Name: 지카 바이러스를 사용하여 Aedes aegypti 모기에 벡터 역량 분석 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 35 s
Description: 학습하세요 지카 바이러스를 사용한 Aedes aegypti 모기의 벡터 역량 분석 방법을 통해 아르보바이러스 전파 위험을 평가하는 기술을 익히세요. 이 프로토콜은 감염병 예방을 위한 중요한 연구 도구를 제공합니다.

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우리는 신흥 바이러스 및 Arboviruses (WRCEVA)에 대한 세계 참조 센터의 직원을 인정 : 박사 로버트 테시, 힐다 구즈만, 박사 케네스 플랜테, 박사 제시카 플랜트, 디오나 샤튼, 그리고 디비야 미르 찬다니, 큐레이팅및 우리와 다른 그룹의 능력 실험에 사용되는 바이러스 균주의 많은 을 제공하는 그들의 지칠 줄 모르는 작업에 대한. 제시된 작품은 맥러플린 펠로우십 펀드(SRA)와 NIH 보조금 AI120942 및 AI121452에 의해 지원되었다.

이러한 프로토콜에서 수행된 모든 절차는 기관 생물 안전 위원회와 갤버스턴에 있는 텍사스 대학 의료 지점의 기관 동물 관리 및 사용 위원회에 의해 승인된 프로토콜을 완전히 준수하여 수행되었습니다.
1. 베로 셀에서 ZIKV 증폭
<ol><li>베로 세포(CCL-81 또는 VeroE6)는 덜벡코의 이글의 최소한의 필수 매체(DMEM)를 10% v/v 열불성 태아소 혈청(FBS)으로 보충하고, 1% (v/v) 페니실린-스트렙토마이신(100 U/mL 및 10g/mL)을 분해합니다. 각각) 가습37°C 인큐베이터에서 5%CO2에서 80-90% 사이를 150cm2 조직 배양 플라스크로 결합한다.</li>
	<li>생물 안전 캐비닛 (BSC)에서, 배지를 제거하고 10 % 표백제 또는 이중 사위 암모늄(재료의 표)의작업 희석 중 하나에서 폐기한다. 즉시 세포 당 0.1-1 전염성 바이러스 입자를 목표로, 바이러스 육수의 1 mL로 단층을 접종. 무접종이 단층 전체에 닿을 수 있도록 플라스크를 즉시 교반한다.</li>
	<li>2% v/v 열비활성화 FBS, 1%(v/v) 페니실린-연쇄 절제술을 보충한 DMEM을 사용하여 배지를 5mL의 부피로 위로 올려주세요. 그런 다음 플라스크를 가습된 37°C 인큐베이터로 이동하여 60분 동안 5% CO2를 입력합니다.</li>
	<li>인큐베이터에서 플라스크를 제거하고 BSC로 가져옵니다. 2% v/v 열 비활성화 FBS, 1%(v/v) 페니실린-연쇄 절제술을 보충한 DMEM을 사용하여 총 15mL의 총 부피에 배지를 추가합니다. 플라스크를 가습된 37°C 인큐베이터로 5% CO2로이동한다.</li>
	<li>세포 병 증 효과의 증거에 대 한 위상 대비 현미경 검사에서 매일 플라스크를 검사 (CPE). 세포의 약 40-50%만이 단층층에 남아 있을 때 바이러스 수확(step 1.7)으로 진행하며, 일반적으로 3-5일 후감염후체가 활용되고 있는 것으로 나타났다.</li>
	<li>수퍼내를 흡인하고 50mL 원물 바이알에 배치합니다. 원심분리(3,500 x g 20분)로 셀룰러 파편의 상부를 명확히 한다. 참고: 여러 플라스크가 동일하게 감염된 경우 여러 플라스크의 슈퍼나티를 50mL 원추형 튜브로 결합할 수 있습니다.</li>
	<li>50mL 원뿔관에서 펠릿을 방해하지 않도록 주의하여 상체관을 새로운 튜브로 제거합니다. 열 비활성화 FBS를 30%(v/v)의 최종 농도로 보충합니다. Aliquot 개별 나사 캡 튜브에이 혼합물을 보고 사용 될 때까지 -80 °C에서 동결.</li>
</ol>2. 인공 혈액 식 준비
<ol><li>당일 모기는 전염성 혈류에 노출되어야 하며, 수유장치(재료표)가모기가 노출될 때까지 예열되는 것을 하는 절지동물 봉쇄 시설에서 전원(재료표)을 켜야 한다.</li>
	<li>아래에 설명된 방법 중 하나를 사용하여 인공 혈액식을 준비하십시오.<ol>
<li>방법 1: 신선하게 수확된(1주일 이내에) 상업적으로 구입한 1:1 v/v의 혈액을 바이러스 성 육수와 결합합니다(섹션 1에 설명된 대로 준비). 참고: 이 방법은 혈액에 존재하는 바이러스/바이러스 가족에 어떤 항체의 부재에 우발적입니다.</li>
		<li>항체의 부재를 확인할 수 없거나 혈액 공급원이 이전에 flavivirus 노출을 갖는 것으로 알려져 있는 경우, 세척 및 수동으로 적혈구를 포장.<ol>
<li>BSC에서, 50 mL 원판 관에 전체 인간의 혈액의 30 mL을 추가하고 인산완충식식염수 (PBS)와 최대 50 mL를 얹습니다.</li>
			<li>원심 분리기 3,500 x g에서 20 분 동안.</li>
			<li>10% 표백제를 함유한 트레이 팬에 부드럽게 붓거나 이중 사위 암모늄을 희석하여 적혈구 펠릿을 버리지 않도록 주의하여 초퍼를 흡습하십시오.</li>
			<li>PBS의 10 mL을 추가하고 부드럽게 적혈구 펠릿이 재구성 된 있도록 BSC의 바닥에 원적 튜브의 바닥을 누릅니다. PBS로 서스펜션의 볼륨을 최대 50mL까지 가져옵니다. 부드러운 반전으로 섞으세요.</li>
			<li>2.2.2.1−2.2.2.2.4 총 4-6x를 반복합니다. 상체가 명확하거나 약간 분홍색이며 더 이상 불투명하지 않은지 확인합니다. 세로지학적 파이펫을 사용하여 모든 상체를 제거합니다. PBS의 1-2 mL에서 적혈구 펠릿을 다시 중단합니다.</li>
