Name: 형태학적 및 프로테오믹 분석을 위한 배아 우수한 자궁 경부 간리아에서 쥐 동정 신경을 배양 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-09-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 51 s
Description: 배우세요 쥐 배아 우수한 자궁 경부 간리아에서 교감 신경 세포를 배양하는 방법을. 면역세포화학 염색과 질량 분석을 활용한 형태학적 및 프로테오믹 분석을 통해 신경 발달 메커니즘을 연구할 수 있습니다.

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이 작품은 세인트 메리 의 캘리포니아 대학에서 교수 개발 기금 과 여름 연구 프로그램 보조금에 의해 지원되었다. 저자는 또한 데이비스에 캘리포니아 대학의 파멜라 린 박사와 UC 버클리 질량 분광시설에서 안토니 이아바론 박사에게 감사를 표하고 싶습니다. 저자는 또한 비디오 제작 및 편집에 대한 그녀의 도움에 대한 세인트 메리 의 캘리포니아 대학의 대학 커뮤니케이션 사무실에서 헤일리 넬슨에게 감사드립니다.

동물과 관련된 연구에서 수행 된 모든 절차는 캘리포니아 세인트 메리 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC)에 의해 승인되었습니다. 세인트 메리 대학의 동물 관리 및 사용 지침은 국립 보건 원 (https://olaw.nih.gov/sites/default/files/PHSPolicyLabAnimals.pdf 및 https://olaw.nih.gov/sites/default/files/Guide-for-the-Care-and-Use-of-Laboratory-Animals.pdf)의 실험실 동물 복지 사무소에서 제공하는 지침에 따라 개발되었습니다.
1. 문화 매체 의 준비 (제어 매체라고도 함)
<ol><li>DMEM에서 아래 나열된 순서대로 멸균 500mL 플라스크에 190mL, 20 mg/mL 지방산 프리 소 세럼 알부민(FAF-BSA)의 10mL, DMEM의 10mL, 200mM L-글루타민의 2.8mL, 인슐린 셀레늄-트랜스퍼린 혼합물 4mL, 125 μg/mL 신경 성장 인자(DMEM의 0.2% 불활성 단백질 안정제), 함F-12 중형 200mL.</li>
	<li>파이펫에 단백질의 집착을 방지하기 위해 인슐린 셀레늄 -transferrin 및 NGF와 같은 단백질 함유 용액이 첨가되기 전에 FAF-BSA를 함유하는 배지로 파이펫을 코팅해야 합니다.</li>
	<li>플라스크를 소용돌이치면 각 첨가 후 재료를 섞습니다. F-12를 추가한 후 25mL 파이펫과 철저히 섞으세요.</li>
	<li>알리쿼트 문화 매체는 10mL 알리쿼트에 저장하여 -80°C에 저장한다. 알리쿼트는 활동 손실 없이 6개월 동안 보관할 수 있습니다.</li>
</ol>2. 뉴런 을 배양하기위한 플레이트 준비
<ol><li>폴리 D-리신 의 1 mg / mL 주식을 희석 (0.5 M 트리스 버퍼, pH 8에서 만든) 멸균 증류수100 μg / mL에.</li>
	<li>프로테오믹 또는 게놈 분석을 위해, 해부 1~2일 전에, 폴리-D-리신(PDL)의 멸균 100 g/mL 약 2mL로 6웰 플레이트를 코팅한다. 이것은 우물에 세포 접착을 보장하기 위해 필요합니다. 접시를 필름으로 감싸고 접시를 4 °C에서 밤새 보관하십시오.</li>
	<li>형태학적 분석 및 현미경 검사법의 경우, 12mm2개의 미리 처리된 독일 유리 커버립(이전에18 설명된 바와 같이 질산 치료를 사용하여 세척할 수 있거나 구입한) 24웰 플레이트의 각 우물에 놓습니다.<ol>
<li>폴리 D-리신(PDL)의 멸균 100g/mL0.3mL로 커버립을 코팅합니다. 접시를 4°C에서 하룻밤 동안 보관하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>해부의 날에, 해부의 시작 전에, 우물에서 폴리 D-lysine 용액을 제거하고 멸균 증류수와 함께 우물을 5 번 헹구고, 낮은 포도당 DMEM으로 한 번.</li>
	<li>간질 (세포를 도금하기 전에 약 한 시간)의 효소 소화 동안, 플레이트에서 DMEM을 흡인하고 제어 매체의 0.3 mL로 대체합니다. 플레이트를 가습 챔버에 5% CO2 미만으로 35.5°C로 저장합니다.</li>
</ol>3. 해부 설정
<ol><li>해부용 200mL 미디어 준비(해부 미디어라고 함)<ol>
<li>저혈당 DMEM(1 mg/mL 포도당 포함)에 20 mg/mL 지방산 프리 소 세럼 알부민(FAF-BSA)의 8mL과 100x 페니실린-스트렙토마이신 의 2mL를 멸균 라이보비츠의 L-15 중형(또는 공기 완충제 중형)의 193mL에 추가합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>후드에서, 해부에 대한 다음 항목을 설정 : 각 튜브에 해부 미디어의 약 20 mL와 4 50 mL 멸균 원추형 튜브, 해부 미디어의 1.5 mL와 4 멸균 35mm 접시, 원심분리에 대한 해부 미디어의 20 mL, 1 개의 살균 형질 1 개, 1 개의 살균 튜브에 대한 1 개의 살균 형 질 튜브, 1 개의 살균 튜브 1 개 , 및 해리된 세포를 수집하기 위한 멸균 10mL 튜브.</li>
	<li>마른 비드 멸균제를 사용하여 미세 한 쌍의 미세 집게 (4 번 또는 5 번 포셉)를 적어도 1 분 동안 살균하십시오.</li>
</ol>4. 배아 쥐 새끼로부터 우수한 자궁 경부 간질의 격리
<ol><li>임신 한 쥐에서 E21 배아의 제거 참고: 주변 영역이 철저히 살균되면 자궁 경적을 후드 외부에서 제거할 수 있습니다.<ol>
<li>CO2 흡입을 사용하여 임신 한 쥐를 안락사시하십시오. 복부 부위에서 털을 깎고 70 %의 알코올로 부위의 피부를 닦아 살균하십시오.</li>
		<li>멸균 가위와 집게의 신선한 세트를 사용하여, 피부를 통해 잘라 다음 근육 층은 배아를 포함하는 자궁 뿔을 노출. 새로운 가위와 집게 세트를 사용하여 배아로 자궁 뿔을 제거하여 그 과정에서 내장을 손상시키지 않도록 주의하십시오.</li>
		<li>배아와 자궁 뿔을 150mm2 멸균 페트리 접시로 옮기고 후드로 옮긴다.</li>
		<li>새로운 집게와 가위를 사용하여 자궁 경적에서 배아를 제거하고 양막과 태반에서 배아를 분리합니다.</li>
		<li>배아를 안락사시키기 위해 오른팔 아래 의 중간선을 따라 배아의 척수를 잘라냅니다. 이것은 또한 SCG의 제거 도중 경동맥에서 출혈을 감소시킬 것입니다.</li>
		<li>이러한 배아를 해부 매체를 포함하는 준비된 50mL 원내 튜브로 이송한다. 배아가 미디어에 잠겨 있는지 확인합니다. 각 튜브는 최대 3개의 배아를 보유할 수 있습니다.</li>
