정하고 21 일 이상 배양하는 최적화 된 방법을 설명하며,이 기술은 처음에는 마스터하기 어렵다. 그러나 연습을 통해 약 80~90%가 격리 후 심근세포에서 생존할 수 있으며 약 100% 경질 효율을 달성할 수 있습니다. 그리고 올바른 조건에서 이러한 심근 세포의 대부분은 지난 20 일 살아남을 수 있습니다.15분 동안 70%의 알코올에 담그고 이중 증류수로 세척하여 수술기구를 청소하고 살균하십시오. 물 후, 다음에 건조하기 위해 공기에 도구를 두고, 각각 5 분 동안 두 번 70 %의 알코올을 실행하여 풍부 장치를 청소합니다. 유량을 늘리면 알코올이 10 분 동안 이중 증류수를 실행하여 남은 알코올을 헹구면 튜브를 청소하는 데 도움이됩니다.절제 후 심장을 청소하기 위해 세 가지 요리를 설정합니다. 각 요리에 20밀리리터의 심근세포 버퍼를 채웁니다. 파스퇴르 파이펫으로 각 접시에 2~3방울의 헤파린을 넣고 여러 번 위아래로 파이펫을 섞어 웰을 섞습니다.10 밀리리터 주사기를 가져 와서 심근 세포 버퍼로 채웁니다. 주사기에서 기포를 제거하고 각진 위치에 세 번째 접시에 배치하여 테이프로 고정합니다. 외과 봉합사로 느슨한 매듭을 준비하고 바늘 주위에 놓습니다.마취 20분 전에 IP 주입을 통해 헤파린으로 마우스를 주입하십시오. 분당 3밀리리터의 유속으로 증혈 장치를 통해 심근세포 풍부완충액을 순환한다. 5분 후, 풍부농축 버퍼를 효소 용액으로 대체하고, 효소 용액을 공정 중에 산소로 포화하고, 다시 효소 용액을 분당 3mLs의 유량으로 설정한다.발가락 꼬집기로 마취를 확인하고 수술 플랫폼에 마우스를 놓습니다. 70%의 알코올로 피부를 살균합니다. 조심스럽게 가슴을 열고, 심장을 운동하고 첫 번째 요리에 마음을 넣어.부드러운 압박으로 심장에서

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

본 논문에서 우리는 성인 쥐 심장 myocytes를 분리하고 문화에 전형 방법을 설명했다. Collagenase와 단백 분해 효소는 단일 myocytes을 소화하고 격리하는 데 사용됩니다. Myocytes는 대부분의 실험 요구 사항을 충족이 프로토콜을 따라 교양.

성인 쥐 심장 Myocytes의 차 문화

성인 심장 myocytes 동물 마음으로부터 격리하고 며칠 동안 교양 수있는 기본 세포입니다. 이 문화가 기간 내에 adenoviral 유전자 전송은 유전자 인코딩 bi​​osensors (GEBs) 또는 형광 융합 단백질을 표현하는 데 사용할 수 있습니다. 두 접근 방법 공촛점 현미경에 의해 세포 조사를 허용합니다.

공촛점 이미징에 대한 분리 및 성인 심장 Myocytes의 유전자 조작

기본 마우스 심근 문화는 근원 섬유 조직과 기능의 조사를 위해 중요한 도구 중 하나입니다. 다음 프로토콜은 신생아 마우스 마음에서 차 심근의 격리와 문화를 설명합니다. 얻어진 심근 배양 이후 역학적, 생화학 및 세포 생물학의 다양한 분석을 위해 사용될 수있다.

분리 및 문화 신생아 마우스 심근

여기서 우리는 랑겐 관류 시스템을 사용하여 성인 마우스 된 심근의 분리에 대해 설명합니다. 얻어진 세포 + 내성 전기적 무부하 외 Ca2이며 배양 및 아데노 - 또는 유전자 발현을 조작하기 lentiviruses로 형질 감염 될 수있다. 그 기능 또한 MMSYS 시스템 및 패치 클램프 기술을 이용하여 분석 될 수있다.

절연, 문화, 그리고 성인 마우스 된 심근의 기능적 특성

우리는 성인 마우스 심근의 분리를 위해 신뢰할 수있는 방법에 대해 설명합니다. 이 프로토콜은 유전자 변형 마우스의 다양한 기능에서 성인 심근의 문화에 대한 일관성있는 결과를 얻을 수 있습니다.

분리 및 문화 성인 마우스 세포 신호 전달 용의 Cardiomyocytes과의<em&gt; 시험관</em&gt; 심장 비대

이 프로토콜은 높은 수율, 순도 및 생존력을 가진 성체 마우스 심근세포의 재현 가능한 분리 및 장기 배양을 위한 단계별 방법을 설명합니다.

격리, 문화 및 성인 마우스 심근 세포의 형질 도입

쥐 심장에서 다른 심장 세포 유형의 분리를 위해 몇 가지 프로토콜이 개발 및 기술되었습니다. 여기에는 실험 준비 비용을 줄이기 위해 단일 준비에서 고품질 주요 심장 세포 유형 (cardiomyocytes, endothelial cell, fibroblast)을 분리 할 수있는 최적화 된 프로토콜이 설명되어 있습니다.

성인 쥐 심장에서 고품질 Cardiomyocytes, 내피 세포 및 섬유 아세포의 동시 격리

여기, 우리는 분리와 성인 쥐 심 실 cardiomyocytes (ARVC)의 재배에 대 한 프로토콜을 제시. 단기 및 장기 재배에 대 한 고립 된 ARVC는 사용할 수 있습니다. 분리와 ARVC의 재배는 심장 질환에 대 한 새로운 치료 regimens 개발에 중요 한 역할을 재생할 수 있습니다.

절연 및 성인 쥐 Cardiomyocytes의 재배

단일 성인 마우스 심장의 심실과 심실 모두에서 심근세포 및 비근구의 동시 절연을 위한 방법이 설명된다. 이 프로토콜은 매우 실행 가능한 심장 심근세포 및 비 근구세포의 일관된 수율을 초래하고 페노티핑 및 체외 분석을 위한 최적의 세포 별 배양 조건을 자세히 설명합니다.

성인용 마우스 심장에서 심방 심근 세포, 심실 심근 세포 및 비근구의 동시 격리 및 문화

세포 및 분자 기능 실험을 위한 심장학의 황금 표준은 심근 세포입니다. 이 기사에서는 마우스 심근 세포를 분리하기 위한 비 Langendorff 기술에 대한 적응에 대해 설명합니다.

마우스 심근 세포를 일관되게 분리하는 간단하고 효과적인 방법

배우세요 성인 마우스 및 쥐 심근세포의 격리, 트랜스펙션 및 장기 문화 기법을. Langendorff 관류법과 RNAiMAX를 활용하여 20일 이상 생존율 80-90%를 달성하는 최적화된 프로토콜입니다.

성인 마우스및 쥐 심근세포의 격리, 트랜스페션 및 장기 문화

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