			<li>혈중 밀 조립: 포장 된 적혈구 350 μL, 100 μL 100 μL 10% 자당, 200 μL 의 열 비활성화 FBS, 900 μM 재조합 ATP, 2 mL의 DMEM을 사용하여 적절하게 희석 된 바이러스 재고 2 % v / v 열 비활성화 FBS, 1 % (v/v-펜)</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>감염되지 않은마우스의피부와 표준 3mL 저수지 단위(재료 표)를 오버레이합니다(다른 옵션으로는 파라핀 필름, 콜라주공 막 또는 소시지 케이스포함).</li>
	<li>덮인 저수지를 흰 종이 타월에 놓습니다. 한 번에 1mL의 저수지에 전염성 혈밀의 ~2mL를 넣습니다. 누설의 증거를 피더 아래 수건을 검사합니다. 누출이 있는 경우 피더에서 피밀을 회수하고 덮개를 폐기하십시오. 플러그로 피더를 밀봉합니다. 누출이 없는지 다시 한번 확인합니다.</li>
</ol>3. 혈중식사/플라크 분석의 백티션
<ol><li>준비된 블러드밀의 남은 부피를 사용하여, DMEM을 사용하여 10배 직렬 희석 시리즈(즉, 희석된 10x에서 1,000,000x까지) DMEM을 사용하여 2% v/v 열비활성화 FBS, 1%(v/v) 페니실린-streptomycin을 수행한다.</li>
	<li>가장 희석된 에서 가장 농축된 24 또는 12개의 우물 판으로 희석의 Aliquot 100 μL.</li>
	<li>37°C, 5% CO2 인큐베이터에서 1h의 인큐베이션을 위해 인큐베이션합니다.</li>
	<li>1 h 인큐베이션 기간이 끝나면 플레이트를 BSC로 다시 가져와 서 메틸셀룰룰로오스 오버레이 1mL 또는 2mL를 24웰 또는 12개의 웰 플레이트에 추가합니다.</li>
	<li>오버레이 플레이트를 37°C, 5% CO2 인큐베이터에 넣고 3-7일 동안 배양한다(바이러스 변형 에 의존).</li>
	<li>인큐베이션을 따라 인큐베이터에서 플레이트를 제거하고 BSC로 가져옵니다. 메틸셀룰로오스 오버레이를 10% 표백제 또는 이중 사분위 암모늄 소독제가 들어 있는 트레이 팬에 넣습니다.</li>
	<li>PBS로 2배 씩 잘 씻고, 10% 표백제 또는 이중 사분위 암모늄이 들어 있는 트레이 팬에 세척을 폐기합니다.</li>
	<li>메탄올:아세톤(1:1 v)의 ~1mL를 추가하고 실온(RT)에서 BSC에서 최소 30분 동안 세포가 플레이트에 고정되도록 합니다. 유기 폐기물에 대한 제도적 정책에 따라 메탄올 : 아세톤을 폐기하십시오.</li>
	<li>아래에 설명된 두 가지 방법 중 하나를 사용하여 ZIKV를 시각화합니다.<ol>
<li>메탄올제거에 이어 5분 동안 크리스탈 바이올렛 액액(0.25%w/v/v/v30%)으로 즉시 얼룩을 제거하였다. 수돗물에 2x를 헹구고 건조하게 두근 다음 눈으로 직접 눈으로 시각화하여 플라크 또는 모노레이어파괴의 증거를 제시합니다.</li>
		<li>또는 초점 형성 분석작업을 수행합니다.<ol>
<li>유기 고정이 남아있을 때까지 접시가 건조하게 하십시오. 참고: 이것은 BSC 외부에서 ~ 2-3 h가 걸리지만 BSC 또는 화학 연기 후드에서 공기 건조로 가속 될 수 있습니다.</li>
			<li>비멸 성 PBS (Mg2 + 및 Ca 2+ 무료)에서 각 우물을 3x3x로 세척하십시오. PBS를 제거하고 각 웰에 블로킹 솔루션(PBS + 3% FBS)을 추가하고 RT에서 15분 동안 바위를 추가합니다.</li>
			<li>블로킹 용액에서 α-ZIKV 또는 α 플라비바이러스 1차 항체(예: 플라비바이러스 그룹 hybridoma D1-4G2-4-15 [4G2])의 웰당 100 μL을 추가합니다. RT에서 최소 4 시간 (바람직하게는 하룻밤, 18 h를 초과하지 않음)에 대한 흔들로 배양하십시오.</li>
			<li>기본 항체를 제거하고 궤도 플레이트 로커에서 PBS(Mg2+ 및 Ca2+ 무료)로 각각 15분 동안 3배 세척합니다.</li>
			<li>차단 버퍼에 희석된 이차 항체(염소 α 마우스 HRP 라벨)의 우물당 100 μL을 추가합니다. RT에서 1 시간 동안 흔들로 인큐베이션하십시오.</li>
			<li>궤도 플레이트 로커에 PBS (Mg2 + 및 Ca 2+ 무료)와 함께 각각 15 분 동안 3 배 세척하십시오.</li>
			<li>염기판 개발 시약의 Aliquot 100 μL(재료의 표)잘 당. 15 분 동안 RT에서 바위 접시.</li>
			<li>기판을 제거하고 수돗물로 플레이트 2x를 헹구어 포시/플라크의 발달 시 반응을 중단합니다. 수돗물을 붓고 정량화하기 전에 접시가 건조하게 하십시오.</li>
			<li>주어진 샘플에 존재하는 FFU의 수를 결정하기 위해 바이러스 성 포시를 카운트.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. 혈중식 관리
<ol><li>Ae. aegypti 모기 2-4 일 포스트 백과를 사용하십시오. 여성 모기를 0.5 L 골판지 판지 팩에 가려진 뚜껑으로 분류하고 설탕을 박탈하십시오 (일반적으로 36-48 h 전 전염성 혈밀). 수분 포화 면공을 통해 광고 리비툼 물을 제공합니다.</li>
	<li>모기가 전염성 혈중에 노출될 것이라는 아침에 수분포화 면공을 제거하십시오.</li>
	<li>투명한 플라스틱 장갑 상자 안에 인공 혈액식이 포함된 저장소를 먹이 장치에 부착합니다.</li>