	</ol></li>
	<li>배아로부터 우수한 자궁 경부 신경절의 격리<ol>
<li>해부 매체에서 1개의 새끼를 멸균 150mm2 페트리 접시에 고체 기판(파라핀 왁스 또는 실리콘 폴리머)으로 반으로 채워져 기판 위에 등쪽 표면을 전달합니다. 멸균 23G 바늘 3개를 사용하여 새끼를 각 팔 아래에 바늘 1개, 입을 통해 세 번째 바늘로 접시에 고정하여 목을 조심스럽게 과도하게 확장합니다.</li>
		<li>멸균 미세 집게 (4 번 또는 5 번 포셉)를 사용하여 목 부위의 피부를 잘라 내어 침샘을 노출시하십시오. 미세 한 집게를 사용 하 여 이 땀샘을 제거 합니다.</li>
		<li>쇄골과 기관 근처의 흉골마비토이드와 오모로이드 근육을 각각 찾습니다. 먼저 횡단 흉막 균 증 근육을 잘라 하 고 신중 하 게 미세 한 포셉을 사용 하 여 얇은 omohyoid 근육을 잘라. 이러한 근육이 제거되면 전방 끝에 있는 경동맥의 분기가 기관의 양쪽에 표시되며, SCG는 경동맥의 이 포크 아래에 위치합니다.</li>
		<li>닫힌 집게를 사용하여 경동맥을 부드럽게 들어 올려 SCG를 시각화합니다. SCG 양쪽에 하나의 포셉을 사용하여 경동맥을 꺼내 준비된 멸균 35mm2 접시로 옮깁니다. 이 조직은 가장 가능성이 경동맥, 노도스 신경리아와 미주 신경뿐만 아니라 지역에서 근육이나 지방의 다른 세그먼트를 포함 할 것이다.</li>
		<li>다른 쪽에서 해부 프로세스를 반복합니다. 아래에 설명된 나머지 해부 단계를 계속하기 전에 모든 배아에서 SCC를 제거하십시오. 조직 샘플의 처리를 용이하게하기 위해 35mm2 접시 중 두 개 사이에 격리 된 조직을 분배합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>SCG의 후처리<ol>
<li>해부된 조직에서 SCG를 분리하려면 먼저 미세 포셉을 사용하여 지방이나 근육과 같은 외부 조직을 제거하여 경동맥 양분 근처의 부위를 피하십시오.</li>
		<li>이러한 조직이 제거되면 두 개의 간골이 표시됩니다. SCG는 아몬드 모양의 반면 노도스 신경절은 작고 원형입니다. 미주 신경을 부드럽게 당겨 미주 신경과 노도스 신경리아를 경동맥에서 분리한 다음 경동맥에서 SCG를 분리합니다.</li>
		<li>미세 한 집게를 사용 하 여 SCG를 둘러싸는 캡슐을 제거 합니다. SCG를 새로운 35mm 문화 요리로 옮기. 모든 해부 된 조직 샘플로 프로세스를 반복합니다.</li>
		<li>소독된 면에 연결된 유리 파이펫을 해부 매체로 코팅하여 조직이 파이펫 벽을 준수하지 못하도록 합니다. 파이펫을 사용하여 해부 매체를 콜라게나아제 형 II(1 mg/mL)/해파형 II(5mg/mL)로 칼슘및 마그네슘이 없는 HBSS로 교체하고, 37°C에서 50분 동안 배양하여 조직을 분해하도록 돕습니다. 참고: 인큐베이션 시간은 콜라게나아제/디스파스의 다양한 배치로 최적화해야 할 수 있으며 일반적으로 40분에서 1시간 사이입니다.</li>
		<li>인큐베이션 중에 플레이트에서 DMEM을 흡인하고 0.3 mL의 제어 매체로 교체하십시오. 플레이트를 가습 챔버에 5% CO2 미만으로 35.5°C로 저장합니다.</li>
		<li>인큐베이션에 이어, 콜라게나아제/디스파제로 SCCG를 멸균 15mL 원문 튜브로 이송한다. 해부 매체를 사용하여 플레이트를 헹구고 용액을 튜브로 이송합니다. 볼륨을 약 10mL로 끌어올릴 수 있는 충분한 해부 미디어를 추가합니다.</li>
		<li>원심분리기200 x g g(1000 -1200 rpm)에서 실온에서 5분간 샘플을 펠릿합니다. 펠릿을 빼내지 않도록 주의를 기울여 초퍼를 흡인합니다. 10mL의 해부 매체로 펠릿을 다시 중단합니다. 원심분리를 반복하고 상체를 폐기합니다.</li>
		<li>배양 배지의 1 - 2 mL로 교체하십시오. 좁은 보어, 구부러진 팁 멸균 파스퇴르 파이펫 (배양 매체로 미리 코팅)을 사용하여, 기계적으로 5-6 시간을 세상화하여 덩어리를 해리. 큰 덩어리가 약 1 분 동안 정착하게하십시오. 새로운 10mL 튜브로 상체 세포 현탁액을 전송합니다.</li>
		<li>이 과정을 3회 더 반복하여 SCGs의 거의 완전한 해리를 보장하기 위해 매번 트리튜레이션의 힘이 증가합니다.</li>
		<li>볼륨을 8 - 10 mL로 끌어 올릴 수있는 충분한 문화 매체를 추가합니다. 셀 서스펜션을 부드럽게 혼합하고 세포 밀도를 혈종계로 정량화합니다.</li>
		<li>실험에 적합한 세포 밀도에서 세포 현탁액을 우물에 분배합니다. 도금 과정에서 세포 현탁액을 지속적으로 혼합하여 세포가 우물로 도용되도록 합니다. 참고: 형태학적 분석을 위해, 24개의 웰 플레이트와 유전체 및 프로테오믹 프로토콜에 약 8,000개의 세포/우물의 세포를 플레이트, 30,000개의 세포/웰만큼 높은 세포플레이트.</li>
		<li>플레이트를 바닥에 멸균된 물로 유리 건조기로 옮기면 가습 챔버를 만듭니다. 밀봉 전에 건조기에서 5%CO2 환경을 얻기 에 충분한 CO2(약 120mL)를 주입한다. 플레이트를 35.5°C로 유지합니다. 이를 프로토콜에서 0일이라고 합니다. 참고: 이 플레이트는 일반 5% CO2 인큐베이터에서도 유지할 수 있습니다. 위에서 설명한 방법은 온도 및 pH 변화를 최소화하고 교차 오염을 방지하는 데도 도움이 됩니다.</li>
	</ol></li>
</ol>5. 배양 된 SCG 뉴런 및 치료의 유지 보수
<ol><li>1일(도금 후 24시간)에 배양 매체의 절반을 주의 깊게 제거하고 2μM 아라-C(시토신 β-D-아라비노푸라노사이드, 항미토제)로 교체한다. 48 h의 세포에 치료를 둡니다. 일반적으로, 치료의이 길이 배양에서 비 신경 세포를 제거 하기에 충분 하다.</li>
	<li>3일째에는 중간 크기의 절반을 부드럽게 흡인하고 제어 매체로 교체합니다.</li>
	<li>4일째에, 세포는 실험적인 처리를 위한 준비가 되어 있습니다. 적절한 매체로 격일마다 배양을 공급하여 우물의 중간 크기의 절반을 신선한 매체로 부드럽게 대체합니다.</li>
	<li>세럼이 없는 배지에서 배양된 SCG 뉴런은 축축한 것만 확장합니다. 실험이 원점의 존재를 필요로하는 경우, 10 % 태아 송아지 혈청, 지하 막 매트릭스 추출물의 75-100 μg / mL 또는 뼈 형태 유전학 단백질-7의 50 ng / mL로 세포를 치료하십시오. 수지상 성장은 치료의 1 주일 이내에 관찰 정교한 수지상 식목처리48 시간 이내에 관찰된다.</li>
</ol>6. 면역 염색 배양 SCG 뉴런
<ol><li>0.1 M 인산염 완충제에서 4% 파라포름알데히드, pH 7.2를 연기 후드로 웰에 세포 배양 배지를 점진적으로 대체한다.<ol>