	<li>글러브박스 안에는 0.5L 골판지 상자에 50-100개의 굶주린 Ae. aegypti 모기가 들어 있는 스크리닝 된 뚜껑이 있는 0.5 L 골판지 상자를 저수지에 부착된 먹이 장치 아래에 놓습니다. 참고: 적절하게 굶주리고 있는 모기는 일반적으로 20분 이내에 먹이를 줄 것입니다. (ZIKV) 바이러스 성 티터가 ~60 분 후에 피더 내에서 감소 할 수 있기 때문에, 이 60 분 이상 연장해서는 안되지만, 느린 인구에서 샘플 크기를 증가시키기 위해 필요에 따라 수유를 연장 할 수 있습니다.</li>
	<li>수유가 완료되면 저수지를 제거하고 갓 만든 10% 표백제에 담급니다.</li>
	<li>-20°C에서 30초 또는 냉장고에서 5분 동안 인큐베이션으로 모기를 냉정한 마취시합니다.</li>
	<li>글러브박스 안에는 모기를 얼음 위에 페트리 접시에 붓습니다. 계산하고 unengorged 모기에서 engorged 여성을 정렬합니다. 70%의 에탄올로 채워진 50mL 튜브 원내관에 침수하여 모기를 폐기하십시오. 모기는 여전히 마취되어 있는 동안, 0.5 L 골판지 판지 상자에 다시 붓고 화면과 뚜껑으로 빠르게 덮습니다. 초과 화면 메시를 판지에서 잘라테이프로 메시를 고정합니다.</li>
	<li>각 판지의 화면에 10% 수성 자당을 여과한 멸균으로 포화 된 면 공을 추가합니다. 모든 모기 상자를 습기를 유지하기 위해 젖은 스폰지가있는 대형 플라스틱 보조 용기에 놓습니다.</li>
	<li>모기 판기가 들어 있는 이차 용기는 27± 1°C의 온도(또는 관심 지역의 조건을 시뮬레이션하기 위해 적절하다)에 80%± 상대 습도 및 16:8 광:암사이클)을 넣습니다. 실험이 완료될 때까지 10%의 자당에 대한 광고 리비툼 액세스를 사용하여 모기를 유지하십시오.</li>
</ol>5. 샘플 수집 및 처리
<ol><li>지정된 일 후 먹이에, 장갑 상자 내에서 기계 적 흡인체를 사용하여 적절한 판지에서 모기의 소정의 수를 흡인. 필요한 수의 모기를 획득한 후 면둥근 면으로 수집 튜브를 캡합니다.</li>
	<li>-20°C에서 30초 간 또는 4°C에서 5분간 인큐베이션으로 모기를 마취합니다.</li>
	<li>글러브박스 안에는 모기를 얼음 위에 페트리 접시에 붓습니다. 두 쌍의 포셉을 사용하여, 각 모기의 다리 의 모든 6을 제거하고 살균 된 스테인레스 스틸 볼 베어링 (7/32") 및 500 μL의 모기 수집 매체 (MCM)를 포함하는 사전 표지 된 2 mL 둥근 바닥 미세 센심 분리 튜브에 배치, 2 % FBS, 1 % 페니실린 - streptocin, 2 μl</li>
	<li>모기를 미네랄 오일 한 방울에 부드럽게 놓고 제지하고, 오일과 모기의 머리와 프로보시스 사이의 접촉을 허용하지 않도록 주의하십시오.</li>
	<li>모기 프로보시스를 10 μL 파이펫 팁에 열 비활성화 FBS 10 μL로 채우십시오. 참고: 또는 파이펫을 자당, 혈액 또는 미네랄 오일로 채울 수 있습니다. 오일은 가벼운 현미경 을 통해 타액 기포의 직접 시각화를 허용합니다.</li>
	<li>모기가 30 분 동안 침을 뱉도록 하십시오. FBS +타액을 함유한 마이크로피펫 팁을 MCM의 100 μL을 포함하는 마이크로센심심분리기 튜브에 배출한 다음, 멸균된 강철 볼 베어링과 500 μL의 MCM을 포함하는 별도의 2mL 원형 하단 미세 센세리후이튜브에 시체를 배치합니다. 바디, 다리 및 타액에 사용되는 튜브가 동일한 모기에서 유래한 세 가지 샘플이 모두 명확하도록 라벨이 부착되어 있는지 확인합니다.</li>
	<li>모기가 침을 흘리는 동안 나머지 모기에 5.3-5.5 단계를 수행하십시오.</li>
	<li>몸과 다리를 포함하는 튜브를 BSC 내에 포함된 비드 밀링 조직 균질화 장치로 운반한다. 모든 신체 및 다리 샘플을 26Hz에서 5분 동안 세리게 하여 바이러스 성 입자를 상체로 방출합니다. 모든 샘플을 200 x g에서 200 x g로 5분 간 명확히 하여 셀룰러 이물질을 배출합니다. 참고: 이 시점에서 샘플은 -80°C에서 동결되거나 즉시 분석할 수 있습니다.</li>
</ol>6. 전염성 분석에 의한 ZIKV 검출
<ol><li>BSC에서, 감염성 분석의 개시 전에 베로 세포 (우물 당 105 세포) 24 시간으로 24 개의 잘 조직 배양 판을 준비합니다. 단일 모기/샘플의 ID로 각각 잘 라벨을 붙입니다.</li>
	<li>샘플이 -80°C에서 동결된 경우 해동을 수 있습니다.</li>
	<li>샘플 한 플레이트를 한 번에 한 접시로 접종하기 전에 베로 셀 플레이트에서 미디어를 제거합니다.</li>
	<li>몸이나 다리를 포함하는 샘플의 경우, 각 우물에 정제 된 수퍼 나탄의 100 μL을 신중하게 알리쿼트하여 펠릿에서 모기 세포 파편을 방해하지 않도록주의하십시오. 참고: 타액 샘플은 필요한 경우 나중에 적정을 위해 샘플을 보존하기 위해 세포에 접종하기 전에 MCM으로 1:1 (v/v)을 희석할 수 있습니다.</li>
	<li>플레이트를 37°C, 5% CO2 인큐베이터로 이동하고 1시간 동안 배양합니다.</li>
	<li>플레이트를 BSC에 반환하고 각 웰에 메틸셀룰룰로오스 오버레이의 ~1mL을 추가합니다. 오버레이 플레이트를 37°C, 5% CO2 인큐베이터에 다시 넣고 3-7일 동안 배양합니다(바이러스/변형에 의존).</li>
	<li>3.6-3.9 단계에 설명된 대로 고정 및 시각화를 수행합니다.</li>
	<li>초점 형성 분석서를 통한 채점과 관련하여, 경현미경하에서 검사를 통해 양성 우물을 정량화한다. 우물에서 세포의 intracytoplasmic 염색의 검출은 바이러스의 존재를 나타냅니다. 샘플은 초점 양성 또는 -negative로만 채점됩니다.</li>
</ol>

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</ol>

저자는 공개 할 것이 없습니다.

여기에 설명된 메서드는 벡터 역량 분석을 수행하기 위한 일반화된 워크플로우를 제공합니다. 일반적인 틀로서, 이러한 방법론의 대부분은 문학 전체에 걸쳐 보존된다. 그러나 수정할 여지가 있습니다(아자르와 위버1에서검토됨). 바이러스(예를 들어, 바이러스 계보, 도전 바이러스의 저장, 바이러스 통로 역사), 곤충학(예를 들어, 모기 집단의 실험실 식민지화, 타고난 면역, 모기 미생물군유전체/바이롬), 실험 변수(예를 들어, 혈액밀 조성, 순차혈액 공급 및 인큐베이션 온도)는 모두 벡터 역량에 영향을 미치는 것으로 알려져 있다. 능력 연구의 방법론적 가변성은 공식적인 메타 분석1,33을배제했기 때문에 ZIKV 발병의 맥락에서 문제가 입증되었습니다.
이 일반적인 방법론 안에서, 모기와 혈액 밀 메이크업의 적당한 기아의 중요성은 과장될 수 없습...

벡터 능력은 종, 인구, 심지어 개인의 수준으로 정의되며, 모기, 진드기 또는 플렙보토민 모래 와 같은 주어진 절지동물의 능력으로 정의되며, 절지동물1,2에서복제 또는 발달로 생물학적으로 에이전트를 획득 및 전송한다. 모기와 절지동물 매개 바이러스(즉, arboviruses)와 관련하여, 이 에이전트는 여성 모기에 의해 비레믹 숙주로부터 면역을 당합니다. 섭취 후, 바이러스는 중구 상피 세포3의작은 인구 중 하나를 생산적으로 감염시켜야하며, 소화 효소에 의한 프로테오분해분해, 미생물(midgut 감염 장벽 또는 MIB)의 존재, 및 분비된 수막 매트릭스와 같은 다양한 생리적 장애물을 극복해야 한다. 미드구트 상피의 감염은 바이러스의 복제와 모기의 개방 순환 시스템으로 미드구트에서 탈출, 또는 혈청 림프, 미드 구트 탈출 장벽을 극복 전파 감염의 발병을 나타냅니다 (MEB). 이 시점에서 바이러스는 이차 조직 (예를 들면, 신경, 근육 및 지방 바디)의 감염을 확립하고 복제를 계속할 수 있습니다, 비록 그 같은 이차 복제는 타액 땀샘의 아신 세포를 감염하기 위하여 바이러스를 위해 엄격하게 필요하지 않을 수 있더라도 (침샘 감염 장벽을 극복). 타액선 아시나르 세포로부터 의충구멍으로 의한 후 타액 덕트로 이동하면 바이러스를 물고 후속 호스트로 접종할 수 있게 하고, 전송 주기1,2,4,5,6,7을완료한다.
모기 벡터 내에서 확산되는 이러한 특성화되고 일반적으로 보존된 메커니즘을 감안할 때, 실험실 벡터 능력 평가는 프로토콜의 차이가1,2존재하지만종종 방법론적으로 유사합니다. 일반적으로, 경구 바이러스 노출 후, 모기는 중간구체, 다리, 난소, 또는 타액 선반과 같은 개별 조직이 바이러스 감염, 보급 감염, 보급 감염/잠재적 인 트랜스변변성 전염 및 전파 된 감염 /잠재적 인 전송 능력에 대해 분석 될 수 있도록 해부된다8. 타액선에 바이러스의 단순한 존재는, 그러나, 일부 벡터/바이러스조합1,2,4,5,7,9에서타액 선 탈출/송신 장벽(SGEB)의 증거를 감안할 때, 전송 능력의 확실한 증거가 아니다. 전송 능력을 증명하는 표준 방법은취약한동물(10,11,12)에모기 전송을 유지한다. 그러나, 많은 arboviruses에 대해 이 것들은 면역 손상된뮤린모델(13,14,15,16)의사용을 필요로 한다는 점을 감안할 때, 이 방법은 종종 비용 금지이다. 일반적으로 사용되는 대안은 역전사-폴리머라제 연쇄 반응(RT-PCR) 또는 바이러스 게놈 또는 전염성 입자의 존재를 각각 입증하기 위해 전염되는 분석으로 분석될 수 있는 모기 타액의 수집이다. 이러한 체외 타액 수집 방법은 생체 내 수유 중에 증착된 바이러스의 양을12또는 과소 평가할 수 있으며, 이는 이러한 데이터를 주의해서 해석해야 한다는 것을 나타냅니다. 그럼에도 불구하고, 체외 방법은 타액에서 바이러스의 단순한 존재의 관점에서 분석할 때 매우 유용하며, 이는 전염 가능성을 나타낸다.
arboviral 질병 발발에 있는 모기 벡터의 역할을 결정하기 위한 2개의 중요한 접근이 존재합니다. 첫 번째 방법은 모기가 활성 전송18,19,20,21,22,23,24의맥락에서 수집되는 현장감시를포함한다. 그러나, 감염률이 전형적으로 매우 낮다는 점을 감안할 때(예를 들어, 미국21에서활성 Zika 바이러스(ZIKV) 순환 영역에서 모기의 감염률 추정0.061% 추정), 잠재적 벡터 종의 유죄 는 1,600명 중 1개에서 감염된 개인을 트래핑 방법론 25,26 및 무작위 확률(예를 들어) 트래핑 방법으로 심하게 편향될 수 있다. . 이를 고려하여, 주어진 연구는 전송에 관여하는 모기를 정확하게 샘플링하기 위하여 원시 수 또는 종 다양성 둘 다에 있는 충분한 모기를 취득하지 않을 수 있습니다. 대조적으로, 벡터 능력 분석은 실험실 조정에서 착수되어 경구 복용량과 같은 매개 변수를 엄격하게 제어 할 수 있습니다. 현장 환경에서 모기 감염 및 전송 능력의 진정한 복잡성을 완전히 대표할 수는 없지만, 이러한 실험실 평가는 arbovirology 분야에서 강력한 도구로 남아 있습니다.
여러 모기 종, 인구 및방법(27,28, 29,30,31,32)에서ZIKV를 통한 다양한 벡터 역량 분석뿐만 아니라 벡터 능력 평가1의최근 검토를 기반으로, 일반적인 벡터 역량 워크플로우와 관련된 몇 가지 프로토콜을 여기에서 설명한다. 이러한 실험에서, 미주 (살바도르의 도시, 브라질; 도미니카 공화국; 그리고 낮은 리오 그란데 밸리, TX, 미국)에서 세 Ae. aegypti 인구는 ZIKV의 단일 변형에 노출되었다 (멕스 1-7, GenBank 가입: KX247632.1) 4, 5, 또는 6 로그10 초점 단위에 의해 인공 요법 이어서, 해부 및 세포 배양 기반 전염 분석등을 통해 다양한 시간 동안 외래 배양(2, 4, 7, 10 및 14일)을 거쳐 감염, 보급감염 및 전송 능력의 증거를 분석하였다. 현재 워크플로/프로토콜은 ZIKV에 최적화되어 있지만, 많은 원소는 절지동물 봉쇄 및 생물 안전 수준 2 및 3(ACL/BSL2 또는 ACL/BSL3)에서 다른 모기 매개 아르보바이러스와 직접 변형될 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>3mL 표준 리저버</td><td>R37P30</td><td>Hemotek Ltd</td><td>곤충 장비</td></tr><tr><td>7/32" 스테인리스 스틸 440 등급 C 볼</td><td>4RJH9</td><td>그레인저</td><td>그라인딩 매체</td></tr><tr><td>아세톤, 조직학적 등급, 피셔 화학, 폴리 병, 4L, 4/케이스</td><td>A16-P4</td><td>FisherScientific</td><td>고정액</td></tr><tr><td>아데노신 5'-트리포스페이트 디소듐 염 수화제, 미생물, BioReagent, 세포에 적합 culture</td><td>A6419-1G</td><td>MilliporeSigma</td><td>시약</td></tr><tr><td>안티 플라비바이러스 그룹 항원 항체, 클론 D1-4G2-4-15</td><td>MAB10216</td> 초점 형성 분석을 위한 <td>MilliporeSigma</td><td>1차 항체</td></tr><tr><td>안티 마우스 IgG (H+L) 항체, 인간 혈청 흡착 및 과산화효소 표지, 1.0mL/Bottle</td><td>5450-0011</td><td>KPL/Seracare</td><td>초점 형성 분석을 위한 2차 항체</td></tr><tr><td>표백제</td><td>NC0427256</td><td>FisherScientific</td><td>오염 제거</td></tr><tr><td>Corning, 세포 배양 처리 플라스크, 150cm2, 통풍 캡, 50개 케이스</td><td>10-126-34</td><td>FisherScientific</td><td>세포 배양 소모품</td></tr><tr><td>Costar 세포 배양 플레이트, 24-well, 5/bag, 100/case, Corning</td><td>07-200-740</td><td>FisherScientific</td><td>세포 배양 소모품</td></tr><tr><td>Costar 세포 배양 플레이트, 96-well, 5/bag, 100/case, Corning</td><td>07-200-91</td><td>FisherScientific</td><td>세포 