<li>우물의 배양 매체의 절반을 제거하고 4% 파라포름알데히드로 부드럽게 교체하십시오. 그런 다음 매번 미디어의 3분의 2를 제거하고 4%의 파라포름알데히드로 교체하여 적어도 두 번 이상 프로세스를 반복합니다. 이 과정이 끝나면 우물의 미디어 색상이 분홍색에서 무색으로 바뀌었어야합니다.</li>
		<li>모든 매체가 4% 파라포름알데히드로 대체되면 실온에서 15-20분 동안 우물을 배양합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>전술한 바와 유사한 공정으로, 4% 파라포름알데히드 용액을 인산염 완충식식염(PBS), pH 7.2로 점진적으로 대체한다. 5분간 그대로 둡니다. PBS로 5분 동안 우물을 두 번 더 헹구는 다.<ol>
<li>4% 파라포름알데히드가 제거되면 플레이트를 벤치탑으로 이동하여 추가 처리를 합니다. 이 단계는 플레이트를 하룻밤 사이에 4°C로 저장할 수 있는 좋은 정지 지점입니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>모든 PBS를 제거합니다. PBS에 0.1% 트리톤 X-100의 충분한 부피를 추가하여 세포를 덮습니다. 뉴런을 투과화하기 위해 5 분 동안 배양에 둡니다. 이 단계의 타이밍은 세포의 무결성을 유지하면서 좋은 염색을 보장하는 데 중요합니다.</li>
	<li>Triton X-100 용액을 조심스럽게 제거하고 PBS로 매번 5 분 동안 우물을 세 번 헹구습니다. PBS 솔루션을 제거합니다.</li>
	<li>PBS에 충분한 5% BSA를 추가하여 세포를 커버하고 20분 동안 실온에서 배양하여 비특이적 항체 결합을 줄입니다.</li>
	<li>차단 용액을 제거하고 PBS에서 5% BSA로 희석된 MAP-2 단백질에 대한 마우스 단일 클론 항체로 대체하십시오. 4°C에서 하룻밤 동안 세포에 1차 항체를 둡니다.</li>
	<li>제거하고 재사용을 위해 1 차 항체를 저장합니다. 1차 항체는 검출 강도의 손실 없이 적어도 두 번 재사용할 수 있다.</li>
	<li>세포를 덮을 충분한 PBS로 세 번 헹구는 다. 헹구기 당 10 분 동안 세포에 PBS를 둡니다.</li>
	<li>PBS 용액을 제거하고 PBS에서 5% BSA에서 1:1000 희석에서 형광 태그-공액 염소 대마우스 IgG 이차 항체로 교체하십시오. 실온에서 어둠 속에서 2 시간 동안 배양하십시오.</li>
	<li>이차 항체를 제거하고 PBS로 대체하십시오. 헹구기 당 10 분 동안 PBS로 우물을 세 번 헹구습니다. 우물을 물로 한 번 헹구어 소금을 제거합니다.</li>
	<li>형광 라벨이 부착된 시료에 적합한 수성 장착제 한 방울을 포함하는 유리 슬라이드에 커버립을 장착합니다. 슬라이드를 4°C에서 슬라이드 폴더에 저장하여 이미징을 준비합니다.</li>
</ol>7. 질량 분석과 결합된 액체 크로마토그래피를 사용하여 프로테오메의 분석을 위한 샘플 준비
<ol><li>배양 된 뉴런의 리시스<ol>
<li>우물의 모든 배양 매체를 부드럽게 제거합니다. 차갑고 멸균된 칼슘과 마그네슘이 없는 인산염 식염수(PBS), pH 7.4로 교체하십시오. 빨리 제거하고 PBS로 교체하고 5 분 동안 앉을 수 있습니다. 이 단계는 배양 매체에 존재하는 모든 단백질을 제거하기 위해 수행됩니다.</li>
		<li>특정 치료를 위해 모든 우물에서 모든 PBS를 조심스럽게 제거하십시오. 프로세스를 한 번 더 반복합니다. 세포를 용해할 때 얼음 위에 플레이트를 유지하여 신경 손상과 프로테오리시스를 최소화합니다.</li>
		<li>멸균 세포 스크레이퍼를 사용하여 우물 중 하나에 50mM 암모늄 중탄산염, pH 7.5 (NH4HCO3)의100 - 150 μL을 추가합니다. 마이크로 파이프를 사용하여 액체를 옮기고 특정 치료를 위해 모든 우물로 긁는 공정을 반복하십시오. 대부분의 세포가 제거되었는지 확인하기 위해 긁힌 후 현미경의 밑에 우물을 검사합니다.<ol>
<li>뉴런의 수가 적으면 제한된 부피를 사용하여 세포를 lyse하여 프로테오믹 분석을 위한 충분한 농도를 보장합니다.</li>
		</ol>
</li>
		<li>세포 용액을 밤새 -80 °C로 동결하여 세포 용액을 돕습니다. 용액은 추가 처리를 위해 준비될 때까지 이 단계에서 저장할 수 있습니다.</li>
		<li>해동되면 26 G 또는 28 G 바늘로 주사기를 통해 샘플을 분출하여 세포를 기계적으로 lyse하십시오.</li>
		<li>초음파 처리 수조에서 샘플을 10 분 동안 두 번 초음파 처리합니다. 수조에 얼음을 추가하여 단백질의 과열및 변질을 방지합니다. 원심분리기는 12,000 x g에서4 °C에서 5 분 동안.</li>
		<li>단백질 농도를 측정합니다. 일반적인 단백질 농도는 0.4- 1 μg/μL 범위</li>
	</ol>
</li>
	<li>프로테오메 분석을 위한 샘플 제제 및 트립신 소화<ol>
<li>최대 60μL 또는 50 μg의 단백질을 DNase, RNase 및 프로테아제없는 1.5 mL 튜브로 전달합니다. 용액의 부피가 60 μL 미만인 경우, 부피를 구성하기에 충분한 50mM 암모늄 중탄산염을 추가합니다.</li>
		<li>0.2%의 산성 비순계활성제와 소용돌이의 25 μL을 추가합니다. 튜브를 80°C의 블록 히터에 15분 동안 배양합니다. 30 s에 대 한 12,000 x g에서 튜브원심 분리.</li>
		<li>100mM 디티오스레이톨과 소용돌이의 2.5 μL을 추가합니다. 이것은 단백질을 alkylation 및 소화를 위해 더 접근하게 합니다. 튜브를 블록 히터에서 60°C에서 30분 동안 배양합니다. 실온과 원심분리기로 식힙니다.</li>
		<li>샘플 과 소용돌이에 300mM 요오도아세타미드의 2.5 μL을 추가합니다. 이 단계는 시스테인을 알킬 수 있도록 하고 이황화물 결합을 개혁하는 것을 방지합니다. 어둠 속에서 실온에서 튜브를 30분 동안 배양합니다.</li>
		<li>트립신에서 튜브에 질량 분광법 등급 트립신 (0.5 μg /μL)을 추가 : 1:10의 단백질 비율. 하룻밤 사이에 37°C에서 샘플을 소화합니다.</li>
		<li>5% 트리플루오로아세산(TFA)과 소용돌이의 10μL을 추가합니다. 샘플을 37°C에서 90분간 배양합니다. 이 단계는 질량 분석 중에 간섭을 방지하기 위해 산성 음순 계면활성제를 가수분해하는 데 필요합니다.</li>
		<li>원심 분리기 샘플을 4°C에서 4°C에서 30분 동안 12,000 x g로 원심분리하고, 프리 슬릿 테플론/실리콘 중격 캡을 장착한 크롬토그래피 인증 클리어 글래스 바이알로 상류체를 전달합니다. 샘플은 질량 분석 전에 -20°C에서 저장할 수 있습니다.</li>
		<li>고화질 질량 분석과 결합된 액체 크로마토그래피에 샘플 바이알을 피사체.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