배양 소모품</td></tr><tr><td>크리스탈 바이올렛</td><td>C0775-100G</td><td>MilliporeSigma</td><td>Stain</td></tr><tr><td>Eppendorf Snap Cap 마이크로 원심분리기 Safe-Lock 2mL 튜브, 500/케이스</td><td>05-402-7</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>Falcon 15mL 원추형 원심관</td><td>14-959-70C</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>Falcon 50mL 원추형 원심관</td><td>14-959-49A</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>Falcon 일회용 폴리스티렌 혈청학 10mL 피펫, 200/케이스</td><td>13-675-20</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>Falcon 일회용 폴리스티렌 혈청학 1mL 피펫, 1000/케이스</td><td>13-675-15B</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>Falcon 일회용 폴리스티렌 혈청학 25mL 피펫, 200/케이스</td><td>13-675-30</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>팔콘 일회용 폴리스티렌 혈청학 5mL 피펫, 200/케이스</td><td>13-675-22</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>팔콘 표준 조직 배양 접시</td><td>08-772B</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>소 태아 혈청-프리미엄, 500mL</td><td>S11150</td><td>애틀랜타 생물학제</td><td>세포 배양 시약</td></tr><tr><td>Fisherbrand 경제 일반 유리 현미경 슬라이드</td><td>12-550-A3</td><td>FisherScientific</td><td>모기</td></tr><tr><td>FU1 피더</td><td>FU1-0</td><td>Hemotek Ltd</td><td>곤충 장비의 고정화;</td></tr><tr><td>칼슘 및 마그네슘이 함유 된 공급 장치 Gibco DPBS, 10 x 500mL 병</td><td>140-040-182</td><td>FisherScientific</td><td>세포 배양 시약</td></tr><tr><td>Gibco Fungizone, Amphotericin B, 250&mu; g/mL, 50mL/병</td><td>15-290-026</td><td>FisherScientific</td><td>세포 배양 시약</td></tr><tr><td>Gibco 페니실린-스트렙토마이신(10,000 U/mL), 100mL/병, 20병/케이스</td><td>15-140-163</td><td>FisherScientific</td><td>세포 배양 시약</td></tr><tr><td>Gibco, 트립신-EDTA(.25%), 페놀 레드, 20 x 100mL 병</td><td>25-200-114</td><td>FisherScientific</td><td>세포 배양 시약</td></tr><tr><td>Gibcom DMEM, 고포도당, 10 x 500mL 병</td><td>11-965-118</td><td>FisherScientific</td><td>세포 배양 시약</td></tr><tr><td>인간 혈액, 불특정 성별, Na-구연산염, 1 단위</td><td>7203706</td><td>Lampire</td><td>혈액 가루 준비</td></tr><tr><td>InsectaVac 흡인기</td><td>2809B</td><td>Bioquip</td><td>곤충 장비</td></tr><tr><td>메탄올, 인증 ACS, 피셔 화학, 호박색 유리병, 4L, 4/케이스</td><td>A412-4</td><td>FisherScientific</td><td>고정제</td></tr><tr><td>메틸 셀룰로오스, 점도 : 3,500-5,600 cP, 물에서 2 % (20 &deg; C), 250g/병</td><td>M0512-250G</td><td>MilliporeSigma</td><td>세포 배양 시약</td></tr><tr><td>Micro-chem Plus 소독제 세제</td><td>C849T34</td><td>Thomas Scientific</td> 오염 제거; 분자 생물학을 위한 <td>이중 4차 암모늄</td></tr><tr><td>미네랄 오일, BioReagent의</td> 작업 희석 <td>M5904-5X5ML</td><td>MilliporeSigma</td><td>모기</td></tr><tr><td>O-링</td>의 고정 <td>OR37-25</td><td>Hemotek Ltd</td><td>곤충 장비</td></tr><tr><td>플라스틱 플러그</td><td>PP5-250</td><td>Hemotek Ltd</td><td>곤충 장비</td></tr><tr><td>PS6 전원 장치(110-120V)</td><td>PS6120</td><td>Hemotek Ltd</td><td>곤충 장비; 전원</td></tr><tr><td>: 루비스 집게, 오프셋 블레이드, 극세 포인트</td><td>4525</td><td>Bioquip</td><td>곤충 장비</td></tr><tr><td>Sarstedt Inc, 2mL 나사 캡 마이크로 튜브, 원뿔형 바닥, O- 링 캡, 멸균, 1000 / 케이스</td><td>50-809-242</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>설탕, BioUltra, 분자</td>생물학 <td>84097-250G</td><td>MilliporeSigma</td><td>시약</td></tr><tr><td>ThermoScientific, ART Barrier Low Retention 1000&mu; L 피펫 팁, 100 팁/랙, 8 랙/팩, 4 팩/케이스</td><td>21-402-487</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>ThermoScientific, ART Barrier Low Retention 200&mu; L 피펫 팁, 96 팁/랙, 10 랙/팩, 5 팩/케이스</td><td>21-402-486</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>ThermoScientific, ART Barrier Low Retention 20&mu; L 피펫 팁, 96 팁/랙, 10 랙/팩, 5 팩/케이스</td><td>21-402-484</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>ThermoScientific, ART Barrier 저 보유, 확장 리치 10&mu; L 피펫 팁, 96 팁/랙, 10 랙/팩, 5 팩/케이스</td><td>21-402-482</td><td>FisherScientific</td><td>플라스틱 소모품</td></tr><tr><td>TissueLyser II</td><td>85300</td><td>QIAGEN</td><td>균질화</td></tr><tr><td>TrueBlue 과산화효소 기판 키트, 200mL</td><td>5510-0030</td><td>Seracare</td><td>초점 형성 분석을 위한 개발 솔루션</td></tr><tr><td>Vero</td><td>CCL-81</td><td>American Type Culture Collection</td><td>바이러스를 증폭하고 감염 분석을 수행하는 포유류 세포주</td></tr><tr><td>Vero C1008 [Vero 76, clone E6, Vero E6]</td><td>CRL-1586</td><td>American Type Culture Collection</td><td>바이러스를 증폭하고 감염 분석을 수행하는 포유류 세포주</td></tr></tbody></table>

지카 바이러스를 사용하여 aedes aegypti 모기에 벡터 역량 분석

Vector Competence Analyses on Aedes aegypti Mosquitoes using Zika Virus

제시된 절차는 감염의 비율을 결정하기 위하여 실험실 조건의 밑에 Zika 바이러스를 가진 Aedes aegypti 모기를 감염, 보급한 감염 및 문제의 모기 집단에 있는 바이러스의 잠재적인 전송을 확인하기 위하여 일반화한 방법론을 기술합니다. 이러한 절차는 전 세계적으로 벡터 역량 평가에서 다양한 수정과 함께 널리 활용됩니다. 그(것)들은 주어진모기 (즉, 종, 인구, 개별)가 주어진 에이전트의 전송에서 재생할 수 있는 잠재적인 역할을 결정하는 데 중요합니다.

Ae의 세 인구. 미주(살바도르, 브라질, 도미니카 공화국; 리오 그란데 밸리, TX, 미국)의 아이집트는 미주(ZIKV Mex 1-7, 치아파스 주, 멕시코, 2015)에서 혈액밀 티터(4, 5, 6 log10 FFU/mL)에서 인공 혈액 세척을 통해 ZIKV의 발병 균주에 노출되었다. 일 2, 4, 7, 10 및 14 소독에서, 모기의 하위 세트는 감염, 보급 및 잠재적 인 전송 속도를 결정하기 위해 처리되었다.
4로그10 FFU/mL의 혈중 티터에서 ZIKV Mex 1-7, Ae. aegypti 살바도르에서, 브라질은 4일과 14일 후 각각 12.5%와 11.1%의 비율로 감염되었으며, 바이러스에 관찰된 바이러스(1)에서 관찰된 바이러스의 증거없이 바이러스를 검출하였다. 5로그 10 FFU/mL로 티터를 증가시켜 4일,10일, 14...

제시된 프로토콜은 봉쇄 환경에서 Zika와 같은 주어진 바이러스에 대한 Aedes aegypti 모기 집단의 벡터 역량을 결정할 수 있다.

지카 바이러스를 사용하여 Aedes aegypti 모기에 벡터 역량 분석

The procedures presented describe a generalized methodology to infect Aedes aegypti mosquitoes with Zika virus under laboratory conditions to determine ...