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이 논문은 배아 쥐 새끼의 우수한 자궁 경부 신경교에서 동정 신경을 배양하기위한 프로토콜을 설명합니다. 이 모델 시스템을 사용하는 장점은 성장 인자에 유사한 반응을 제공하는 뉴런의 균일한 집단을 얻을 수 있고, 이러한 뉴런에 대한 성장 인자 요구 사항이 잘 특징적이기 때문에, 혈청이 없는 조건 하에서 정의된 매체에서 이러한 뉴런을 성장시킬 수있다. 프로토콜은 E21 쥐 새끼로부터 SCG를 격리하는 과정을 설명하지만, 이 프로토콜은 E17에서 E21까지 의 랫 트 새끼에서 SCG의 해부및 배아 마우스 SCG10,,22,,23의해부에 사용될 수 있다. 이 해부 프로토콜은 또한 초기 단계에 사소한 수정과 산후 쥐에서 SCG를 격리하는 데 사용할 수 있습니다. 이러한 수정에는 C-섹션에 대한 필요성 제거, 이산화탄소를 이용한 산...

Sympathetic neurons derived from embryonic superior cervical ganglia (SCG) have been widely used as a primary neuronal culture system for studying many aspects of neuronal development including growth factor dependence, neuron-target interactions, neurotransmitter signaling, axonal growth, dendrite development and plasticity, synaptogenesis and signaling mechanisms underlying nerve-target/neuron-glia interactions1,2,3,4,5,6,7,8,9. 그들의 작은 크기에도 불구하고 (약 10000 뉴런 / 신경망), 개발및이 문화 시스템의 광범위한 사용에 대한 세 가지 주요 이유가 있다 i) 공감 체인의 첫 번째 신경리아인, 그들은 더 크고, 따라서 분리하기 쉽게, 공감 신경리아의 나머지 부분보다10; ii) 중앙 뉴런과는 달리, SCG의 뉴런은 신경 문장에서 파생되는 모든 뉴런과 상당히 균일하며 비슷한 크기를 가지고 있으며 신경 성장 인자에 대한 의존도 도 성상입니다. 이는 형태학적 및 유전체연구를 위한 귀중한 모델로 만들며,10, 11 및 iii) 이들 뉴런은 한 달,10,,12이상신경 성장 인자를 함유하는 정의된 혈청 없는 배지에서 유지될 수 있다.10 주산기 SCG 뉴런은 2의 개시 및 유지 보수의 기초메커니즘을 연구하기2위해 광범위하게 사용되어 왔다. 이는 주로 SCG 뉴런이 생체 내 광범위한 수지상 식목을 가지고 있지만, 혈청이 없는 경우 시험관 내 의 원더라이트를 연장하지 는 않지만 뼈 형태유전학 단백질2,,12,,13과같은 특정 성장 인자의 존재속에서 원더라이트를 성장하도록 유도될 수 있기 때문이다.
이 논문은 배아 쥐 SCG 뉴런을 격리하고 배양하기 위한 프로토콜을 설명합니다. 지난 50 년 동안, SCG에서 1 차적인 신경 배양은 대규모 게놈 또는 proteomic 변경을 검토하는 연구의 제한된 수와 형태학 연구에 주로 사용되었습니다. 이것은 주로 DNA 또는 단백질의 낮은 양의 격리의 결과로 작은 조직 크기 때문, 이러한 뉴런에 게놈과 proteomic 분석을 수행 하기 어렵게. 그러나, 최근 몇 년 동안, 검출 감도가 증가하여 수지상 성장 발달 동안 SCG 뉴런에서 게놈, miRNome 및 프로테아메를 검사하는 방법의발달을가능하게 했다14,15,,16,,17. 이 논문은 또한 질량 분광 분석을 위한 신경 단백질 추출물을 얻기 위하여 면역 세포화학 및 프로토콜을 사용하여 이 뉴런의 형태학 분석을 위한 방법을 설명할 것입니다.

<table><tbody><tr><td>2D nanoACQUITY</td><td>Waters Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>중탄산암모늄</td><td>시그마-알드리치</td><td>9830</td><td></td></tr><tr><td>BMP-7</td><td>R& D Systems</td><td>354-BP</td><td></td></tr><tr><td>소 혈청 알루민</td><td>시그마-알드리치</td><td>5470</td><td></td></tr><tr><td>세포 스크레이퍼</td><td>코닝</td><td>CLS-3010</td><td></td></tr><tr><td>콜라겐 분해 효소</td><td>Worthington Biochemical</td><td>4176</td><td></td></tr><tr><td>Corning Costar 또는 Nunc 평평한 바닥 세포 배양 플레이트</td><td>Fisher Scientific</td><td>07-200, 140675, 142475</td><td></td></tr><tr><td>Cytosine- &beta;- D-arabinofuranoside</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C1768</td><td></td></tr><tr><td>D-phosphate 완충 식염수(칼슘 및 마그네슘 무함유)</td><td>ATCC</td><td>30-2200</td><td></td></tr><tr><td>Dispase II</td><td>Roche</td><td>4942078001</td><td></td></tr><tr><td>증류수</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15230</td><td></td></tr><tr><td>디티오트레이톨</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D0632</td><td></td></tr><tr><td>DMEM - 저포도당 + 글루타민, + 피루브산 나트륨</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11885</td><td></td></tr><tr><td>지방산 무함유 BSA</td><td>Calbiochem</td><td>126609</td><td>저포도당 DMEM</td></tr><tr><td>미세 집게 Dumont no.4 및 no.5</td><td>Ted Pella Inc</td><td>5621, 5622</td><td></td></tr><tr><td>해부용 집게 및 가위</td><td>Ted Pella Inc</td><td>1328, 1329, 5002</td><td></td></tr><tr><td>유리 덮개 - 12mm</td><td>Neuvitro Corporation</td><td>GG-12</td><td></td></tr><tr><td>Goat-Anti Mouse IgG Alexa 488 conjugated</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A32723</td><td></td></tr><tr><td>Ham's F-12 Nutrient Mix</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11765</td><td></td></tr><tr><td>Hank's balanced salt soltion (칼슘 및 마그네슘 free)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14185</td><td></td></tr><tr><td>인슐린-셀레늄-트랜스페린(100X)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>41400-045</td><td></td></tr><tr><td>Iodoacetamide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3221</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>25030</td><td></td></tr><tr><td>Leibovitz L-15 medium</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>11415064</td><td></td></tr><tr><td>유리 커버슬립용 마운팅 미디어</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>P36931, P36934</td><td></td></tr><tr><td>Mouse-anti-MAP2 항체 (SMI-52)</td><td>BioLegend</td><td>SMI 52</td><td></td></tr><tr><td>신경 성장 인자</td><td>Envigo Bioproducts (이전 Harlan Bioproducts)</td><td>BT5017</td><td>재고 125 &mu; DMEM</td></tr><tr><td>파라포름알데히의</td><td>0.2</td>% 프리오넥스 중 g/mL 페니실린-스트렙토마이신<td>(100X</td><td></td></tr><tr><td>)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>폴리-D-라이신</td><td>시그마-알드리치</td><td>P0899</td><td></td></tr><tr><td>프리오넥스</td><td>밀리포어</td><td>529600</td><td>10% 용액, 100mL</td></tr><tr><td>RapiGest SF</td><td>Waters Corporation</td><td>186001861</td><td>5 X 1 mg</td></tr><tr><td>Synapt G2 고화질 질량 분석기</td><td>Waters Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Trifluoro acetic acid - 시퀀싱 등급</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>28904</td><td>10 X 1 mL</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X100</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin</td><td>Promega 또는 NEB</td><td>V511A, P8101S</td><td>100 &mu; g 또는 5 X 20 mg</td></tr><tr><td>Waters 총 회수 바이알</td><td>Waters Corporation</td><td>186000385c</td><td></td></tr></tbody></table>

형태학적 및 프로테오믹 분석을 위한 배아 우수한 자궁 경부 간리아에서 쥐 동정 신경을 배양

Culturing Rat Sympathetic Neurons from Embryonic Superior Cervical Ganglia for Morphological and Proteomic Analysis

배아 쥐 우수한 자궁 경부 신경리아 (SCG)에서 동정 뉴런은 축축성장, 축축인 인신 매매, 시냅토 발생, 수지상 성장, 수지상 가소성 및 공동 배양 시스템에서 신경 표적 상호 작용을 연구하기 위해 말초 뉴런을위한 시험관 내 모델 시스템으로 사용되어 왔다. 이 프로토콜은 E21 쥐 배아의 우수한 자궁 경부 중화로부터 뉴런의 격리 및 해리를 설명하고, 혈청이없는 배지에서 순수한 뉴런 배양의 준비 및 유지 보수에 따른다. 뉴런은 코팅되지 않은 플라스틱을 부착하지 않기 때문에 뉴런은 12mm 유리 커버립 또는 폴리 D-리신으로 코팅된 6웰 플레이트에서 배양됩니다. 항미항제(Ara-C, cytosine β-D-arabinofuranoside)로 치료한 후, 이 프로토콜은 체외에서 한 달 이상 유지될 수 있는 5% 미만의 비신경 세포를 가진 건강한 뉴런 배양을 생성합니다. 배아 쥐 SCG 뉴런은 생체 내 5-8 원원염으로 다극성이지만; 혈청없는 조건하에서, 이 뉴런은 문화에 있는 단 하나 축록소를 확장하고 문화의 기간 동안 단극성 계속합니다. 그러나, 이들 뉴런은 지하 막 추출물, 뼈 형태유전학 단백질(BMP) 또는 10% 태아 종아리 혈청이 존재하여 수상월을 연장하도록 유도될 수 있다. 이러한 균질성 신경 배양은 면역 세포화학 염색 및 생화학 연구에 사용될 수 있습니다. 이 논문은 또한 이러한 뉴런에서 미세 투과 관련 단백질-2 (MAP-2)에 대한 면역 세포화학 염색및 질량 분석법을 위한 신경 추출물의 제조를 위한 최적화된 프로토콜을 설명합니다.

배아 SCG 뉴런의 신경 배양을 고립시키고 유지 쥐 배아 SCG로부터 해리된 세포는 폴리-D-리신 코팅 플레이트 또는 커버슬립으로 도금되어 b-신경 성장 인자를 함유한 혈청 자유 배양 배지에서 유지하였다. 뉴런과 신경교 세포의 혼합물을 포함하는 해리된 세포는 도금 시 원형으로보입니다(도 1A). 도금 24시간 이내에 뉴런은 국외 세포가 평평해지고 위상 암흑이 나타나는 작은 축축 과정을확장합니다(그림 1B). 아라-C로 치료한 후, 교반세포의 99%가 제거되고 배양은 타원형 세포 체, 광범위한 축축산 및 훈장 없음을 가진 주로 뉴런 세포를 함유하고있다(도 1C).
배양 배아 쥐 우수한 자궁 경부 신경신경의 면역 세포화학 염색 이전 연구에 따르면 혈청이 ...