아르보바이러스(arbovirus)에 의해 매개되는 발생 사례에서 대응책은 주로 모기 박멸에 국한됩니다. 따라서 매개체 적합성 분석은 특정 아르보바이러스의 매개체가 될 수 있는 모기 집단과 종을 결정하여 방제 대상을 설정할 수 있게 하므로 매우 중요한 예방 전략입니다. 따라서 모기와 기타 매개체의 감염성 질환 전파 역할을 평가하기 위한 도구 상자에서 가장 중요한 구성 요소 중 하나가 바로 매개체 적합성 연구입니다. 이러한 실험을 통해 우리는 모기나 진드기의 종뿐만 아니라 지리적 계통, 그리고 서로 다른 바이러스나 기타 감염성 유기체의 매우 특정한 균주까지 매우 정밀하게 제어할 수 있으며, 이를 통해 세계 특정 지역에서 서로 다른 병원체를 전파하는 다양한 종의 위험성에 대해 매우 정확하고 잘 제어된 데이터를 얻을 수 있습니다. 감염된 모기를 다루는 작업에는 실험자에 대한 위험과 감염된 모기의 유출 위험을 최소화하기 위해 전용 시설, 교육, 경험 및 세심한 계획이 필요합니다. 따라서 이 시설의 신입 연구원이 비감염 혈액 모기를 사용하여 기술과 작업 흐름을 익히는 시간을 갖는 것이 매우 중요합니다.노출 당일에 절지동물 격리 시설의 전원을 켜서 급이 장치를 예열합니다. 갓 채취한 시트르산염 또는 헤파린 처리된 인간 혈액과 바이러스 스톡을 1:1 부피 비율로 혼합하고, 표준 3 mL 저장조 장치 위에 감염되지 않은 일반 마우스의 피부를 덮습니다. 덮개가 있는 저장조를 흰색 종이 타월 위에 놓고, 감염성 혈액 약 2 mL를 1 mL씩 나누어 저장조에 추가합니다.그 다음, 키친타월로 확인하여 누출이 없는지 점검하십시오. 감염 분석을 수행하기 24시간 전에 Vero 세포가 담긴 24-웰 세포 배양 플레이트를 준비하고, 각 웰에 모기의 식별 정보와 샘플명을 표시하십시오. 모기가 감염된 혈액 식사를 하게 될 날 아침에, 물에 젖은 솜 뭉치를 제거하고 투명 플라스틱 밀폐 글로브 박스를 사용하여 인공 혈액 식이 저장조를 급이 장치 리드에 부착하십시오.굶긴 모기가 들어있는 판지 상자를 급여 장치 아래의 글로브 박스 안에 넣습니다. 급여가 완료되면 저장조를 꺼내어 갓 준비한 10% 표백제 용액에 담급니다. 글로브 박스 내에서 냉각 마취된 모기를 얼음 위에 놓인 페트리 접시에 붓고, 흡혈한 모기와 흡혈하지 않은 모기를 분류합니다.흡혈한 모기들을 다시 판지 상자에 넣고, 빠르게 망과 뚜껑으로 덮습니다. 상자 밖으로 나온 과도한 망 부분을 잘라내고, 뚜껑을 테이프로 고정합니다. 멸균 여과된 10%sucrose에 적신 솜 뭉치를 망에 추가하고, 습도를 유지하기 위해 젖은 스펀지가 들어 있는 커다란 플라스틱 2차 용기에 상자를 넣습니다.2차 용기를 27°C에서 배양하며, 실험이 완료될 때까지 모기가 설탕물을 자유롭게 섭취할 수 있도록 합니다. 기계식 흡입기를 사용하여 카톤에서 정해진 수의 배양된 모기를 수집하고, 수집이 끝나면 수집 튜브의 입구를 코튼 라운드로 막습니다. 글로브 박스 내에서, 저온 마취된 모기를 얼음 위에 놓인 페트리 접시에 붓습니다.모기 한 마리당 여섯 개의 다리를 모두 제거하여, 멸균된 스테인리스강 볼 베어링과 500 µL의 모기 수집 배지(MCM)가 들어 있는 라벨링 된 2 mL 마이크로 원심분리 튜브에 넣습니다. 모기의 머리나 구침에 오일이 닿지 않도록 주의하며 미네랄 오일 한 방울 위에 모기를 조심스럽게 놓습니다. 10 µL의 열 불활성화 FBS가 채워진 마이크로 피펫 팁에 구침을 삽입하고, 모기가 30분 동안 타액을 분비하도록 둡니다.타액이 묻은 피펫 팁을 100 µL의 MCM이 들어 있는 마이크로 원심분리 튜브에 배출하고, 사체는 멸균된 스틸 볼 베어링과 500 µL의 MCM이 들어 있는 별도의 2 mm 튜브에 넣습니다. 튜브를 생물안전작업대 내의 비드 밀링 조직 균질화 장치로 옮겨, 모든 신체 및 다리 시료를 26 Hz에서 5분 동안 분쇄하여 상층액으로 바이러스 입자를 용출시킵니다. 세포 잔해를 침전시키기 위해 모든 시료를 200 ×g에서 5분 동안 원심분리하여 청징화합니다.시료를 접종하기 직전에, 이전에 준비한 Vero 세포에서 배지를 제거합니다. 펠릿의 모기 세포 잔해를 건드리지 않도록 주의하며, 몸통 또는 다리에서 얻은 정제된 상층액 100 µL를 각 웰에 조심스럽게 분주합니다. 그런 다음, 플레이트를 1시간 동안 배양합니다.배양 후, 각 웰에 1 mL의 메틸셀룰로오스 오버레이를 추가하고 플레이트를 인큐베이터에 넣어 3~7일 동안 배양합니다. 오버레이 플레이트를 인큐베이터에서 꺼내 생물안전작업대(BSC)로 옮깁니다. 메틸셀룰로오스 오버레이를 10% 표백제가 담긴 트레이 팬에 버리고, 각 웰을 PBS로 2회 세척하며 각 세척액은 트레이 팬에 버립니다.PBS를 제거하고, 웰당 1 mL의 메탄올-아세톤을 첨가하여 30분 동안 세포가 플레이트에 고정되도록 합니다. 그 후, 고정액을 버리고 플레이트를 건조시킵니다. 오비탈 플레이트 로커(orbital plate rocker)에서 웰당 3회씩, 회당 15분 동안 비멸균 PBS로 세척한 다음, 각 웰에 1 mL의 블로킹 용액을 첨가하고 다시 15분 동안 플레이트를 흔들어 줍니다.각 웰에 100 µL의 anti-Zika Virus 또는 anti-flavivirus 1차 항체를 첨가하고, 플레이트를 흔들어주며 하룻밤 동안 배양합니다. 다음 날, 1차 항체를 제거하고 PBS로 세척 과정을 반복합니다. 마지막 세척 후, 100 µL의 2차 항체를 첨가하고 흔들어주며 1시간 동안 배양합니다.PBS로 세척 과정을 반복한 다음, 웰당 100 µL의 기질 발색 시약을 첨가하고 플레이트를 15분 동안 흔들어 줍니다. 초점(foci) 또는 플라크(plaques)가 형성되면, 플레이트를 수돗물로 헹구어 반응을 중단시킵니다. 수돗물을 따라 버리고 플레이트를 공기 중에서 건조시킨 후, 바이러스 초점의 수를 정량하여 해당 시료에 존재하는 초점 형성 단위(focus forming units)의 수를 결정합니다.세 가지 모기 집단을 다양한 혈액 식사 역가의 지카 바이러스 유행 균주에 노출시켰습니다. 이후 2주 동안 모기 하위 집단을 처리하여 감염, 전파 및 잠재적 전송률을 결정하였습니다. 낮은 혈액 식사 역가에서 브라질 살바도르 출신 모기들은 4일, 10일, 14일의 외부 잠복기 후에 감염되었으며, 분석한 다리에서는 전파된 감염의 증거가 관찰되지 않았습니다.가장 높은 역가에서 바이러스가 모기의 다리에서는 검출되었으나, 타액에서는 검출되지 않았습니다. 도미니카 공화국 출신 모기가 감염에 가장 민감했으며, 테스트한 모든 혈액 식사 역가에서 전송 능력이 가장 뛰어난 것으로 나타났습니다. 세 가지 용량을 모두 섭취한 모기는 감염 7일째에 바이러스 확산이 확인되었으며, 감염 후 14일째에 전송 능력을 보였습니다.낮은 혈액 식사 역가에 노출된 텍사스 리오그란데 밸리(Rio Grande Valley) 유래 모기들은 감염 후 이르면 4일째에 감염되었으며, 전신 감염은 14일 후에 발견되었습니다. 가장 높은 역가에 노출된 코호트에서는 감염 후 2일째부터 감염이 관찰되었고, 4일, 10일, 14일에 정점에 도달했습니다. 전신 감염은 7일째에 관찰되었으며, 10일째에는 단 한 마리의 모기만이 전파 능력을 갖추었습니다.이 프로토콜을 수행할 때는 신속함보다 안전하게 작업하는 것이 중요합니다. 따라서 감염되었거나 감염 가능성이 있는 모기는 다리나 날개를 제거할 때까지 반드시 글로브 박스나 생물 안전 작업대(bio safety cabinet) 내에서 취급하십시오. 기본적인 매개체 역량 분석 워크플로우는 전파 연구와 같은 후속 분석을 위한 감염 모기를 생성하거나, 모기, 바이러스 및 마이크로바이옴 간의 상호작용을 조사하는 데 응용될 수 있습니다.매개체 적합성은 바이러스성 질병의 유행 시기에 바이러스 전파에서 모기가 수행하는 역할을 이해하는 데 있어 수십 년 동안 매우 중요한 도구였습니다. 또한 이 방법은 바이러스와 모기 매개체 간의 상호작용에 대해 새롭게 밝혀지는 정보들을 반영하며 수년에 걸쳐 발전해 왔습니다. 두 가지 예를 들자면, 모기 내 바이러스 집단의 유전적 다양성과 그 복잡성이 전파 능력에 매우 중요하다는 사실이 밝혀졌으며, 이제는 바이러스 집단에 대한 새로운 시퀀싱 방법을 통해 매개체 적합성 연구에 이러한 내용을 포함시킬 수 있게 되었습니다.또한 우리는 모기의 위장관에 서식하는 박테리아 및 기타 생물군이 모기의 전파 능력에 큰 영향을 미칠 수 있다는 점을 알게 되었으며, 이제 새로운 시퀀싱 방법을 통해 해당 생물군을 평가할 수 있습니다. 따라서 벡터 능력(vector competence) 측정법은 이러한 복잡한 상호작용에 대해 더 많이 알게 됨에 따라 발전해 왔으며 지금도 계속 진화하고 있는 방법입니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Immunology and Infection