이 논문은 우수한 자궁 경부 신경교에서 배아 쥐 동정 뉴런의 격리 및 배양에 대해 설명합니다. 또한 면역 세포화학 염색및 질량 분광 분석을 위한 신경 추출물을 준비하기 위한 상세한 프로토콜을 제공합니다.

Sympathetic neurons from the embryonic rat superior cervical ganglia (SCG) have been used as an in vitro model system for peripheral neurons to study ...

이 비디오에서는 형태학적 및 양성 분석을 위한 배아 쥐의 우수한 자궁 경부 간질의 배양을 시연할 것입니다. 해부를 시작하기 전에 제어 및 해부 미디어를 준비합니다. 대조군 배지는 인슐린 셀레늄-트랜스퍼린 혼합물, 글루타민, 신경 성장 인자 및 BSA로 보충된 F-12 및 저혈당 DMEM을 함유하고 있습니다.해부 매체에는 펜 스트렙과 BSA로 보충된 L-15가 포함되어 있습니다. 미디어 준비를 위한 자세한 프로토콜은 원고를 참조하십시오. 뉴런을 배양하기 위한 플레이트 준비.폴리-D-리신의 밀리리터 스톡당 1밀리그램을 멸균 증류수로 밀리리터당 100 마이크로그램으로 희석합니다. proteomic 또는 유전체 분석을 위해, 해부 1~2일 전에, 폴리 D-리신의 밀리리터 당 약 2밀리리터의 멸균 100그램으로 6웰 플레이트를 코팅합니다. 이것은 우물에 세포 접착을 보장하기 위해 필요합니다.접시를 필름으로 감싸고 접시를 섭씨 4도에 밤새 보관합니다. 해부의 날에, 해부의 시작 전에, 우물에서 폴리 D-lysine 용액을 제거하고 멸균 증류수와 함께 우물을 5 번 헹구고, 낮은 포도당 DMEM으로 한 번. 간질의 효소 소화 동안, 세포를 도금하기 전에 약 한 시간, 플레이트에서 DMEM을 흡인하고 제어 매체의 0.3 밀리리터로 대체.가습 챔버에 5 % CO2 에서 35도의 섭씨 35도에 접시를 보관하십시오. 후드에 해부에 대한 다음 항목을 설정합니다. 각 튜브에 약 20 밀리리터의 해부 미디어가 있는 4개의 50 밀리리터 멸균 원내 튜브.해부 매체의 1.5 밀리리터와 네 멸균 35 밀리미터 요리. 원심분리용 해부 미디어 20밀리리터가 있는 멸균 50 밀리리터 원뿔관 1개. 15 밀리리터 살균 원추형 튜브 원심분리용, 분리된 세포를 수집하기 위한 멸균 10 밀리리터 튜브 1개.마른 구슬 소독기를 사용하여 미세 한 쌍의 미세 한 집게를 1 분 이상 살균하십시오. 동물과 관련된 연구에서 수행 된 모든 절차는 캘리포니아 세인트 메리 대학의 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었습니다. 캘리포니아 세인트 메리 대학의 동물 관리 및 사용 지침은 국립 보건 원의 실험실 동물 복지 사무소가 제공하는 지침에 따라 개발되었습니다.임신 한 쥐에서 E21 배아의 제거. 주변 지역이 철저히 살균되면 자궁 경적을 후드 외부에서 제거할 수 있습니다. CO2 흡입으로 임신 한 쥐를 안락사시하십시오.복부 부위의 털을 전단하고 70 %의 알코올로 부위의 피부를 닦아 살균하십시오. 멸균 가위와 집게의 신선한 세트를 사용하여, 피부를 통해 잘라 다음 배아를 포함하는 자궁 뿔을 노출하는 근육을 잘라. 배아와 자궁 경적을 제거, 가위와 집게의 새로운 세트를 사용하여, 과정에서 내장을 손상시키지 않도록주의.배아로 자궁 경적을 150mm 멸균 페트리 접시로 옮기고 후드로 옮긴다. 새로운 집게와 가위를 사용하여 자궁 경적에서 배아를 제거하고 양막과 태반에서 배아를 분리합니다. 배아를 안락사시키기 위해 오른팔 아래 의 중간선을 따라 배아의 척수를 잘라냅니다.이것은 SCG의 제거 도중 경동맥에서 출혈을 감소시킬 것입니다. 이러한 배아를 해부 매체를 포함하는 제조된 50 밀리리터 원내 튜브로 이송한다. 배아가 미디어에 잠겨 있는지 확인합니다.각 튜브는 최대 3개의 배아를 보유할 수 있습니다. 배아로부터 우수한 자궁 경부 신경절의 격리. 해부 매체에서 1개의 새끼를 멸균 150mm 페트리 접시에 기판에 등쪽 표면이 있는 고체 기판으로 반으로 채워지도록 옮긴다.멸균 23 게이지 바늘 3개를 사용하여 각 팔 아래에 바늘 1개, 입을 통해 세 번째 바늘로 술집을 접시에 고정하여 목을 조심스럽게 확장합니다. 멸균 미세 포셉을 사용하여 목 부위의 피부를 잘라 내어 침샘을 노출시합니다. 미세 한 집게를 사용 하 여 이 땀샘을 제거 합니다.쇄골과 기관 부근의 흉골마비토이드와 오모로이드 근육을 각각 찾습니다. 첫째, 횡단 흉골 균증 근육을 잘라. 그런 다음 미세 한 포셉을 사용하여 얇은 오모로이드 근육을 조심스럽게 잘라냅니다.이러한 근육이 제거되면 전방 끝에 있는 경동맥의 양분은 경동맥의 이 포크 아래에 위치한 SCG와 함께 기관 양쪽에서 볼 수 있습니다. 닫힌 집게를 사용하여 경동맥을 부드럽게 들어 올려 SCG를 시각화합니다. SCG 양쪽에 하나의 포셉을 사용하여 경동맥을 꺼내 준비된 멸균 35mm 요리로 옮깁니다.이 조직은 가장 가능성이 경동맥, 노도스 신경리아와 미주 신경, 뿐만 아니라 지역에 근육이나 지방의 다른 세그먼트를 포함 할 것이다. 다른 쪽에서 해부 프로세스를 반복합니다. 설명된 나머지 해부 단계를 계속하기 전에 모든 배아에서 SCC를 제거합니다.조직 샘플의 처리를 용이하게하기 위해 35 밀리미터 접시 의 두 사이에 고립 된 조직을 분배. SCG의 후처리. 해부된 조직에서 SCG를 분리하려면 먼저 미세 포셉을 사용하여 근육이나 지방과 같은 외부 조직을 제거하여 경동맥 양분 근처의 부위를 피하십시오.이러한 조직이 제거되면 두 개의 간골이 표시됩니다. SCG가 아몬드 모양인 동안 노도스 신경절은 작고 원형입니다. 미주 신경을 부드럽게 당겨 미주 신경과 노도스 신경을 경동맥으로부터 분리한 다음 SCG를 경동맥에서 분리합니다.미세 한 집게를 사용 하 여 SCG를 둘러싸는 캡슐을 제거 합니다. SCG를 새로운 35mm 문화 요리로 옮기. 해부된 모든 조직 샘플로 이 과정을 반복하십시오.소독된 면에 연결된 유리 파이펫을 해부 매체로 코팅하여 조직이 파이펫 벽을 준수하지 못하도록 합니다. 파이펫을 사용하여 해부 매체를 콜라게나아제 타입 II의 멸균 2밀리리터로 대체하고, 칼슘과 마그네슘이 없는 HBSS의 II형 II를 해체하고, 37°C에서 50분 동안 배양하여 조직을 분해합니다. 인큐베이션 시간은 콜라게나아제/디스파제의 다양한 배치로 최적화해야 할 수 있으며 일반적으로 40분에서 1시간 사이입니다.인큐베이션에 따라 SCCG와 콜라게나아제/디스파제를 멸균 15 밀리리터 원옥 튜브로 옮기십시오. 해부 매체를 사용하여 플레이트를 헹구고 용액을 튜브로 이송합니다. 볼륨을 약 10 밀리리터에 가져올 수 있도록 충분한 해부 미디어를 추가합니다.원심분리기200 x g, 1, 000 ~ 1, 200 rpm에서 실온에서 5분간 샘플을 펠릿합니다. 펠릿을 빼내지 않도록 주의를 기울여 초퍼를 흡인합니다. 해부 매체의 10 밀리리터로 펠릿을 다시 중단하고 원심분리를 반복하고 상퍼를 폐기하십시오.배양 배지의 1~2밀리리터로 교체하십시오. 좁은 보어, 구부러진 팁 멸균 파스퇴르 파이펫을 사용하여 배양 매체로 미리 코팅하고, 5~6회 부드럽게 삼중하여 덩어리를 기계적으로 분리합니다. 더 큰 덩어리가 약 1 분 동안 정착하고 새로운 10 밀리리터 튜브로 상체 세포 현탁액을 전달하십시오.SCC의 거의 완전한 해리를 보장하기 위해 매번 트리튜션의 힘이 증가함에 따라 이 과정을 세 번 더 반복합니다. 볼륨을 8~10밀리리터로 가져올 수 있는 충분한 문화 매체를 추가합니다.셀 서스펜션을 부드럽게 혼합하고 세포 밀도를 혈종계로 정량화합니다. 실험에 적합한 세포 밀도에서 세포 현탁액을 우물에 분배합니다. 도금 과정에서 세포 현탁액을 지속적으로 혼합하여 세포가 우물로 도용되도록 합니다.형태학적 분석을 위해, 24웰 플레이트에서 우물당 약 8, 000개의 세포를 플레이트. 그리고 게놈 및 프로테오믹 프로토콜을 위해, 세포를 30, 000 세포만큼 높게 플레이트한다. 플레이트를 바닥에 멸균된 물로 유리 건조기로 옮기면 가습 챔버를 만듭니다.밀봉 하기 전에 건조기에서 5%의 CO2 환경을 얻기 위해 충분한 CO2, 약 120 밀리리터를 주입하십시오. 플레이트를 섭씨 35.5도에서 유지합니다. 이를 프로토콜의 일 제로라고 합니다.이 플레이트는 또한 일반 5% CO2 인큐베이터에서 유지 관리할 수 있습니다. 위에서 설명한 방법은 온도 및 pH 변화를 최소화하고 교차 오염을 방지하는 데도 도움이 됩니다. 배양 된 SCG 뉴런 및 치료의 유지 보수.이 사진은 0일, 1일, 5일째에 해리된 우수한 자궁경부 간질 세포를 보여줍니다. 하루 제로 이미지는 도금 시 셀을 보여줍니다. 제로 일째에 도금된 세포는 뉴런 과 비 신경 세포의 혼합물을 포함합니다.도금 후 24시간 후인 첫날, 배양 매체의 절반을 조심스럽게 제거하고 2개의 마이크로몰라 아라-C, 시토신 D-아라비노푸라노사이드, 항미토제로 대체한다. 48 시간 동안 세포에 치료를 둡니다. 일반적으로 이 치료 기간은 배양시 비신경 세포를 제거하기에 충분합니다.셋째 날에는 중간 크기의 절반을 부드럽게 흡인하고 제어 매체로 교체하십시오. 4일째에, 세포는 실험적인 처리를 위한 준비가 됩니다. 적절한 매체로 격일 마다 배양에 공급합니다.중간 크기의 절반을 신선한 매체로 부드럽게 교체합니다. 5일째 그림은 수지상 성장이 관찰되지 않은 광범위한 축축 성장을 보여줍니다. 수지상 성장을 유도하기 위해, 뉴런은 Matrigel에서 성장하거나 뼈 형태 유전학 단백질-7의 밀리리터 당 10% 혈청 또는 50 나노그램으로 치료될 수 있습니다.그림 2 BMP-7 치료 다음 E21 쥐 SCG 뉴런의 신경 형태에 변화를 보여줍니다. 대표적인 상 대비 현미경 10X 배율에서 10 X 배율은 패널 A의 조절 뉴런에 축축이 있는 원형 뉴런 세포 체를 보여주고, 패널 B.Cultured SCG 뉴런의 화살표에 의해 나타난 BMP-7로 치료할 때 여러 개의 짧은 원더라이트 와 같은 과정을 가진 뉴런은 적절한 치료법에 따른 면역세포화학적 염색을 이용한 형태학적 분석에 사용될 수 있다. , 프로테오믹 분석 등. 프로테오믹 분석을 위한 면역스테인링 및 샘플 준비를 위한 상세한 프로토콜을 위한 원고를 참조하십시오.도 3은 배양 배아 쥐 교감 뉴런에서 MAP-2 단백질로부터 면역 염색을 나타낸다. 패널 A를 통해 D쇼 는 제어 매체와 패널 E로 처리 된 SCG 뉴런을 5 일 동안 밀리리터 당 50 나노 그램에서 BMP-7로 치료한 뉴런을 보여줍니다. C및 G에서 마이크로튜트 단백질-2를 가진 뉴런의 면역세포화학적 염색을 보여주는 대표적인 현미경 사진, B와 F의 위상 대비 현미경으로 D와 H의 핵 얼룩, 마이크로튜트 단백질-2로부터 염색하는 A 및 D.면역세포화학적 염색의 3개의 채널이 나타나고 패널 C.에서 제어 뉴런의 근접 축축이 패널 C.와 세포 체내MAP-2 단백질에서 염색되고 BMP-7 처리된 뉴런의 원회자는 패널 G.Here에 1, 100단백질을 검출한 대조군으로 처리된 우수한 자궁경부 간리아의 샘플 실행이다.팬더 데이터베이스를 이용한 유전자 종양학은 단백질의 대부분이 세포질이었다는 것을 것을을 발견했습니다. 그러나, 견본에 있는 세포 접합에 막 결합 단백질 및 단백질이 있었습니다. 이 분석은 또한 신경 신호 경로의 넓은 배열에서 관련시키는 단백질이 견본에서 검출되었다는 것을 밝혔습니다.결론적으로, 이 비디오를 본 후에, 당신은 형태학 및 proteomic 분석을 위한 우수한 자궁 경관 신경절 신경절 신경세포를 격리하고 배양할 수 있어야 합니다. 이 작품은 캘리포니아 세인트 메리 대학의 교수 개발 기금과 여름 연구 프로그램에 의해 지원되었다.