면역학 및 감염학

이 프로토콜은 두 개의 플라스미드 감염성 cDNA 클론으로부터 감염성 Zika 바이러스의 회수를 설명합니다.

새로운 세계 Zika 바이러스 전염성 클론으로부터 재조합 바이러스의 구조 및 특성 규명

Aedes aegypti 모기 Wolbachia 감염 arboviruses의 전송을 억제 하는 자연적인 인구에 발표 되는. 우리 실험실 적응 및 선택 최소화 하기 위해 예방 조치를 복용 실험 및 필드 릴리스, 후면 Ae aegypti Wolbachia 감염 실험실에서 하는 방법을 설명 합니다.

Aedes aegypti 모기 감염 Wolbachia 유지

현재 다중화 Zika, chikungunya, 뎅 그 열 바이러스 복잡 한 샘플 준비 및 비싼 장비를 요구 하 고 저 리소스 환경에서 사용 하기 어려운 검출 하는 진단. 우리는 감지 하 여 높은 감도와 특이성이이 바이러스를 차별화 대상 특정 가닥 displaceable 프로브 등온 증폭을 사용 하는 진단을 보여줍니다.

멀티플렉스 등온 증폭 Zika, Chikungunya, 뎅 그 열의 1 감지 진단 플랫폼을 기반으로

모기 품 어진 바이러스 전송의 효율적인 제어를 위해 각각 모기의 벡터 잠재력의 지식은 특정 관심의 이다. 우리는 Aedes albopictus Zika 바이러스의 전송에 대 한 3 개의 다른 Culex taxa의 벡터 역량을 분석 하는 방법으로 강제 타 액 분 비를 설명 합니다.

모기의 벡터 역량을 분석 하는 방법으로 타 액 분 비를 강제

우리는, 사용 하 여 인간의 혈 청 기본 인간 세포 감염 부 량 정량 실시간 중 합 효소 연쇄 반응에 의해 Zika 바이러스 감염에 뎅기열 바이러스에 대 한 기존의 면역의 효과 평가 하는 방법을 설명 합니다.

기본 인간 세포에서 Zika 바이러스의 항 체 의존 향상의 정량화

이 프로토콜은 CRISPR/Cas9 유전자 편집 도구와 함께 작동하도록 최적화된 Culex quinquefasciatus 태아를 위한 미세 주입 절차를 기술합니다. 이 기술은 이 저학질병 벡터에 있는 유전 기술을 구축하는 데 사용될 수 있는 사이트 특정, 유전성, 생식선 돌연변이를 효율적으로 생성할 수 있습니다.

컬렉스 퀸케파시아투스의 효율적인 부위 별 돌연변이 발생을 위한 배아 미세 주입 기술

현미경 기생충 에드hazardia aedis를배양하는 프로토콜. 기생충은 애벌레 단계에서 수평 전송을 통해 다음에 Aedes aegypti 모기의 한 세대에서 통과하고 성인 단계에서 수직 전송에 선행됩니다. 살아있는 포포라진은 감염된 계란에서 장기적으로 살아남습니다.

Aedes aegypti 모기에서 현미경 포리디안 기생충 에드hazardia aedis의 전파

경구 수유 및 흉강내 주사 감염을 포함하는 이 방법론은 아르보 바이러스 감염에 대한 중장 및/또는 침샘 장벽의 영향을 효과적으로 평가할 수 있습니다.

경구 수유 및 미세 주입에 의한 성인 모기의 실험적 바이러스 감염

AC-DC 전기 침투를 사용하여 사람의 손에 있는 Culex tarsalis 모기의 프로빙 및 섭취 행동을 연구하기 위한 절차가 설명되어 있습니다.

인간의 손에 Culex tarsalis 모기의 프로빙 및 섭취 행동 연구를 위한 AC-DC 전기 침투 검사

이 프로토콜은 clonal 세포 라인 선택과 자신의 동족 GPCRs에 합성 arthropod neuropeptides의 구조 - 활동 관계를 분석하기 위해 칼슘 bioluminescence 분석에 대한 지침을 제공합니다. 이 분석은 합성 아날로그 설계 및 펩타이드 / 약물 리드 발견 수용체 deorphanization 및 구조 - 활동 관계 연구에 사용될 수 있습니다.

모기의 기능 분석을 위해 칼슘 Bioluminescence 분석 ( Aedes aegypti)와 틱 ( Rhipicephalus microplus) G 단백질 결합 수용체

학습하세요 지카 바이러스를 사용한 Aedes aegypti 모기의 벡터 역량 분석 방법을 통해 아르보바이러스 전파 위험을 평가하는 기술을 익히세요. 이 프로토콜은 감염병 예방을 위한 중요한 연구 도구를 제공합니다.

지카 바이러스를 사용하여 Aedes aegypti 모기에 벡터 역량 분석

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