culturing-rat-sympathetic-neurons-from-embryonic-superior-cervical

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

형태학적 및 단백질체학 분석을 위한 배아 상경부핵(Embryonic Superior Cervical Ganglia)에서 쥐 교감신경 뉴런(Rat Sympathetic Neurons from Embryonic Superior Cervical Ganglia) 배양

이것은 갓 태어난 새끼 쥐의 우수한 경추 신경 (SCG)에서 기본 교감 신경을 분리하고 문화하는 방법을 설명하는 프로토콜입니다.

쥐 우수한 자궁암 신경 (SCG)에서 Culturing 교감 신경에 대한 프로토콜

우리는 선택적으로 perinatal 쥐의 우수한 경추 신경 (SCG)에서 dissociated 주요 동정 뉴런의 돌기 성장을 유도하는 뼈 morphogenetic 단백질 7 (BMP-7) 또는 Matrigel을 사용하는 프로토콜을 설명합니다.

교양 공감 뉴런의 돌기 성장을 유도

프로토콜은 헤르페스 바이러스 1 형 (HSV-1) 대기 시간과 재활 성화를 단순 공부하는 효율적이고 재현성 모델 시스템을 설명합니다. 분석은 동질적인 교감 신경 세포 배양을 고용하고 RNA 간섭 및 재조합 단백질의 표현을 포함한 다양한 도구를 사용하여 바이러스 신경 세포 상호 작용의 분자 해부을 허용합니다.

헤르페스의 연구를위한 예비 신경 세포 문화 시스템은 바이러스 지연 및 재가입을 단순

이 비디오는 쥐 배아에서 등뿌리 신경절(DRG) 뉴런을 분리하고 슈반 세포 전구체와 공동 배양하여 성숙한 슈반 세포를 생성하는 절차를 보여줍니다. 분리된 DRG는 뉴런과 신경교세포를 분리하기 위해 처리됩니다. 분리된 세포를 배양하여 뉴런을 정제한 다음, 공동 배양 배지에서 슈반 세포 유사 세포(SCLC)와 공동 배양합니다. DRG 뉴런과의 상호 작용은 SCLC가 슈반 세포로 성숙하도록 유도합니다.

DRG 뉴런의 분리 및 Schwann 세포 전구체와의 공동 배양을 통해 Schwann 세포 생성

이 비디오는 쥐의 척추에서 등뿌리신경절(DRG) 세포를 분리하고 배양하는 기술을 보여줍니다. 척추에서 절제된 DRG는 효소로 처리되고 기계적으로 해리되어 단일 세포 현탁액을 얻습니다. 세포는 각각 신경교세포 증식을 제한하고 신경 세포 성장을 촉진하는 억제제와 성장 인자를 포함하는 배지에서 배양됩니다.

쥐의 척추 기둥에서 1차 등뿌리 신경절 세포 배양 확립

여기 SCS는 확장 axons을 함께 개발 할 수 있습니다하는 Schwann 세포 (SC) 마이그레이션 분석을 설명합니다.

성장 Axons 함께 손쥐 Schwann 세포 개발 분석

유도만능줄기세포(iPSC), 일차 피질 뉴런 및 성상세포에서 유래한 뉴런으로 구성된 공동 배양 시스템을 생성하는 프로토콜에 대해 설명합니다. 이 공동 배양 시스템을 통해 새로운 iPSC 유래 뉴런과 채널로돕신-2를 발현하는 기존 피질 뉴런 사이의 시냅스 접촉 및 회로 형성을 감지할 수 있습니다.

공동 문화 시스템에 신경 연결의 형성을 평가하기위한 Optogenetic 접근

주요 골반 신경절은 골반 기관을 속이 되는 부교감 및 교감 신경세포를 포함합니다. 여기에서 우리는 해부 방법을 설명하고 이 중추및 관련 신경의 확인을 위한 회로도를 제공합니다. 이들 방법은 추가 연구를 위해 생체 내 이러한 중추골의 실험적 조작 또는 제거 사후 처리에 적용될 수 있다.

남성과 여성 쥐에서 골반 자율 신경절 및 관련 신경의 해부

심장 자율 신경계의 병리학적 변화, 특히 교감 지점에서 심실 부정맥의 발병 및 유지 보수에 기여합니다. 본 프로토콜에서, 우리는 근본적인 분자 및 세포 프로세스의 이해를 향상시키기 위하여 murine stellate ganglia를 특성화하는 방법을 보여줍니다.

뮤린 스텔레이트 갠리온의 위치, 해부 및 분석

이 프로토콜은 우수한 자궁경부 및 성상 신경절, 세포 해리, 동결보존, 핵 분리 및 해시태그 바코딩을 포함하는 단일 핵 시퀀싱을 위한 상세하고 낮은 입력 샘플 준비를 설명합니다.

단일 핵 RNA 시퀀싱을 위한 마우스 교감신경 신경절의 바코드된 항체를 사용한 저입력 핵 분리 및 멀티플렉싱

본 프로토콜은 상부 경추 신경절을 식별하고 절제함으로써 아드레날린성 신경 분포를 절제하는 마우스 모델을 설명합니다.

쥐 모델에서 우수한 자궁경부 신경절 절제술을 위한 수술 기법

배우세요 쥐 배아 우수한 자궁 경부 간리아에서 교감 신경 세포를 배양하는 방법을. 면역세포화학 염색과 질량 분석을 활용한 형태학적 및 프로테오믹 분석을 통해 신경 발달 메커니즘을 연구할 수 있습니다.

형태학적 및 프로테오믹 분석을 위한 배아 우수한 자궁 경부 간리아에서 쥐 동정 신경을 배양

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